Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Особенности разложения древесины грибами, вызывающими коррозию и делигнификацию

Диссертация: Особенности разложения древесины грибами, вызывающими коррозию и делигнификацию
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

При заготовке образцов необходимо учитывать, что химический состав одной и той же породы (ботанического вида) древесины не является строго постоянным и изменяется в зависимости от географической зоны произрастания, места произрастания, возраста дерева, а иногда и времени рубки. Даже в стволе одного и того же дерева могут наблюдаться заметные отличия в содержании отдельных компонентов, как… Читать ещё >

Особенности разложения древесины грибами, вызывающими коррозию и делигнификацию (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Предисловие
  • Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Химический состав древесины
      • 1. 1. 1. Целлюлоза
      • 1. 1. 2. Гемицеллюлозы
      • 1. 1. 3. Лигнин
    • 1. 2. Типология гнилей на основе химических изменений при ксилолизе
      • 1. 2. 1. Деградация
      • 1. 2. 2. Деструкция
      • 1. 2. 3. Коррозия
    • 1. 3. Механизм разрушения лигнина
    • 1. 4. Значение ксилолиза в лесных экосистемах
    • 1. 5. Применение ксилолитических процессов в биотехнологиях

Настоящая работа выполнена на кафедре общей экологии, физиологии и анатомии растений Санкт-Петербургской государственной лесотехнической академии при прохождении курса аспирантуры в 2006;2009 г. под руководством д.б.н., профессора и зав. кафедрой В. А. Соловьева и была бы невозможна без регулярных консультаций и методических указаний д.х.н., профессора, зав. кафедрой химии древесины, физической и коллоидной химии В. И. Рощина. При проведении серии хроматографических анализов автору оказали помощь к.т.н. Л. П. Белов и к.т.н. Е. В. Гриненко. За регулярную поддержку и неиссякаемый интерес к предмету исследований хотелось бы поблагодарить к.б.н. О. Н. Малышеву и студентку М. В. Лазареву.

Всем перечисленным лицам выражаю свою искреннюю признательность.

Актуальность проблемы. Современный интерес, связанный с изучением ксилотрофных грибов (КТГ), продиктован как прикладными, так и фундаментальными аспектами научного поиска. Исторически изучение этих грибов было связано с практической необходимостью хранения круглого леса и защиты древесины в деревянных конструкциях и сооружениях [Вакин, 1964].

В настоящее время исследования уникальных особенностей КТГ формируют самостоятельные направления, ориентированные на нужды отдельных отраслей промышленности. Наибольший интерес привлекает уникальная группа лигнинразрушающих грибов, вызывающих белую гниль древесины. От других грибов их отличает способность к синтезу оксидазных ферментов, позволяющих разрушать лигнин, являющийся наиболее устойчивым компонентом клеточной стенки [Головлева, Мальцева, 1986; Crawford, 1981; Kirk, Farell, 1987; Cullen, Kersten 2004]. Неспецифический характер действия и высокий окислительный потенциал этих ферментов позволяет использовать их для разрушения органических загрязнителей (диоксинов, пентахлорфенолов, полиароматических углеводородов), очистки сточных вод пищевых, текстильных и целлюлозно-бумажных фабрик [Bezalel et al., 1996; Eggen, Majcherczyk, 1998; Lamar et al., 1999; Raghukumar, Rivonkar, 2001]. В лесопромышленном комплексе (ЛПК) природные особенности этих грибов можно использовать для биологической отбелки целлюлозы [Александрова, Медведева, 1999; Jasper et al., 1994], а также получения модифицированной древесины с заданными свойствами и древесностружечных плит [Кадималиев и др., 2001; Рабинович и др., 2001], не требующих применения синтетических смол. Древесные отходы лесопромышленного комплекса, прошедшие предварительный процесс ферментации, можно использовать в энергетике для получения этанола [Kim,.

Dale, 2004; Dashtban et al., 2009], а в сельском хозяйстве — для кормления домашних жвачных животных [Малышева и др., 1986; Albores et al., 2006].

В производстве бумаги и целлюлозных полуфабрикатов лигнин является нежелательным компонентом. От него избавляются, используя вредные химические соединения или энергоемкие термомеханические способы, приносящие вред окружающей среде прямыми или косвенными путями. Среди лигнинразрушающих грибов есть организмы способные на ранних стадиях разложения древесного субстрата избирательно разрушать лигнин, без существенной потери целлюлозного компонента [Соловьев, 1986; Kirk et al., 1997]. Использование таких организмов могло бы значительно изменить технологические схемы, наносящие непоправимый ущерб природе, приблизив их к биосферным процессам. В этом направлении с 1985 г. в России интенсивно изучается Phanerochaete sangidnea (Fr.) Pouzar [Соловьев и др., 1985], а за рубежом с 1990 г. — Ceriporiopsis subvermispora (Pilat) Gilb. et Ryvarden [Setliff et al., 1990].

Одновременно с практическими задачами необходимо уделить внимание расширению знаний о функциональной роли КТГ в лесных экосистемах, прежде всего, уточнению типологии и скорости ксилолиза. Необходимо дать оценку роли КТГ в формировании древесного детрита, превращении органического углерода в двуокись углерода, высвобождении минеральных и органических соединений в процессе ксилолиза древесных остатков и вовлечении их в естественный круговорот [Мухин, 1981; Соловьев и др., 1992].

Современная классификация грибов по типам гнили указывает на разные способы воздействия грибов на древесину — главнейший продукт леса, но о вкладе отдельного типа разложения в общий поток редукции органического вещества в лесных экосистемах известно мало. Поэтому необходимо детальное изучение грибов, вызывающих коррозию и делигнификацию, для выяснения их функции в лесных экосистемах, а также для всестороннего практического использования в биотехнологиях.

Цель и задачи исследования

«Цель работы заключалась в сравнении особенностей разложения химических компонентов древесины под действием типичных лигнинразрушающих грибов, вызывающих два типа ксилолиза — делигнификацию (Ceriporiopsis subvermispora, Phanerochaete sanguinea) и коррозию (Trametes pubescens (Schumach.) Pilat, Bjerkandera adusta (Willd.) P. Karst.).

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1. Оценить потенциальную скорость разложения древесины КТГ.

2. Определить скорость и избирательность разложения лигнина под действием КТГ.

3. Уточнить особенности разложения углеводного комплекса древесины, главным образом ее гемицеллюлозной составляющей, в процессе микогенного ксилолиза.

4. Подобрать адекватные задачам методики определения компонентов древесины.

Положения, выносимые на защиту. На фактическом материале показаны различия грибов, вызывающих коррозию (на примере Trametes pubescens, Bjerkandera adusta) и делигнификацию (на примере Ceriporiopsis subvermispora, Phanerochaete sanguinea). В первом случае потенциальная удельная скорость разложения древесины существенно выше, чем во втором.

