Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние удобрений на продуктивность агроценоза и микробное сообщество серых лесных почв

Диссертация: Влияние удобрений на продуктивность агроценоза и микробное сообщество серых лесных почв
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Минеральные удобрения даже при интенсивном (N210P150K340 + навоз 40 т/га за ротацию) и высокоинтенсивном (N480P180K360 + навоз 80 т/га за ротацию) уровне их применения в плодосменном севообороте не оказывают негативного влияния на биоразнообразие микробного сообщества. Положительная корреляция индекса Шеннона с содержанием в почве арбускулярных микоризныхгрибов свидетельствует о стимулирующем… Читать ещё >

Влияние удобрений на продуктивность агроценоза и микробное сообщество серых лесных почв (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Роль агротехнических приемов в формировании микробного сообщества агроценоза
    • 1. 1. Процессы, связанные с корневыми выделениями растений
      • 1. 1. 1. Ризодепозиты. Регуляция компонентов экссудации
      • 1. 1. 2. Роль корневых экссудатов в перераспределении питательных элементов в почве
      • 1. 1. 3. Микробные взаимодействия и биоконтроль в ризосфере
      • 1. 1. 4. Микоризные грибы и ризодепозиты
    • 1. 2. Биоразнообразие почвенных микроорганизмов. Влияние агротехнических приемов на разнообразие микробных сообществ
    • 1. 3. Влияние агротехнических приемов на эмиссию диоксида углерода и увеличение автохтонного органического вещества почв
    • 1. 4. Влияние различного сельскохозяйственного использования почв агроценозов на цикл метана
    • 1. 5. Методы изучения микробных сообществ почв агроценоза

Актуальность. Почвенная биота — «биологический двигатель планеты» [Bloem et al., 1994] обеспечивает экосистемные функции по поддержанию качества окружающей среды [Kaur et al., 2005], и микроорганизмы играют ключевую роль в осуществлении этих процессов. В полной мере это относится к агроэкосистемам, где микроорганизмы выступают потенциальным индикатором их здоровья.

Одним из приоритетных направлений в области охраны природы является сохранение ее биоразнообразия. Особое место отводится правовому регулированию данной проблемы. В настоящее время разработаны механизмы международного взаимодействия для реализации требований Конвенции о биологическом разнообразии, выполнения Россией обязательств по международным договорам и соглашениям в области сохранения биоразнообразияпринята Национальная стратегия, где наряду с другими объектами названы агроценозы:

• в документе «Национальная стратегия сохранения биоразнообразия России» (от 5. 06. 2001 г.) среди десяти экосистем, к охране которых привлечено внимание, находятся Агроэкосистемы;

• отдельной задачей исследований в этом направлении выделена «разработка научных основ сохранения биоразнообразия агроценозов».

Сохранение биологического статуса, который обеспечивает гомеостатическую стабильность сельхозугодья — его продуктивность, является важным аспектом концепции интенсивного земледелия. В большой степени, помимо биоразнообразия, это относится к структуре микробного сообщества почв и направленности микробиологических процессов, играющих определяющую роль в функционировании круговоротов биогенных элементов. Известно, что агрохимические средства обычно увеличивают количество органического вещества почв (Сорг), что способствует повышению общей численности микроорганизмов [Ни et al.,.

1999; Pascual et al., 2000; Лебедева, Едемская, 2005]. Однако применение как органических, так и минеральных удобрений и даже совместное их внесение может приводить к быстрой минерализации органического вещества почв [Ajwa, Tabatabai, 1994; Kandeler, 1999; Минеев, 2004] за счет нарушения взаимосвязанности трофических цепей переработки питательных субстратов отдельными организмами агроэкосистемы. Как следствие, может происходить потеря гумуса почвы. О направленности процессов трансформации органических веществ можно косвенно судить по соотношению С: N и С: Р. Показано, что минерализация Сорг является движущим фактором для минерализации Рорг [Tiessen et al., 1992]. Соотношение С: N в зоне корней определяет наиболее важный механизм ризосферного эффекта [Cheng, Kuzyakov, 2005]. Недостаток азота может стимулировать микробное разложение автохтонного почвенного органического вещества, в том числе гумуса [Sparling, 1982]. Следовательно, необходимо иметь данные не только об общей численности микроорганизмов, но и о структуре микробного сообщества почв. Микробоценоз почв представлен разнообразными видами бактерий и грибов. При изучении отдельных групп микроорганизмов, трудно поддающихся культивированию или тех, которые невозможно выращивать in vitro без облигатного симбионта, как в случае с арбускулярными микоризными грибами, представляется актуальным использование молекулярных методов [Graham, 1995], одним из которых является газовая хроматография — масс-спектрометрия (ГХ — МС).

Целью работы являлось определение особенностей изменения микробоценоза в почве в зависимости от интенсивности применяемых агрохимических средств и нахождение взаимосвязи микробного сообщества с продуктивностью агроценоза.

Для достижения поставленной цели решали следующие задачи: 1. Оценить взаимосвязь изменения агрохимических характеристик и фаз развития сельскохозяйственных культур в севообороте на серой лесной почве с микробиологическими показателями (общей численностью, составом, структурой микробного сообщества и биоразнообразием по данным метода ГХ-МС);

2. Определить влияние органических и минеральных удобрений и климатических факторов на микробное сообщество почвы;

3. Выделить доминантные ассоциации микроорганизмов и определить возможные микробиологические показатели состояния почв агроценоза;

4. Исследовать влияние уровня интенсивности применения удобрений на продуктивность культур и качество зерна, а также рассмотреть взаимосвязь данных параметров с микробиологической составляющей агроценоза;

5. Определить потенциальную скорость выделения диоксида углерода и метана, а также эмиссию этих газов из почвы в разные вегетационные периоды.

Научная новизна. Впервые исследована продуктивность агроценоза в связи со структурой микробного сообщества, изученного методом газовой хроматографии — масс-спектрометрии (ГХ-МС). Впервые проведена оценка численности арбускулярных микоризных (AM) грибов методом ГХ-МС в серой лесной почве агроценоза и определено значение этой группы микромицетов в биоразнообразии почв.

Практическая значимость работы. Полученные результаты могут быть использованы для создания оптимальных почвенных условий в отношении сохранения автохтонного органического вещества (гумуса) и микробного разнообразия при применении высоких доз минеральных удобрений.

Апробация работы. Основные положения и результаты работы были доложены на следующих международных, всероссийских региональных конференциях:

• Международная конференция студентов и аспирантов по фундаментальным наукам «Ломоносов-2002» (Москва, 2002);

• Международная конференция 7-ой Пущинской школы-конференции молодых ученых «Биология — наука XXI века» (Пущино, 2003);

• Региональная научно-практическая конференция «Современные проблемы биологии, экологии, химии», (Ярославль, 2003);

• Всероссийская научно-практическая конференция «Физиология растений и экология на рубеже веков» (Ярославль, 2003);

• 1st EGU General Assembly (France, 2004) — th.

• 13 RAMIRAN international Conference «Potencial for simple technology solutions in organic manure management» (Bulgaria, 2008).

