Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние химической десимпатизации крыс в пре-и постнатальный периоды онтогенеза на функции почек

Диссертация: Влияние химической десимпатизации крыс в пре-и постнатальный периоды онтогенеза на функции почек
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Впервые представлены данные о становлении почечной функции после пренатальной химической десимпатизации гуанетидином. Показано изменение парциальных функций почек потомства симпатэктомированных крыс в различные периоды постнатального онтогенеза в условиях спонтанного мочеотделе5 ния и в ответ на введение водной нагрузки. Нарушение симпатической иннервации в антенатальный период приводит… Читать ещё >

Влияние химической десимпатизации крыс в пре-и постнатальный периоды онтогенеза на функции почек (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОСОБЕННОСТИ ВЛИЯНИЯ СИМПАТИЧЕСКОЙ НЕРВНОЙ СИСТЕМЫ НА ФУНКЦИИ ПОЧЕК (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
    • 1. 1. Взаимосвязь между почками в системе «мать — плод»
    • 1. 2. Нервная регуляция функций почек
      • 1. 2. 1. Почечная иннервация
        • 1. 2. 1. 1. Эфферентные нервы
        • 1. 2. 1. 2. Афферентные нервы
      • 1. 2. 2. Почечные нейротрансмиттеры
      • 1. 2. 3. Почечные рег{епторы
        • 1. 2. 3. 1. Афферентные рецепторы
        • 1. 2. 3. 2. Эфферентные рецепторы
      • 1. 2. 4. Функция почечных нервов
        • 1. 2. 4. 1. Эфферентные нервы
        • 1. 2. 4. 1. 1 Влияние стимуляции почечных нервов на функцию почек
        • 1. 2. 4. 1. 2 Эффекты почечной денервации
        • 1. 2. 4. 2. Афферентные нервы
        • 1. 2. 4. 3. Функция адренергических нервов
    • 1. 3. возрастные особенности регуляции почечной функции
      • 1. 3. 1. Созревание адренергической иннервации
      • 1. 3. 2. Онтогенез адренергических и дофаминергических рецепторов
      • 1. 3. 3. Адренергическая регуляция почечного транспорта натрия в онтогенезе
    • 1. 4. Химическая десимпатизация с помощью гуанетидина
      • 1. 4. 1. Механизм действия гуанетидина
      • 1. 4. 2. Действие гуанетидина на взрослых животных
      • 1. 4. 3. Действие гуанетидина на новорожденных животных
      • 1. 4. 4. Действие гуанетидина на эмбрионы
  • 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Подготовка животных и план проведения экспериментов
    • 2. 2. Физико-химические методы анализа
    • 2. 3. Математические методы анализа экспериментального материала
  • 3. ВЛИЯНИЕ ПРЕНАТАЛЬНОЙ ДЕСИМПАТИЗАЦИИ НА ПАРЦИАЛЬНЫЕ ФУНКЦИИ ПОЧЕК ПОСЛЕ РОЖДЕНИЯ
    • 3. 1. Парциальные функции почек в условиях спонтанного мочеотделения
    • 3. 2. Парциальные функции почек после введения водной нагрузки
      • 3. 2. 1. Особенности парциальных функций почек у 10-ти дневных животных
      • 3. 2. 2. Особенности парциальных функций почек у 20-ти дневных животных
      • 3. 2. 3. Особенности парциальных функций почек у 30-ти дневных животных
      • 3. 2. 4. Особенности парциальных функций почек у 60-ти дневных животных
  • 4. ВЛИЯНИЕ ПОСТНАТАЛЬНОЙ ДЕСИМПАТИЗАЦИИ НА ПАРЦИАЛЬНЫЕ ФУНКЦИИ ПОЧЕК
    • 4. 1. Парциальные функции почек после введения возрастающих водных нагрузок
      • 4. 1. 1. Особенности парциальных функций почек после введения 3% водной нагрузки
      • 4. 1. 2. Особенности парциальных функций почек после введения 5% водной нагрузки
      • 4. 1. 3. Особенности парциальных функций почек после введения 7% водной нагрузки
      • 4. 1. 4. Особенности парциальных функций почек после введения 10% водной нагрузки
  • 5. СОПОСТАВЛЕНИЕ ПРЕ- И ПОСТНАТАЛЬНОГО ДЕЙСТВИЙ ГУАНЕТИДИНА
  • 6. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
  • ВЫВОДЫ

Актуальность проблемы.

Сегодня ни у кого не вызывает сомнений, что функция почек находится под контролем нервной системы и ее регуляция обеспечивается многими рефлекторными актами. Регуляция водно-солевого баланса достигается интеграцией осмо-, волюмои ионорегулирующих рефлексов, в которых почка служит эффектором (Великанова JI.K., 1990). Кроме того, почка и механизмы регуляции ее функций к моменту рождения не завершают своего развития, а продолжают его в постнатальный период.

Состояние здоровья детей во многом зависит от того, как протекало их развитие в антенатальном периоде. Установлено, что ненаследственные врожденные заболевания и ранняя постнатальная гибель детей связаны главным образом с влиянием неблагоприятных факторов внешней среды. Многие формы акушерской патологии связаны с нарушениями механизмов регуляции водно-солевого обмена, которые характеризуются отеками, гипертензией, удлинением срока беременности и т. д. (Гармашева H.JI. и др., 1978, 1985). В последние годы внимание специалистов привлечено к изучению особенностей формирования водно-солевого гомеостаза плода при физиологическом и патологическом течении беременности и при нарушении водно-солевого гомеостаза матери и плода (Айзман Р.И., Елькова Н. Г., 1988; Елькова Н. Г., 1989; Айзман Р. И., Быструшкин С. К., Склянов Ю. И., 1992; Aizman RI et al, 1990).

Поражение органа (системы) матери приводит к поражению одноименного органа (системы) плода, что обусловливает в постнатальном онтогенезе функциональную неполноценность и предрасположенность к заболеваниям тех органов (систем), которые были поражены у матери в период беременности (Громов Л.И., 1964; Бодяжина В. И., 1966; Клосовский Б. Н., Космарская E.H., 1968; Антонова С. Н., Кондрор М. И., Цибулевский А. Ю., 1978; Савченков Ю. И., Лобынцев К. С., 1980).

Одной из систем, оказывающей существенное влияние на беременный организм и водно-солевой гомеостаз, является симпатическая нервная система. 4.

Однако до настоящего времени практически нет сведений о влиянии симпатической нервной системы в пренатальный период на формирование почечной функции, не выяснено, как нарушение симпатической иннервации в пренатальный период онтогенеза сказывается на надежности системы водно-солевого го-меостаза после рождения.

Таким образом, изучение связи между функцией почек и нарушением симпатической иннервации в пренатальный период представляется весьма важным для углубления теоретических представлений о значении симпатической нервной системы в становлении почечной функции после рождения.

Цель работы.

Исходя из сказанного, основной целью настоящей работы явилось выяснение влияния химической десимпатизации гуанетидином беременных крыс на становление водно-солевого гомеостаза их потомства.

Задачи.

Реализация поставленной цели требовала решения следующих задач:

1. Выявить особенности антенатального воздействия гуанетидина на гидро-и ионоуретические функции почек после рождения.

2. Определить особенности функций почек потомства симпатэктомирован-ных крыс в различные периоды постнатального онтогенеза в условиях гипоос-мотического сдвига.

3. Определить особенности почечной функции после ранней постнатальной десимпатизации в условиях возрастающих водных нагрузок.

4. Выявить отличие влияний пренатальной и постнатальной десимпатизаций на почечную функцию.

Научная новизна.