Для грибов-делигнификаторов характерны значительные потери лигнина уже на первых этапах разложения древесины, которые достоверно описываются экспоненциальной зависимостью. Под действием грибов, вызывающих коррозию, потеря массы лигнина по отношению к потере массы древесины происходит менее интенсивно, чем под действием грибов-делигнификаторов, и удовлетворительно описывается линейной функцией.

Предложенные эскизные модели процессов коррозии и делигнификации позволяют определить параметры для вычисления зависимости разложения лигнина от времени и потери массы. Благодаря моделям показано, что, несмотря на высокую избирательность разложения лигнина грибами7 делигнификаторами, скорость разложения лигнина грибами, вызывающими коррозию, существенно выше. Эти грибы могут использоваться в биотехнологии там, где необходима высокая скорость разложения субстрата, например, в биоремедиации.

Из грибов-делигнификаторов Р. sanguinea 16−65 вызывал большие потери лигнина по отношению к общей потере массы древесины, чем С. subvermispora L-14 807. Но вследствие более быстрого ксилолиза последним штаммом, скорости разложения лигнина обоими организмами оказались практически одинаковыми. Благодаря большей избирательности в разложении лигнина Р. sanguinea 16−65 может считаться перспективнейшим грибом для использования в биотехнологических процессах, требующих целенаправленной делигнификации древесины.

Интенсивная делигнификация осины сопровождается резким снижением содержания ксилозы, входящей в состав глюкуроноксиланового комплекса. Предположительно ксилоза используется в качестве косубстрата в процессе разложения лигнина. В ели, где содержание ксилозы значительно ниже, он не имеет большого значения в питании гриба.

Научная новизна. Впервые проведено сравнение способности штаммов С. subvermispora L-14 807 и Р. sanguinea 16−65, считающихся наиболее эффективными делигнификаторами, к избирательному разложению лигнина в древесине хвойных (на примере Picea abies) и лиственных (на примере Populus tremula) пород.

Получены данные по кинетике микогенного ксилолиза образцов и последовательности разложения компонентов древесины двумя группами КТГ — грибами, вызывающими делигнификацию (С. subvermispora L-14 807, Р. sanguinea 16−65) и коррозию (Т. pubescens 5−08, В. adusta 13−07).

Показано, что избирательность разложения субстрата грибами-делигнификаторами предопределена не только особенностями организмов, но и особенностями лигноцеллюлозного субстрата. Впервые установлено, что интенсивная делигнификация древесины лиственных пород 8 сопровождается активным потреблением ксилозы, входящей в состав глюкуроноксиланового гемицеллюлозного комплекса. Делигнификация ели, где содержание ксилозы в несколько раз меньше, идет менее интенсивно. При разложении осиновой древесины грибами, вызывающими коррозию, ксилоза потребляется одновременно с остальными компонентами, и, по-видимому, не представляет для них исключительной пищевой ценности.

Предложены модели для определения степени разложения лигнина в зависимости от времени или стадии ксилолиза древесины, которые могут быть использованы для расчета параметров разложения и других компонентов древесины.

Полученные данные, свидетельствующие о принципиальном отличии грибов, вызывающих коррозию и делигнификацию, уточняют типологию древесных гнилей и критерии их разделения.

Показано, что Р. sanguinea неспецифичен к древесной породе и развивается преимущественно на мелком древесном субстрате.

Практическая значимость. Для качественной и количественной оценки углеводного состава древесины на разных стадиях микогенного ксилолиза был модифицирован метод определения ацетатов альдононитрилов моносахаридов.

Получены модели, позволяющие рассчитать потребление компонентов древесины КТГ в зависимости от потери массы, а также от времени. Модели могут быть использованы для контроля за биотехнологическими процессами при получении древесной массы, обогащенной целлюлозой.

Показано, что Р. sanguinea 16−65 обладает всеми необходимыми свойствами для эффективного использования в биотехнологии для предобработки щепы с целью получения древесной массы, обогащенной целлюлозой.

Практическая необходимость изучения грибов, вызывающих коррозию и делигнификацию продиктована высокой привлекательностью этих организмов для использования в биотехнологиях. Для осуществления этой 9 идеи необходимо глубокое понимание процессов, сопровождающих микогенный ксилолиз. В результате исследований выяснилось, что содержание ксилозы, входящей в состав полисахарида глюкуроноксилана, в процессе делигнификации древесины лиственных пород существенно снижается. Делигнификация в хвойных породах, где содержание ксилозы в несколько раз меньше, идет менее интенсивно. Таким образом, интенсивная делигнификация древесины обуславливается наличием в ней достаточного количества ксилозы, которая может использоваться в качестве косубстрата при деградации лигнина. В случае подтверждения этого факта можно ожидать положительный эффект при использовании ксилозы в качестве пищевого регулятора при промышленном получении древесной массы обогащенной целлюлозой с помощью грибов-делигнификаторов.

Делигнификаторы — целая группа организмов, роль которых в лесных экосистемах недооценена. В некоторых случаях грибы способны вызывать практически полную делигнификацию древесины. А это значит, что ее целлюлозная составляющая становится доступна многочисленным ассоциациям целлюлолитических организмов, которые могут разрушать ее совместно с делигнификатором в качестве комменсалов или активно конкурируя с ним. Необходимо дальнейшее изучение редуцирующей, диссипативной и эдафической функций грибов-делигнификаторов в лесных экосистемах.

Апробация работы. Результаты исследований неоднократно обсуждались на ежегодных научно-технических конференциях СПбГЛТА. Материалы работы доложены на конференции International Academy of Wood Science «Forest as a renewable source of vital values for changing world» (Санкт-Петербург, 2009), Всероссийской конференции молодых ученых «Молодые исследователи — регионам» (Вологда, 2009), IV Всероссийской конференции «Новые достижения в химии и химической технологии растительного сырья» (Барнаул, 2009).

Публикации. По теме диссертации опубликовано 7 работ (в том числе 2 работы в издании из списка ВАК).

Личное участие автора в получении научных результатов. Работа выполнена в период прохождения аспирантуры в 2006;2009 годах. Личный вклад автора состоит в подготовке и проведении экспериментов, математической обработке полученных данных, их интерпретации и обобщении.

Выводы.

1) Удельные скорости разложения древесины Picea abies и Populus tremula грибом Ceriporiopsis subvermispora L-14 807 {Picea abies k2=4,lxl0″ 3 сутки" 1;

Populus tremula k2=6,2xl0″ 3 сутки" 1) в 2−4 раза выше, чем Phanerochaete i <> sanguinea 16−65 {Picea abies k2=2,0xl0″ сутки" - Populus tremula k2=l, 4xl0 сутки" 1).

2) Разложение древесины грибами, вызывающими коррозию, происходит существенно быстрее, чем грибами-делигнификаторами. Удельные скорости разложения древесины Populus tremula грибами Bjerkandera adusta 13−07.

1 1 •> 1 (k2= 14,2×10″ сутки") и Trametes pubescens 5−08 (k2=22,3xl0″ сутки) в 2,5−3 раза выше, чем Ceriporiopsis subvermispora L-14 807, и в 10−15 раз выше, чем.

