ΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² написании студСнчСских Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚
АнтистрСссовый сСрвис

ΠšΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ аспСкты взаимодСйствия ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ Π’Π˜Π§-1 с субстратом ΠΈ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΌ

Π”ΠΈΡΡΠ΅Ρ€Ρ‚Π°Ρ†ΠΈΡΠŸΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒ Π² Π½Π°ΠΏΠΈΡΠ°Π½ΠΈΠΈΠ£Π·Π½Π°Ρ‚ΡŒ ΡΡ‚ΠΎΠΈΠΌΠΎΡΡ‚ΡŒΠΌΠΎΠ΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹

Однако ΡƒΠ½ΠΈΠΊΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ кристаллографичСскиС Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ относятся, Π² ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π½ΠΎΠΌ, ΠΊ ΡΡ‚атичСской структурС, Ρ‚. Π΅. ΠΊ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° ΠΈ ΠΏΠΎΠΊΠ° лишь Π² Ρ€Π΅Π΄ΠΊΠΈΡ… особых случаях ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‚ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚ΡŒ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΎ ΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠΈ Π½Π΅ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… состояний (Π½Π°ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€, Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-субстратных комплСксов). ИмСнно ΠΏΠΎ ΡΡ‚ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΈΡ‡ΠΈΠ½Π΅ Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΈ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ ΠΆΠ΅ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π° прСдлагаСтся, ΠΊΠ°ΠΊ ΠΏΡ€Π°Π²ΠΈΠ»ΠΎ, Π½Π΅ ΠΎΠ΄Π½Π°, Π° Π½Π΅ΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ… Π§ΠΈΡ‚Π°Ρ‚ΡŒ Π΅Ρ‰Ρ‘ >

ΠšΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ аспСкты взаимодСйствия ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ Π’Π˜Π§-1 с субстратом ΠΈ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΌ (Ρ€Π΅Ρ„Π΅Ρ€Π°Ρ‚, курсовая, Π΄ΠΈΠΏΠ»ΠΎΠΌ, ΠΊΠΎΠ½Ρ‚Ρ€ΠΎΠ»ΡŒΠ½Π°Ρ)

Π‘ΠΎΠ΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΠ΅

  • ГЛАВА 1. Π’Π•ΠžΠ Π•Π’Π˜Π§Π•Π‘ΠšΠ˜Π• И Π­ΠšΠ‘ΠŸΠ•Π Π˜ΠœΠ•ΠΠ’ΠΠ›Π¬ΠΠ«Π• ΠœΠ•Π’ΠžΠ”Π« Π˜Π‘Π‘Π›Π•Π”ΠžΠ’ΠΠΠ˜Π™ Π’Π—ΠΠ˜ΠœΠžΠ”Π•Π™Π‘Π’Π’Π˜Π™ Π€Π•Π ΠœΠ•ΠΠ’-Π›Π˜Π“ΠΠΠ”
  • Π§Π°ΡΡ‚ΡŒ 1. ВСорСтичСский ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄ ΠΊ ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΈΡŽ явлСния Π±ΠΈΠΎΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π°
  • Π§Π°ΡΡ‚ΡŒ 2. Π‘ΠΎΠ²Ρ€Π΅ΠΌΠ΅Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Ρ‹ ΠΊΠΎΠΌΠΏΡŒΡŽΡ‚Π΅Ρ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ модСлирования взаимодСйствий Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄-Ρ€Π΅Ρ†Π΅ΠΏΡ‚ΠΎΡ€
  • Π§Π°ΡΡ‚ΡŒ 3. ΠšΡ€ΠΈΡΡ‚Π°Π»Π»ΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΡ‡Π΅ΡΠΊΠ°Ρ структура ΠΈ ΠΊΠ°Ρ‚алитичСскиС свойства аспартатных ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·
  • ГЛАВА 2. ΠœΠ•Π’ΠžΠ” Π’Π•ΠžΠ Π•Π’Π˜Π§Π•Π‘ΠšΠžΠ“Πž ΠšΠžΠΠ€ΠžΠ ΠœΠΠ¦Π˜ΠžΠΠΠžΠ“Πž ΠΠΠΠ›Π˜Π—Π
  • Π§Π°ΡΡ‚ΡŒ 1. ΠŸΠΎΡΡ‚Π°Π½ΠΎΠ²ΠΊΠ° Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ ΠΈ ΠΏΠ»Π°Π½ исслСдования
  • Π§Π°ΡΡ‚ΡŒ 2. ΠœΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ расчСта, ΠΏΠΎΡ‚Π΅Π½Ρ†ΠΈΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΈ ΠΈ ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚ризация
  • ГЛАВА 3. ΠšΠžΠΠ€ΠžΠ ΠœΠΠ¦Π˜ΠžΠΠΠ«Π• Π’ΠžΠ—ΠœΠžΠ–ΠΠžΠ‘Π’Π˜ Π‘Π’ΠžΠ‘ΠžΠ”ΠΠžΠ“Πž БУББВРАВА, Π˜ΠΠ“Π˜Π‘Π˜Π’ΠžΠ Π И ΠΠšΠ’Π˜Π’ΠΠžΠ“Πž ЦЕНВРА ΠŸΠ ΠžΠ’Π•Π˜ΠΠΠ—Π« Π’Π˜Π§
  • Π§Π°ΡΡ‚ΡŒ 1. ΠšΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ возмоТности ΠΏΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π³Π΅ΠΏΡ‚Π°ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ субстрата ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ Π’Π˜Π§
  • Π§Π°ΡΡ‚ΡŒ 2. ΠšΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ возмоТности ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π° JG
  • Π§Π°ΡΡ‚ΡŒ 3. Активный Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ Π’Π˜Π§
  • ГЛАВА 4. ΠšΠžΠœΠŸΠ›Π•ΠšΠ‘ ΠŸΠ ΠžΠ’Π•Π˜ΠΠΠ—Π« Π’Π˜Π§-1 Π‘ Π˜ΠΠ“Π˜Π‘Π˜Π’ОРОМ JG
  • ГЛАВА 5. ΠšΠžΠœΠŸΠ›Π•ΠšΠ‘ ΠŸΠ ΠžΠ’Π•Π˜ΠΠΠ—Π« Π’Π˜Π§-1 Π‘ ΠŸΠ Π˜Π ΠžΠ”ΠΠ«Πœ Π‘Π£Π‘Π‘Π’Π ΠΠ’ΠžΠœ
  • ГЛАВА 6. ΠœΠ•Π₯ΠΠΠ˜Π—Πœ ΠšΠΠ’ΠΠ›Π˜Π—Π ΠŸΠ ΠžΠ’Π•Π˜ΠΠΠ—Π« Π’Π˜Π§
  • Π’Π«Π’ΠžΠ”Π«

Одной ΠΈΠ· Π²Π°ΠΆΠ½Π΅ΠΉΡˆΠΈΡ… Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ соврСмСнной молСкулярной Π±ΠΈΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ являСтся установлСниС зависимости ΠΌΠ΅ΠΆΠ΄Ρƒ пространствСнной структурой Π±Π΅Π»ΠΊΠ° ΠΈ Π΅Π³ΠΎ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠ΅ΠΉ. ΠžΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»ΡΡŽΡ‰Π°Ρ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π² Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠΈ этой ΠΏΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΡ‹, нСсомнСнно, ΠΏΡ€ΠΈΠ½Π°Π΄Π»Π΅ΠΆΠΈΡ‚ исслСдованиям Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ многочислСнной Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹ Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² — Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ², Π³Π΄Π΅ Π½Π°ΠΊΠΎΠΏΠ»Π΅Π½ ΠΎΠ³Ρ€ΠΎΠΌΠ½Ρ‹ΠΉ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹ΠΉ ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π». Π’ Π½Π°ΡΡ‚оящСС врСмя основой для всСх Π·Π°ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π½ΠΈΠΉ ΠΎ Π²ΠΎΠ·ΠΌΠΎΠΆΠ½ΠΎΠΌ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΠ΅ функционирования Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° Π½Π° ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎΠΌ ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π½Π΅ слуТит рСнтгСноструктурный Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ информация, получСнная косвСнными ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π°ΠΌΠΈ, ΠΊ ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹ΠΌ ΠΏΡ€ΠΈΠ½Π°Π΄Π»Π΅ΠΆΠ°Ρ‚ всС Π²ΠΈΠ΄Ρ‹ спСктроскопии, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ мСтодыхимичСской ΠΊΠΈΠ½Π΅Ρ‚ΠΈΠΊΠΈ.