Впервые представлены данные о становлении почечной функции после пренатальной химической десимпатизации гуанетидином. Показано изменение парциальных функций почек потомства симпатэктомированных крыс в различные периоды постнатального онтогенеза в условиях спонтанного мочеотделе5 ния и в ответ на введение водной нагрузки. Нарушение симпатической иннервации в антенатальный период приводит к изменениям ионного гомеостаза после рождения. Выявлено, что наибольшим изменениям подвержена система регуляции гомеостаза калия. Определены особенности почечной функции после ранней постнатальной десимпатизации в условиях возрастающих водных нагрузок. Показано, что постнатальная десимпатизация вызывает нарушение регуляции ионного гомеостаза и приводит к усилению роли клубочковых процессов в условиях спонтанного мочеотделения и гипоосмотического сдвига. Выявлено отличие влияний антенатального и постнатального введения гуанетидина на парциальные функции почек крыс. Пренатальная десимпатизация приводит к более глубоким нарушениям регуляции водно-солевого гомеостаза по сравнению с постнатальным введением гуанетидина, что проявляется в достоверном повышении экскреции ионов и преобладающем значении фильтрации в ответ на введение водной нагрузки.

Практическая значимость.

Экспериментальные исследования и теоретические положения данной работы позволяют расширить представления о формировании системы водно-солевого гомеостаза в онтогенезе. Материалы диссертации, раскрывающие особенности становления почечной функции в постнатальном онтогенезе, могут быть полезны для прогноза состояния водно-солевого обмена потомства у женщин с акушерской патологией. Полученные данные о антенатальном влиянии гуанетидина на формирование функции почек могут быть учтены при назначении терапии беременным женщинам препаратами из группы симпатолитиков.

Результаты работы используются при чтении курса лекций и проведении практических занятий по физиологии человека и животных в НГПУ, НГМА и НГАУ.

Апробация работы.

Основные положения диссертации были доложены на ежегодных научных конференциях НГПУ 1993;96 гг.- на симпозиуме, посвященном 100-летию со дня рождения А. Г. Гинецинского, Новосибирск, 1995; на конгрессе Европейской организации биологии развития (ЕОВО), Тулуза, 1995. 6.

Публикации.

По материалам диссертации опубликовано 7 работ.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, объекта и методов исследования, 3 глав собственных исследований, обсуждения, выводов и списка литературы. Работа содержит 147 страниц, 19 таблиц, 30 рисунков. Библиография включает 295 источников: 65 на русском и 230 на иностранных языках. Весь материал получен, обработан и проанализирован лично автором.

ВЫВОДЫ.

1. Эффект пренатального введения гуанетидина проявляется в изменении фоновых показателей функций почек, что выражается в достоверном снижении гидрои ионоуреза в раннем возрасте и повышении их в последующие периоды постнатального онтогенеза.

2. Отличительной особенностью десимпатизированных крысят является нарушение регуляции ионного гомеостаза в ответ на введение водной нагрузки. Экскреция ионов достоверно выше в опыте по сравнению с контролем во все периоды постнатальной жизни. Ведущим фактором, определяющим парциальные функции почек потомства десимпатизированных крыс, является скорость клубочковой фильтрации.

3. При постнатальном введении гуанетидина восстановление нарушенного равновесия после введения нагрузки у десимпатизированных животных осуществляется менее эффективно по сравнению с контролем, что приводит к достоверному повышению экскреции ионов. Постнатальная десимпатиза-ция приводит к усилению роли клубочковых процессов в условиях спонтанного мочеотделения и гипоосмотического сдвига.

4. Пренатальная симпатэктомия, по сравнению с постнатальным воздействием, приводит к достоверному увеличению экскреции ионов после введения водной нагрузки. Наибольшим изменениям подвержена система регуляции гомеостаза калия. Дезинтеграция клубочково-канальцевых процессов в ответ на гипоосмотический сдвиг после пренатальной десимпатизации приводит к усилению роли фильтрационных процессов по сравнению с постнатальным введением гуанетидина.

5. Симпатическая нервная система играет важную роль в становлении почечной функции у крыс. Нарушение симпатической иннервации у матери в период беременности приводит к нарушениям водно-солевого гомеостаза у потомства.