Список работ, опубликованных по теме диссертации:

1. Рутковская О. М., Кубарев Е. Б. Влияние органоминеральных удобрений на численность гетеротрофных метанобразующих бактерий и эмиссию ССЬ и СН4 // Тезисы докладов 12 международной конференции студентов и аспирантов по фундаментальным наукам «Ломоносов-2002», 10 апреля 2002 г. -М.: МГУ, 2002.-С. 93.

2. Рутковская О. М., Кубарев Е. Б. Кузьмина Н.В. Структура микробного сообщества серой лесной почвы при применении различных систем удобрений // Современные проблемы биологии, экологии, химии: Региональный сборник научных трудов молодых ученых. — Ярославль: Ярославский гос. ун-т., 2003. — С. 77−80.

3. Рутковская О. М., Кубарев Е. Б. Зависимость между численностью метанокисляющих бактерий и биохимическими показателями дерново-подзолистой супесчаной почвы в агроценозе // Сборник тезисов 7-ой Пущинской школы-конференции молодых ученых «Биология — наука XXI века». — Пущино, 2003. — С. 291−292.

4. Рутковская О. М., Верховцева Н. В., Кузьмина Н. В. Влияние злаковых растений на структуру микробного сообщества серой лесной почвы в агроценозе // Физиология растений и экология на рубеже веков: Материалы Всероссийской научно-практической конференции. — Ярославль: Яросл. гос ун-т., 2003.-С. 171−172.

5. Селиверстова P.M., Верховцева Н. В., Степанов A. JI, Кузьмина Н. В., Кубарев Е. Б. Влияние различных систем удобрений на серой лесной почве на эмиссию СО2 и СН4 и структуру микробного сообщества. // Агрохимия в высших учебных заведениях России. Материалы Всероссийской конференции, посвященной 140-летию кафедры агрохимии в МГУ / Под редакцией академика РАСХН Минеева В. Г. — М.: Изд-во МГУ, 2004. — С. 229 234.

6. Kubarev Е., Rutkovskaia О., Verkhovtseva N., Stepanov A., Kuzmina N. Metanogenesis and microbial community structure of grey forest soil under manure and nitrogen fertilizers application [Electronic resource]: European Geosciences Union // Geophysical Research Abstracts, ISSN: 1029−7006. — 2004. -Vol. 6, 7 437.

7. Seliverstova P., Verkhovtseva N., Stepanov A., Korchagin A. Influence of plant developmental stages on composition and activities of rhizosphere microbial community at application of different fertilizer systems on grey forest soil // WORKSHOP: Practical Solutions IV, 2007. http://www.Practicalsolutions. cz/register.php. 2007.

8. Seliverstova P., Verkhovtseva N., Korchagin A.,. Kirushin E. Comparative investigation of a microbial biodiversity in agroecosystem on grey forest soil at application of manure and mineral fertilizers // 13th RAMIRAN international Conference: Potential for simple technology solutions in organic manure management. — Albena, Bulgaria.: AmbroziaNTLtd., 2008.-P. 285−288.

9. Пашкевич Е. Б., Верховцева H. B, Степанов A. JI, Егорова Е. В., Селиверстова P.M., Лукин С. М. Влияние минеральных и органических удобрений на изменение микробного сообщества дерново-подзолистой почвы с разным содержанием гумуса // Экологическая агрохимия. Материалы результатов исследований, выполненных сотрудниками и докторантами кафедры агрохимии факультета почвоведения МГУ им. М. В. Ломоносова / Под ред. академика РАСХН Минеева В. Г. — М.: Изд-во МГУ, 2008.-С. 152−163.

10. Селиверстова P.M. Верховпева Н. В., Степанов A. JI, Корчагин А. А. Изменение микробного сообщества серой лесной почвы под посевом злаковых культур при применении органических и минеральных удобрений // Агрохимия. — 2008. — № 8. — С. 46−54.

11. Селиверстова О. М., Верховцева Н. В., Корчагин А. А. Анализ микробоценоза почвы при внесении удобрений в севообороте методом газовой хроматографии // Плодородие. — 2008. — № 5. — С. 37−39.

Выводы.

1. Продуктивность возделываемых сельскохозяйственных культур зависит от климатических условий, вида культуры и уровня внесения удобрений. Так, в условиях 2002 года (шестой год севооборотов) самой продуктивной культурой являлась озимая пшеница, возделываемая на контрольном (навоз 40 т/га) и поддерживающем (навоз 40 т/га + N30) вариантах опыта. В 2003 г. (первый год новой ротации) наибольшей продуктивностью отличался овес, возделываемый после озимой пшеницы (поддерживающий уровень внесения удобрений — N30P50K90) и после озимой ржи (интенсивный уровень — N30P60K120), а также картофель — по высокоинтенсивному фону применения удобрений (N140P50K190). о.

2. Общая численность микроорганизмов серой лесной почвы (х10 кл/г) в условиях засушливого года увеличивается к концу вегетационного периода, максимальный показатель — в 3 раза — наблюдается в самом продуктивном, контрольном варианте (навоз 40 т/га). Благоприятные влажностный и температурный режимы (ГТК = 1,97) способствуют росту числа бактерий в ранние фазы развития растений, однако, внесение минеральных удобрений в высоких дозах (интенсивный и высокоинтенсивный варианты) сопровождается снижением этого показателя в августе.

3. Рост общего числа микроорганизмов в условиях влажного года сопровождается увеличением скорости выделения СО2 в контроле (первый год последействия навоза) и в варианте с внесением полного минерального удобрения в высокой дозе (N140P50K190), а также повышением образования СН4 во всех вариантах опыта. Среди доминирующих видов возрастает численность бактерий, способных использовать автохтонное органическое вещество почвы.

Propionibacterium freudenreichii, анаэробных железоредукторов), что ведет к снижению Сорг, при высокоинтенсивном уровне применения удобрений.

4. Низкое количество выпавших осадков (ГТК = 0,85- засушливый год) создает условия для преимущественного развития аэробных актиномицетов и коринеформных бактерий (Arthrobacter globiformisубиквитного почвенного обитателя, и актиномицетов Micromonospora sp., Rhodococcus equi, Nocardia asteroids, N. earned).

5. Высокий влажностный режим почвы (ГТК = 1,97- влажный год) благоприятствует развитию анаэробиоза — в сообществе микроорганизмов наблюдается увеличение доли анаэробных бактерий с бродильным типом метаболизма (Clostridium pasterianum), а также некоторых анаэробных и факультативно-анаэробных коринеформных бактерий (Butyrivibrio spp., Propionibacterium freudenreichii). При этом индекс аэробности остается высоким во всех вариантах опыта.

6. Внесение навоза (40 т/га за ротацию) и навоза с добавлением азота способствует увеличению количества видов микроорганизмов (согласно индексу Шеннона) в ранние сроки вегетации растений. В конце вегетационного периода наблюдается нивелирование влияния навоза на микробное разнообразие исследуемой почвы, которое становиться сравнимо с комплексом микроорганизмов в вариантах с внесением полного минерального удобрения.