Однако ΡƒΠ½ΠΈΠΊΠ°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Π΅ кристаллографичСскиС Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ относятся, Π² ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π½ΠΎΠΌ, ΠΊ ΡΡ‚атичСской структурС, Ρ‚. Π΅. ΠΊ ΠΌΠΎΡ€Ρ„ΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ Π±Π΅Π»ΠΊΠ° ΠΈ ΠΏΠΎΠΊΠ° лишь Π² Ρ€Π΅Π΄ΠΊΠΈΡ… особых случаях ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‚ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚ΡŒ Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Π΅ ΠΎ ΡΡ‚Ρ€ΠΎΠ΅Π½ΠΈΠΈ Π½Π΅ΡΡ‚Π°Π±ΠΈΠ»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… состояний (Π½Π°ΠΏΡ€ΠΈΠΌΠ΅Ρ€, Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-субстратных комплСксов). ИмСнно ΠΏΠΎ ΡΡ‚ΠΎΠΉ ΠΏΡ€ΠΈΡ‡ΠΈΠ½Π΅ Π½Π° ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΈ Ρ‚ΠΎΠ³ΠΎ ΠΆΠ΅ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π° прСдлагаСтся, ΠΊΠ°ΠΊ ΠΏΡ€Π°Π²ΠΈΠ»ΠΎ, Π½Π΅ ΠΎΠ΄Π½Π°, Π° Π½Π΅ΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ гипотСтичСских схСм Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π°.

БСйчас становится всС Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ ΠΎΡ‡Π΅Π²ΠΈΠ΄Π½Ρ‹ΠΌ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ эмпиричСский ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄ ΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Π°Ρ ΠΈΠ· ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° информация нСдостаточна для объяснСния, Π° Ρ‚Π΅ΠΌ Π±ΠΎΠ»Π΅Π΅ для количСствСнного описания Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° ΠΊΠ°ΠΊ биологичСской ΠΌΠ°ΡˆΠΈΠ½Ρ‹, ΠΎΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²Π»ΡΡŽΡ‰Π΅ΠΉ ΠΏΡ€ΠΈ взаимодСйствии с ΡΡƒΠ±ΡΡ‚Ρ€Π°Ρ‚ΠΎΠΌ Ρ†Π΅Π»Π΅Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΡƒΡŽ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΡŽ ΠΏΠΎ Π²ΠΏΠΎΠ»Π½Π΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠΌΡƒ ΠΌΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌΡƒ. ПолноС Ρ€Π΅ΡˆΠ΅Π½ΠΈΠ΅ этой Π·Π°Π΄Π°Ρ‡ΠΈ Ρ‚Ρ€Π΅Π±ΡƒΠ΅Ρ‚ привлСчСния тСорСтичСских ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² исслСдования.

Настоящая Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π° прСдставляСт собой ΠΏΠΎΠΏΡ‹Ρ‚ΠΊΡƒ использования ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄Π° тСорСтичСского ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° для количСствСнного описания ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Ρ… стадий Π½Π΅ΠΏΡ€Π΅Ρ€Ρ‹Π²Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΈ ΡΠΏΠΎΠ½Ρ‚Π°Π½Π½ΠΎ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΊΠ°ΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ процСсса Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π°.

Π’ ΠΊΠ°Ρ‡Π΅ΡΡ‚Π²Π΅ ΠΎΠ±ΡŠΠ΅ΠΊΡ‚Π° исслСдования Π²Ρ‹Π±Ρ€Π°Π½Π° аспартатная ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Π° вируса ΠΈΠΌΠΌΡƒΠ½ΠΎΠ΄Π΅Ρ„ΠΈΡ†ΠΈΡ‚Π° Ρ‡Π΅Π»ΠΎΠ²Π΅ΠΊΠ° (Π’Π˜Π§-1), которая ΠΈΠ³Ρ€Π°Π΅Ρ‚ ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π΅Π²ΡƒΡŽ Ρ€ΠΎΠ»ΡŒ Π² Ρ†ΠΈΠΊΠ»Π΅ ΠΆΠΈΠ·Π½ΠΈ вирусной частицы, осущСствляя процСссинг ΠΏΠΎΠ»ΠΈΠ±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²ΠΎΠΉ Ρ†Π΅ΠΏΠΈ ΠΈ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π·Ρ€Π΅Π»Ρ‹Ρ… структурных «Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ²: Вирусная ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ нСпосрСдствСнно V ΡƒΡ‡Π°ΡΡ‚Π²ΡƒΠ΅Ρ‚ Π² ΠΏΠ°Ρ‚ΠΎΠ³Π΅Π½Π΅Π·Π΅ Π‘ΠŸΠ˜Π”Π°, вызывая Π³ΠΈΠ΄Ρ€ΠΎΠ»ΠΈΠ· Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ² ΠΈΠ½Ρ„ΠΈΡ†ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΊΠ»Π΅Ρ‚ΠΎΠΊ ΠΈ, Π½Π°Ρ€ΡƒΡˆΠ°Ρ, Ρ‚Π΅ΠΌ самым, ΠΈΡ… Π½ΠΎΡ€ΠΌΠ°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ΅ Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅. Π­Ρ‚ΠΈ особСнности Π΄Π΅Π»Π°ΡŽΡ‚ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρƒ Π’Π˜Π§-1 ΠΏΡ€ΠΈΠ²Π»Π΅ΠΊΠ°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ мишСнью для антивирусной Ρ‚Π΅Ρ€Π°ΠΏΠΈΠΈ, ΠΏΠΎΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΡƒ Π΅Π΅ ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ ΠΏΡ€Π΅Π΄ΠΎΡ‚Π²Ρ€Π°Ρ‰Π°Π΅Ρ‚ ΠΎΠ±Ρ€Π°Π·ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ способных ΠΊ Ρ€Π°Π·ΠΌΠ½ΠΎΠΆΠ΅Π½ΠΈΡŽ вирусных частиц.

ΠŸΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Π° Π’Π˜Π§-1 ΠΏΡ€ΠΈΠ½Π°Π΄Π»Π΅ΠΆΠΈΡ‚ ΠΊ Ρ‡ΠΈΡΠ»Ρƒ Π½Π°ΠΈΠ±ΠΎΠ»Π΅Π΅ ΡˆΠΈΡ€ΠΎΠΊΠΎ ΠΈ Ρ€Π°Π·Π½ΠΎΡΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ½Π½Π΅ ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎ ΠΈΠ·ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… аспартатных ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·. Для Π½Π΅Π΅ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π° пространствСнная структура Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρ‹ ΠΈ ΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎΡ‡ΠΈΡΠ»Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… комплСксов, ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΎ большоС количСство кинСтичСских Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ…. Однако Π½ΠΈ Π² ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΌ случаС Π½Π΅ Π±Ρ‹Π»ΠΎ составлСно ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΎΠΉ динамичСской ΠΊΠ°Ρ€Ρ‚ΠΈΠ½Ρ‹ Π΅Π΅ ΠΊΠ°Ρ‚алитичСского дСйствия. Π”ΠΎ ΡΠΈΡ… ΠΏΠΎΡ€ остаСтся нСизвСстным ΠΏΡ€ΠΎΠ΄ΡƒΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ΅ располоТСниС субстрата Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΌ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π΅ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°, ΠΎΡ‚Π½ΠΎΡΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ³ΠΎ Π²Ρ‹ΡΠΊΠ°Π·Ρ‹Π²Π°ΡŽΡ‚ΡΡ Ρ€Π°Π·Π»ΠΈΡ‡Π½Ρ‹Π΅, часто Π²Π·Π°ΠΈΠΌΠΎΠΈΡΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°ΡŽΡ‰ΠΈΠ΅ Π³ΠΈΠΏΠΎΡ‚Π΅Π·Ρ‹, основанныС, Π² ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π½ΠΎΠΌ, Π½Π° Ρ‚Ρ€Π΅Ρ…ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… структурах Π½Π°Π±ΠΎΡ€Π° ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… комплСксов.

РСшСниС этих вопросов, ΠΏΠΎΠΌΠΈΠΌΠΎ чисто Π½Π°ΡƒΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ, ΠΈΠΌΠ΅Π΅Ρ‚ ΠΎΠ³Ρ€ΠΎΠΌΠ½ΠΎΠ΅ практичСскоС Π·Π½Π°Ρ‡Π΅Π½ΠΈΠ΅ для Ρ†Π΅Π»Π΅Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ поиска высокоэффСктивных ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΌΠΎΠ³ΡƒΡ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ ΠΈΡΠΏΠΎΠ»ΡŒΠ·ΠΎΠ²Π°Π½Ρ‹ ΠΊΠ°ΠΊ лСкарствСнныС срСдства Π² Ρ‚Π΅Ρ€Π°ΠΏΠΈΠΈ Π‘ΠŸΠ˜Π”.