Показать весь текст

Список литературы

  1. РФ. Морфо-функциональные связи между почками матери и плода. М., Медицина, 1985, с. 84 -125.
  2. Ю.П. Механизм регуляции гладких мышц почечных сосудов. Успехи физиологических наук, 1977, т. 8, № 4, с. 45−61.
  3. Р.И., Антоненко Н. П. Формирование механизмов регуляции водно-солевого обмена в процессе онтогенеза. Новосибирск, 1979, с. 57.
  4. Р.И., Антоненко Н. П., Великанова J1.K. Интеграция механизмов регуляции водно-солевого равновесия при возрастающих водных, солевых и объемных нагрузках. Физиологич. жур. СССР, 1980, т. 66, с. 1404−1411.
  5. Р. И., Быструшкин С. К., Склянов Ю. И. Водно-солевой обмен материнского и плодового организмов при гипергидратации в различные периоды беременности. Физиологич. жур., 1992, т. 78, № 6, с. 97.
  6. Р.И., Великанова JI.K., Блинова J1.B. Метод исследования биологической надежности систем волюмо- и осморегуляции в онтогенезе. В кн.: Методы исследования функций организма в онтогенезе. М., 1975, с. 130−131.
  7. Р.И., Елькова Н. Г. Особенности водно-солевого обмена плода и беременных крыс при венозном застое. Тез. региональной конференции, Иркутск, 1988, с. 5.
  8. Н.П. Онтогенетические особенности реакции почек крыс на водные и солевые нагрузки. Автореферат дисс. канд. биол. наук., Новосибирск, 1982.
  9. П.К. Очерки по физиологии функциональных систем. М., Медицина, 1975, с. 447.
  10. С.Н., Кондрор М. И., Цибулевский А. Ю. Функционально-морфологическая характеристика эндокринной системы потомства адреналэк-томированных крыс. Бюлл. экспер. биол., 1978, № 4, с. 400−403.121
  11. И.А. Плацентарный барьер. В кн. Физиология гистогематиче-ских барьеров / Под ред. Я. А. Росина. М., Наука, 1977, с. 443−456.
  12. Е.Б., Иванов Ю. И. Методы экспериментального исследования почек и водно-солевого обмена. Барнаул, 1972. — 199 с.
  13. В.И. О заболеваниях аналогичных органов (систем) матери и плода. Педиатрия, 1966, № 9, с. 3−6. Цит. по Аверкина Р. Ф., 1985.
  14. М.М. Исследование особенностей проявления некоторых вазомоторных рефлексов у десимпатизированных животных. Автореф. дис. канд. наук, М., 1975.
  15. С.А. Роль почек в осморегуляции организма. Бюл. экспер. биол. и мед., 1965, № 10, с. 18−20.
  16. В.Ф. О влиянии денервации на функцию почек. Физиологический журнал СССР, 1958, т. 44, № 3, с. 236−238.
  17. Л. К. Методологические и биологические аспекты надежности биологических систем. В кн. Формирование механизмов регуляции водно-солевого обмена в процессе онтогенеза. Новосибирск, Изд-во НГПИ, 1979, с. 3.
  18. Л.К. Резервные возможности механизмов регуляции водно-солевого обмена в различные периоды онтогенеза. В кн. Онтогенез почки. Новосибирск, 1984, с. 109−128.
  19. Л.К. Осморецепторы. Новосибирск: Наука, 1985, с. 29.
  20. Л.К. Значение эфферентных систем осмо-, волюмо- и ионоре-гулирующих рефлексов в интеграции функции почек. В кн. Интеграция функциональных систем в онтогенезе. Новосибирск, Изд-во НГПИ, 1990.
  21. Л.К., Айзман Р. И., Абаскалова Н. П. Резервные возможности функции почек и водно-солевого гомеостаза. Новосибирск, Изд-во НГПУ, 1997.
  22. Л.К. Значение эфференттных систем осмо-волюмо- и ионоре-гулирующих рефлексов в интеграции функции почек. В кн. Интеграция функциональных систем в онтогенезе. -Новосибирск, Изд-во НГПИ, 1990. -с. 152.122
  23. A.M. Быковская К. Н. К вопросу об экспериментальном врожденном нефротическом синдроме. В кн. Достижения нефрологии / Под ред. Е. И. Чазова. М., 1970, с. 57−68. Цит. по Аверкина Р. Ф., 1985.
  24. A.A., Назаренко Н. К., Талалаев C.B. К причинам некоторых отклонений нефроногенеза у плодов человека. Арх. анат., 1977, № 2, с. 64−70.
  25. H.JI. Патофизиологические основы охраны внутриутробного развития человека. М., 1985, с. 85−100.
  26. Гармашева H. JL, Константинова H.H. Введение в перинатальную медицину. М., Медицина, 1978, с. 294.
  27. А.Д. Роль нервных и гормональных механизмов в регуляции го-меостаза калия. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 1994.
  28. А.Г. Физиологические механизмы водно-солевого равновесия. M.- JL- Наука, 1964, с. 427
  29. O.A. Интракортикальные и юкстамедуллярные нефроны почки в постнатальном онтогенезе крысы. Архив анатомии, физиологии и эмбриологии, 1977, т. 2, № 6, с. 20−27.
  30. Т.А. О специфических особенностях дистрофических процессов при чувствительной и двигательной денервации органов. Проблема нервной трофики в теории и практике медицины. М., 1963.
  31. Л.И. Преждевременная функция плода как медико-биологическая проблема. Вести АМН СССР, 1964, № 6, с. 10−13.
  32. P.A. Функциональное значение нервов почки. Успехи физиологических наук, 1986, т. 17, № 4, с. 105−109.
  33. Е.Д. Изменение функции почек в онтогенезе осморегулирующего рефлекса. Автореферат дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 1970, с. 18.
  34. Г., Кршечек И., Наточин Ю. Онтогенез почки. Л., Наука, 1981.123
  35. Н.Г. Формирование водно-солевого гомеостаза в процессе физиологического и нарушенного эмбриогенеза крыс. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Новосибирск, 1989, с. 25.
  36. JI.H. Антидиуретический гормон и его роль в регуляции осмотического регулирования мочи // Физиология и патология почек и водно-солевого обмена. Киев: Наукова думка, 1974. с. 35−45.
  37. JI.H., Зеленина М. Н., Мелиди H.H., Соленов Е. И., Хегай И. И. Ва-зопрессин: онтогенез антидиуретического действия на клеточном уровне // Фи-зиол. Жур. СССР.- 1989. -Т 75. -с. 970−979.
  38. A.B., Вичев Е. П. Микрометоды в клинической лаборатории. -София, 1968.
  39. JI.E., Мельман Е. П. Иннервация юкстагломерулярного комплекса (ЮГК) почки позвоночных животных. Архив анатомии, гистологии и эмбриологии, 1990, № 4, с. 41−47.
  40. Л.И. Механизмы осморегуляции в онтогенезе. Автореф. дис. д.м.н. Новосибирск, 1971.
  41. Г. Ф. Биометрия. М., Высш. школа, 1980, с. 293.
  42. П.И., Ковальчук И. Е., Руденок В. В. Антенатальный морфогенез спинномозговых узлов плодов белой крысы в условиях химической десимпати-зации беременной самки. Здравоохр. Белоруссии, 1990, № 12, с. 17−19.
  43. В.Г., Соловьев H.A. Влияние концентрации ионов натрия на структурно-функциональные характеристики кустиковидных рецепторов. Архив анат. гистол., 1980, т. 79, вып. 10, с. 43−48.
  44. В.Ф. Бюл. эксперим. биологии и медицины, 1962, т. 64, № 10, с. 118. Цит. по Федоров В. И., 1998.124
  45. .Н. Физиология адренорецепторов. М., Наука, 1968.
  46. .Н., Мухаммедов А-, Бердышева JI.B., и др. Содержание норад-реналина в периферических органах и их адреночувствительность при химической десимпатизации. Физиол. журн. СССР, 1980, Т. 65, № 3, с. 344−349.
  47. H.H., Савенкова JI.A., Иванова J1.H. Влияние ранней постнаталь-ной десимпатизации на концентрирующую функцию почки крыс. Журн. эвол. биохим. и физиолог., 1989, т. XXY, № 4, с. 481−486.
  48. Е.П., Шутка Б. В. Нервный аппарат почки. Архив анатомии, гистологии и эмбриологии, 1986, ТХС, № 6, с. 90−97.
  49. В.Н. Патогенное действие нефроцитотоксической сыворотки на эмбриональное развитие белых крыс. Бюлл. экспер. биол, 1967, № 6, с. 97−100. Цит. по Аверкина Р. Ф., 1985.
  50. Ю.В. Физиология почки: формулы и расчеты. JL: Наука, 1974, с 60
  51. Ю.В. Ионорегулирующая функция почки. Д.: Наука, 1976.
  52. JI.A. Теория адаптационно-трофического влияния нервной системы. Избр. тр., М., Л., Изд-во АН СССР, 1948, Т 2.
  53. Н. Эндокринология. М., JL, Биомедгиз, 1937. Цит. по Аверкина Р. Ф., 1985.
  54. ., Натчев Н., Киркова JI. Экскреторная функция почек после де-нервации и введения ß--блокатора. Физиологический журнал СССР, 1978, т. 64, № 3, с. 335.
  55. И.М., Ярыгин В. Н., Мухаммедов A.A. Иммунологическая и химическая десимпатизация. М., Наука, 1988, с. 28−68.
  56. Л.К., Жихарева И. А. К вопросу о гуморальной регуляции восстановительного роста в легких, почках и печени. Бюлл. экспер. биол., 1972, № 1, с. 84−87. Цит. по Аверкина Р. Ф., 1985.125