7. Минеральные удобрения даже при интенсивном (N210P150K340 + навоз 40 т/га за ротацию) и высокоинтенсивном (N480P180K360 + навоз 80 т/га за ротацию) уровне их применения в плодосменном севообороте не оказывают негативного влияния на биоразнообразие микробного сообщества. Положительная корреляция индекса Шеннона с содержанием в почве арбускулярных микоризныхгрибов свидетельствует о стимулирующем влиянии последних на биоразнообразие микроорганизмов серой лесной почвы.

8. Высокая продуктивность озимой пшеницы способствует увеличению общей численности микроорганизмов к концу вегетации растений в 3 раза, по-видимому, за счет дополнительного поступления в почву веществ ризодепозитного происхождения. В сообществе микроорганизмов данного варианта отмечается самое высокое содержание актиномицетов (Nocardia asteroides и Nocardia carnea) и ферментирующих бактерий.

9. Высокая продуктивность овса оказывает положительное влияние на важные биологические составляющие микробоценоза: в почве увеличивается биоразнообразие бактерий, а также численность микроорганизмов — активных гидролитиков, способствующих росту растений, в том числе за счет продуцирования ростовых веществ {Arthrobacter globiformis).

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Ю., Наумкина Т. С., Штарк О. Ю., Данилова Т. Н., Цыганов В. Е. Эффективность использования совместной инокуляции гороха посевного грибами арбускулярной микоризы и клубеньковыми бактериями // Докл. Рос. акад. сельскохоз. Наук, 2004. — С. 12−14.
  2. В.Ф. Метанотрофные бактерии. М.: ГЕОС, 2001. 500 с.
  3. Т.Г., Лысак Л. В., Звягинцев Д. Г. Почвы и микробное разнообразие // Почвоведение. 1996. — № 6. — С. 699−704.
  4. Т.Г., Чернов И. Ю., Звягинцев Д. Г. О показателях структуры бактериальных сообществ // Микробиология. 1997. — Т. 66, № 3. — С. 408−414.
  5. Т.Г. Структура бактериальных сообществ почв. — М.: ИКЦ «Академкнига», 2002. 282 с.
  6. Е.П., Великанов Л. Л., Чилаппагари П. Ч. Влияние эндомикоризных грибов на поглощение азота, фосфора и калия пшеницей в раннем онтогенезе // Вестн. Моск. Ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 1993. — № 2.
  7. В.Т. Микробиология: учебник для вузов / В. Т. Емцев, Е. Н. Мишустин. 6-е изд., испр. — М.: Дрофа, 2006. — С. 287−334.
  8. Г. А. Микробное сообщество в прошлом и настоящем // Микробил. журн. 1989. — Т. 52. — № 6. — С. 3−14.
  9. П.Звягинцев Д. Г., Бабьева И. П., Зенова Г. М., Полянская JI.M. Разнообразие грибов и актиномицетов и их экологические функции // Почвоведение. 1996. — № 6. — С. 705−713.
  10. Д.Г., Зенова Г. М. Экология актиномицетов. М.: ГЕОС, 2001.-256 с.
  11. Д.Г., Добровольская Т. Г., Бабьева И. П., Чернов И. Ю. Развитие представлений о структуре микробных сообществ почв // Почвоведение. 1999. — № 1. — С. 134−144.
  12. И.В. Коэволюция грибов и растений // Тр. бот. ин-та РАН, 1993.-Т. 9. С.1−118.
  13. В.В., Зенкина В. В. Действие рыхления и аэрации почвы разных горизонтов на ее биологическую активность, аммонификацию и денитрификацию // Проблемы агрохимии и экологии. 2008. — № 1. — С.44−50.
  14. А.В., Сорочинский Б. В., Гродзинский Д. М. Молекулярные и клеточные аспекты развития арбускулярных микоризных симбиозов и их значение в жизнедеятельности растений // Цитол. и генетика. 2002. -Т. 36, № 4.-С. 125−137.
  15. А.Ю. Фосфатогенная трансформация почв. — М.: Наука, 1995.-288 с.
  16. Н.В., Верховцева Н. В., Касатиков В. А. Микробиологические свойства вермикомпостов и их влияние на микробоценоз дерново-подзолистой почвы // Материалы I междунароной конференции «Дождевые черви и плодородие почв», Владимир, 2002. С. 93−95.
  17. Н.В., Верховцева Н. В., Касатиков В. А. Микробиологические свойства вермикомпостов и их влияние на микробоценоз дерново-подзолистой почвы // Агрохимический вестник. № 1. — 2003. — С. 14.
  18. Н.А., Ефремов В. Ф., Трофимов Н. П. Значение систем удобрения и севооборотов в регулировании гумусового режима дерново-подзолистой почвы в условиях интенсивного земледелия // Агрохимия. 1996. — № 12. — С. 10−16.
  19. В.И. Динамика продуктивности культур в различных полевых севооборотах на типичном черноземе при его длительном сельскохозяйственном использовании // Докл. РАСХН. 1998. -№ 2. — С.22−25.
  20. Л.А., Едемская Н. Л. Научные принципы системы удобрения с основами экологической агрохимии. Учебное пособие. / Под ред. В. Г. Минеева. М.: Изд-во МГУ, 2004. — 320 с.
  21. Л.В., Добровольская Т. Г., Скворцова И. Н. Методы оценки бактериального разнообразия почв и идентификации почвенных бактерий. доп. изд., перераб. — М.: МАКС Пресс, 2003. — 120 с.
  22. Г. Н. Эффективность инокуляции вики эндомикоризными грибами и Rhizobium II Бюл. ВНИИ с.-х. микробиол. 1987. — № 47. — С. 8−11.
  23. В.Г. Агрохимия: Учебник. — 2-е изд., перераб. и доп. М.: МГУ, «КолосС», 2004. — 720 с.
  24. Микробные сообщества и их функционирование в почве / Сб. науч. тр. Киев: Наук, думка, 1981. 280 с.
  25. В.Г. Воспроизводство почвенного плодородия агрохимическими средствами и охрана почв от техногенного загрязнения / Избранное: Сборник научных статей в 2-х частях. М.: Изд-во МГУ, 2005. — 601 с.
  26. В.Г. Фитосанитарный эффект минеральных удобрений и растений в агроценозе (1998, соавторы Е. П. Дурынина, О.А.Пахненко). / Избранное: Сборник научных статей в 2-х частях. — М.: Изд-во МГУ, 2005.-601 с.
  27. В.Г. Экологические функции использования агрохимических средств в агробиоэкосистемах / Избранное: Сборник научных статей в 2-х частях. М.: Изд-во МГУ, 2005.-601 с.
  28. В.Г. Эколого- агрохимические аспекты биологизации земледелия / Избранное: Сборник научных статей в 2-х частях. М.: Изд-во МГУ, 2005. — 601 с.
  29. Т.Г., Паников Н. С. Современные подходы к оценке биомассы и продуктивности грибов и бактерий в почве / Успехи микробиологии. М.: Наука, 1985. — Т. 20. — С. 198−226.
  30. Е.Н. Текущие задачи в изучении микробного населения почв. В: Микробные сообщества и их функционирование в почве: Сб. науч. тр. / Киев: Наук, думка, 1981. 280 с.