ВыполнСнная Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π° являСтся Ρ‡Π°ΡΡ‚ΡŒΡŽ большого исслСдования, Π½Π°ΠΏΡ€Π°Π²Π»Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ Π½Π° Π°ΠΏΡ€ΠΈΠΎΡ€Π½ΠΎΠ΅ количСствСнноС ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ всСх стадий каталитичСского Π°ΠΊΡ‚Π° аспартатных ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·. Основной Π·Π°Π΄Π°Ρ‡Π΅ΠΉ ΠΏΡ€ΠΎΠ²Π΅Π΄Π΅Π½Π½ΠΎΠ³ΠΎ исслСдования являСтся ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½ΠΈΠ΅ Π³Π΅ΠΎΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΈΠΈ Π½Π΅Π²Π°Π»Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-субстратного комплСкса, которая ΠΏΠΎΠΊΠ° Π½Π΅ ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ ΠΎΠΏΡ€Π΅Π΄Π΅Π»Π΅Π½Π° с ΠΏΠΎΠΌΠΎΡ‰ΡŒΡŽ ΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΡ… ΡΠΊΡΠΏΠ΅Ρ€ΠΈΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°Π»ΡŒΠ½Ρ‹Ρ… ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ². РСшСниС ΠΌΠΎΠΆΠ΅Ρ‚ Π±Ρ‹Ρ‚ΡŒ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ΠΎ ΠΏΡƒΡ‚Π΅ΠΌ Π°ΠΏΡ€ΠΈΠΎΡ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ встраивания субстрата Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹ΠΉ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°. Для провСдСния этого расчСта, ΠΎΠ΄Π½Π°ΠΊΠΎ, Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΠΎ ΠΏΡ€Π΅Π΄Π²Π°Ρ€ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎ ΠΈΠ·ΡƒΡ‡ΠΈΡ‚ΡŒ ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ свойства самого субстрата, ΠΏΡ€Π΅Π΄ΡΡ‚Π°Π²Π»ΡΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ ΠΈΠ· ΡΠ΅Π±Ρ ΠΎΠ»ΠΈΠ³ΠΎΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄, Π° Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ остатков ΠΈ Ρ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚ΠΎΠ² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠ³ΠΎ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π° Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π°. НСобходимо Ρ‚Π°ΠΊΠΆΠ΅ ΠΏΠΎΠ΄Π²Π΅Ρ€Π³Π½ΡƒΡ‚ΡŒ ΠΏΡ€ΠΎΠ²Π΅Ρ€ΠΊΠ΅ расчСтный ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄, ΠΎΠΏΡ€ΠΎΠ±ΠΎΠ²Π°Π² Π΅Π³ΠΎ Π²Π½Π°Ρ‡Π°Π»Π΅ Π½Π° ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ комплСкса извСстной структуры. Π’ ΡΠΎΠΎΡ‚вСтствии с ΡΡ‚ΠΈΠΌ исслСдованиС подраздСляСтся Π½Π° Π½Π΅ΡΠΊΠΎΠ»ΡŒΠΊΠΎ этапов, ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Π΅ ΠΏΠΎΠ΄Ρ€ΠΎΠ±Π½ΠΎ ΠΎΠΏΠΈΡΡ‹Π²Π°ΡŽΡ‚ΡΡ Π² ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π½ΠΎΠΉ части Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹.

ДиссСртация состоит ΠΈΠ· Π²Π²Π΅Π΄Π΅Π½ΠΈΡ, ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€Π° Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹, ΠΎΡ€ΠΈΠ³ΠΈΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ части, Π²Ρ‹Π²ΠΎΠ΄ΠΎΠ² ΠΈ Π±ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΎΠ³Ρ€Π°Ρ„ΠΈΠΈ. ΠŸΡ€Π΅Π΄ΡˆΠ΅ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰ΠΈΠΉ ΠΎΡ€ΠΈΠ³ΠΈΠ½Π°Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ части Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Ρ‹ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π½Ρ‹ΠΉ ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€ Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°Π΅Ρ‚ Ρ‚Ρ€ΠΈ части. Π’ ΠΏΠ΅Ρ€Π²ΠΎΠΉ рассмотрСн тСорСтичСский ΠΏΠΎΠ΄Ρ…ΠΎΠ΄ ΠΊ ΠΈΡΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΡŽ явлСния Π±ΠΈΠΎΠΊΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ·Π°, Π½Π° ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΌ основана данная Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°. Π’ΠΎ Π²Ρ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΉ части ΠΌΡ‹ ΡΠΎΡ‡Π»ΠΈ Π½Π΅ΠΎΠ±Ρ…ΠΎΠ΄ΠΈΠΌΡ‹ΠΌ Π΄Π°Ρ‚ΡŒ ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€ распространСнных Π² Π½Π°ΡΡ‚оящСС врСмя ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ΠΎΠ² «ΠΏΠΎΡΠ°Π΄ΠΊΠΈ» (docking) ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ² Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Π΅ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Ρ‹ Ρ€Π΅Ρ†Π΅ΠΏΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠ², нСсмотря Π½Π° Ρ‚ΠΎ, Ρ‡Ρ‚ΠΎ поставлСнная Π²^ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π΅ Π·Π°Π΄Π°Ρ‡Π° Π³ΠΎΡ€Π°Π·Π΄ΠΎ ΡˆΠΈΡ€Π΅ воспроизвСдСния структур ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Ρ… комплСксов. Π’Ρ€Π΅Ρ‚ΡŒΡ Ρ‡Π°ΡΡ‚ΡŒ Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΎΠ±Π·ΠΎΡ€Π° посвящСна Ρ€Π°ΡΡΠΌΠΎΡ‚Ρ€Π΅Π½ΠΈΡŽ ΠΎΠ±ΡˆΠΈΡ€Π½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΌΠ°Ρ‚Π΅Ρ€ΠΈΠ°Π»Π° ΠΎ Ρ‚Ρ€Π΅Ρ…ΠΌΠ΅Ρ€Π½Ρ‹Ρ… структурах Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½Ρ‹Ρ….

Π’Ρ‹Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

1. ΠŸΡ€Π΅Π΄Π»ΠΎΠΆΠ΅Π½ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΎΠ΄ расчСта ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΉ ΠΎΠ»ΠΈΠ³ΠΎΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½Ρ‹Ρ… Π»ΠΈΠ³Π°Π½Π΄ΠΎΠ² Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΌ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π΅ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° ΠΏΡƒΡ‚Π΅ΠΌ ΠΏΠΎΡΠ»Π΅Π΄ΠΎΠ²Π°Ρ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠ³ΠΎ ΠΏΠΎΡ„Ρ€Π°Π³ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ наращивания ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½ΠΎΠΉ Ρ†Π΅ΠΏΠΈ. Π Π°Π·Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚Π°Π½ ΠΏΠ°ΠΊΠ΅Ρ‚ ΠΏΡ€ΠΎΠ³Ρ€Π°ΠΌΠΌΠ½ΠΎΠ³ΠΎ обСспСчСния FAG, ΠΏΠΎΠ·Π²ΠΎΠ»ΡΡŽΡ‰ΠΈΠΉ ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Ρ‚ΡŒ Π½Π΅Π²Π°Π»Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-субстратныС ΠΈ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€Π½Ρ‹Π΅ комплСксы.

2. РасчСт ΠΏΠΎΠΊΠ°Π·Π°Π», Ρ‡Ρ‚ΠΎ Π² Π½Π°Ρ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΉ ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΈ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ Π’Π˜Π§-1 Π² ΡƒΡΠ»ΠΎΠ²ΠΈΡΡ… Π²ΠΎΠ΄Π½ΠΎΠΉ срСды внСшниС Π -ΠΏΠ΅Ρ‚Π»ΠΈ (Ρ„Π»Π΅ΠΏΡ‹) ΠΏΡ€ΠΈΠ±Π»ΠΈΠΆΠ΅Π½Ρ‹ ΠΊ Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΌΡƒ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Ρƒ, Π° Π½Π΅ ΡƒΠ΄Π°Π»Π΅Π½Ρ‹ ΠΎΡ‚ Π½Π΅Π³ΠΎ, ΠΊΠ°ΠΊ это слСдуСт ΠΈΠ· Π΄Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… рСнтгСноструктурного Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π°.

3. Π’Ρ‹ΠΏΠΎΠ»Π½Π΅Π½ΠΎ тСорСтичСскоС ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠ΅ Π½Π΅Π²Π°Π»Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ комплСкса Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° с ΠΈΠ½Π³ΠΈΠ±ΠΈΡ‚ΠΎΡ€ΠΎΠΌ JG-365. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½ Π½Π°Π±ΠΎΡ€ ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΉ, ΠΈΠ· ΠΊΠΎΡ‚ΠΎΡ€Ρ‹Ρ… самая низкоэнСргСтичСская совпала с Π΄Π°Π½Π½Ρ‹ΠΌΠΈ рСнтгСноструктурного Π°Π½Π°Π»ΠΈΠ·Π° (срСднСквадратичноС ΠΎΡ‚ΠΊΠ»ΠΎΠ½Π΅Π½ΠΈΠ΅ составляСт 0,8 А).