  57. В.В. Строение шейных спинномозговых узлов в эмбриогенезе человека и белой крысы в норме и при введении гуанетидина беременной самке. Автореферат дисс. канд. мед. наук, Минск, 1992, с. 14.
  58. Ю.И., Лобынцев К. С. Очерки физиологии и морфологии функциональной системы мать-плод. М., Медицина, 1980, с. 256.
  59. О.Н. Натрийуретическая реакция при осмотическом раздражении почек. В кн.: Альдостерон и водно-солевой гомеостаз. Новосибирск, 1968, с. 55−56.
  60. Е.И. Развитие клеточных механизмов действия АДГ в постна-тальном онтогенезе почки млекопитающих. Автореф. дис. д. б. н., Новосибирск, 1994.
  61. Е.М. Электрофизиологическая характеристика и функциональная роль механорецепторов печени. Физиол. журн. СССР, 1980, т. 66, № 7, с. 984−992.
  62. В.И. Холинергическая система почки. Успехи совр. биол., 1998, т. 118, вып. 4, с. 498−503.
  63. Ф. Нейрохимия. Основы и принципы. М., Мир, 1990, с. 383.
  64. В.Н. Иннервация почек. М: Л, Наука, 1965, с. 176.
  65. Ahlquist RP: A study of adrenotropic receptors. Am J Physiol 153:586, 1948.
  66. Aizman RI, Antonenko NP, Bistrushkin SK. Water-electrolyte balance of the embrio under difference conditions of pregnancy. Symp. on Develop. Pharmacol., Jena, 1990, p. 138−145.
  67. Andrews PM, Coffey AK: Cytoplasmic contractile elements in glomerular cells. FedProc 42:3046, 1983.
  68. Angeletti PU, Levi-Montalcini R. Growth inhibition of sympathetic cells by some adrenergic blocking agents. Proc Nat Acad Sci 1972, V 69, № 1, P 86−88.126
  69. Angeletti PU, Levi-Montalcini R, Caramia F. Structural and ultrastructural changes in developig sympathetic ganglia induced by guanethidine. Brain Res, 1972, 5i 43, № 2, P 515−525.
  70. Aperia A, Larsson L, Letterstrom R. Hormonal induction Na±K±ATPase in developing proximal tubular cells. Am J Physiol, v. 241, № 4, 1981.
  71. Appenroth D, Braunlich H: Effect of sympathectomy with 6-hydro^y dopamine on the renal excretion of water and electrolytes in developing rats. Acta Biol Med Ger 40:1715, 1981.
  72. Ayus JC, Humphreys MH: Hemodynamic and renal functional changes after acute unilateral nephrectomy in the dog: Role of carotid sinus baroreceptors. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 11)242:F181, 1982.
  73. Baines AD, Drangova R, Ho P: arAdrenergic stimulation of renal Na reabsorption requires glucose metabolism. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 22) 253: F810, 1987.
  74. Barajas L: Innervation of the renal cortex. Fed Proc 37:1192, 1978.
  75. Barajas L, Powers K, Wang P: Innervation of the renal cortical tubules: A quantitative study. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 16) 247: F50, 1984.
  76. Barajas L, Wang P: Simultaneous ultrascructural visualization of acetylcholinesterase activity and tritiated norepinephrine uptake in renal nerves. Anat Rec 205:185, 1983.
  77. Barber JD, Harrington WW, Moss NG, et al: Prostaglandin blockade impairs denervation diuresis and natriuresis in the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250: F895, 1986.
  78. Bass AS: DA2 dopamine receptor mediated renal effects of LY 141 865 in rats subjected to acute unilateral denervation (abstr). Kidney Int 35:477, 1989.
  79. Bauer JH, Brooks CS: The long-term effect of propranolol therapy on renal function. Am J Med 66:405, 1979.127
  80. Baylis С, Blantz RC. News Physiol Sci, ^ 1, P 86, 1986. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  81. Bello-Reuss E, Colindres RE, Pastoriza-Munoz E, et al: Effects of acute unilateral renal denervation in the rat. J Clin Invest 56:208, 1975.
  82. Bencsath P, Asztalos B, Szalay L, et al: Renal handling of sodium after chronic renal sympathectomy in the anesthetized rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 5) 236: F513, 1979.
  83. Bencsath P, Fekete MI, Kanyicska, et al: Renal excretion of sodium after bilateral renal sympathectomy in the anaesthetized and conscious rat. J Physiol (Lond) 331:443, 1982.
  84. Bencsath P, Szenasi G, Tackacs L: Renal nerves and sodium conservation in conscious rats (letter). Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 17) 248: F616, 1985.
  85. Bencsath P, Szenasi G, Tackacs L: Water and electrolyte transport in Henle’s loop and distal tubule after renal sympathectomy in the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249: F308, 1985.
  86. Bernard C: Lecons sur les phenomenes de la vie communes аш* animaux et аш$ vegetara. Paris, 1878 (Цит. по Гинецинский А. Г., 1964)
  87. Berne RM: Hemodynamics and sodium excretion of denervated kidney in anaesthetized and unanesthetized dog. Am J Physiol 171:148, 1952.
  88. Berthoud HR, Powley TL. J Autonom Nerv System, 4 42, P 153, 1993. Цит. no Федоров В. И., 1998.
  89. Bradley T, Hjemdahl P: Further studies on renal nerve stimulation induced release of noradrenaline and dopamine from the canine kidney in situ. Acta Physiol Scand 122:369, 1984.
  90. Brent RL, Jensen M. Immunological aspects of development. Handbook of teratology. Ed JG Wilson, FC Fraser. New York, 4 4,? 339−396, 1978.128
  91. Buckley NM, Brazeau P, Charney AN, et al: Cardiovascular and renal effects of isoproterenol infusions in young swine. Biol Neonate 45:69, 1984.
  92. Buckley NM, Brazeau P, Frasier ID: Cardiovascular effects of dopamine in the developing swine, Biol Neonate 43:50, 1983.
  93. Buckley NM, Brazeau P, Frasier ID: Renal blood flow autoregulation in developing swine. Am J Physiol (Heart Circ Physiol 14) 245: H1, 1983.
  94. Buckley NM, Charney AN, Brazeau P, et al: Changes in cardiovascular and renal function during catecholamine infusions in developing swine. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 9) 240: F276, 1981.
  95. Burnstock G, Evans В et al. A new method of destroyng adrenergic nerves in adult animals using guanethidine. Brit J Pharmacol, 1971, ^ 43, P 295−301.
  96. Calaresu FR, Ciriello J: Renal afferent nerves affect discharge rates of medullary and hypothalamic single units in the cat. J Auton Nerv Syst 3:311, 1981.
  97. Carey RM, Thorner MO, Ortt EM: Dopaminergic inhibition of metoclopramide-induced aldosterone secretion in man. J Clin Invest 66:10, 1980.
  98. Carter MK, Hemstreet GR, Reid JW. Physiologist, 3, P 57, 1961. Цит по Федоров В. И., 1998.
  99. Cass R, Kuntzman R, Brodie BB. Norepinephrine depletion as a possible mechanism of action of guanethidine (SU-5864), a new hypertensive agent (25 702). Proc Soc Ещ> Biol, 1960, 103, № 4, P 871−872.
  100. Cogan MG: Neurogenic regulation of proximal bicarbonate and chloride reabsorption. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250: F22,1986.
  101. Collier B, Johnson G, Quik M, Welner S. Effect of chemical destruction of mechanisms in adult rat sympathetic ganglia. Brit J Pharmacol, 1984, 82, № 4, P 827−832.
  102. Colindres RE, Spielman WS, Moss NG, et al: Functional evidence for renorenal reflexes in the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 8) 239: F265, 1980.129
  103. Coupland RE. Renal disease. Oxford: Blackwell Scientific Publ, P 1, 1972. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  104. Cuche JL: Sources of circulating dopamine. In McGrath B, Bell С (eds): Peripheral Actions of dopamine. London, McMillan, 1988, p 1.
  105. De Michelle M, Amenta F. Clin E^p Hypertens, ii A10, P 1031, 1988. Цит. no Федоров В. И., 1998.
  106. De Wolf WC, Fraley EE: Renal pain. Urology 6: 403, 1975.
  107. DiBona GF: Neurogenic regulation of renal tubular sodium reabsorption. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 2) 233: F73, 1977.
  108. DiBona GF. Rev Physiol Biochem Pharmacol, 94, P 75, 1982. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  109. DiBona GF, Sawin LL: Role of renal a2-adrenergic receptors in spontaneously hypertensive rats. Hypertension 9:41, 1987.