  31. Г. С., Маршунова Г. Н., Павлова В. Ф., Зольншсова Н. В. Роль почвенных микроорганизмов в фосфорном питании растений / Успехи микробиологии. М.: Наука, 1985. — Т. 20. — С. 174−195.
  32. .В., Заварзин Г. А. Трофические связи в культуре, окисляющей метан // Микробиология. 1972. — Т. 41. — № 6. — С. 999 -1006.
  33. Г. А. Способ определения родового (видового) состава ассоциации микроорганизмов // Патент на изобретение № 2 086 642 от 10.08.1997, — 12.с.
  34. Е.Б. Влияние разных видов органических удобрений на агрохимическое и микробиологическое состояние дерново-подзолистой почвы в агроценозе: Дис.. канд.биол.наук. Москва, 2004. 128с.
  35. Практикум по агрохимии: Учеб. пособие. 2-е изд., перераб. и доп. / Под ред. В. Г. Минеева. — М.: МГУ, 2001. — 689 с.
  36. Д.Н. Избр. труды, М.: Колос, 1965, — Т. 3. — 639 с.
  37. О.М., Верховцева Н. В., Кузьмина Н. В. Влияние злаковых растений на структуру микробного сообщества серой лесной почвы вагроценозе // Материалы конференции «Физиология растений и экология на рубеже веков», Ярославль, 2003. С. 171−172.
  38. О.М., Верховцева Н. В., Степанов A.JL, Кузьмина Н. В., Кубарев Е. Н. Влияние различных систем удобрений на серой лесной почве на эмиссию С02, СН4 и структуру микробного сообщества // Сб. науч. трудов. Изд-во МГУ, 2004. С. 229−234.
  39. В.М. Современные проблемы и перспективы агрохимии азота // Проблемы агрохимии и экологии. 2008. — № 1. — С. 55−64.
  40. Современная микробиология. Прокариоты / Под ред. Й. Ленгелера, Г. Древса, Г. Шлегеля, М.: Мир, 2005. — Т.2. — 493с.
  41. Справочник агронома по сельскохозяйственной метеорологии Нечерноземной зоны Европейской части РСФСР / Под ред. И. Г. Грингода. Л.: Гидрометеоиздат, 1986. 191 с.
  42. Справочник по зерновым культурам / М. П. Шкель, Н. Д. Мухин, Н. А. Жилинский и др. 2-е изд., перераб. и доп. Мн.: Ураджай, 1986. 304 с.
  43. Справочник по кормопроизводству. М.: Колос, 1973. 488 с.
  44. А.Л., Лысак Л. В. Методы газовой хроматографии в почвенной микробиологии: Учебно-методическое пособие. — М.: МАКС Пресс, 2002. 88 с.
  45. Структурно-функциональная роль почв и почвенной биоты в биосфере / Под ред. Г. В. Добровольского. М.: Наука, 2003. — 364 с.
  46. Физиология и биохимия сельскохозяйственных растений / Под ред. Н. Н. Третьякова. М.: Колос, 2000. 640 с.
  47. А.П. Арбускулярно-микоризный гриб и бобовое растение — надорганизменная система. Успехи медицинской микологии.
  48. Материалы четвертого всероссийского конгресса по медицинской микологии. Москва, национальная Академия Микологии, 2006. С.64−65.
  49. Abbasi Р. А, Miller S.A., Meulia Т., Hoitink J. A,. Kim J.-M. Precise detection and tracing of Trichoderma hamatum 382 in compost-amended potting mixes by using molecular markers // Appl. Environ. Microbiol. -1999. Vol.65. — P. 5421−5426.
  50. Ajwa H.A., Tabatabai M.A. Decomposition of different organic materials in soils // Biol. Fertil. Soils. 1994. — Vol.18. — P. 175−182.
  51. Ali N.A., Jackson R.M. Fffects of plant roots and their exudates on germination of spores of ectomycorrhizal fungi // Transections of the British Myrological Sotiety. 1988. — Vol.91. — P. 253−260.
  52. Andreev L.V., Akimov V.N., Nikitin D.I. Peculiarities of fatty acid composition of the Genus Caulobacter // Folia Microbiol. 1986. — Vol. 31. -P. 144−153.
  53. Artusson V. Bacterial-Fungal Interactions Highlighted using Microbiomics: Potential Application for Plant Growth Enhancement. Doctor thesis Swedish University of Agricultural Sciences, Uppsala, 2005.
  54. Azcon-Aguilar, C. & Bago, B. 1994. Physiological characteristics of the host plant
  55. Bagnasco P., de la Fuente L., Gualtieri G., Noya .F, Arias A. Fluorescent Pseudomonas spp. as biocontrol agents against forage legume root pathogenic fungi // Soil Biol. Biochem. 1998. — Vol. 30. — P. 1317−1322.
  56. Barber S.A. Soil nutrient bioavailability: a mechanistic approach. New York, USA: John Wiley & Sons, 1995.
  57. Bardgett R. D. and McAlister E. The measurement of soil fungal: bacterial biomass ratios as an indicator of ecosystem self-regulation in temperate meadow grassland // Biol. Fertil. Soils. 1999. — Vol.29. — P. 285−290.
  58. Bardgett R.D., Mawdsley J.L., Edwards S., Hobbs P.J., Rodwell J.S. and Davies WJ. Plant species and nitrogen affects on soil biological properties of temperate upland grasslands // Functional Ecology. 1999. — Vol.13. — P. 650−660.
  59. Bardgett R. D., Jones A. C., Jones D. L., Kemmitt S. J., Cook R. and Hobbs P. J., Soil microbial biomass community patterns related to the history and intensity of grazing in sub-montane ecosystems // Soil Biol. Biochem. -2001.-Vol.33.-P. 1653−1664.
  60. Barea J.M. Mycorrhiza-bacteria interactions on plant growth promotion. In Plant growth promoting rhizobacteria. Edited by A. Ogoshi, K. Kobayashi, Y. Homma, F. Kodama, N. Kondo & S. Akino. OECD Press. Paris, 1997. -P. 150−158.
  61. Benhamou N., Chet I. Parasitism of sclerotia of Sclerotium rolfsii by Trichoderma harzianum: ultrastructural and cytochemical aspects of the interaction // Phytopathology. 1996. — Vol.86. — P. 405−416
  62. Billes G., Bottner P., Gandais-Riollet N. Effectet des raciness de graminees sur la mineralization nette de lazote du sol // Revue dEcologie et de Biologie Du Sology. 1998. — Vol.25. — P. 261 — 277.
  63. Bingham I.J., Blackwood J.M., Stevenson E.A. Relationship between tissue sugar content, phloem import and lateral root initiation in wheat // Physiologia Plantarum. 1998.-Vol.103.-P. 107—113.
  64. Bloem, J., de Ruiter, P. and Bouwman, L. A., Soil food webs and nutrient cycling in agro-ecosystems. In Modern Soil Microbiology (eds van Elsas, J. D., Trevors, J. T. and Wellington, H. M. E.), Marcel Dekker, New York, 1994.-P. 245−278.
  65. Boare, M.N. Fungal and bacterial pathways of organic matter decomposition and nitrogen mineralization in arable soil, 1997. P. 37−70.
  66. Bossio D.A., Scow K.M., Gunapala N., Graham K.J. Determinations of soil microbial communities: effects of agricultural management, season, and soil type on phospholipids fatty acid profiles // Microb. Ecol. 1998. — Vol. 36. -P. 1−12.