4. Π’ΠΏΠ΅Ρ€Π²Ρ‹Π΅ Π°ΠΏΡ€ΠΈΠΎΡ€Π½ΠΎ рассчитана конформация ΠΎΠ»ΠΈΠ³ΠΎΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ субстрата Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΌ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π΅ ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ Π’Π˜Π§-1. Π“Π΅ΠΏΡ‚Π°ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½Ρ‹ΠΉ субстрат Π² Π½Π΅Π²Π°Π»Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠΌ комплСксС Π½Π΅ ΠΏΡ€Π΅Ρ‚Π΅Ρ€ΠΏΠ΅Π²Π°Π΅Ρ‚ ΠΏΡ€ΠΈΠ½ΡƒΠ΄ΠΈΡ‚Π΅Π»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ Π΄Π΅Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΈ, Π° ΠΊΠΎΠ½Ρ„ормация расщСпляСмой ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½ΠΎΠΉ Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹ Π±Π»ΠΈΠ·ΠΊΠ° ΠΊ ΠΏΠ»Π°Π½Π°Ρ€Π½ΠΎΠΉ. Бвязанная ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Π° Π²ΠΎΠ΄Ρ‹ находится Π½Π° Ρ€Π°ΡΡΡ‚оянии 3,01 А ΠΎΡ‚ Π°Ρ‚ΠΎΠΌΠ° Π‘' расщСпляСмой Π³Ρ€ΡƒΠΏΠΏΡ‹ ΠΈ ΠΏΡ€Π΅Π΄Ρ€Π°ΡΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠ΅Π½Π° ΠΊ Π½ΡƒΠΊΠ»Π΅ΠΎΡ„ΠΈΠ»ΡŒΠ½ΠΎΠΉ Π°Ρ‚Π°ΠΊΠ΅.

5. ΠŸΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Π°Ρ гСомСтрия Π½Π΅Π²Π°Π»Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ комплСкса ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ Π’Π˜Π§-1 использована ΠΏΡ€ΠΈ создании ΠΌΠΎΠ΄Π΅Π»ΠΈ для квантовомСханичСского расчСта ab initio, Π²ΠΊΠ»ΡŽΡ‡Π°ΡŽΡ‰Π΅ΠΉ Π΄Π²Π΅ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρ‹ Π°Ρ†Π΅Ρ‚Π°Ρ‚Π°, ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρƒ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»Π°Ρ†Π΅Ρ‚Π°ΠΌΠΈΠ΄Π° ΠΈ ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»Ρƒ Π²ΠΎΠ΄Ρ‹.

6. На ΠΎΡΠ½ΠΎΠ²Π°Π½ΠΈΠΈ ΠΏΠΎΠ»ΡƒΡ‡Π΅Π½Π½Ρ‹Ρ… гСомСтричСских ΠΏΠ°Ρ€Π°ΠΌΠ΅Ρ‚Ρ€ΠΎΠ² Π½Π΅Π²Π°Π»Π΅Π½Ρ‚Π½ΠΎΠ³ΠΎ комлСкса рассчитана структура тСтраэдричСского состояния Π² Π°ΠΊΡ‚ΠΈΠ²Π½ΠΎΠΌ Ρ†Π΅Π½Ρ‚Ρ€Π΅. Π‘ΠΎΠ»Π΅Π΅ низкая конформационная энСргия этого комплСкса, ΠΏΠΎ ΡΡ€Π°Π²Π½Π΅Π½ΠΈΡŽ с ΡΡƒΠ±ΡΡ‚Ρ€Π°Ρ‚Π½Ρ‹ΠΌ, ΡΠ²ΠΈΠ΄Π΅Ρ‚Π΅Π»ΡŒΡΡ‚Π²ΡƒΠ΅Ρ‚ ΠΎΠ± ΠΎΡ‚сутствии ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½ΠΎΠ³ΠΎ напряТСния ΠΈ ΠΎ ΠΏΡ€Π΅Π΄Ρ€Π°ΡΠΏΠΎΠ»ΠΎΠΆΠ΅Π½Π½ΠΎΡΡ‚ΠΈ Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚Π° ΠΊ ΠΏΠΎΠ΄Π΄Π΅Ρ€ΠΆΠ°Π½ΠΈΡŽ структуры ΠΏΡ€ΠΎΠΌΠ΅ΠΆΡƒΡ‚ΠΎΡ‡Π½ΠΎΠ³ΠΎ состояния.