  110. DiBona GF, Sawin LL: Renal nerves in renal adaptation to dietary sodium restriction. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 14) 245: F322, 1983.
  111. DiBona GF, Sawin LL: Effect of renal nerve stimulation on NaCl and H20 transport in Henle’s loop of the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 12)243:F576, 1982.
  112. DiBona GF, Sawin LL: Renal nerve activity in conscious rats during volume expansion and depletion. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 17) 248: F15, 1985.
  113. DiBona GF, Sawin LL: Role of renal nerves in congestive bean failure. Kidney Int 33:418, 1988.
  114. Douglas IR, Johnson EI et al. Development and maintenence of renal hypertension in normal and guanethidine sympathectomized rats. Circulation Res, 1975, 36, № 6, Suppl 1, P 171−178.130
  115. Downing OA, Juul P. The effect of guanethidine pretreatment on transmission in the superior cervical ganglion. Acta Pharmacol Et Toxicol, 1973, V 32, № 5, P 369 381.
  116. Driscoll DJ, Fukushige J, Hartley CJ, et al: The comparative hemodynamic effects of isoproterenol in chronically instrumented puppies and adult dogs. Dev Pharmacol Ther 2:91, 1981.
  117. Driscoll DJ, Gillete PC, Lewis RM: Comparative hemodynamic effects of isoproterenol, dopamine, and dobutamine in the newborn dog. Pediatr Res 13:1006, 1979.
  118. Dzau VJ, Kresiberg J: Cultured glomerular mesangial cells contain renin: Influence of calcium and isoproterenol. J Cardiovasc Pharmacol (suppl 10) 8: S6, 1986.
  119. Eranko O, Eranko L. Histochemical evidence of chemical sympathectomy by guanethidine in newborn rats. Ibid, 1971, V 3, № 6, P 451−456.
  120. Euler I, Hillarp N. Evidence for the presence of noradrenaline in submicroscopic structures of adrenergic axons. Nature, 1956, V 177, P 44.
  121. Evans BK, Burnstock G. Chronic guanethidine treatment of female rats including effects on the fetus. J Reprod and Fert, 1979, V 56, № 2, P 715−724.
  122. Felder RA, Blecher M, Eisner GM, et al: Cortical tubular and glomerular dopamine receptors in the rat kidney. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 15) 246: F557, 1984.
  123. Felder RA, Blecher M, Schoelkopf L, et al: Renal dopamine receptors during maturation (abstr). Pediatr Res 17:148A, 1983.
  124. Felder RA, Jose PA: Development of adrenergic and dopamine receptors in the kidney. In Strauss J (ed): Homeostasis, Nephrotoxicity, and Renal Anomalies in the Newborn. Boston, Martinus Nijhoff, 1986, p 3.
  125. Felder RA, Pelayo JC, Calcagno PL, et al: Alpha-adrenoceptors in the developing kidney. Pediatr Res 17:177, 1983.131
  126. Felder RA, Seikaly MG, Eisner GM, et al: Renal dopamine-1 defect in the spontaneously hypertensive rat. Contrib Nephrol 67:71, 1988.
  127. Felder RB: Excitatory and inhibitory interactions among renal and cardiovascular afferent nerves in dorsomedial medulla. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 19) 250: R580, 1986.
  128. Ferguson M, Bell C: Substance P-immunoreactive nerves in the rat kidney. Neu-rosci Lett 60: 183, 1985.
  129. Fernandez-Repollet E, Silva-Netto CR, Colindres RE, et al: Role of renal nerves in maintaining sodium balance in unrestrained conscious rats. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249: F819, 1985.
  130. Fildes RD, Eisner GM, Calcagno PL, et al: Renal alpha adrenoceptors and sodium excretion in the dogs. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 17) 248: F 128, 1985.
  131. Fildes R, Sohaug M, Eisner GM, et al: Enhancement of sodium excretion by substance P during saline loading in the canine puppy. Pediatr Res 17:737, 1983.
  132. Forssmann WG, Reinecke M: Organ-specific innervation by autonomic nerve fibers as revealed by electron microscopy and immunohistochemistry. Front Horm Res 12:59, 1984.
  133. Gallen DD, Cowen T, Griffith SC, et al: Functional and non-functional nerve -smooth muscle transmission in the renal arteries of the newborn and adult rabbit and guinea pig. Bloodvessels 19:237, 1982.
  134. Gannon BI, Iwajama T, Burnstock G. Prolonged effect of chronic guanethidine treatment of the sympathetic innervation of the genitalia of male rats. Med J Austral, V2, № 4, P 207−208, 1971.
  135. Gattone VH, Marfurt CF, Dallie S: Extrinsic innervation of the rat kidney: A retrograde tracing study. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250: F189, 1986.
  136. Genovesi S, Protasoni G, Golin R, Stella A, Zanchetti A. J. Hyper-tension. V 7, Suppl 6, P 176, 1989. Цит. по Федоров В. И., 1998.132
  137. Gill JR Jr, Bartter FC: Adrenergic nervous system in sodium metabolism. II. Effects of guanethidine on the renal response to sodium deprivation in normal man. N Engl J Med 275:1466, 1966.
  138. Gilmore JP, Tomomatsu E: Renal mechanoreceptors in nonhuman primates. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 17) 248: R202, 1985.
  139. Gitler MS, Piccio MM, Robillard JE, et al: Ontogeny of renal alpha adrenoceptor subtypes in the sheep (abstr). Pediatr Res 25:340A, 1989.
  140. Goetz KL: Physiology and pathophysiology of atrial peptides. Am J Physiol (Endocrinol Metab 7) 254: E1, 1988.
  141. Gordon D, Pert WS, Wilcox CS: Requirement of the adrenergic nervous system for conservation of sodium by the rabbit kidney (proceedings). J Physiol (Lond) 293:24P, 1979.
  142. Goss RJ. Effects of maternal nephrectomy on foetal kidneys. Nature (London), 1963, V 46, P 402−403.
  143. Graham RM, Pettinger WA, Sagalowsky A, et al: Renal alpha-adrenergic receptor abnormality in the spontaneously hypertensive rat. Hypertension 4:881, 1982.
  144. Grignolo A, Seidler FJ, Bartolome M, et al: Norepinephrine content of the rat kidney during development: Alterations induced by perinatal methadone. Life Sei 31:3009, 1982.
  145. Gross R, Hackenberg H, Hackenthal E: Interaction between perfusion pressure and sympathetic nerves in renin release by carotid baroreflex in conscious dogs. J Physiol (Lond) 313:237, 1981.
  146. Gross R, Kirchheim H: Effects of bilateral carotid and auditory stimulation on renal blood flow and sympathetic nerve activity in the conscious dog. Pflugers Arch 383:233, 1980.
  147. Gross R, Kirchheim HR, Ruffman K: Effect of carotid occlusion and of perfusion pressure on renal function in conscious dogs. Circ Res 48:774, 1981.133
  148. Hartmann PJ, Davies H. J Compar Neurol V 89, P 225, 1948. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  149. Heath IW, Burnstock G. Selectivity of neuronal degeneration production by chronic guanethidine treatment. J Neurocytol, 1977, V 6, № 4, P 397−405.
  150. Heath IW, Evans BK et al. Degeneration of adrenergic neurons following guanethidine treatment: an ultrastructural study. Virchows Arch, 1972, V 11, № 2, P 182 197.
  151. Heath IW, Evans BK, Burnstock G. Axon retraction following guanethidine theatment. Studies of sympathetic neuron in vivo. Ztschr Zellforsch, 1973, V 146, № 4, P 439−451.
  152. Hermansson K, Larson M, Kallskog O, et al: Influence of renal nerve activity in arteriolar resistance, ultrafiltration dynamics and fluid reabsorption. Pflugers Arch 389:85, 1981.
  153. Hermansson K, Ojteg G, Wolgast M: The cortical and medullary blood flow at different levels of renal nerve activity. Acta Physiol Scand 120:161, 1984.
  154. Hermansson K, Ojteg G, Wolgast M: The reno-renal reflex: Evaluation from renal blood flow measurements. Acta Physiol Scand 120:207, 1984.
  155. Hiroshi H, Miro M, Shuji U, Hiroshi I. Changes in density of muscarinic clon-inergic receptor by adrenergic denervation with guanethidine. Jap J Pharmacol, 1985, V 37, № 2, P 207−211.