  67. Bronson K.F., Mosier A.R. Suppression of methane oxidation in aerobic soil by nitrogen fertilizers- nitrification inhibitors- and urease inhibitors // Biol. Fert. Soil. 1994. — Vol.17. — P. 264−268.
  68. Butler J.L., Williams M.A., Bottomley P.J., Myrold D.D. Microbial community dynamics associated with rhizosphere carbon flow // Applied and environmental microbiology. 2003. — Vol.69. — P. 6793−6800.
  69. Calderon F. J., Jackson L. E., Scow К. M., Rolston D. E. Shot-term dynamics of nitrogen, microbial activity and phospholipid fatty acids after tillage // Soil Sci. Soc. Am. J. 2001. — Vol.65. — P. 118−126.
  70. Chaudhary, A., Kaur, A., Choudhary, R., Kaushik, R. and Kalra, N., Impact of pesticides on temporal dynamics of microbial community signatures in rice crop of India — a field study // Agric. Ecol. Environ. 2005 (under submission).
  71. Cheng W., Coleman D.C. Effect of living roots on soil organic matter decomposition // Soil Biology and Biochemistry. 1990. — Vol.22. — P. 781 787.
  72. Curl E.A., Trueglove B. Thee rhizospher advanced series in agricultural science 15. Berlin, Germany: Springer-Verlag, 1986.
  73. Dao Т.Н. Tillage System and crop residue effects on serface compaction of a Paleustoll // Agronomy Journal. 1998. — Vol. 88. — P. 141−148.
  74. Del Val C., Barea J.M. Diversity of Arbuscular mycorrhyzal fungus population in heavy metal contaminated soil // Appl. and Environ. Microbiol. 1999.-Vol. 2.-P. 103.
  75. Dilkes N.B., Jones D.L., Farrar J.F. Temporal dynamics of carbon partitioning and rhizodeposition in wheat // Plant Physiology. 2004. -Vol.134.-P. 706−715.
  76. DixN.J., Webster J. Fungal Ecology. Champan & Hall, London, 1995.
  77. Dormaar J.F. Effect of active roots on the decomposition of soil organic materials // Biology and Fertility of soils. 1990. — Vol. 10. — P. 121 -126.
  78. Duijff B.J., Gianinazzi-Pearson V., Lemanceau P. Involvement of the outer membrane lipopolysaccharides in the endophytic colonization of tomato roots by biocontrol Pseudomonas fluorescens strain WCS417r // New Phytologist. 1997.-Vol.135.-P. 325−334
  79. Dunfield P., Knowles R. Kinetics of inhibition of methane oxidation by nitrate, nitrite, and ammonium in a humisoil // Appl. Environ. Microbiol. -1995. Vol.61. -P. 3129−3135.
  80. Ehrenfeld J.C., Parsons W.F.J., Han X., Parmelee R.W., Zhu W. Live and dead roots in Forest soil horizons: Contrasting effects on nitrogen dynamics //Ecology. 1997.-Vol.78.-P. 348−362.
  81. Farrar J., Hawes M., Jones D., Lindow S. How roots control the flux of carbon to the rhizosphere // Ecology. 2003. — Vol.84. — P. 827−833.
  82. Fitter A.H., Garbaye J. Interactions between mycorrhizal fungi and other soil organisms // Plant and Soil. Vol.159. — P. 123 — 132.
  83. Franzluebbers A.J., Hons F.M. and Zuberer D.A. Tillage-induced seasonal-changes in soil physical-properties affecting soil C02 evolution under intensive cropping // Soil and Tillage Research. 1994. — Vol.34. — P. 41−60.
  84. Freixes S., Thibaud M.C., Tardieu F., Muller B. Root elongation and branching и related to local hexose concentration in Arabidopsis thaliana seedlings // Plant, Cell & Environment. 2002. — Vol.25. — P. 1357−1366.
  85. Fries N., Bardet M., Serck-Hanssen K. Growth of ectomycorrhizal fungi stimulated by lipids from a pine root exudates // Plant and Soil. 1985. -Vol.86.-P. 287−290.
  86. Frostegard A., Tunlid A. and Baath E. Phospholipids fatty acid composition, biomass and activity of microbial communities from two soil types exposed to different heavy metals // Soil Biol. Biochem. 1993. -Vol.25. — P. 723−730.
  87. Garbaye J. Biological interactions in the mycorrhizosphere // Experientia. 1991. — Vol.47. — P. 370−375.
  88. Gilbert G.A., Knight J.D., Vance C.P., Allan D.L. Proteoid root development of phosphorus deficient lupin is mimicked by auxin and phosphonate // Annals of Botany. 2002. — Vol.85. — P. 921 — 928.
  89. Giller K.E., Beare M.H., Lavelle P., Izac A.-M.N., Swift M.J. Agricultural intensification, soil biodiversity and agroecosystem function // Appl. Soil Ecol. 1997. — Vol.6. — P. 3−6.
  90. Gregorich E.G., Drury c.f. and Baldock J.A. Changes in soil carbon under long-term maize in monoculture and legume-based rotation // Canadian Journal of Soil Science. 2001. — Vol.81. — P. 21 -31.
  91. Gunawardena U., Hawes M.C. Tissue specific localization of root infection by fungal pathogens: Role of root border cells // Molecular Plant-Microbe Interactions. 2002. — Vol.15. — P. 1128−1136.
  92. Hutsch B.W. Tillage and land use affects on methane oxidation rates and their vertical profiles in soil // Biol. Fert. Soil. 1998. — Vol.27. — P. 284−292.
  93. Hutsch B.W., Webster C.P., Powlson D.S. Long term effeats of nitrogen fertilization on methane oxidation in soil of broadbalk wheat experiment//Soil Biol. Biochem. 1993. — Vol.25.-P. 1307−1315.
  94. Hutsch B.W., Webster C.P., Powlson D.S. Methane oxidation in soil as affected by land use, soil pH and N fertilization // Soil Biol. Biochem. -1994.-Vol.26.-P. 1613−1622.
  95. Ibekwe, A.M., Kennedy A.C. Fatty acid methyl ester (FAME) profiles as a tool to investigate community structure of two agricultural soils //Plant and Soil. 1999. — Vol. 206. P. 151−161.
  96. Ibekwe A.M., Kennedy A.C. Phospholipid fatty acid profiles and carbon utilization paterns for analysis of microbial community structure under field and greenhouse conditions // FEMS Microbiol. Ecol. 1998. — Vol.26.-P.151−163.
  97. Intergovernmental Panel on Climate Change (IPCC), Climate Change 1994 (Radiative Forcing of Climate Change), Cambridge Univ. Press, Cambridge, UK, 1995.
  98. Jenkinson D.S. The turnover of organic carbon and nitrogen in soil. Philosophical Transaction of the Royal Society London series В 329, 1990. -P. 361−368.
  99. Jones D.L., Farrar J., Giller K.E. Associative nitrogen fixation and root exudation — What is theoretically possible in the rhizosphere? // Symbiosis.-2003.-Vol. 35.-P. 19−38.