Phanerochaete sanguinea 16−65.

3) Для грибов, вызывающих делигнификацию, зависимость потери массы лигнина от потери массы древесины описывается экспоненциальной функцией:

На основании значений констант разложения лигнина (i) можно судить, что Phanerochaete sanguinea 16−65 {Picea abies i=9,7xl0″ - Populus tremula i=13,5xl0″) разрушает лигнин более избирательно, чем Ceriporiopsis.

•2 • 2 subvermispora L-14 807 {Picea abies i=2,5xl0″ - Populus tremida i—6,.

2x10).

4) Потребление лигнина грибами, вызывающими коррозию, происходит прямо пропорционально потере массы древесины. Зависимость потери массы лигнина от потери массы древесины описывается линейной функцией:

Разложение лигнина по отношению к общей потере массы грибами Bjerkandera adusta 13−07 {Populus tremula j=l, 15) и Trametes pubescens 5−08 {Populus fremida j=l, 16), вызывающими коррозию, осуществлялось почти одинаково.

5) На примере лигнина показана возможность расчета скорости разложения отдельного компонента в процессе микогенного ксилолиза.

Предложены модели для описания разложения лигнина грибами, вызывающими делигнификацию (1) и коррозию (2), в зависимости от времени:

1 — ехр (- - ехр (- k*(t -10))))), (1).

— ехр (- k*(t -10))) — S0) (2).

Наиболее быстрым разложением лигнина характеризуются грибы, вызывающие коррозию, что обусловлено общей высокой скоростью разложения ими всех компонентов древесины. Скорость разложения лигнина в древесине Populus tremula и Picea abies изученными грибами-делигнификаторами одинакова и существенно меньше по сравнению с грибами, вызывающими коррозию. Более низкая скорость разложения лигнина, присущая Phanerochaete sanguinea 16−65, компенсируется высокой избирательностью его разложения этим штаммом.

6) Делигнификация древесины Populus tremula грибами Phanerochaete sanguinea 16−65 и Ceriporiopsis subvermispora L-14 807 сопровождается интенсивным потреблением ксилозы, входящей в состав глюкуроноксиланового гемицеллюлозного комплекса. В древесине Picea abies потребление ксилозы происходит одновременно с потреблением других моносахаридов, входящих в состав гемицеллюлоз. Предположительно ксилоза используется в качестве основного косубстрата в процессе делигнификации Populus tremula, однако не представляет исключительной пищевой ценности при делигнификации Picea abies, где ее содержание значительно ниже. Грибы Bjerkandera adusta 13−07 и Trametes pubescens 5−08, вызывающие коррозию, характеризуются одинаковой способностью к разрушению гемицеллюлоз, целлюлозы и лигнина.

7) Отсутствие субстратной специализации, а также высокая скорость и избирательность разложения лигнина в сравнении с другими изученными грибами позволяет рекомендовать штамм Phanerochaete sanguinea 16−65 для использования в процессах получения древесной массы, обогащенной целлюлозой, и других технологических процессах, где требуется преимущественное разложение лигнина с сохранением целлюлозы.

1.6.

Заключение

.

Последние десятилетия особое внимание уделялось изучению КТГ в связи с их ролью в лесных экосистемах и возможностью их использования в биотехнологиях. Положительные результаты были получены во многих направлениях биотехнологии, где необходима избирательная делигнификация древесины. Были известны лигнинразрушающие грибы, обеспечивающие в лесных экосистемах разложение лигнина древесины и возврат минеральных веществ в круговорот. Среди них были отобраны и интенсивно изучаются несколько видов, особенно детально в России — Р. sanguinea 16−65, а за границейС. subvermispora. Однако отсутствуют работы по их сравнению. Большинство работ по биоделигнификации посвящено ферментному механизму разложения лигнина. Установлено, что для его разложения необходим косубстрат. Предположительно косубстратом служат некоторые гемицеллюлозы. Прямые определения изменений в содержании отдельных гемицеллюлоз в отношении делигнификаторов являются очень скудными. Такие данные могли бы объяснить избирательность разложения лигнина при биоделигнификации и найти критерии различий коррозии и делигнификации как типов микогенного ксилолиза.

Глава 2.

ПРОГРАММА И МЕТОДИКА ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.1. Программа.

Штаммы грибов-делигнификторов, использованные в работе, были выбраны неслучайно. В настоящее время, С. subvermispora L-14 807 и Р. sanguinea 16−65 можно считать наиболее перспективными штаммами для получения древесной массы с улучшенными свойствами. Эти грибы были выбраны после довольно обширного скрининга штаммов, вызывающих делигнификацию. Серьезной практической задачей является сравнение лигнинразрушающих особенностей этих грибов, которое до сих пор не проводилось.

Ранее исследование С. subvermispora L-14 807 проводилось преимущественно на породах, коммерчески востребованных в США: Pinus taeda, Populus tremuloideus, Eucalyptus grandis, Eucalyptus salignia, Picea glauca [Hunt et al., 2004]. В нашей работе свойства этого гриба планируется изучить на древесных породах Северо-западного региона России: Populus tremula и Picea abies. Таким образом, мы можем дополнительно сравнить эффекты разложения, вызываемые С. subvermispora L-14 807, на разных древесных породах.

Учитывая, что Р. sanguinea 16−65 и С. subvermispora L-14 807 являются грибами с наиболее выраженными лигнинразрушающими свойствами, в работе планируется выяснить фундаментальные отличия между грибами, вызывающими коррозию и делигнификацию. В качестве контрольной группы были выбраны типичные грибы, вызывающие симультанное разложение всех компонентов древесины, В. adusta и T. pubescens.

Сравнения всех грибов проводили по следующим критериям:

• кинетика разложения древесины хвойных и лиственных пород;

• скорость разложения лигнина.

• избирательность разложения лигнина на единицу потери массы;

• особенность разложения углеводного комплекса древесины.

Все существующие данные относительно разложения компонентов древесины делигнификаторами относятся к сопоставлению количества разрушаемого лигнина и целлюлозы. Относительно того, что происходит с гемицеллюлозами, свидетельствуют лишь отрывочные данные, являющиеся результатами единичных анализов. Поэтому в процесс работы планируется уточнить характер изменения гемицеллюлозного комплекса под действием грибов, вызывающих делигнификацию. Для этого необходимо подобрать соответствующую задачам методику определения компонентов углеводной части древесины.

2.2. Методика 2.2.1. Среды и субстраты.

Сусло пивное неохмеленное получали с пивоваренного завода «Вена» о плотность-21,7 мг/см — рН-5,61). Колбы объемом 500 мл заполняли суслом до половины, закупоривали и стерилизовали при давлении 1,0 ати 40 мин. При использовании сусло разводили водопроводной водой в соотношении 1:3 соответственно.

Для приготовления агаризованной среды в разведенное водой пивное сусло добавляли 20 г/литр агар-агара и нагревали до его полного растворения. Среду разливали в колбы Эрленмейера объемом 250 мл, закупоривали ватными пробками и стерилизовали при 1,0 ати 40 мин.