ΠŸΠΎΠΊΠ°Π·Π°Ρ‚ΡŒ вСсь тСкст

Бписок Π»ΠΈΡ‚Π΅Ρ€Π°Ρ‚ΡƒΡ€Ρ‹

  1. Π•.М. Попов. ВСорСтичСскоС исслСдованиС Ρ„Π΅Ρ€ΠΌΠ΅Π½Ρ‚-субстратных взаимодСйствий. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€. Биология 11:5−41 (1977).
  2. Π•.М. Попов. Π‘Ρ‚Ρ€ΡƒΠΊΡ‚ΡƒΡ€Π½ΠΎ-Ρ„ΡƒΠ½ΠΊΡ†ΠΈΠΎΠ½Π°Π»ΡŒΠ½Π°Ρ организация Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ². Наука, М., 1992).
  3. Π•.М. Попов. Бтруктурная организация Π±Π΅Π»ΠΊΠΎΠ². Наука, Москва, (1989).
  4. Π•.М. Попов. ВзаимодСйствиС Π°-химотрипсина с ΡΡƒΠ±ΡΡ‚Ρ€Π°Ρ‚Π°ΠΌΠΈ. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€. Биология 19:1107−1138 (1985).
  5. И.Π . ΠŸΡ€ΠΈΠ³ΠΎΠΆΠΈΠ½. ΠžΡ‚ ΡΡƒΡ‰Π΅ΡΡ‚Π²ΡƒΡŽΡ‰Π΅Π³ΠΎ ΠΊ Π²ΠΎΠ·Π½ΠΈΠΊΠ°ΡŽΡ‰Π΅ΠΌΡƒ. ΠœΠΈΡ€, Москва, (1985).
  6. Π”.И. Π₯ΡƒΡ€Π³ΠΈΠ½, Π”. Π‘. ЧСрнавский, and Π‘. Π­. Шноль. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Π°Ρ биология. (1967).
  7. JI.A. Π‘Π»ΡŽΠΌΠ΅Π½Ρ„Π΅Π»ΡŒΠ΄. ΠŸΡ€ΠΎΠ±Π»Π΅ΠΌΡ‹ биологичСской Ρ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠΈ. Наука, Москва, (1974).
  8. Н. Eyring, R. Lamry, and J. Spikes. Mechanisms of Enzyme Action. Hopkins Univ. Press, Baltimore, (1964).
  9. D.E.J. Koshland. Molecular basis of enzyme catalysis and control. Pure Appl.Chem. 25 :119−133 (1971).
  10. D.E.J. Koshland, K.W. Carraway, G.A. Dafforn, D R. Storm. The importance of orientation factors in enzymatic reactions. Cold Spring Harb.Symp.Quant.Biol. 36:13−20(1972).
  11. Π’. ДТСнкс. ΠšΠ°Ρ‚Π°Π»ΠΈΠ· Π² Ρ…ΠΈΠΌΠΈΠΈ ΠΈ ΡΠ½Π·ΠΈΠΌΠΎΠ»ΠΎΠ³ΠΈΠΈ. ΠœΠΈΡ€, Москва, (1972).
  12. М.Π’. Π’ΠΎΠ»ΡŒΠΊΠ΅Π½ΡˆΡ‚Π΅ΠΉΠ½. ΠœΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½Π°Ρ Π±ΠΈΠΎΡ„ΠΈΠ·ΠΈΠΊΠ°. Наука, Москва, (1975).
  13. A.J. Pertsin and A.I. Kitaigorodsky. The atom-atom potential method: application to organic molecular solids. Springer-Verlag, Berlin, (1987).
  14. Π•.М.Попов. Π‘ΠΏΠ΅Ρ†ΠΈΡ„ΠΈΠΊΠ° ΠΆΠΈΠ²ΠΎΠ³ΠΎ Π½Π° ΠΌΠΎΠ»Π΅ΠΊΡƒΠ»ΡΡ€Π½ΠΎΠΌ ΡƒΡ€ΠΎΠ²Π½Π΅. ΠŸΡ€ΠΈΡ€ΠΎΠ΄Π° N6:59−671 993).
  15. C.M. Ho, G.R. Marshall. FOUNDATION: a program to retrieve all possible structures containing a user-defined minimum number of matching query elements from three- dimensional databases. J Comput.Aided.Mol.Des. 7:3−22 (1993).
  16. O.F. Guner and L.M. Dumont. 3D searching in computer-aided drug design, in: «Pharmaceutical Manufacturing International». Sterling Publicatons, Cambridge, 65−68 (1990).
  17. N.W. Murrall, E.K. Davies. Conformational Freedom in 3-D databases. 1.Techinques. J.Chem.Inf.Comput.Sci. 30:316(1990).
  18. Y.C. Martin. 3D database searching in drug design. J Med.Chem. 35:2145−2154 (1992).
  19. F.H. Allen, D.G. Watson. The development of versions 3 and 4 of the Cambridge Structural Database system. J.Chem.Inf.Comput.Sci. 31:187−204 (1991).
  20. R.S. Pearlman. Three dimensional structures: how do we generate them and what can we do with them? Chem.Des.Auto.News 8:3−15 (1993).
  21. W. Fisanick, K.P. Cross, J.C. Forman, A. Rusinko. Experimental system for similarity and 3D searching of CAS' registry substances. 1.3D substructure searching. J.Chem.Inf.Comput.Sci. 33:548−559(1993).
  22. P.J. Goodford. A computational procedure for determining energetically favorable binding sites on biologically important macromolecules. J Med.Chem. 28:849−857 (1985).
  23. A. Miranker, M. Karplus. Functionality maps of binding sites: a multiple copy simultaneous search method. Proteins 11:29−34 (1991).
  24. G. Lauri, P.A. Bartlett. CAVEAT: a program to facilitate the design of organic molecules. J Comput.Aided.Mol.Des. 8:51−66 (1994).
  25. MB. Eisen, D.C. Wiley, M. Karplus, R.E. Hubbard. HOOK: a program for finding novel molecular architectures that satisfy the chemical and steric requirements of a macromolecule binding site. Proteins 19:199−221 (1994).
  26. V. Tschinke, N.C. Cohen. The NEWLEADprogram: a new methodfor the design of candidate structures from pharmacophoric hypotheses. J Med.Chem. 36:38 633 870 (1993).
  27. P.M. Colman. Structure-based drug design. Curr.Opin.Struct.Biol. 4:868−874 (1994).
  28. R. A. Lewis, A.R. Leach. Current methods for site-directed structure generation. J Comput.Aided.Mol.Des. 8:467−475 (1994).
  29. H.J. Bohm. LUD1: rule-based automatic design of new substituents for enzyme inhibitor leads. J Comput.Aided.Mol.Des. 6:593−606 (1992).
  30. H.J. Bohm. The computer program LUDI: a new methodfor the de novo design of enzyme inhibitors. J Comput.Aided.Mol.Des. 6:61−78 (1992).
  31. Y. Nishibata, A. Itai. Automatic creation of drug candidate structures based on receptor structure. Starting point for artificial lead generation. Tetrahedron 47:8985−8990(1991).
  32. S.H. Rotstein, M. A. Murcko. GenStar: a methodfor de novo drug design. J Comput.Aided.Mol.Des. 7:23−43 (1993).
  33. V.J. Grillet, W. Newell, P. Mata, G. Myatt, S. Sike, Z. Zsoldos, A.P. Johnson. SPROUT: recent developments in the de novo design of molecules. J Chem. Inf Comput. Sei. 34:207−217(1994).
  34. B.K. Shoichet, I.D. Kuntz. Protein docking and complementarity. J Mol.Biol. 221:327−346 (1991).
  35. B.K. Shoichet, I.D. Kuntz. Matching chemistry and shape in molecular docking. Protein Eng. 6:723−732 (1993).
  36. SJ. Weiner, P.A. Kollman, D A. Case, U.C. Singh, C. Ghio, G. Alagona, S.J. Profeta, P. Weiner. A new force-field for molecular mechanical simulation of nucleic acids and proteins. J Amer.Chem.Soc. 106:765−784 (1984).
  37. S.J. Weiner, P.A. Kollman, D.T. Nguen, D.A. Case. An all-atom force-field for simulation of nucleic acids andproteins. J Comput.Chem. 7:230−252 (1986).
  38. M.K. Gilson, B. Honig. Calculation of the total electrostatic energy of a macromolecular system: solvation energies, binding energies, and conformational analysis. Proteins 4:7−18 (1988).
  39. M.K. Gilson, B.H. Honig. Energetics of charge-charge interactions in proteins published erratum appears in Proteins 1992- 12(2) :201J. Proteins 3:32−52 (1988).
  40. S.J. Wodak, M. De Crombrugghe, J. Janin. Computer studies of interactions between macromolecules. Prog.Biophys.Mol.Biol. 49:29−63 (1987).
  41. D. Eisenberg, A.D. McLachlan. Solvation energy in protein folding and binding. Nature 319:199−203 (1986).
  42. L.M. Gregoret, F.E. Cohen. Novel methodfor the rapid evaluation of packing in protein structures. J Mol.Biol. 211:959−974 (1990).
  43. J. Ruppert, W. Welch, A.N. Jain. Automatic identification and representation of protein binding sites for molecular docking. Protein Sei. 6:524−533 (1997).
  44. D.E. Clark, D. Frenkel, S.A. Levy, J. Li, C.W. Murray, B. Robson, B. Waszkowycz, D.R. Westhead. PRO-LIGAND: an approach to de novo moleculardesign. 1. Application to the design of organic molecules. J Comput.Aided.Mol.Des. 9:13−32 (1995).
  45. M. Rarey, B. Kramer, T. Lengauer. Time-efficient docking of flexible ligands into active sites of proteins. Ismb. 3:300−308 (1995).
  46. M.D. Miller, S.K. Kearsley, D.J. Underwood, R.P. Sheridan. FLOG: a system to select 'quasi-flexible' ligands complementary to a receptor of known three-dimensional structure. J Comput.Aided.Mol.Des. 8:153−174 (1994).
  47. W. Welch, J. Ruppert, A.N. Jain. Hammerhead: fast, fully automated docking of flexible ligands to protein binding sites. Chem.Biol. 3:449−462 (1996).
  48. I.D. Kuntz, J.M. Blaney, S.J. Oatley, R. Langridge, T.E. Ferrin. A geometric approach to macromolecule-ligand interactions. J Mol.Biol. 161:269−288 (1982).
  49. I.D. Kuntz. Structure-based strategies for drug design and discovery see comments. Science 257:1078−1082 (1992).
  50. J.M. Blaney, J.S. Dixon. A good ligand is hard to find: automated docking methods. Perspect.Drug.Disc.Design 1:301−319 (1993).
  51. I.D. Kuntz, E.C. Meng, B.K. Shoichet. Structure-based molecular design. Acc.Chem.Res. 27:117−123 (1994).
  52. D.S. Goodsell, A.J. Olson. Automated docking of substrates to proteins by simulated annealing. Proteins 8:195−202 (1990).
  53. S.Y. Yue. Distance-constrained molecular docking by simulated annealing. Protein Eng. 4:177−184 (1990).