  100. Jones D.L., Yjdge A., Kuzyakov Y. Plant and mycorrhizal regulation of rhizodeposition // New Phytologist. 2004. — Vol. 163. — P. 459−480.
  101. Kabir Z., O’Hallora, I. and Hamel C. Combined effects of soil disturbance and following on plant and fungal component of mycorrhizal (Zea mays L.) // Soil Biol. Biochem. 1999. — Vol.31. — P. 307−314.
  102. Kapkiyai J.J., Karanja N.K., Qureshi J.N., Smithson and PC Woomer P.L. Soil organic matter and nutrient dynamics in a Kenyan nitisol under long-term fertilizer and organic input management // Soil Biology and Biochemistry. 1999.-Vol.31.-P. 1773−1782
  103. H., Sirois J.C. & Shirley E.Cole. Production of a Gibberellin-like Substance by Arthrobacter globiformis II Nature. 1962. — Vol.196.-P. 1012−1013.
  104. Katsnelson H, Sirois JC. Auxin Production by Species of Arthrobacter II Nature. 1965. -Vol. 191. — P. 1323−1324.
  105. Katsnelson H., Sirois J.C., Shirley E.C. Production of a gibberellin-like substance by Arthrobacter globiformis // Nature. 1962. — Vol. 196. — P. 1012−1013.
  106. Kaur A., Chaudhary A., Kaur A., Choudhary R. and Kaushik R. Phospholipid fatty acid A bioindicator о invirinment monitoring and assessment in soil ecosystem // Current science. — 2005. — Vol. 89. — P. 1103−1112.
  107. Keith H., Oades J.M. and Martin J.K. Input of carbon to soil from wheat plants // Soil Biol. Biochem. 1986. — Vol. 18. — P. 445−449.
  108. Kelly J.J., Haggblom M., Tate R.L. Changes in soil microbial communities over time resulting from one time application of zinc: a laboratory microcosm study // Soil Biochem. 1999. — Vol.32. — P. 14 551 465.
  109. Kennedy A.C. and Smith K.L. Soil microbial diversity and the sustainability of agricultural soil // Plant and Soil. 1995. — Vol.170. — P. 75−86.
  110. Kerr J.R. Bacterial inhibition of fungal growth and patogenicity // Microbial Ecology in Health and Disease. 1999.-Vol.11.-P. 129−142.
  111. Kirk J. L., Lee A. Beaudette, l, Miranda Hartb, Peter Moutoglis, John N. Klironomos, Hung Lee, Jack T. Trevors. Methods of studying soil microbial diversity // Journal of Microbiological Methods. 2004. Vol. — 58. P. 169- 188.
  112. Kloepper J., Tuzun S., Ku" J. Proposed definitions related to induced disease resistance // Biocontrol Science and Technology. 1992. — Vol.2. -P. 347−349.
  113. Krupa S., Fries N. Studies on ectomycorrhizae of pine. Production of organic volatile compounds // Canadian Journal of Botany. 1971.-Vol.49.-P. 1425−1431.
  114. Kuzyakov Y., Cheng W. Photosynthesis controls of rhizosphere respiration and organic matter decomposition // Soil Biology and Biochemistry. -2001.-Vol. 33.-P. 1915−1925.
  115. Kuzyakov Y., Domanski G. Carbon input by plants into the soil // Plant Nutrition and Soil Science. 2000. — Vol.163. — P. 421−431.
  116. Kuzyakov, Y. and Schneckenberger. Review of estimation of plant rhizodeposition and their contribution to soil organic matter formation // Archives of Agronomy and Soil Science. 2004. — Vol.50. — P. 115−132.
  117. Laheurte F., Leyval C., Berthefm J. Root exudates of maize, pine and beech seedlings influenced by mycorrhizal and bacterial inoculation // Symbiosis. 1990.-Vol.9.-P. 111−116.
  118. Lai R., Kimble I., Levine E., Stewart B.A. (ads). Soil and global change. CRC & Lewis publishes, Boca Raton FL. 1995.
  119. Lambers, H., Posthumus, F., Stulen, 1., Lanting, L., Van de Dijk, S.J. and Hofstra, R. Energy metabolism of Plantago major ssp. major as dependent on the supply of mineral nutrients // Physiol. Plant. 1981. -Vol.51.-P. 245 -252.
  120. Leeman M., van Pelt J.A., den Ouden F.M., Heinsbroek M., Bakker PAHM, Schippers B. Induction of systemic resistance against Fusarium wilt of radish by lipopolysaccharides of Pseudomonas fluorescens И Phytopathology. 1995. — Vol.85. — P. 1021−1027.
  121. Levin I., Glatzel-Mattheir H., Marik Т., Cunts M., Schmidt M., Worthy D.E. Verification of German methan emission inventories and their recent changes bases on atmospheric observations // J.Geophys. Res. Atmos. 1999.-Vol.104.-P. 3447−3456.
  122. Leyval С., Berthelin J. Rhizodeposition and net release of soluble organic compounds by pine and beech seedlings inoculated with rhizobacteria and ectomycorrhizal fungi // Biology and Fertility of soil. -1993.-Vol.15.-P. 259−267.
  123. Li C.S., Frolking S. and Harriss R. Modeling carbon biogeochemistry in agricultural soils // Global Biogeochemical Cycles. 1994. — Vol.8. P. 237−254.
  124. Li C.J., Zhu X.P., Zhang F.S. Role of shoot in regulation of iron deficiency responses in cucumber and bean plants // Journal of Plant Nutrition. 2000. — Vol.23. — P. 1809−1818.
  125. Loper J.E., Buyer J.S. Siderophores in microbial interactions on plant surfaces // Molecular Plant-Microbe Interaction. 1991. — Vol, 4. -P. 5−13.
  126. Loper J.E., Henkels M.D. Utilization of heterologous siderophores enhances levels of iron available to Pseudomonas putida in the rhizosphere // Applied and Environmental Microbiology. 1999. -Vol.65.-P. 5357−5363.
  127. Lynch J.M., Whipps J.M. Substrate flow in the rhizosphere // Plant and Soil. 1990. — Vol. 129. — P. 1 -10.
  128. Ma J. F, Ueno H., Ueno D., Rombola A.D., Iwashita T. Characterization of phytosiderophore secretion under Fe deficientcy stress in Festuca rubra // Plant and soil. 2003. — Vol.256.-P. 131−137.
  129. Mandhare V.K., Kalbhor H.B., Patil O.L. Effect of VA-mycorrhiza, Rhizobium and phosphorus on summer groundnut // J. Maharashtra Agr. Univ. 1995. — Vol. 20.-P. 261−262.
  130. Marschner P., Kandeler E., Marschner, B. Structure and function of the soil microbial community in a long-term fertilizer experiment // Soil Biology and Biochemistry. 2002. — Vol.35. — P. 453−461.
  131. Marschner В., Noble A. Chemical and biological processes leading to the neutralisation of soil acidity after incubation with different litter materials // Soil Biology and Biochemistry. 2000. — Vol.32. — P. 805−813.
  132. Melin E., Rama Das V.S. Influence of root-metabolites on the growth of tree mycorrhizal fungi // Physiologia Plantarum. 1954. — Vol.7. — P. 851- 858.