  156. Hjemdahl P, Bradley T, Tidgren B: Release of dopamine from the kidney in vivo. In McGrath B, Bell С (eds): Peripheral Actions of Dopamine. London, McMillan 1988, p 56.
  157. Hjemdahl P, Tidgren B: Differential changes of norepinephrine (NE) and dopamine (DA) overflow from the human kidney in response to different stressors (abstr), Circulation 76: IV-272, 1987.
  158. Holdaas H, DiBona GF: On the existence of renal vasodilator nerves. Proc Soc Exp Biol Med 176:426, 1984.134
  159. Holdaas H, DiBona GF: Stimulatory and inhibitory reflexes from somatic receptors: Effect on renin release. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 15) 246: R1005, 1984.
  160. Horster M. Expression of ontogeny in individual nephron sygments. Kidney Int 22:5, 1982.
  161. Hosotani T, Misu I. Studies on the mechanism of guanethidine action. VI. Effects of guanethidine and calcium on release of noradrenaline from rabbit heart induced by sodium reduction, pap J Pharmacol, 1976, V 26, P 1−47.
  162. Hyem Ch., Grube D. Die funktionellen Zellelemente im ganglion cervicale Su-perius der Katze unter dem Einflus von Guanethidine. Verh anat Ges, 1975, Bd 69, № 8, p 484 490.
  163. Ichikawa I, Kon V: Glomerular mesangium as an effector locus for the tubu-loglomerular feedback system and renal sympathetic innervation. Fed Proc 42:3075, 1983.
  164. Ichikawa K, Maddox DA, Cogan MG, et al: Dynamics of glomerular ultrafiltration in euvolemic Munich-Wistar rats. Renal Physiol 1:121, 1978.
  165. Iensen-Holm I., Juul P. Ultrastructural changes in the rat superior cervical ganglion following prolonged guanethidine administration. Acta Pharmakol, 1971, V 30, № 3,P 308−314.
  166. Insel PA, Snavely MD: Catecholamines and the kidney: Receptors and renal function. Annu Rev Physiol 43:625, 1981.
  167. John E, Assadi F, Fornell L: Dose related effect of dopamine (D) on renal function (RF) during ontogeny (abstr). Pediatric Nephrol 1: C27, 1987.
  168. Johnson EM. Biochemical and functional evaluation of the sympathectomy induced by treatment of newborn rats with guanethidine. Fed Proc, 1974, V 33, № 3, Pt 1, P 486.
  169. Johnson EM. Destruction of the sympathetic nervous system in neonatal rats and hamster by vinblastine: prevention by concomitant administration of nerve growth factor. Brain Res, 1978, V 141, № 1, P 105−118.135
  170. Johnson EM, O’Brien F. Evaluation of the permanent sympathectomy produced by the administration of guanethidine to adult rats. J Pharmacol and Exp Ther, 1976, V 196, № 1,P 53−61.
  171. Johnson MD, Barger CA: Circulating catecholamines in control of renal electrolyte and water excretion. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 9) 240: F192, 1981.
  172. Johnson EM, Macia RA. Unique resistance to guanethidine-induced chemical sympathectomy of spontaneously hypertensive rats. A resistance overcome by treatment with antibody to nerve growth factor. Circulation Res, 1979, V 45, P 243−249.
  173. Jonson EM, Macia RA, Andres RG, Bradshow RA. The effects of drugs which destroy the sympathetic nervous system on the retrograde transport of nerve growth factor. Brain Res, 1979, V 171, P 461−472.
  174. Johnson IE, Manning PT. Guanethidine-induced destruction of sympathetic neurons. Intern Rev Neurobiol, 1984, V 25, P 1−37.
  175. Jose PA: Adrenergic Regulation of Blood Pressure. NHLBI Workshop on Juvenile Hypertension, Proc Symposium, New York, Biomedical Information Corp. 1984, p 205.
  176. Jose PA, Felder RA, Holloway RR, et al: Dopamine receptors modulate sodium excretion in denervated kidney. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250:1033, 1986.
  177. Jose PA, Felder RA, Robillard JE, et al: Dopamine-2 receptor in the canine kidney (abstr). Kidney Int 28:385, 1986.
  178. Jose P, Logan A, Slotkoff L, et al: Intrarenal blood flow distribution in the maturing kidney. Proceedings of the 1 st International Symposium «Radionuclides in Nephrology», New York, Grune and Stratton, 1972, p 9.
  179. Judes C, Helwig JJ, Bollavck C, et al: Isoproterenol-sensitive adenylate cyclase in glomeruli isolated from young and adult rat renal cortex. Gen Pharmacol 16:205, 1985.
  180. Juul P, Melsaac RL. The effect of guanethidine on the noradrenaline content of the adult rat superior cervical ganglion. Acta Pharmacol Et Toxicol, 1973, V 32, № 5, P 382−389.
  181. Juul P, Sand O. Guanethidine determination in rat sympathetic ganglia following prolonged administration. Acta Pharmacol, 1971, V 29, spl 4, P 25.
  182. Kahan T, Dahlof C, Hjemdahl P: Facilitation of nerve stimulation evoked noradrenaline overflow by isoprenaline but not by circulating adrenaline in the dog in vivo. LifeSci 40:1811, 1987.
  183. Katholi RE: Renal nerves in the pathogenesis of hypertension in experimental animals and humans. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 14) 245: F1, 1983.
  184. Kessler JA, Adler JE, Bohn MC, et al: Substance P in principal sympathetic nerves: Regulation by impulse activity. Science 242:1403, 1981.
  185. Kinoshita S, Canada M, Felder RA: DA-1 receptors identified in rat renal ho1mogenates, slices, and microdissected nephrons with I-SCH23982 (abstr). Kidney Int 33:419, 1988.
  186. Kinoshita S, Jose PA, Felder RA: Ontogeny of the dopamine. (DAj) receptor in rat renal proximal convoluted tubule (PCT) (abstr). Pediatr Res 25:68A, 1989.
  187. Klein RM. Alteration of neonatal rat parotid gland acinar cell proliferation by guanethidine-induced sympathectomy. Cell Tissue Kinet 1979, V 12, № 4, P 411−423.
  188. Kon V, Ichikawa I: Effector loci for renal nerve control of cortical microcirculation. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 14) 245: F545, 1983.
  189. Kopp UC, Olson LA, DiBona GF: Renorenal reflex responses to mechano- and chemoreceptor stimulation in the dog and rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 15) 246: F67, 1984.137
  190. Kopp UC, Smith LA, DiBona GF: Impaired renorenal reflexes in spontaneously hypertensive rats. Hypertension 9:69, 1987.
  191. Kopp UC, Smith LA, DiBona GF: Renorenal reflexes: Neural components of ipsilateral and contralateral renal responses. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249: F507, 1985.
  192. Kreisberg JI, Venkatachalam MA, Patel PY: Cyclic AMP associated shape change in mesangial cells and its reversal by prostaglandin E2. Kidney Int 25:874, 1984.
  193. Krothapalli RK, Suki WN: Functional characterization of the alpha adrenergic receptor modulating the hydroosmotic effect of vasopressin on the rabbit cortical collecting tubule. J Clin Invest 73:740, 1984.
  194. Kuo DC, Nadelhaft I, Hisamitsu T, et al: Segmental distribution and central projections of renal afferent fibers in the cat studied by transganglionic transport of horseradish peroxidase. J Comp Neurol 216:162, 1983.
  195. Kurkus J, Thorup C, Persson AE. Renal nerve stimulation restores tubuloglome-rular feadback after acute renal denervation. Acta Physiol Scand V 164, № 3, P 237 243, 1998.
  196. Kusano E, Nakamura R, Asano Y, et al: Distribution of alpha-adrenergic receptors in the rabbit nephron. Tohoku J Exp Med 142:275, 1984.
  197. Laradi A, Sakhrani LM, Massry SG: Effect of dopamine on sodium uptake by renal proximal tubule cells of rabbit. Miner Electrolyte Metab 12:303, 1986.
  198. Levin BE, Triscari I, Marquet E, Sullivan AC. Dietary obesity and neonatal sympathectomy I. Effects on body composition and grown adipose. Amer J Physiol V 247, № 6, Pt 2, P 979−987, 1984.
  199. Lifschitz MD: Lack of a role for the renal nerves in renal sodium reabsorption in conscious dogs. Clin Sci Mol Med 54:567, 1978.138
  200. Lin S-Y, Chaves C, Widemann E, et al: A y-melanocyte stimulating hormonelike peptide causes reflex natriuresis after acute unilateral nephrectomy. Hypertension 10:619, 1987.