  54. T.N. Hart, R.J. Read. A multiple-start Monte Carlo docking method. Proteins 13:206−222 (1992).
  55. A. Caflisch, P. Niederer, M. Anliker. Monte Carlo docking of oligopeptides to proteins. Proteins 13:223−230 (1992).
  56. D.S. Goodsell, H. Lauble, C.D. Stout, A.J. Olson. Automated docking in crystallography: analysis of the substrates of aconitase. Proteins 17:1−10 (1993).
  57. R.M. Knegtel, J. Antoon, C. Rullmann, R. Boelens, R. Kaptein. MONTY: a Monte Carlo approach toprotein-DNA recognition. J Mol.Biol. 235:318−324 (1994).
  58. M.K. Gilson, T.P. Straatsma, J.A. McCammon, D R. Ripoll, C.H. Faerman, P.H. Axelsen, I. Silman, J.L. Sussman. Open «back door» in a molecular dynamics simulation of acetylcholinesterase. Science 263:1276−1278 (1994).
  59. B.A. Luty, Z.R. Wasserman, P.F.W. Stouten, C.N. odge, M. Zacharias, J.A. McCammon. A molecidar mechanics/grid method for evaluation of lygand-receptor interactions. J Comput.Chem. 16:454−464(1995).
  60. A. Di Nola, D. Roccatano, H. J. Berendsen. Molecular dynamics simulation of the docking of substrates to proteins. Proteins 19:174−182(1994).
  61. J. Cherfils, J. Janin. Protein docking algorithms: sumulating molecular recognition. Curr.Opin.Struct.Biol. 3:265−269(1993).
  62. D.K. Gehlhaar, G.M. Verkhivker, P.A. Rejto, C.J. Sherman, D.B. Fogel, L.J. Fogel, S.T. Freer. Molecular recognition of the inhibitor AG-1343 by HIV-1 protease: conformational flexible docking by evolutionary programming. C.hem.Biol. 2:317−324 (1995).
  63. D.B. Fogel. Evolutionary Computation: Forward a New Philosophy of Machine Intelligence. IEEE Press, Piscataway, (1995).
  64. L.J. Fogel, A. J. Owens, and M.J. Walsh. Artificial Intelligence Through Simulated Evolution. Wiley, New York, (1996).
  65. P.H. Winston. «Artificial Intelligence. 3rd edition.». Addison-Wesley Publ., Reading, MA, 63−100(1992).
  66. J.B. Moon, W J. Howe. Computer design of bioactive molecules: a methodfor receptor-based de novo ligand design. Proteins 11:314−328 (1991).
  67. W. Hasel, T.F. Hendrickson, W.C. Still. A rapid approximation to the solvent accessible surface area of atoms. Tetrahedron 1:103−116 (1988).
  68. K. Suguna, E.A. Padlan, C.W. Smith, W.D. Carlson, D.R. Davies. Binding of a reduced peptide inhibitor to the aspartic proteinase from Khizopus chinensis: implications for a mechanism of action. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 84:7009−7013 (1987).
  69. M. Miller, J. Schneider, B.K. Sathyanarayana, M.V. Toth, G.R. Marshall, L. Clawson, L. Selk, S.B. Kent, A. Wlodawer. Structure of complex of synthetic H1V-1 protease with a substrate-based inhibitor at 2.3 A resolution. Science 246:1149−1152 (1989).
  70. M. Rarey, B. Kramer, T. Lengauer, G. Klebe. A fast flexible docking method using an incremental construction algorithm. J Mol.Biol. 261:470−489 (1996).
  71. G. Klebe, T. Mietzner. A fast and efficient method to generate biologically relevant conformations. J Comput.Aided.Mol.Des. 8:583−606 (1994).
  72. P.J. DeClerq. Systematic Conformational Analysis. A microcomputer methodfor the semi-quantitative evaluation ofpolycyclic containing five-six- andseven-memberedrings: Program Characteristics. Tetrahedron 40:3717−3727 (1984).
  73. M. Rarey, S. Wefing, T. Lengauer. Placement of medium-sized molecular fragments into active sites of proteins. J Comput. Aided.Mol.Des. 10:41−54 (1996).
  74. D. Fischer, S.L. Lin, H.L. Wolfson, R. Nussinov. A geometry-based suite of molecular docking processes. J Mol.Biol. 248:459−477 (1995).
  75. H.J. Bohm. On the use ofLUDI to search the Fine Chemicals Directory for ligands of proteins of known three-dimensional structure. J
  76. Comput. Aided.Mol.Des. 8:623−632 (1994).
  77. D.W. Banner, P. Hadvary. Crystallographic analysis at 3.0-A resolution of the binding to human thrombin of four active site-directed inhibitors. J Biol.Chem. 266:20 085−20 093 (1991).
  78. A.R. Leach. Ligand docking to proteins with discrete side-chain flexibility. J Mol.Biol. 235:345−356 (1994).
  79. T.L. Blundell, B.L. Sibanda, M. Sternberg, J.M. Thornton. Knowledge-based prediction of protein structure and the design of novel molecules. Nature 326:347−352 (1987).
  80. R.E. Bruccoleri, M. Karplus. Chain closure with bond-angle variations. Macromolecules 18:2767−2773 (1985).
  81. R.E. Bruccoleri, M. Karplus. Prediction of the folding of short polypeptide segments by uniform conformational sampling. Biopolymers 26:137−168 (1987).
  82. L. Holm, C. Sander. Fast and simple Monte Carlo algorithm for side chain optimization in proteins: application to model building by homology. Proteins 14:213−223 (1992).
  83. C. Lee, S. Subbiah. Prediction of protein side-chain conformation by packing optimization. J Mol.Biol. 217:373−388 (1991).
  84. P. Tuffery, C. Etchebest, S. Hazout, R. Lavery. A new approach to the rapid determination of protein side chain conformations. J Biomol.Struct.Dyn. 8:12 671 289 (1991).
  85. J. Desmet, M. DeMaeyer, B. Hazes, I. Lasters. The dead-end elimination theorem and its use in protein side-chain positioning. Nature 356:539−542 (1992).
  86. P.E. Hart, N.J. Nilsson, B. Raphael. A formal bases for the heuristic detemination of minimum caused path. JEEE Trans on SSC 4:100−114 (1968).
  87. N.J. Nilsson. «Principles of Artificial Intelligence». Springer-Verlag, Berlin, 7488 (1982).
  88. A.R. Leach, I.D. Kuntz. Conformational analysis of flexible ligands of macromolecular receptor cites. J Comput.Chem. 13:730−748 (1992).
  89. U.C. Singh, P.A. Kollman. UCSF Gaussian-80.QCPE bulletin 2. 17 (program 446)(1982).
  90. J.W. Ponder, F.M. Richards. Tertiary templates for proteins. Use ofpacking criteria in the enumeration of allowed sequences for different structural classes. J Mol.Biol. 193:775−791 (1987).
  91. A. Tropsha, J. Hermans. Application offree energy simulations to the binding of a transition- state-analogue inhibitor to HIV protease. Protein Eng. 5:29−33 (1992).
  92. C.E. Sansom, J. Wu, IT. Weber. Molecular mechanics analysis of inhibitor binding to HIV-I protease. Protein Eng. 5:659−667 (1992).
  93. I.T. Weber, R.W. Harrison. Molecular mechanics calculations on HIV-I protease with peptide substrates correlate with experimental data. Protein Eng. 9:679−690 (1996).
  94. T.J.A. Ewing, T.P. Lybrand. J Phys. Chem 98:1748−1752 (1994).
  95. C.S. Ring, E. Sun, J.H. McKerrow, G.K. Lee, P.J. Rosenthal, ID. Kuntz, F.E. Cohen. Structure-based inhibitor design by using protein models for the development of antiparasitic agents. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 90:3583−3587 (1993).
  96. D.L. Bodian, R.B. Yamasaki, R.L. Buswell, J.F. Stearns, J.M. White, ID. Kuntz. Inhibition of the fusion-inducing conformational change of influenza hemagglutinin by benzoquinones and hydroquinones. Biochemistry 32:2967−2978 (1993).
  97. P.Y. Lam, P.K. Jadhav, C.J. Eyermann, C.N. Hodge, Y. Ru, L.T. Bacheler, J.L. Meek, M.J. Otto, M.M. Rayner, Y.N. Wong. Rational design of potent, bioavailable, nonpeptide cyclic ureas as HIV protease inhibitors. Science 263:380−384 (1994).
  98. M. von Itzstein, W.Y. Wu, G.B. Kok, M.S. Pegg, J.C. Dyason, B. Jin, T. Van Phan, M.L. Smythe, H.F. White, S.W. Oliver. Rational design of potent sialidase-based inhibitors of influenza virus replication see comments. Nature 363:418 423 (1993).
  99. H. Nakanishi, R.A. Chrusciel, R. Shen, S. Bertenshaw, M.E. Johnson, T.J. Rydel, A. Tulinsky, M. Kahn. Peptide mimetics of the thrombin-bound structure of fibrinopeptideA. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 89:1705−1709(1992).
  100. K. Padmanabhan, K.P. Padmanabhan, J.D. Ferrara, J.E. Sadler, A. Tulinsky. The structure of alpha-thrombin inhibited by a 15-mer single-stranded DNA aptamer. J Biol.Chem. 268:17 651−17 654 (1993).