  133. McCarthy A J. Lignocellulose-degrading actinomycetes // FEMS Microbiol. Rev. 1987. — Vol. 46. — P. 145−163.
  134. McCarthy A. J., Williams S.T. Actinomycetes as agents of biodegradation in the environment a review // Gene. — 1992. — Vol. 115. — P. 189−192.
  135. Mer J.L., Roger P. Production, oxidation, emission and consumption of methane by soils: A review // Eur. J. Soil Biol. 2001. — Vol.37. — P. 2530.
  136. Merckx R., Dijkstra A., den Hartog A. and Van Veen J.A. Production of root-derived material and associated microbial growth in soil at different nutrient levels // Biol. Fertil. Soils. 1987. — Vol.5. — P. 126−132.
  137. Metraux J.-P., Signer H., Ryals J., Ward E., Wyss-Benz M., Gaudin J., Raschdorf K., Schmid E., Blum W., Inverardi B. Increase in salicylic acid at the onset of systemic acquired resistance in cucumber // Science. 1990. — Vol.250. — P. 1004−1006.
  138. Minchin P.E.H., Thorpe M.R., Farrar J.F. Short-term control of root: shoot partitioning // Journal of Experimental Botany, 1994. Vol.45. — P. 615−622.
  139. Mitchell R., Hurwitz E. Suppression of Pythium debaryanum by lytic rhizosphere bacteria // Phytopathology. 1965. — Vol.55. — P. 156−158.
  140. Morton J.B. Taxonomy of VA mycorrhizal fungi: Classification, nomenclature, and identification // Mycotaxon. 1988. Vol. 32. — P. 267−324.
  141. Neeno-Eckwall E.C., Schottel J.L. Occurrence of antibiotic resistance in the biological control of potato scab disease // Biological Control. 1999.-Vol.16.-P. 199−208.
  142. Nesbit S.P., Breinbeck G.A. A laboratory study of factors influencing methane uptake by soils // Agric. Ecosyst. Environ. 1992. — Vol.41. — P. 39−54.
  143. Nguyen C., Todorovic C., Robin C., Christophe A., Guckert A. Continuous monitoring of rhizosphere respiration after labelling of plant shoots with 14 C02// Plant and Soil. 1999.-Vol.212.-P. 191−201.
  144. Nguyen C. Rhizodeposition of organic С by plants: mechanisms and controls // Agronomie. 2003. — Vol.23. — P. 375−396.
  145. Nobili M., Contin M., Mondini C., Brookes P.C. Soil microbial biomass is triggered into activity by trace amounts of substrate // Soil Biology and Biochemistry. 2001. — Vol.33. — P. 1163 -1170.
  146. Nugroho S.G., Lumbanraja J., Suprapto H., Sunyoto, Ardjasa W.S., Haraguchi H., Kimura M. Methane emission from an Indonesian paddy field subjected to several fertilizer treatments // Soil Sci. Plant Nutr. 1993. -Vol.40.-P. 275−281.
  147. Nylund J-E, Unestam T. 1982. Structure and physiology of ectomycorrhizae. I. The process of mycorrhiza formation in Norway spruce in vitro // New Phytologist. 1982. — Vol.91. — P. 63 -79.
  148. Osipov GA, Turova ES. Studying species composition of microbial communities with the use of gas chromatography-mass spectrometry. Microbial community of kaolin. FEMS//Microb. Rev. 1997. V.20, pp. 437−446.
  149. O’Sullivan D.J., O’Gara F. Traits of fluorescent Pseudomonas spp. involved in suppression of plant root pathogens // Microbiological Reviews. 1992. — Vol.56. — P. 662−676.
  150. Pineros M.A., Magalhaes J.V., Alves V.M.C., Kochian L.V. The physiology and biophysics of an aluminum tolerance mechanism based on root citrate exudation in maize // Plant Physiology. 2002. -Vol.129.-P. 1194−1206.
  151. Punja Z.K. Comparative efficacy of bacteria, fungi and yeasts as biological control agents for diseases of vegetable crops // Canadian Journal of Plant Pathology. 1997. — Vol.19. — P. 315−323.
  152. Rambelli A. The rhizosphere of mycorrhizae. In Ectomycorrhizae. Edited by G.L. Marks & К. T.T. Academic Press. New York, 1973. P. 299−343.
  153. P.E. & Rodhe C.R. Long-term tillage and nitrogen fertilization affects on organic nitrogen and carbon in a semiarid soil // Soil Science Society of America Journal. 1988. — Vol.52. — P. 1114−1117.
  154. Rattray E.A.S, Paterson E., Killham K. Characterisation of the dynamics of C-partitioning within Lolium perenne and to the rhizosphere microbial biomass using 14 С pulse chase // Biology and Fertility of Soils. -1995. Vol.19. — P. 280−286.
  155. Reicosky D.C., Kemper W.D., Landgdale G.W., Douglas Jr. C.K. and Rasmussen P.E. Soil organic matter changes resulting from tillage and biomass production // Journal of Soil and Water Conservation. 1995. -Vol.50.-P. 253−261.
  156. S., Bengough A.G., Griffiths B.S., Stubbs V., Young I.M. 2003. Does the presence of detached root border cells of Zea mays alter the activity of the pathogenic nematode Meloidogyne incognita} II Phytopathology. 2003. — Vol.93. — P. 1111−1114.
  157. Ryan A.D., Kinkel L.L. Inoculum density and population dynamics of suppressive and pathogenic Streptomyces strains and theirrelationship to biological control of potato scab // Biological Control. -1997.-Vol.10.-P. 180−186.
  158. Ryan P.R., Delhaize E., Randall P.J. Malate efflux from root apices and tolerance to aluminum are highly correlated in wheat // Australian Journal of Plant Physiology. 1995.-Vol.22.-P. 531−536.
  159. Sallih Z., Bottner P. Effect of wheat (Triticum aestivum) roots on mineralization rates of soil organic matter 11 Biology and Fertility of Soils. -1988.-Vol.7.-P. 67−70.
  160. Sarathchandra S.U., Ghani A., Yeates G.W., Burch G., Cox N.R. Effect of nitrogen and phosphate fertilizers on microbial and nematode diversity in pasture soils // Soil Biology and Biochemistry. 2001. — Vol.33. -P. 953 —964.
  161. Schimel J.P., Jackson L.E., Firestone M.K. Spatial and temporal effects on plant microbial competition for inorganic nitrogen in a California annual grassland // Soil Biology and Biochemistry. 1989. — Vol.21. — P. 1059−1066.
  162. Schnell S., King G.M. Mechanistic analysis of ammonium inhibition of atmospheric methane consumption in forest soils // Appl. Environ. Microbiol. 1994. — Vol. 60. — P. 3514−3521.
  163. Schobert C., Komor E. Amino acids uptake by Ricinus communis roots: characterization and physiological significance // Plant, Cell and Environment. 1987. — Vol.10. — P. 494 -500.