Вермикулит (фракция 2−5 мм) рассыпали в банки объемом 200 мл так, чтобы заполнить 1/3 объема (приблизительно 70 мл).

Деревянные кубики для инокуляции со стороной 5 мм изготавливали из древесины ели {Picea abies) и осины {Populus tremula). Перед высыпанием на культуру их стерилизовали в автоклаве при давлении 1,0 ати 1 час.

Образцы древесины размером 30×20×5 мм (тангентальный х радиальный х продольный размеры) получены из заболони ели (Р. abies) и осины (Р. tremula). Перед закладкой опыта образцы пропитывались водопроводной водой в течение трех дней, затем их раскладывали на фильтровальную.

40 бумагу в чашках Петри и стерилизовали текучим паром три раза по 1 часу через каждые сутки. Стерилизацию под давлением не проводили, чтобы не вызвать необратимых изменений в химическом составе древесины.

2.2.2. Подготовка образцов.

При заготовке образцов необходимо учитывать, что химический состав одной и той же породы (ботанического вида) древесины не является строго постоянным и изменяется в зависимости от географической зоны произрастания, места произрастания, возраста дерева, а иногда и времени рубки. Даже в стволе одного и того же дерева могут наблюдаться заметные отличия в содержании отдельных компонентов, как по высоте ствола, так и по его диаметру. Древесина корней и ветвей отличается по химическому составу от древесины ствола [Азаров и др., 1999]. Поэтому для уменьшения вариабельности получаемых аналитических данных необходимо стандартизировать процедуру отбора и изготовления образцов для исследования. Стандартный образец не должен содержать признаков поражения грибами, сучков и ходов насекомых. образец спелая заболонь древесина.

Рис. 2. Схема заготовки образцов из ствола дерева (поперечный разрез).

В эксперименте использовались образцы, изготовленные из древесины ели (Р. abies) и осины (Р. tremula). Деревья были срублены в Лисинском учебно-опытном лесхозе Ленинградской области в середине июня в ельнике черничном свежем. Возраст ели составлял 70 лет /Н=21 мD=22 см/, осины.

90 лет /№=24 мБ=24 см/. Образцы выпиливали с периферической части заболони (см. рис. 2), с участка ствола, расположенного на расстоянии 2−4 м от комля.

Подготовленные для работы образцы древесины номеровали, подписывая карандашом. Затем их помещали в эксикатор, где они несколько дней выдерживались для достижения равновесной влажности, после этого образцы взвешивали. 10% образцов сушили при температуре 100−105 °С не менее трех часов до абсолютно сухой массы. При температуре ниже 100 °C удаление воды может произойти не полностью, а при температуре выше 105 °C может наблюдаться деградация компонентов древесины, что делает их непригодными для последующего химического анализа. Из сушильного шкафа образцы помещали в эксикатор на 10 минут, где они остывали. Время охлаждения должно быть строго постоянным. Затем рассчитывали влажность образцов (Ж) и находили для каждой породы в отдельности ее среднее значение (Жср), которое использовали для вычисления абсолютно сухой массы остальных образцов (ш0): ч? = (т"-т{])1 пц, (2) то = т&bdquoА>Ф.-1)> (3) где — влажность образцовт0 — масса соответственно сырой и сухой древесины, г.

Преимущество такого способа определения абсолютно сухой массы заключается в том, что образцы, непосредственно участвующие в анализе, не подвергаются высушиванию и воздействию высоких температур, что может негативно повлиять на дальнейшее развитие гриба и пр.

2.2.3. Культуры.

В работе использованы штаммы грибов, хранящиеся в коллекции культур кафедры общей экологии, анатомии и физиологии растений Санкт-Петербургской государственной лесотехнической академии. Грибы культивировались на косом агаре и хранились при комнатной температуре и влажности. Перечень использованных для работы грибов приведен в табл. 1.