  101. B.K. Shoichet, R.M. Stroud, D.V. Santi, I.D. Kuntz, K.M. Perry. Structure-based discovery of inhibitors of thymidylate synthase. Science 259:1445−1450 (1993).
  102. C. Mattos, B. Rasmussen, X. Ding, G.A. Petsko, D. Ringe. Analogous inhibitors of elastase do not always bind analogously. Nat.Struct.Biol. 1:55−58 (1994).
  103. D. Ringe. Immunosuppression. Binding by design news- comment. Nature 351:185−186 (1991).
  104. R.H. Hoess. Curr.Opin.StruCt.Biol. 3:572−579 (1993).
  105. A.N. Jain. Scoring noncovalent protein-ligand interactions: a continuous dijferentiable function tuned to compute binding affinities. J Comput.Aided.Mol.Des. 10:427−440 (1996).
  106. S.L. Lin, R. Nussinov, D. Fischer, H.J. Wolfson. Molecular surface representations by sparse critical points. Proteins 18:94−101 (1994).
  107. R. Norel, D. Fischer, H.J. Wolfson, R. Nussinov. Molecular surface recognition by a computer vision-based technique. Protein Eng. 7:39−46 (1994).
  108. M. Helmer-Citterich, A. Tramontano. PUZZLE: a new methodfor automated protein docking based on surface shape complementarity. J Mol.Biol. 235:1021 -1031 (1994).
  109. Y.L. Xiao, D.E. Williams. Genetic algotithmsfor docking of actinomicine D and the d-oxyguanosine molecules. J Phys. Chem 98:7191(1994).
  110. R.S. Judson, Y.T. Tan, E. Mori. J Comput.Chem. 11:1405−1419 (1995).
  111. C.M. Oshiro, I.D. Kuntz, J.S. Dixon. Flexible ligand docking using a genetic algorithm. J Comput.Aided.Mol.Des. 9:113−130(1995).
  112. T. Dandekar, P. Argos. Folding the main chain of small proteins with the genetic algorithm. J Mol.Biol. 236:844−861 (1994).
  113. G. Jones, P. Willett, R.C. Glen. Molecular recognition of receptor sites using a genetic algorithm with a description of desolvation. J Mol.Biol. 245:43−53 (1995).
  114. J.H. Holland. Adaptation in natural and artificial systems. MIT Press, Cambridge, MA, (1992).
  115. D.E. Goldberg. Genetic algorithms in search, optimization and machine learning. Addison-Wesley, Reading MA, (1989).
  116. D.E. Goldberg. Complex Syst. 5:139−150 (1991).
  117. Handbook of Genetic Algorithms. Van Nostrand Reinhold, New York, (1991).
  118. L.D. Whitley. Foundations of Genetic Algorithms. Morgan Kaufmann, Los Altos, CA, (1993).
  119. L.B. Booker. Mach.Learn. 9:29−44 (1991).
  120. A. Bergman, M.W. Feldman. Physica D56.57−68 (1992).
  121. G.E. Liepins, M.D. Vose. J Exp.Theor.Artif.Intel. 2:101−108 (1990).
  122. D.E. Goldberg, K. Deb, J.H. Clark. Complex Syst. 6:(1992).
  123. J.P. Ros. «Foundation of genetic algorithms». Morgan Kaufmann, Los Altos, CA., 257−276 (1993).
  124. S. Forrest. Genetic algorithms: principles of natural selection applied to computation. Science 261:872−878 (1993).
  125. N.S. Andreeva, A.E. Gustchina, A.A. Fedorov, N.E. Shutzkever, T.V. Volnova. X-ray crystallographic studies of pepsin. Adv. Exp Med.Biol. 95:23−31 (1977).
  126. C. Abad-Zapatero, T.J. Rydel, J. Erickson. Revised 2.3 A structure of porcine pepsin: evidence for a flexible subdomain. Proteins 8:62−81 (1990).
  127. A.R. Sielecki, A.A. Fedorov, A. Boodhoo, N.S. Andreeva, M.N. James. Molecular and crystal structures of monoclinic porcine pepsin refined at 1.8 A resolution. J Mol.Biol. 214:143−170 (1990).
  128. J.B. Cooper, G. Khan, G. Taylor, I.J. Tickle, T.L. Blundell. X-ray analyses of aspartic proteinases. II. Three-dimensional structure of the hexagonal crystal form of porcine pepsin at 2.3 A resolution. J Mol.Biol. 214:199−222 (1990).
  129. A.R. Sielecki, M. Fujinaga, R.J. Read, M.N. James. Refined structure of porcine pepsinogen at 1.8 A resolution. J Mol.Biol. 219:671−692 (1991).
  130. J. A. Hartsuck, G. Koelsch, S.J. Remington. The high-resolution crystal structure of porcine pepsinogen. Proteins 13:1−25 (1992).
  131. G.L. Gilliland, E.L. Winborne, J. Nachman, A. Wlodawer. The three-dimensional structure of recombinant bovine chymosin at 2.3 A resolution. Proteins 8:82−101 (1990).
  132. M. Newman, M. Safro, C. Frazao, G. Khan, A. Zdanov, I.J. Tickle, T.L. Blundell, N. Andreeva. X-ray analyses of aspartic proteinases. IV. Structure and refinement at 2.2 A resolution of bovine chymosin. J Mol.Biol. 221:1295−1309 (1991).
  133. I.N. Hsu, L.T. Delbaere, M.N. James, T. Hofmann. Penicillopepsin from Penicillium janthinellum crystal structure at 2.8 A and sequence homology with porcine pepsin. Nature 266:140−145 (1977).
  134. M.N. James, A.R. Sielecki. Structure and refinement ofpenicillopepsin at 1.8 A resolution. J Mol.Biol. 163:299−361 (1983).
  135. C. Wong, T.J. Lee, T. Y. Lee, T.H. Lu, C.S. Hung. The structure of acid protease from Endothia parasitica in cross-linked form at 3.5 A resolution. Biochem.Biophys.Res.Commun. 80:891−896 (1978).
  136. L. Pearl, T. Blundell. The active site of aspartic proteinases. FEBS Lett. 174:96 101 (1984).
  137. E. Subramanian, M. Liu, I.D. Swan, D.R. Davies. The crystal structure of an acid protease from Rhizopus chinensis at 2.5 A resolution. Adv. Exp Med.Biol. 95:3341 (1977).
  138. K. Suguna, R.R. Bott, E.A. Padlan, E. Subramanian, S. Sheriff, G.H. Cohen, D.R. Davies. Structure and refinement at 1.8 A resolution of the aspartic proteinase from Rhizopus chinensis. J Mol.Biol. 196:877−900 (1987).
  139. A.R. Khan, M.M. Cherney, N.I. Tarasova, M.N. James. Structural characterization of activation 'intermediate 2' on the pathway to human gastricsin. Nat.Struct.Biol. 4:1010−1015 (1997).
  140. S.A. Moore, A.R. Sielecki, M.M. Chernaia, N.I. Tarasova, M.N. James. Crystal and molecular structures of human progastricsin at 1.62 A resolution. J Mol.Biol. 247 :466−485 (1995).
  141. J. Yang, A. Teplyakov, J.W. Quail. Crystal structure of the aspartic proteinase from Rhizomucor miehei at 2.15 A resolution. J Mol.Biol. 268:449−459 (1997).
  142. M.A. Navia, P.M. Fitzgerald, B.M. McKeever, C.T. Leu, J.C. Heimbach, W.K. Herber, I.S. Sigal, P.L. Darke, J.P. Springer. Three-dimensional structure of aspartyl protease from human immunodeficiency virus HIV-1. Nature 337:615 620 (1989).
  143. S. Spinelli, Q.Z. Liu, P.M. Alzari, P.H. Hirel, R.J. Poljak. The three-dimensional structure of the aspartyl protease from the HIV-1 isolate BRIJ. Biochimie 73:1391−1396(1991).
  144. A. Wlodawer, M. Miller, M. Jaskolski, B.K. Sathyanarayana, E. Baldwin, IT. Weber, L.M. Selk, L. Clawson, J. Schneider, S.B. Kent. Conservedfolding in retroviral proteases: crystal structure of a synthetic HIV-1 protease. Science 245:616−621 (1989).
  145. D.H. Ohlendorf, S.I. Foundling, J.J. Wendoloski, J. Sedlacek, P. Strop, F.R. Salemme. Structural studies of the retroviral proteinase from avian myeloblastosis associated virus. Proteins 14:382−391 (1992).
  146. M. Jaskolski, M. Miller, J.K. Rao, J. Leis, A. Wlodawer. Structure of the aspartic protease from Rous sarcoma retrovirus refined at 2-A resolution. Biochemistry 29:5889−5898 (1990).
  147. R.B. Rose, C.S. Craik, R.M. Stroud. Domainflexibility in retroviral proteases: structural implications for drug resistant mutations. Biochemistry 37:2607−2621 (1998).
  148. A.F. Wilderspin, R.J. Sugrue. Alternative native flap conformation revealed by 2.3 A resolution structure of SIVproteinase. J Mol.Biol. 239:97−103 (1994).
  149. M. Fujinaga, M.M. Chernaia, N.I. Tarasova, S.C. Mosimann, M.N. James. Crystal structure of human pepsin and its complex with pepstatin. Protein Sci. 4:960−972 (1995).
  150. M.E. Fraser, N.C. Strynadka, P.A. Bartlett, J.E. Hanson, M.N. James. Crystallographic analysis of transition-state mimics bound to penicillopepsin: phosphorus-containing peptide analogues. Biochemistry 31:5201−5214 (1992).
  151. M.N. James, A.R. Sielecki, K. Hayakawa, M.H. Gelb. Crystallographic analysis of transition state mimics bound to penicillopepsin: difluorostatine- and difluorostatone-containingpeptides. Biochemistry 31:3872−3886 (1992).