  201. Liu CL, Bigazzi R, Bollard J, Campese VM. Amer J Nephrol, V 12, P 86, 1992. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  202. Liuzzi A, Foppen FH, Angeletti PU. Adrenaline, noradrenaline and dopamine levels in brain and heart after administration of 6-hydroxydopamine and guanethidine to newborn mice. Biochem Pharmacol V 23, № 6, P 1041−1044, 1974.
  203. Lokhandwala MF, Steenberg ML: Evaluation of effects of SKF 82 526 and LY 171 555 on presynaptic (DA2) and postsynaptic (DAI) dopamine receptors in rat kidney. J Auton Pharmacol 4:273, 1984.
  204. Lundin S, Ricksten SE, Thoren P: Renal sympathetic activity in spontaneously hypertensive rats and normotensive controls, as studied by three different methods. Acta Physiol Scand 120: 265, 1984.
  205. Maines JE, Williams RL, Pearson JE. Amer J Physiol, V 222, P 829, 1972. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  206. Matherne GP, Nakamura KT, Alden BM, et al: Regional variation of postjunctional alpha-adrenoceptor responses in the developing renal vascular bed of the sheep. Pediatr Res 25:461, 1989.
  207. Matherne GP, Nakamura KT, Robillard JE: Ontogeny of a-adrenoceptor responses in renal vascular bed of sheep. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 23) 254: R277, 1988.
  208. Maxwell RA, Mull RP, Plummer AI. 2-(octohydro-l-azocinyl)-ethyl-guanidine sulfate (Ciba 5864-SU), a new synthetic antihyper-tensive agent. Experientia, 1959, V 15, P 267.
  209. McCaughran JA Jr, Juno CJ, O’Malley E, et al: The ontogeny of renal alphaland alpha2-adrenoceptors in the Dahl rat model of experimental hypertension. J Auton Nerv Syst 17:1, 1986.139
  210. McKenna OC, Angelakos ET: Acetylcholinesterase containing nerve fibers in the canine kidney. Circ Res 23:645, 1968.
  211. McKenna OC, Angelakos ET: Development of adrenergic innervation in the puppy kidney. AnatRec 167:115, 1970.
  212. Melidi NN. Renal function after early postnatal chemical sympathectomy in rat. Acta Physiol Pharmacol Bulgarica, Varna, V 14, P 59, 1988.
  213. Mitchell GAG: The nerve supply of the kidneys. Acta Anat (Basel) 10:1, 1950.
  214. Mizelle HL, Hall JE, Woods LL, et al: Role of renal nerves in compensatory adaptation to chronic reductions in sodium intake. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 21) 252: F291, 1987.
  215. Morgunov N, Baines AD: Renal nerves and catecholamine excretion. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 9) 240: F75, 1981.
  216. Morgunov N, Baines AD: Vagal afferent activity and renal nerve release of dopamine. Can J Physiol Pharmacol 63:636, 1985.
  217. Morita H, Vatner SF: Effects of volume expansion on renal nerve activity, renal blood flow, and sodium and water excretion in conscious dogs. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249: F680, 1985.
  218. Moss NG: Renal function and renal afferent and efferent nerve activity. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 12) 243: F425, 1982.
  219. Nakamura KT, Alden BM, Matherne GP, et al: Ontogeny of renal hemodynamic response to terbutaline and forskolin in sheep. J Pharmacol Exp Ther 247:453, 1988.
  220. Nakamura KT, Felder RA, Jose PA, et al: Effects of dopamine in the renal vascular bed of fetal, newborn and adult sheep. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 21) 252: R490, 1987.
  221. Nakamura KT, Matherne GP, Jose PA, et al: Effects of epinephrine on the renal vascular bed of fetal, newborn, and adult sheep. Pediatr Res 23:181, 1988.140
  222. Nakamura KT, Matherne GP, Jose PA, et al: Ontogeny of renal-adrenoceptor mediated vasodilation in sheep: Comparison between endogenous catecholamines. Pediatr Res 22:465, 1987.
  223. Nakamura R, Imai M: Nephron distribution of H.-dihydroalprenolol binding and its physiological significance. Jpn J Nephrol 5:70, 1982.
  224. Nielsen GD. Guanethidine induced sympathectomy in the adult rat. I. Functional effects following subacute adminiatration. Acta Pharmacol et Toxicol, V 41, № 3, P 203−208, 1977.
  225. Nielsen GD. Guanethidine induced sympathectony in the adult rat. II. Functional effects following chronic adminiatration. Acta Pharmacol et Toxicol, V 41, № 3, P 209−216, 1977.
  226. Niijima A: Observation on the localization of mechanoreceptors in the kidney and afferent nerve fibers in the renal nerves in the rabbit. J Physiol (Lond) 245:81, 1975.
  227. Nomura I, Naitoh F, Segama T. Regional changes in brain catecholamine content following administration of guanethidine to neonatal rats. Jap J Pharmacol V 25, № 6, P 773−779, 1975.
  228. Nomura G, Takabatake T, Arai S, et al: Effect of acute unilateral renal denervation on tubular reabsorption in the dog. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 1) 232: F16, 1977.
  229. Norvell JE, Anderson JM. The aorticorenal ganglion and its role in renal innervation of the kidney. J Auton Nerv Syst 8:291, 1983.
  230. Numao Y, Saito M, Terui N, et al: Physiological and pharmacological properties of the three subsystems constituting the aortic nerve-renal sympathetic reflex in the rabbit. J Auton Nerv Syst 9:361, 1983.
  231. Oliver JA, Pinto J, Sciacca RR, et al: Basal norepinephrine overflow into the renal vein: Effect of renal nerve stimulation. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 8) 239: F371, 1980.141
  232. Oliver JA, Sciacca RR, Pinto J, et al: Role of the prostaglandin in norepinephrine release during augmented renal sympathetic nerve activity in the dog. Circ Res 48:835, 1981.
  233. Osborn JL, Holdaas H, Thames MD, et al: Renal adrenoceptor mediation of an-tinatriuretic and renin secretion response to low frequency renal nerve stimulation in the dog. Circ Res 53:298, 1983.
  234. Padbury JF, Diakomanolis ES, Hobel CJ, et al: Neonatal adaptation: Sympathoadrenal response to umbilical cord cutting. Pediatr Res 15:1483, 1981.
  235. Pelayo JC: Modulation of renal adrenergic effector mechanisms by calcium entry blockers. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 21) 252: F613, 1987.
  236. Pelayo JC: Renal adrenergic effector mechanisms: Glomerular sites for prostaglandin interaction. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 23) 254: F184, 1988.
  237. Pelayo JC, Blantz RC: Analysis of renal denervation in the hydropenic rat: Interactions with angiotensin II. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 15) 246: F87, 1984.
  238. Pelayo JC, Fildes RD, Eisner GM, et al: Effects of dopamine blockade on renal sodium excretion. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 14) 245: F247, 1983.
  239. Pelayo JC, Fildes RD, Jose PA: Age-dependent renal effects of intrarenal dopamine infusion. Am J Physiol (Regulatory Integrative Comp Physiol 16) 247: R212, 1984.
  240. Pelayo JC, Ziegler MG, Blantz RC: Angiotensin II in adrenergic-induced alterations in glomerular hemodynamics. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 16) 247: F799, 1984.
  241. Pelayo JC, Ziegler MG, Jose PA, et al: Renal denervation in the rat: Analysis of glomerular and proximal tubular function. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 13) 244: F70, 1983.
  242. Pirola CJ, Alvarez AL, Balda MS, Finkielman S, Nahmod VE. Amer J Physiol, 257: F746, 1989. Цит. по Федоров В. И., 1998.142
  243. Pirola CJ, Alvarez AL, Finkielman S, Nahmod VE. Amer J Physiol, 260: F198, 1991. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  244. Pollock DM, Arendshorst WJ. Amer J Physiol, 261: R835, 1991. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  245. Rasmussen H, Kojima I, Apfeldorf W, et al: Cellular mechanism of hormone action in the kidney: Messenger function of calcium and cyclic AMP. Kidney Int 29:90, 1986.