Гриб С. subvermispora штамм L-14 807 был получен 9.08.06 из Forest Product Laboratory (USA, Madison, Department of Agriculture) на следующих условиях: использовать только в контролируемых лабораторных условиях по указанному почтовому адресу, все культивируемые организмы должны быть уничтожены стерилизацией после окончания работ. Во время работы данные критерии соблюдались для всех культур без исключения.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.И., Буров A.B., Оболенская A.B. Химия древесины и синтетических полимеров: Учебник для вузов. -СПб.: СпбЛТА, 1999.-628 с.
  2. Г. П., Медведева С. А. Биоотбелка сульфатной целлюлозы оксидазными ферментами гриба Daedaleopsis confragosa II Химия растительного сырья. 1999. — № 2. — С. 81 — 84.
  3. М.А., Пармасто Э. Х. Семейства гименохетовые, лахнокладиевые, кониофоровые, щелелистниковые. Л: Наука, 1986. -192 с.
  4. М.А. Определитель грибов России. Порядок афиллофоровые. Спб.: Наука, 1998. — Вып. 2.-391 с.
  5. Л.Б., Козьмин-Соколов Б.Н., Фрейдлин И. С. Руководство к лабораторным занятиям по медицинской микробиологии, вирусологии и иммунологии: Учебное пособие. -М.: Медицина, 1993. 240 с.
  6. А.Т. Хранение круглого леса. М., 1964. — 428 с.
  7. С.И. Гниль дерева. Ее причины и меры борьбы. М: Сельхозгиз, 1930.-165 с.
  8. Х.Г. Эколого-физиологические особенности дереворазрушающих высших базидиальных грибов. Баку: Элм, 1989. — 200 с.
  9. Л.А., Мальцева О. В. Биохимия разложения лигнина микроорганизмами // Проблемы биоконверсии растительного сырья / Под ред. Скрябин Г. К., Головлев Е. Л., Клесов A.A. М. -Наука, 1986. -295с.
  10. И.Д., Фофанова М. Ф., Саплина В. И. Разрушение древесины лиственницы грибом Phanerochaete sanguinea II Экология и Защита леса. -Л.: ЛТА, 1987.-С. 90−92.
  11. М.В., Бондарцева М. А., Гарибова Л. В. Грибы СССР. М.: Мысль, 1980.-303 с.
  12. Н.И., Семичаевский В. Д., Дудченко Л. Г., Трутнев И.А.
  13. Ферментные системы высших базидиомицетов / Под ред. Судьина Е. Г., Дудка И. А, АнУССР Инт-т ботаники им Н. Г. Холодного. Киев: Наук, думка, 1989. -280 с.
  14. М.С., Громов B.C., Ведерников H.A. Гемицеллюлозы. Рига: Зинатне, 1991.-488 с.
  15. Р.П. Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. М.: Издательство МГУ, 2004. — 312с.
  16. Г. А. Лекции по природоведческой микробиологии. М.: Наука, 2003.-348 с.
  17. Д.А., Ревин В. В., Шутова В. В. Влияние прессования на свойства лигнина древесины сосны обработанной грибом Partus tigrinus //Химия растительного сырья. -2001. -№ 3. — С. 111−118.
  18. О.Н., Лейтан Э. З. Изменение гистохимической структуры древесины делигнифицированной некоторыми грибами // Экология и Защита леса-Л: ЛТА, 1987 С. 110−113.
  19. О.Н. Образование ядровых веществ в древесине березы при ее поранении и поражении грибами // ЛТА. Лесной журнал. 1976. — № 2.-С. 85−88.
  20. О.Н., Горелова И. Д., Богомолов В. В., Кузнецова И. В. Перевариваемость древесины в последней стадии микогенного ксилолиза // Экология и защита леса. Л.: ЛТА, 1986. — С. 107−110.
  21. О.Н., Меламед Ц. Э. Влияние дереворазрушающих грибов на содержание свободных углеводов в древесине березы // Химия древесины. Рига: Зинатне, 1976. № 2. — С. 105−107.
  22. Н.С., Абросов Н. С., Косолапова Л. Г. Кинетика биоконверсии лигноцеллюлоз. Новосибирск: Наука, 1990. -112 с.
  23. А.Э., Шарапов Г. Е., Домбург Г. Э. Газохроматографическое определение углеводов древесины в виде ацетоальдононитрилов // Химия древесины. 1980. — № 2. — С. 94−99.
  24. В.А. Роль базидиальных дереворазрушающих грибов в лесных биогеоценозах // Лесоведение. 1981. — № 1. — С. 46−53.
  25. В.М., Оболенская A.B., Щеголев В. П. Химия древесины. М.: Лесная промышленность, 1978. — 368с.
  26. Ю.Н., Гашкова М. Я., Бейгельман A.B., Антонова Е. С. Исследование химических свойств древесины сосны, пораженной грибом Fomitosispinicola. СПб: СПБ ЛТА, 1974. — С. 181−192.
  27. A.B., Ельницкая З. П., Леонович A.A. Лабораторные работы по химии древесины и целлюлозы: Учебное пособие для вузов. М.: Экология, 1991.-320 с.
  28. Ю. Экология: в 2 т./ перевод с англ. М: Мир, 1986. -Т.1. 328 с.
  29. Г. А., Авакумова A.B. Реагенты для отбелки целлюлозы. -СПб.:, 2002.-110 с.
  30. М.Л., Болобова A.B., Кондращенко В. И. Теоретические основы биотехнологии древесных композитов. Древесина и разрушающие ее грибы М.: Наука, 2001 264 с.
  31. В. Биология дереворазрушающих грибов. М: Лесная промышленность, 1967.-276 с.
  32. Ролл-Хансен Ф., Ролл-Хансен X. Болезни лесных деревьев. СПб: СПБ ЛТА, 1998. — 120 с.
  33. К.И., Бражников В. В., Волков С. А., Зельвенский В. Ю., Ганкина Э. С., Шатц В. Д. Аналитическая хроматография. М.: Химия, 1993 г.-464 с.
  34. В.А. Дыхательный газообмен древесины. Л: ЛГУ, 1983. — 408 с.
  35. В.А., Морозов Е. Е. Физические параметры еловой древесины, разрушаемой грибом Phanerochaete sanguinea в различных экологических условиях// Экология и Защита леса. Л: ЛТА, 1989. — С.87.90.
  36. В.А. Проблема делигнификации древесины. Экология и защита леса. Экология лесных животных: Межвузовский сборник науч.тр. Л: ЛТА, 1986. — 116 с.
  37. В.А., Малышева О. Н., Саплина В. И., Малева И. Л., Стрельникова Л. Л. Отбор штаммов грибов по их лигнинразрушающей способности // Экология и Защита леса. Л: ЛТАД982. — Вып.7. -С.128−134.
  38. В.А., Малышева О. Н., Сушкова Н. Е. Разложение древесных остатков базидиомицетами на сплошных вырубках // Экология и Защита леса. Л: ЛТА, 1985. — С.61−66.
  39. В.А., Яковлева Н. С. Особенности ферментной системы лигнинразрушающего гриба Phanerochaete вап^теа // Экология и Защита леса —Л: ЛТА, 1987-С.112−114.
  40. В.А., Малышева О. Н., Малева И. Л., Саплина В. И. Изменение химического состава древесины под действием лигнинразрушающих грибов // Химия древесины. 1985. -№ 6. — С.94−100.
  41. В.А., Стороженко В. Г., Бондарцева М. А., Крупнов В. И. Научные основы устойчивости лесов к дереворазрушающим грибам. -М.: Наука, 1992.-221 с.
  42. Н.Т., Мухин В. А. Основы экологии дереворазрушающих грибов. М.: Наука, 1979.- 100 с.
  43. Е.З., Шильникова В. К., Переверзева Г. И. Практикум по микробиологии. 2-е изд. — М: Колос, 1979. — 216 с.
  44. .Н. Древесиноведение с основами лесного товароведения:
  45. Учебник для вузов. 2-е изд. — М: Лесная промышленность, 1986. -368с.