  152. K. Suguna, E.A. Padlan, R. Bott, J. Boger, K.D. Parris, D.R. Davies. Structures of complexes of rhizopuspepsin with pepstatin and other statine-containing inhibitors. Proteins 13:195−205 (1992).
  153. J. Cooper, W. Quail, C. Frazao, S.I. Foundling, T.L. Blundell, C. Humblet, E.A. Lunney, W.T. Lowther, B.M. Dunn. X-ray crystallographic analysis of inhibition of endothiapepsin by cyclohexyl renin inhibitors. Biochemistry 31:8142−81 501 992).
  154. T.L. Blundell, J.A. Jenkins, B.T. Sewell, L.H. Pearl, J.B. Cooper, I.J. Tickle, B. Veerapandian, S.P. Wood. X-ray analyses of asparticproteinases. The three-dimensional structure at 2.1 A resolution of endothiapepsin. J Mol.Biol. 211:919 941 (1990).
  155. D. Bailey J.B. Cooper. A structural comparison of 21 inhibitor complexes of the aspartic proteinase from Endothia parasitica. Protein Sci. 3:2129−2143 (1994).
  156. J.B. Cooper, S.I. Foundling, T.L. Blundell, J. Boger, R.A. Jupp, J. Kay. X-ray studies of aspartic proteinase-statine inhibitor complexes. Biochemistry 28:85 968 603 (1989).
  157. S.I. Foundling, J. Cooper, F.E. Watson, A. Cleasby, L.H. Pearl, B.L. Sibanda, A. Hemmings, S.P. Wood, T.L. Blundell, M.J. Valler. High resolution X-ray analyses of renin inhibitor-aspartic proteinase complexes. Nature 327:349−352 (1987).
  158. S.M. Cutfield, E.J. Dodson, B.F. Anderson, P.C. Moody, C.J. Marshall, P.A. Sullivan, J.F. Cutfield. The crystal structure of a major secreted aspartic proteinase from Candida albicans in complexes with two inhibitors. Structure. 3:1261−1271 (1995).
  159. J.M. Louis, F. Dyda, N.T. Nashed, A.R. Kimmel, D R. Davies. Hydrophilic peptides derived from the transframe region of Gag-Pol inhibit the HIV-1 protease. Biochemistry 37:2105−2110 (1998).
  160. K. Backbro, S. Lowgren, K. Osterlund, J. Atepo, T. Unge, Hulten, N.M. Bonham, W. Schaal, A. Karlen, A. Hallberg. Unexpected binding mode of a cyclic sulfamide HIV-1 protease inhibitor. J Med. Chem 40:898−902 (1997).
  161. L. Hong, J.A. Hartsuck, S. Foundling, J. Ermolieff, J. Tang. Active-site mobility in human immunodeficiency virus, type 1, protease as demonstrated by crystal structure of A28Smutant. Protein Sci. 7:300−305 (1998).
  162. A.M. Silva, R.E. Cachau, H.L. Sham, J.W. Erickson. Inhibition and catalytic mechanism of HIV-1 aspartic protease. J Mol.Biol. 255:321−346 (1996).
  163. R. Bone, J.P. Vacca, P. S. Anderson, M.K. Holloway. X-ray crystal structure of the HIV protease complex with L-700,417, an inhibitor with pseudo C2 symmetry. J Amer.Chem.Soc. 113:9382−9387 (1991).
  164. A.L. Swain, M.M. Miller, J. Green, D.H. Rich, J. Schneider, A. Wlodawer. X-ray crystallographic structure of a complex between a synthetic protease of HIV-1 and a substrate-based hydroxyethylamine inhibitor. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 87:8809(1990).
  165. L. Pearl, W. Taylor. Nature 329:351−354 (1987).
  166. C.L. Dilanni, L.J. Davis, M.K. Holloway, W.K. Herber, P.L. Darke, N.E. Kohl, R. A. Dixon. Characterization of an active single polypeptide form of the human immunodeficiency virus type 1 protease. J Biol. Chem 265:17 348−17 354 (1990).
  167. A.G. Tomasselli, W.J. Howe, T.K. Sawyer. Comp.Phys.Commun. N5:6−27 (1991).
  168. S.P. Jordan, J. Zugay, P.L. Darke, L.C. Kuo. Activity and dimerization of human immunodeficiency virus protease as a function of solvent composition and enzyme concentration. J Biol. Chem 267:20 028−20 032 (1992).
  169. S. Seelmeier, H. Schmidt, V. Turk, H. von der. Human immunodeficiency virus has an aspartic-type protease that can be inhibited by pepstatin A. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 85:6612−6616 (1988).
  170. N.E. Kohl, E.A. Emini, W.A. Schleif, L.J. Davis, J.C. Heimbach, R. A, Dixon, E.M. Scolnick, I.S. Sigal. Active human immunodeficiency virus protease is required for viral infectivity. Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 85:4686−4690 (1988).
  171. S.F. Le Grice, J. Mills, J. Mous. Active site mutagenesis of the AIDS virus protease and its alleviation by trans complementation, EMBO J 7:2547−25 531 988).
  172. D.D. Loeb, R. Swanstrom, L. Everitt, M. Manchester, S.E. Stamper, C.A. Hutchison. Complete mutagenesis of the HIV-1 protease. Nature 340:397−4 001 989).
  173. X.L. Lin, R.N. Wong, J. Tang. Synthesis, purification, and active site mutagenesis of recombinant porcine pepsinogen. J Biol. Chem 264:4482−4489 (1989).
  174. L.M. Babe, S. Pichuantes, C.S. Craik. Inhibition of HIV protease activity by heterodimer formation. Biochemistry 30:106−111 (1991).
  175. H.J. Schramm, A. Billich, E. Jaeger, K.P. Rucknagel, G. Arnold, W. Schramm. The inhibition of HIV-1 protease by interface peptides. Biochem.Biophys.Res.Commun. 194:595−600 (1993).
  176. J. Hajdu, K.R. Acharya, D.I. Stuart, P.J. McLaughlin, D. Barford, N.G. Oikonomakos, H. Klein, L.N. Johnson. Catalysis in the crystal: synchrotron radiation studies with glycogenphosphorylase b. EMBO J 6:539−546 (1987).
  177. L.N. Johnson, S.H. Hu, D. Barford. Catalytic mechanism of glycogen phosphorylase. Faraday.Discuss. 131−142(1992).
  178. E D. Lowe, M.E. Noble, V.T. Skamnaki, N.G. Oikonomakos, D.J. Owen, L.N. Johnson. The crystal structure of a phosphorylase kinase peptide substrate complex: kinase substrate recognition. EMBO J 16:6646−6658 (1997).
  179. K.H. Verschueren, F. Seljee, H.J. Rozeboom, K.H. Kalk, B.W. Dijkstra. Crystallographic analysis of the catalytic mechanism of haloalkane dehalogenase see comments. Nature 363:693−698 (1993).
  180. H. Π‘. АндрССва, УстноС сообщСниС
  181. W.A. Hendrickson. Stereochemical restrained refinement of macromolecular structures. Methods Enzymol. 115:252−270(1985).
  182. B.C. Finzel. J Appl.Crystallogr. 20:53−55 (1987).
  183. A. Brunger. A system for X-ray crystallography and NMR, in: «X-PLOR version 3.1». Yale University Press, New Haven, CT, (1995).
  184. T.A. Jones. Diffraction methods for biological macromolecules. Interactive computer graphics: FRODO. Methods Enzymol. 115:157−171 (1985).
  185. R. Smith, I.M. Brereton, R.Y. Chai, S.B. Kent. Ionization states of the catalytic residues in HIV-1 protease. Nat.Struct.Biol. 3:946−950 (1996).
  186. IIJPAC-IUB Commission on Biochemical Nomenclature. Biochem.Biophys.Acta. 19:1−17(1971).
  187. M.E. Попов, И. Π’. ΠšΠ°ΡˆΠΏΠ°Ρ€ΠΎΠ², E.M. Попов. ΠœΠ΅Ρ…Π°Π½ΠΈΠ·ΠΌ дСйствия аспартатных ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·. II ΠšΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΎΠ½Π½Ρ‹Π΅ возмоТности Π³Π΅ΠΏΡ‚Π°ΠΏΠ΅ΠΏΡ‚ΠΈΠ΄Π½ΠΎΠ³ΠΎ субстрата ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΈΠ½Π°Π·Ρ‹ HIV-L Π‘ΠΈΠΎΠΎΡ€Π³Π°Π½. Π₯имия 22:510−522 (1996).
  188. A.M. Silva, R.E. Cachau, H.L. Sham, J.W. Erickson. Inhibition and catalytic mechanism of HIV-1 aspartic protease. J.Mol.Biol. 255:321−346 (1996).
  189. E.M. Popov. Quantitative approach to conformations of proteins. Int.J.Quant.Chem. 16:707−737(1979).
  190. E.M. Попов, Π“. М. Π›ΠΈΠΏΠΊΠΈΠ½Π΄, Π‘. Π€. Архипова. ВСорСтичСскоС исслСдованиС ΠΊΠΎΠ½Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΠ°Ρ†ΠΈΠΉ ΠΌΠ΅Ρ‚ΠΈΠ»ΠΈΡ€ΠΎΠ²Π°Π½Π½Ρ‹Ρ… ΠΏΡ€ΠΎΠΈΠ·Π²ΠΎΠ΄Π½Ρ‹Ρ… аминокислот. Изв. АН Π‘Π‘Π‘Π .Π‘Π΅Ρ€.Ρ…ΠΈΠΌ. N2:312−319 (1971).
  191. Y. Kong, J.W. Ponder. J.Chem.Phys. 107:481−492(1997).
  192. M.J. Dudek, J. W. Ponder. Accurate Modeling of the Intramolecular Electrostatic Energy of Proteins. J. Comput.Chem. 16:791−816 (1995).
  193. И.Π’. ΠšΠ°ΡˆΠΏΠ°Ρ€ΠΎΠ², M.E. Попов, Π›. Π”. Π ΡƒΠΌΡˆ, E.M. Попов. РизопуспСпсин — Π½Π΅Π²Π°Π»Π΅Π½Ρ‚Π½Ρ‹Π΅ комплСксы. Π‘ΠΈΠΎΠΎΡ€Π³Π°Π½. Π₯имия (1999).
  194. Π’.К. Антонов. Π₯имия ΠΏΡ€ΠΎΡ‚Π΅ΠΎΠ»ΠΈΠ·Π°. Наука, Москва, (1991).
  195. L.H. Pearl. The catalytic mechanism of aspartic proteinases. FEBS Lett. 214:8−12 (1987).
  196. N.I. Dergousova, Yu.F. Leonova, A.A. Zinchenko, L.D. Rumsh, N.S. Andreeva. Mutant of HIV-1 Protease with New Specific properties. Protein and Peptide Letters 4:321−328 (1997).
Π—Π°ΠΏΠΎΠ»Π½ΠΈΡ‚ΡŒ Ρ„ΠΎΡ€ΠΌΡƒ Ρ‚Π΅ΠΊΡƒΡ‰Π΅ΠΉ Ρ€Π°Π±ΠΎΡ‚ΠΎΠΉ