  164. Schutter M.E., Dick R.P. Comparison of Fatty Acid Methyl Ester (FAME) methods for characterizing microbial communities // Soil Sci. Soc. Am. J. -2000.-Vol.64.-P. 1659−1668.
  165. Sharma N., Srivastava L.L. and Mishra B. Studies on microbial changes in soil as a result of continuos application of fertilizes, farmyard manure and lime // J.Indian. Soc. Soil. Sci. 1983. — Vol.31. — P. 202−206.
  166. Shen J., Rengel Z., Tang C., Zhang F. Role of phosphorus nutrition in development of cluster roots and release of carboxylates in soil-grown Lupinus albus // Plant and Soil. 2003. — Vol.248. — P. 199−206.
  167. Shenk Su, Lambein F., Werner D. Broad antifungal activity of beta-isoxazolinonyl-alanine, a nonprotein amino-acid from roots of pea (Pisum sativum L.) seedlings // Biology and Fertility of Soils. 1991. — Vol.11. — P. 203−209.
  168. Siciliano S.D., Germida J.J., Banks K., Greer C.W. Changes in microbial community composition and function during a polyaromatic hydrocarbon phytoremediation field trial // Appl. Environ. Microbiol. -1998. V. 69.-P. 483−489.
  169. Siniakina S.V. and Kuzyakov Y. The 14C tracer study of carbon turnover in soil in a model experiment // Euras. Soil Sci. 2002. — Vol.35. -P. 1287−1295.
  170. Soil carbon sequestration for improved land management / World Soil Resources Reports. Based on the work of Michel Robert. Food and agriculture organization of the United Nations, Rome. 2001. — P. 62.
  171. Sparling G.S., Cheshire M.V., Mundie C.M. Effect of barley plants on the decomposition of 14 C-labelled soil organic matter // Journal of Soil Science. 1982. — Vol.33. — P. 89 -100.
  172. Steingroever E. The relationship between cyanide-resistant root respiration and the storage of sugars in the taproot in Daucus carora L. // Exp. Bot. 1981. — Vol.130. — P. 911 — 919.
  173. Sticher L., Mauch-Mani B, Metraux J.P. Systemic acquired resistance // Annual Review of Phytopathology. 1997. — Vol.35. — P. 235−270.
  174. Sun H.Y., Deng S.P. and Raun W.R. Bacterial Cmmunity Structure and Diversity in a Century-Old Manure Treated Agroecosystem // Appl. Environ. Microbiol. 2004. — Vol.70. — P. 5868−5874.
  175. Swinnen J. Van Veen J.A. Merckx R. 14C pulse-labelling of field-grown spring wheat: an evaluation of its use in rhizosphere carbon budget estimations // Soil Bail. Biochem. 1994. — Vol.26. — P. 121−170.
  176. Tate R.L. Soil microbial diversity research: Whithe to now? // Soil Sci. 1997. — Vol. 162. — P. 605−606.
  177. Sylvia D.M. Fundamentals and applications of arbuscular mycorrhizae: A 'biofertilizer" perspective // Soil Fertility, Biology, and Plant Nutrition Interrelationships. 1999. — P. 705−723.
  178. Sylvia, D.M. Mycorrhizal symbioses. In Principles and Applications of Soil Microbiology. D.M. Sylvia et al. (ed.) Prentice Hall, Upper Saddle River, NJ., 1998. P. 408−426.
  179. Thorn G. The fungi in soil. In: van Elsas J.D., Trevors J.T., Wellington E.M.N. (Eds.). Modern Soil Microbiology. Marcel Dekker, New York, 1997.-P. 63−127.
  180. Tinker PB, Nye P. Solute movement in the rhizosphere. Oxford, UK: Oxford University Press, 2000.
  181. Torsvik V., Daae F.L., Sandaa R.-A., Ovreas L. Review article: novel techniques for analyzing microbial diversity in natural and perturbed environments. // J. Biotechnol. 1998. — Vol.64. — P. 53−62.
  182. Trevors J.T. Bacterial biodiversity in soil with an emphasis on chemically-contaminated soils // Water Air Soil Pollut. 1998. — Vol.101. — P. 45−67.
  183. Venkateswarlu B. and Srinivasarao Ch. Soil Microbial Diversity and the Impact of Agricultural Practices. 2008. http: // www.dzumenvis.nic.in/oct/news.htm
  184. Venkateswarlu B. Assesment of soil biodiversity in rainfed environment as influenced by degradation and restorative processece. Final Report of A.C. Cess Scheme, Central Research Institute for Dryland Agriculture, Hyderbad, 2008. P. 1−96.
  185. Wang JG, Bakken LR. Competition for nitrogen during decomposition of plant residues in soil: Effect of spatial placement of N-rich and N-poor plant residues//Soil Biol, and Biochem. 1997. — Vol.29. — P. 153−162.
  186. Weier K.L. N20 and CH4 consumption in a sugarcane soil after variation in nitrogen and water application // Soil Biol. Biochem. 1998. -Vol.31. — P. 1931−1941.
  187. Whalen S.C., Reeburgh W.S., Sandbeck K.A. Rapid methane oxidation in a landfill cover soil. // Appl. Environ. Microbiol. 1990. -Vol.56.-P. 3405−3411.
  188. Whipps JM. Carbon economy. In: Lynch JM, ed. The rhizosphere. Chichester: Wiley, 1990. P. 59−97.
  189. Whipps J.M. Developments in the biological control of soil-borne plant pathogens // Advances in Botanical Research. 1997. — Vol.26. — P. 129−134.
  190. Whipps J.M. Microbial interactions and biocontrol in the rhizosphere // 2001. J. Exp. Bot. — Vol. 52. — P. 487−511.
  191. Willison T.W., Webster C.P., Goulding K.W.T., Powlson D.S. Methane oxidation in temperate soils effects of land- use and the chemical form of nitrogen-fertilizer // Chemosphere. — 1995. — Vol.89. — P. 245−252.
  192. Wu H., Pratley J., Lemerle D., Haig T. Crop cultivars with allelopathic capability // Weed Research. 1999. — Vol.39. — P. 171−180.
  193. Yagi К., Minami К. Effects of organic matter application on methane emission from Japanese paddy fields, in: Bouwman A.F. (Ed.), Soil and Greenhouse Effect, John Wiley, 1990. P. 467−473.
  194. Zeng R. S, Mallik R. S, Setliff E. Growth stimulation of ectomycorrhizal fungi by root exudates of Brassicaceae plants: role of degraded compounds of indole glucosinolates // Journal of Chemical Ecology. 2003. — Vol.29. — P. 1337−1355.
  195. Helal H.M., Sauerbeck D.R. Effect of plant roots on carbon metabolism of soil microbial biomass // Zeitschriflt fur Pflanzenernahrung undBodenkunde. 1986. — Vol.149.-P. 181−188.
  196. Hu S.J., Van Brugge, A.H.C., Griinwald N.J. Dynamics of bacterial populations in relation to carbon availability in a residue-amended soil // Applied Soil Ecology. 1999. — Vol.13. — P. 21−30.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!