  46. Д., Вегенер Г. Древесина (химия, ультраструктура, реакции): Пер. с англ. -М.: Лесная промышленность, 1988. 512 с.
  47. Н.И., Царев В. И., Катраков И. Б. Практическая газовая хроматография. Барнаул: Алт. Ун-та, 2000. — 156 с.
  48. А.Н., Низковская О. П., Фалина Н. Н., Маттисон Н. Л., Ефименко О. М. Биосинтетическая деятельность высших грибов М: Наука, 1969.-241 с.
  49. В.И. Физиологическая регуляция лигнолитической активности высших базидиальных грибов// Микробиология. 1993. — Т. 62, № 5.-С. 801−815.
  50. Н.С., Саплина В. И., Малева И. Л., Ярмишко М. А., Стрельникова Л. Л. Влияние температуры и азота на разрушение древесины грибом Phanerochaete sanguined II Экология и Защита леса -Л: ЛТА, 1987-С.113−116.
  51. Albores S., Pianzola M.J., Soubes M., Cerdeiras M.P. Biodegradation of agroindustrial wastes by Pleurotus spp. for its use as ruminant feed II Electronic Journal of Biotechnology. 2006. — Vol. 9. № 3. — P. 215−220.
  52. Agosin E., Blanchette R.A., Silva H., Lapierre C., Cease K.R., Ibach R.E., Abad A.R., Muga P. Characterization of Palo Podrido, a natural process of delignificationin wood // Applied and Enviromental Microbiology. 1990. -Vol. 56. -P. 65−74.
  53. Akhtar M., Blanchette R.A., Kirk Т.К. Microbial delignification and biomechanical pulping // Springer-Verlag Berlin. 1997. -Vol. 57. — P. 159−195.
  54. Anagnost S.E. Light microscopic diagnosis of wood decay // International
  55. Association of Wood Anatomists Journal. 1998. -Vol. 19. — P. 141−167.
  56. Baghoon E.S., Linder D.H. Marine fungi: their taxonomy and biology // Farlowia. 1944. -Vol. 1. — P. 395−467.
  57. Bailey I.W., Vestal M.R. The significance of certain wood destroying fungi in the study of the enzymatic hydrolysis of cellulose // Journal of the Arnold Arboretum. 1937. — Vol. 18. — P. 196−205.
  58. Baecker A.A., King B.W. Soft rot in wood coased by Streptomyces // Journal of the Institute of Wood Science. 1982. — Vol. 10. — P. 65−71.
  59. Bar-Lev S. S., Kirk T. K., Chang H.-m. Fungal treatment can reduce energy requirements for secondary refining of TMP // Tappi Journal. -1982. Vol. 65.-P. 111−113.
  60. Baum S., Schwarze F.W.M.R. Persistence of the gelatinous layer within tension wood fibres of European beech degraded by Ustulina deusta //New Phytologist. 2001. — Vol. 147. -P.347−355.
  61. Bavendamm W. U. ber das Vorkommen und den Nachweis von Oxydasenbei holzzerstorenden Pilzen // Zeitschrift fur Pflanzen Krankheiten. 1928. — Vol 38.-P. 257−276.
  62. Bezalel L., Hadar Y., Cerniglia C.E. Mineralization of Polycyclic Hydracarbons by the white-rot fungus Pleurotus ostreatusll Applied and Enviromental. 1996. — Vol. 62. № 1. -P.292−295.
  63. Blanchette R.A. et al. Degradation of Compression and Tension Wood by Fungi // Holzforschung. 1994. — Vol. 48. — P. 34−42.
  64. Blanchette R.A., Burnes T.A., Leatham G.F., Effland M.J. Selection of white-rot fungi for biopulping // Elsevier Biomass. 1988. — Vol. 15. — P. 93−101.
  65. Blanchette R.A., Nilsson T., Daniel G., Abad A. Biological degradation of wood. In: Rowell R.M. Barbour R.J. (editors) Archaeological wood: Properties, Chemistry and Preservation. Washington: Am. Chem. Society. -1990.-P. 141−174.
  66. Blanchette R.A., Otjen L., Effland M.J., Eslyn W.E. Changes in structural and chemical components of wood delignified by fungi // Wood Sei. technol.1 081 985.-Vol. 19.-P. 36−46.
  67. Blanchette R.A., Burnesl T.A., Eerdmans M.M., Akhtar M. Evaluatingl1. olates of Phanerochaete chrysosporium and Ceriporiopsis subvermispora for Use in Biological Pulping Processes // Holzforschung -1992. Vol. 46. -P.109−115.
  68. Blanchette R.A. Resistance of hardwood vessels to degradation by white rot Basidiomycetes II Can. J. -1988. -Bot. 66. P.1841−1847.
  69. Blanchette R.A. Delignification by wood-decay fungi // Ann. Rev. Phytopathol. -1991. Vol. 29. — P. 381−398.
  70. Bogan B.W., Lamar R. T. Polycyclic aromatic hydrocarbon-degrading capabilities of Phanerochaete laevis HHB-1625 and its extracellular ligninolytic enzymes // Appl. Environ. Microbiol. -1996. -Vol. 62. № 5. -P. 1597−1603.
  71. Souza-Cruz P.B., Freer J., Siika-Aho M., Ferraz A. Extraction and determination of enzymes produced by Ceriporiopsis subvermispora during biopulping of Pinus taeda wood chips // Enzyme and Microbial Technology. 2004. -Vol.34. — P. 228−234.
  72. Clausen C.A., Kenealy W., Lebow P. Oxalate analysis methodology for decayed wood // Elsevier Int. Biodeterioration & Biodegradation. 2008. -Vol. 62.-P. 372−375.
  73. Collins P.J., Dobson Ad.W. Oxidation of fluorene and phenantrene by Mn (II) dependent peroxidase activity in whole cultures of Trametes versicolorII Biotechnol. Lett. 1996. — Vol. 18. № 7. — P. 801−804.
  74. Collins P.J., Dobson A.W. Extracellular lignin and manganese peroxidase production by the white-rot fungus Coriolus versicolor II Biotechnol. Lett. -1995. Vol. 17. № 9. — P. 989−992.
  75. Crowford R.L. Lignin biodegradation and transformation // John Wiley & Sons Inc New York.-1981.-P. 170.
  76. Dashtban M., Schraft H., Qin W. Fungal bioconversion of lignocellulosic. Opportunities and Perspectives // Int.J.Biol.Sci. 2009. -Vol. 5(6). — P. 578 595.
  77. Daniel G., Nilsson T. Developments in study of soft rot and bacterial decay// Forest Product biotechnology Taylor & Francis. 1998. — P.37−62.
  78. Daniel G., Vole J., Nilsson T. Soft rot and multiple T-branching by the Basidiomycete Oudemansiella mucida // Mycological Research. 1992. -Vol. 96. — P. 49−54.
  79. Davis M.W., Glaser J.A., Evans J.W., Lamar R.T. Field evaluation of lignin-degrading fungus Phanerochaette sordida to treat creosote-contaminated soil // Enviromental Science & Technology. 1993. — Vol. 27. № 12. — P. 25 722 676.
  80. Datta A.A., Bettermann A., Kirk T.K. Identification of specific manganese peroxidase among lignolytic enzemes secreted by Phanerochaete chrysosporium during wood decay// Applied Envir. Microbiology. 1991. -№ 57(5). — P.1453−1460.
  81. Douglas S., Flournoy T., Kirk T.K., Highley T.L. Wood Decay by Brown-Rot Fungi: Changes in Pore Structure and Cell Wall Volume // Holzforschung. -1991.-Vol. 45.-P. 383−388.
  82. Duncan C. Wood-attacking capabilities and physiology of soft rot fungi // USD A Forest Service Research Paper. 1960. — № 2173.