  246. Recordati GM, Moss NG, Genovesi S, et al: Renal receptors in the rat sensitive to chemical alterations of their environment. Circ Res 46:395, 1980.
  247. Recordati G, Moss NG, Genovesi S, et al: Chemoreceptors. J Auton Nerv Syst 3:237, 1981.
  248. Reison DS, Oliver J, Sciacca RR, et al: Release of norepinephrine from sympathetic nerve efferents by bilateral carotid occlusion. Am J Physiol (Heart Circ Physiol 14) 245: H635, 1983.
  249. Ribstein J, Humphreys MH: Renal nerves and cation excretion after acute reduction in functioning renal mass in the rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 15) 246: F260, 1984.
  250. Robie NW: Evaluation of presynaptic alpha-adrenoceptor function in the canine renal vascular bed. Am J Physiol (Heart Circ Physiol 3) 239: H422, 1980.
  251. Robillard JE, McWeeny OJ, Smith B, et al: Ontogeny of neurogenic regulation of renal tubular reabsorption in sheep (abstr). Pediatr Res 23:545A, 1988.
  252. Robillard JE, Nakamura KT, DiBona GF: Effects of renal denervation on renal responses to hypoxemia in fetal lambs. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 19) 250: F294, 1986.
  253. Robillard JE, Nakamura KT: Neurohormonal regulation of renal function during development. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 23) 254: F771, 1988.143
  254. Robillard JE, Nakamura KT, Wilkin MK, et al: Ontogeny of renal hemodynamic response to renal nerve stimulation in sheep. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 21) 252: F605, 1987.
  255. Robillard JE, Smith FG, McWeeny OJ, et al: Ontogeny of the renal response to alphai-adrenoceptor stimulation in sheep (abstr). Pediatr Res 25:347A, 1989.
  256. Rogenes PR: Single-unit and multiunit analysis of reno-renal reflexes elicited by stimulation of renal chemoreceptors in the rat. J Auton Nerv Syst 6:143, 1982.
  257. Rogenes PR, Gottschalk CW: Renal function in conscious rats with chronic unilateral renal denervation. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 11) 242: F140, 1982.260. Rollason
  258. Rump LC, Majewski H: Modulation of norepinephrine release thorough ar and a2-adrenoceptors in the rat isolated kidney. J Cardiovasc Pharmacol 9:500, 1987.
  259. Sadowski J, Kurkus J, Gellert R: Denervated and intact kidney responses to saline load in awake and anesthetized dogs. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 6) 237: F262, 1979.
  260. Sadowski J, Kurkus J, Gellert R: Reinvestigation of denervation diuresis and na-triuresis in conscious dogs. Arch Int Physiol Biochem 87:663, 1979.
  261. Sanchez A, Vidal MJ, Martinez-Sierra R, et al: Ontogeny of renal alpha-1 and alpha-2 adrenoceptors in the spontaneously hypertensive rat. J Pharmacol Exp Ther 237:972, 1986.
  262. Schneider E, McLane Vega L, Hanson R, et al: Effect of chronic bilateral renal denervation on daily sodium excretion in the conscious dog: (abstr). Fed Proc 37:645, 1978.
  263. Schwartz DD, Eikenberg DC: Enhanced endogenous neurotransmitter overflow in the isolated perfused rat kidney alter chronic epinephrine administration: Lack of a prejunctional beta adrenoceptor influence. J Pharmacol Exp Ther 244:11, 1988.144
  264. Simmonds SH, Strange PG: Inhibition of inositol phospholipid breakdown by D2 dopamine receptors in dissociated bovine anterior pituitary cells. Neurosci Lett 60:267, 1985.
  265. Simon OR, Schramm LP: The spinal course and medullary termination of myelinated renal afferents in the rat. Brain Res 290:239, 1984.•5
  266. Singh I, Klein RM, Yerstrowits M. Autoradiographic assessment of H-proline up take by osteoblasts following guanethidine-induced sympathectomy in the rat. Cell and Tissue Res, 1981, V 216, № 1, P 215−220.
  267. Skerb N, Domazet Z, Lukovic G, Hofman L. Growth of fetal organs after maternal partial hepatectomy or unilateral nephrectomy. Experientia, 1971, V 27, № 1, P 76−77.
  268. Slivka SR, Insel PA: arAdrenergic receptor-mediated phosphoinositide hydrolysis and prostaglandin E2 formation in Madin-Darby canine kidney cells. Possible parallel activation of phospholipase C and phospholipase A. J Biol Chem 262:4200, 1987.
  269. Smyth DD, Umemura S, Pettinger WA: Renal nerve stimulation causes ar adrenoceptor-mediated sodium retention but not a2-adrenoceptor antagonism of vasopressin. Circ Res 57:304, 1985.
  270. Solomon S. Developmental changes in nephron number, proximal tubular length and superficial nephron glomerular filtration rate of rats. J Physl, v. 272, № 3, 1977.
  271. Spelman FA, Oberg PA. Continuous measurment of renal cortical blood flow and renal arterial blood flow during stimulation of the renal nerve. Med Biol End Comput, V 22. № 2, P 121−128, 1991.
  272. Spitzer A: The role of the kidney in sodium homeostasis during maturation. Kidney Int 21:539, 1982.145
  273. Sripairojthikoon W, Wyss JM: Cells of origin of the sympathetic renal innervation in rat. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 21) 252: F957, 1987.
  274. Sripanidkulchai B, Wyss JM: The development of a2-adrenoceptors in the rat kidney: Correlation with noradrenergic innervation. Brain Res 400:91, 1987.
  275. Steblay RW. Experimental autoimmune antiglomerular-basement-membrane glomerulonephritis in the sheep. Amer J Path, 1979, V 3, P 875- 878.
  276. Stephenson RK, Sole MJ, Baines AD: Neural and extraneural catecholamine production by rat kidneys. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 11) 242: F261, 1982.
  277. Sulyok E: Dopaminergic control of neonatal salt and water metabolism. Pediatr Nephrol 2:163, 1988.
  278. Szenasi G, Bencsath P, Takacs L: Proximal tubular transport and urinary excretion of sodium after renal denervation in sodium depleted rats. Pflugers Arch 403:146, 1985.
  279. Szenasi G, Bencsath P, Szalay L, et al: Fasting induces denervation natriuresis in the conscious rats. Am J Physiol (Renal Fluid Electrolyte Physiol 18) 249: F753, 1985.
  280. Takishita S, Muratani H, Sesoko S, et al. Hypertension, V 24, P 445, 1994. Цит. по Федоров В. И., 1998.
  281. Terman BI, Slivka SR, Hughes RJ, et al: ai-adrenergic receptor-linked guanine nucleotide-binding protein in muscle and kidney epithelial cells. Mol Pharmacol 31:12, 1987.
  282. Tomlinson DR, Mayor D. The effects of guanethidine, bretylium and de-brisoguine on the accumulation of noradrenaline in constricted postganglionic sympathetic nerves in vitro. Europ J Pharmacol, 1973, V 21, № 1, P 161−170.
  283. Tulassay T, Seri I, Machay T, et al: Effects of dopamine on renal functions in premature neonates with respiratory distress syndrome. Int J Pediatr Nephrol 4:19, 1983.146
  284. Vik I, Volin M, Smetanova I. Dependence of the cytotoxic effect of guanethidine on the degree of sympathetic activity. Physiol Bohemosl, 1984, V 33, № 5, P 457 461.
  285. Weitsen HA, Norvell JE. Circulat Res V25, P535, 1969. Цит. no Федоров В. И., 1998.
  286. Williams RL, Pearson JE, Carter MK. J Pharmacol and Exp Ther V 147, P 32, 1965. Цит. no Федоров В. И., 1998.
  287. Winternitz SR, Katholi RE, Oparil S: Role of the renal sympathetic nerves in the development and maintenance of hypertension in the spontaneously hypertensive rat. J Clin Invest 66:971, 1980.
  288. Woosley RL, Niels AS. Guanethidine. New Engl J Med, 1976, V 295, № 19, P 1053−1057.
  289. Young WS, Kuhar MJ: Alpha-2 adrenergic receptors are associated with renal proximal tubules. Eur J Pharmacol 67:493, 1980.
  290. Zambraski EJ, DiBona GF, Kaloyanides GJ: Effect of sympathetic blocking agents on the antinatriuresis of reflex renal nerve stimulation. J Pharmacol Exp Ther 198:464, 1976.
  291. Zimmermann HD: Elektronenmikroskopische befimde zur innervation des nephron nach Untersuchungen an der fetalen nachniere des menschen. Z Zellforsch Mikrosk Anat 129:65, 1972.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!