  83. Eriksson K.-E., Blanchette R. A., Ander P. Microbial and Enzymatic Degradation of Wood and Wood Components. Springer: Verlag Berlin Heidelberg.- 1990.-P. 407.
  84. Eriksson K.-E. Biotechnology in the Pulp and Paper Industry // Wood Sci.Technol. -1990. -Vol. 24. P.79−101.
  85. Eslyn W.E., Kirk. T.K., Effland M.J. Changes in chemical composition of wood caused by six soft rot fungi // Phytopotology. 1975. — Vol. 65. № 4.1. P. 473−476.
  86. Eaton R.A., Hale M.D.C. Wood: Decay, Pests and protection // Chapman & Hall London. 1993. — P. 546.
  87. Etheridge D.G. Differentiation of white-and brown rot fungi by an oxidase reaction //Nature. -1957. -Vol. 179. -P. 921−922.
  88. Eggen T., Majcherczyk A. Removal of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAH) in contaminated soil by white rot fungus Pleurotus ostreatus// Int. Biodeterior. Biodegrad. 1998. — Vol. 41. № 2. — P. 111−117.
  89. Faix O., Mozuch M.D., Kirk T.K. Degradation of gymnosperm (guaiacyl) vs. angiosperm (syringyl/guaiacyl) lignins by Phanerochaete chrysosporium II Holzforschung. 1985. -Vol. 39. -P. 203−208.
  90. Fernando T., Rumpus J.A., Aust S.D. Biodegradation of TNT by Phanerochaete chrysosporium!/ Appl. and Enwiron. 2 Microbiol. 1990. -Vol. 56. № 6.-P. 1666−1671.
  91. Fernando T., Aust S. Biodegradation of toxic chemicals by white-rot fungi. In: Chaudhry G.R. (ed.) Biological Degradation and Bioremediation of Toxic Chemicals // Chapman & Hall London. 1994. — P. 386−402.
  92. Geib S.M., Filley T.R., Hatcher P.G., Hoover K. Lignin degradation in woodfeeding insects // PNAS. 2008. -Vol. 105. № 35. — P.12 932−12 937.
  93. Gilbertson R.L. Wood-rotting fungi in North America // Mycologia. 1980. -Vol. 72.-P. 1−49.
  94. Green F. III., Highley T.L., Mechanism of Brown-Rot Decay: Paradigm or Paradox // International Biodeterioration & Biodegradation. 1997. — Vol. 39. №(2−3).-P. 113−124.
  95. Hammel K. E., Kalyanaraman B., Kirk T. K. Oxidation of polycyclic aromatic hydrocarbons and bibenzopdioxins by Phanerochaetechrysosporium ligninase. // J. Biol. Chem. -1986. -Vol. 261. № 36. -P.16 948−16 952.
  96. Hammel E.K., Cullen D. Role of fungal peroxidases in biological ligninolysis // Current Opinion in plant biology. 2008. -Vol.11. -P.349−355.
  97. Hatakka A. Biodegradation of lignin. // Biopolymers, Lignin, Humic Substances and Coal / editors Hofrichter M., Steinbuchel A.-Wiley: VCH Germany. -Vol.1. -P. 129−180.
  98. Harris G. C. M. Chemical changes in beech litter due to infection by Marasmiusperonatus II Ann. Applied Bot. — 1945. —Vol.32. —P. 38−39.
  99. Hartig R. Die Zersetzungserscheinungen des Holzes der Nadelholzbaume und der Eiche in forslicher botanischer und chemischer Richtung.-Springer: Berlin.-1878
  100. Hartig R Wichtige Krankheiten der Waldbaume Berlin 1874
  101. Heitkamp M. A., Freeman J. P., Miller D.W., and Cerniglia C.E. Pyrene degradation by a Mycobacterium sp.: Identification of ring oxidation and ring fission products II Appl. Environ. Microbiol. -1988. -Vol.54. № 10. -P. 2556−2565.
  102. Highley T.L. Requirements for cellulose degradation by brown-rot fungus// Material und Organismen. 1977. — Vol. 12. — P. 25−36.
  103. Higuchi T. Microbial degradation of lignin: role of lignin peroxidase, manganese peroxidase, and laccase // Proceedings of the Japanese Academy. -2004. -Vol.80. P.204−214.
  104. Holt D.M. Bacterial Degradation of wood cell walls in aerobic aquatic habitats. Decay patterns and mechanisms proposed to account for their formation // Journal of the Institute of Wood Science. 1983. -Vol. 9. — P. 212−223.
  105. Hood I., Ramsden M., Dot T., Self M. Rigidoporus lineatus (Pers.) in fire salvaged logs stored under water sprinklers in south-east Queensland // Material und Organismen. 1997. — Vol. 31. — P. 123−143.
  106. Hunt C., Kenealy W., Horn E., Houtman C. A biopulping mechanism:
  107. Creation of acid groups on fiber // Holzforschung. -2004. Vol. 58. -P. 434 439.
  108. Johannes C., Majcherczyk A., Hutterman A. Degradation of antracene by laccase of Trametes versicolor in the presence of different mediator compounds// Appl. Microbiol. Biotechnol. 1996. — Vol. 46. № 3. — P. 313— 317.
  109. Karppanen O., Venalainen M., Harju A.M., Laakso T. The effect of brown-rot decay on water adsorption and chemical composition of Scots pine heartwood // Ann.For.Sci. -2008. Vol.65. — P.610.
  110. Kerr A.J., Goring D.A.I. The role of hemicellulose in the delignification of wood // Can. J. Chem. -1975. -Vol.53. P. 952−959.
  111. Kim S., Dale B. Global potential bioethanol production from wasted crops and crop residues // Biomass and Bioenergy. 2004. -Vol. 26. № 4. -P. 361 375.
  112. Kirk T.K. Cowling E.B. Biological decomposistion of solid wood/ In The chemistry of solid wood, ed.- Rowell, R., American Chemical Society.-Washington: DC, 1984. P. 455−487.
  113. Kirk T.K., Akhtar M., Blanchette R.A. Fungal delignification and biochemical pulping of wood // Biotecnology. -1997. Vol. 57. -P. 160−193.
  114. Kirk T.K. Farrell R.L. Enzymatic «combustion»: The microbial degradation of lignin // Ann. Rev. Microbiol. 1987. -Vol. 41. — P.465−505.
  115. Kirk T.K., Shimada M. Lignin biodegradation: The microorganizms involved and the physiology and biochemestry of degradation by white-rot fungi // Biosynthesis and biodegaradation of Wood Components. 1985. -P. 579 605.
  116. Kirk T.K. Tien M. Biochemistry of lignin degradation by Phaerochaetechrysosporium: Investigation with non-phenolic model compounds // Ref. -1983.-Vol. 115. -P.233−245.
  117. Kirk T.K. Lignin degrading enzyme system // In Cellulose as a chemical Energy resource Biotechnology and Bioengineering symposium. 1975. — № 5. -P.139−150.
  118. Kuwahara M., Glenn J.K., Morgan M.A., Gold M.H., Separation and characterization of two extracellular H202-dependent oxidases from lignolitic cultures of Phanerochaete chrysosporium-FEBBS: Lett, 1984. — Vol. 169 — P.247−250
  119. Lamar R. T., Main Laura M., Diatrich Diane M., John A.Claser. Screening of fungi for Soil Remediation Potential // Agronomy monograph. —1999. — Vol. 37.-P. 139−156
  120. Lawson, L.R., Still C.N. The biological decomposition of lignin—Literature survey // Tappi Journal. 1957. — Vol. 40. — P. 56A-80A.
  121. Lee K. H, Wi S.G., Singh A.P., Kim Y.S. Micromorphological characteristics of decayed wood and laccase produced by the brown rot fungus Coniophora puteana // Journal of Wood Science. 2004. -Vol. 50. — P. 281−284.
  122. Leatham, G.F., Myers G.C. A PFI mill can be used to predict biomechanical pulp strength properties // Tappi Journal. 1990. -Vol. 73. -P. 192−197.
  123. Leatham G. F., Myers G.C., Wegner T.H. Biomechanical pulping of aspen chips: energy savings resulting from different fungal treatments // Tappi Journal. 1990. -Vol. 73. — P. 197−200.
  124. Leatham G.F., Myers G.C., Wegner T. H., Blanchette, R.A. Biomechanical pulping of aspen chips: paper strength and optical properties resulting from different fungal treatments.// Tappi Journal. -1990. -Vol. 73. -P. 249−255.
  125. Liese W. Ultrastructural of woody tissue disintegration // Annual Review of phytopathology. 1970. — Vol. 8. — P. 231−258
  126. Liese W. The action of fungi and bacteria during wood deterioration Intern // Pest Contr. 1971. — Vol. 13. № 1. — P. 20−24.
  127. Lindeberg G. Uber die Physiologie ligninabbauender BodenHymenomyzeten // Symbolae Botan. Uppsalienses. 1944. -Vol. 8. -P. 1183.
  128. Lindeberg G. On the decomposition of lignin and cellulose in litter caused by soil inhabiting Hymenomycetes // Ark.bot.A. 1946. — Vol. 33. № 10. — P. 1−16.
  129. Luna M. L., Murace M. A., Keil G. D. Patterns of decay caused by P. sanguineus and G. lucidum in poplar wood III IAWA Journal. -2004. -Vol. 25(4).-P. 425−433.
  130. Luthard W. Holzverendelung durch Pilze II Wissen u. Leben. -1959. -Vol. 10. -P. 762−764.
  131. Majcherczyk A. Johannes C. Huttermann A. Oxidation of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAH) by laccase of Trametes versicolor// Enzyme Microb. Technol. 1998. — Vol. 22. № 5. — P. 335−341.
  132. Martens R., Zadrazil F. Screening of white-rot fungi for their ability to mineralize polycyclic aromatic hydrocarbons in soil// Folia Microbiologica. -1998. Vol. 43. № 1. — P. 97−103.
  133. Nishida, T., Kashino, Y., Mimura. A., Takahara Y. Lignin biodegradation by wood-rotting fungi. I. Screening of lignin-degrading fungi // Mokuzai Gakkaishi. -1988. -Vol. 34. -P.530−536.
  134. Nobles M.K. Identification of cultures of wood-rotting fungi // Can. Journal of research. 1948. -Vol. 26. -P. 281−431.
  135. Nobles M.K. A rapid test for extracelluar oxidase in cultures of wood-inhabiting hymenomycetes // Canadian Journal of Botany. -1958. -Vol. 36. -P. 91−99.
  136. A.B., Pease E.A., Tien M. (1994) Properties of lignin-degrading peroxidases and their use in bioremediation. In: Chaudhry G.R. (ed.)
  137. Biological Degradation and Bioremediation of Toxic Chemicals. Chapman & Hall, London, P. 345−363.
  138. Osono T., Takeda H. Fungal decomposition of Abies needle and Betula leaf litter // Mycologia. -2006. Vol. 98(2). -P. 172−179.
  139. Otjen L., Blanchette R., Effland M., Leatham, G. Assessment of 30 white rot basidiomycetes for selective lignin degradation // Holzforschung. 1987. -Vol. 41.-P. 343−349.
  140. Paszczynski A., Crawford R.L. Potential for bioremediation of xenobioticcompounds by the white-rot fungus Phanerochaete chrysosporium // Biotechnol. Prog. -1995. -Vol. 11. -P. 368−379.
  141. Phillipi F. Die Pilze Chiles, soweit dieselben als Nahrungsmittel debraucht werden//Hedwigia.- 1893.-Vol. 32.-P. 115−118.
  142. Pointing S.B. Feasibility of bioremediation by white-rot fungi // Appl. Microbiol. Biotechnol. -2001. -Vol. 57. -P. 20−33.
  143. Raghukumar C., Rivonkar G. Decolorization of molasses spent wash by the white-rot fungus Flavodon flavus, isolated from a marine habitat // Appl Microbiol Biotechnol. -2001. Vol. 55. -P. 510−514.
  144. Rowell R. Handbook of wood chemistry and wood composites. -Florida: CRC Press, 2005.-P. 487.
  145. Rypacek V., Navratilova Z., Rust hub ve dreve// Drevarsky vyskum. -1971. -R. XVI, C.1−2.-S. 115−122.
  146. Ruiz-Duenas F.J., Morales M, Garcata E., Miki Y et al. Substrate oxidation sites in versatile peroxidase and other basidiomycete peroxidases // Journal of Experimental Botany. -2009. -Vol. 60. № 2- P. 441−452
  147. Savory JG. Breakdown of timber by ascomycetes and fungi imperfecti // Annals of Applied Biology. -1954. vol. 41. -P. 336−347.
  148. Schacht H. Uber die Veranderungen durch Pilze in abgestorbenen Pflanzenllen // Jahrb wiss. -1863. Bot. 3. — P. 442−483.
  149. Schwarze F.W.M.R. Wood decay under the microscope// Elsevier: Fungal Biology Reviews -2007- P. 1−3 8
  150. Schwarze F.W.M.R., Baum S., Fink S. Dual modes of degradation by Fistulina hepatica in xylem cell walls of Quercus robur II Mycological Research. 2000. — Vol. 104. — P. 846−852.
  151. Setliff E.C., Marton R., Granzow S.G., and Ericksson K.-L. Biomechanical Pulping with White-Rot Fungi // Tappi. -1990. -Vol. 73(8). -P. 141−147.
  152. Soloviev V.A. Kinetics of decomposition of wood by wood destroying fungi// Proc. XVIIIUFRO World Cong. Tokio. -1981. D 5. — P. 301−309.
  153. Srebotnik E., Messner K. A simple method that uses differential staining and light microscopy to assess the selectivity of wood delignification by white rot fungi // Appl. Environ. Microbiol. -1994. -Vol. 60. -P. 1383−1386.
  154. Stalpers J.A. Identification of wood inhabiting Aphyllophorales in pure culture. Centraalbureau voor Schimmelcultures, Baarn, Studies in Mycology 1978−161−248.
  155. Tamblyn N. Decay of timber with special reference to Jarrah //Australian Forest Journal. 1937. -Vol. 2. -P. 6−13.
  156. Trotter P.C. Biotechnology in the Pulp and Paper Industry: A Review // TAPPI. 1990. -Vol. 73(4). -P. 198−203.
  157. Wammer K.H., Peters C.A. Polycyclic aromatic hydrocarbon biodegradation rates: A structure-based study // Environ. Sci. Technol. 2005. -Vol. 39. — P. 2571−2578.
  158. Wilcox W.W. Changes in wood microstructure through progressive stages of decay. USDA Forest Products Laboratory (Madison). Research Paper FPL. -1968.-Vol. 70.-46 p.
  159. Worrall J.J., Anagnost S.E., Zabel R.A. Comparision of wood decay among diverse lignicolous fungi. город: Mycologia, 1997. -Vol. 89. -P. 199−219.
  160. Wood D. Mushroom biotechnology// Int. Industrial Biotech. 1989. — Vol. 9. -P. 5−8
  161. Zabel R.A., Morrell J.J. Wood microbiology: Decay and its Prevention // Academic Press. 1992. -476 p.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!