Лабораторная диагностика цистита у кошек и котов.
Для анализа брали мочу, собранную при массаже мочевого пузыря или катетеризации в стерильныечашки Петри. Органолептически определяли цвет и запах. Для оценки прозрачности использовали белыйлист бумаги. Удельный вес, pH, количество лейкоцитов, белка, глюкозы, нитритов, кетонов, билирубина, уробилиногена и эритроцитов в моче определяли с помощью тест полосок Deca Phan Leuco фирмы ErbaLachema s. r. o. (Чехия).
Тест полоску погружали в мочуна 2 секунды, затем извлекали и держали в горизонтальном положении ещё 2 минуты и сопоставляли цветиндикаторных зон. При лабораторном анализе мочи в большинстве случаев выявляли ги-постенурию, протеинурию, увеличение содержания лейкоцитов и небольшую гематурию (в период обострения процесса). Иногда в моче обнаруживались уробилиноген и нитриты. В центрифугате мочи при микроскопии выявлялись большое количество клеток переходного эпителия, многочисленные лейкоциты и умеренное количество эритроцитов (в фазу обострения процесса). Кроме того, обнаруживались кристаллы солей и их конгломераты. Типичный анализ мочи у кошек при цистите представлен на рисунке 32. Примерно у 75% животных с клинической картиной циститу, но без явных клинических признаков уролитиаза, при исследовании мочи обнаруживают активную кристаллурию. Рисунок 31. Кристаллы оксалата кальция в моче.
У кошек явления хронического цистита были выявлены при обнаружении в полости мочевого пузыря в 46,03% случаев ураты, в 39,68% случаев — струвиты и в 20,29% случаев оксалаты. Рисунок 32. Общий анализ мочи у кошек.
В кислой моче (pH мочи 5,0−5,5) выявлялись преимущественно ураты, при pH 5,5−6,6 — оксалаты, а в щелочной моче (pH 7,0−9,0) обнаруживались, как правило, струвиты. Иногда в мазках выявляли клеточные, гиалиновые и зернистые цилиндры. При микроскопии окрашенных по Романовскому-Гимзе мазков из центрифугата мочи выявляли бактериальные клетки разнообразной морфологии. Таблицам 4. Дифференциальная диагностика различных видов цистита.
ИЦКБАКТЕРИАЛЬНЫЙ ЦИСТИТ ЦИСТИТ ВСЛЕДСТВИИ МКБрН 5−68−106,5−8запахнетзапах мочи сильный аммиачный запах мочи сильный специфический Осадок.
Кристаллы не обнаруженыкристаллы, как правило, единичные кристаллы единичные или в большом количестве УЗИ брюшной полости.
В большинстве случаев нормальное состояние мочевого пузыря.
Утолщение стенок мочевого пузырядиффузное незначительное утолщение стенки мочевого пузыря и значительный осадок в его просвете.
Посев мочи.
Роста бактерий нетвыделение бактериальных культур Роста бактерий нет.
Рентгенография брюшной полости.
Камней не выявлено.
Камней не выявленоналичие минерализованной тени овальной формы с четкими краями в области мочеиспускательного канала При клиническом анализе крови отмечали незначительный эритроцитоз (содержание эритроцитов превышало норму в 1,04 раз у кошек), некоторое повышение содержания гемоглобина (в 1,02 раза у кошек), незначительный лейкоцитоз (общее содержание лейкоцитов превышало норму (в 1,31 раз у кошек соответственно) с нейтрофильным регенеративным. При анализе лейкограмм выявляли небольшую базопению и лимфоцитоз. При биохимическом анализе крови выявляли гипопротеинемию (содержание общего белка было ниже показателей нормы в 1,22 раза у кошек), увеличение содержания креатинина в 1,33 раза у кошек, мочевой кислоты в 1,46 раз, фосфора в 1,04 раза и магния в 1,15 раз и снижение содержания кальция в 1,10 раз у кошек соответственно. Результаты исследований на третьем этапе, когдабыли оценены субклинические проявления цистита, приведены в таблице. Исследование морфо-физиологических показателей крови не выявило каких-либо особенностей. Как правило, все показатели были в пределах физиологической нормы для данного вида и возраста животных. Таблица 5. Основные показатели биохимического анализа крови.
Основные проявления цистита на субклиническом уровне.
Наименование биохимического показателя сыворотки крови.
Нормальные значения показателя.
Значения показателей у кошек с циститом.
Число животных с повышенным показателем, гол (%)АсАТ, Ед/л12−4542−2155.
АлАТ, Ед/л18−6056−5938.
Холестерин, моль/л1,9−3,92,9−8,913Мочевая кислота, моль/лДо 6044−1223.
Глюкоза натощак, моль/л3,3−6,84,7−9,12Триглицериды, моль/л0,38−1,10,98−7,411Полученные числовые значения были обработаны с помощью программы Exel. Результаты исследований клинического анализа мочи. У кошек больных циститом цвет урины варьировал от соломенно-желтого 15 (22%), до розового 6 (10%), красного 33 (55%) и темно-бурого 6 (10%). Рисунок 33. Цвет мочи.
По прозрачности моча былапреимущественно мутной 54 (90%) и значительно режепрозрачной 6 (10%). Рисунок 34. Прозрачность мочи.
Обладала слабым запахом 26 (44%), резким запахом крови 27 (45%), или резким специфическим запахом 7 (11%).Рисунок 35. Запах мочи.
При исследовании мочи больных кошек с применением тест полосок были получены следующие результаты:
У животных опытной группы наблюдалосьдостоверное повышение количества лейкоцитов — прицистите (500,00 лейкоцитов на 1 мкл мочи), что указывает на развитие острого и хронического воспалительного процесса в мочевыводящих путях. Водородныйпоказательпри цистите составил 6,44.Незначительно содержание белка в моче увеличивалосьпри цистите (0,96 г/л). Выраженная протеинурия чаще всего говорито повреждении и нарушении барьерной функции фильтра почечных клубочков. Кетоны не обнаруживались в урине как здоровых кошек, так и животных изопытных групп. Уробилиноген достоверно повышалсяв моче при цистите (7,56 мкмоль/л).Билирубин при цистите обнаруживался у 33,3% животных. Присутствие в моче желчныхпигментов говорит о вовлечении печени и желчных путей в патологический процесс. Достоверная гематуриярегистрировалась у кошек с циститом — 166,70 эритроцитов на 1 мклмочи. Таблица 6. Средние показатели мочи у кошек в норме и с заболеваниями мочевыделительной системы№ п/пПоказатель мочи.
Здоровые кошки.
Кошки с циститом1Лейкоциты (на 1 мкл мочи)-500,002pH5,96,443Белок, г/л-0,964Глюкоза, ммоль/л—5Кетоны, ммоль/л—6Уробилиноген, мкмоль/л-7,567Эритроциты (на 1 мкл мочи)-166,70Удельный вес мочи здоровых и больных циститом кошек колебался в пределах 1,015 — 1,030 г/мл. Относительная плотностьурины при нарушении фильтрационной способностипочек может не снижаться за счёт протеинурии и глюкозурии. Нитриты отсутствовали в моче здоровых кошек. При цистите обнаруживались в 16,7% случаев. Положительнаяреакция на нитриты говорит о возможном инфицировании мочевыводящих путей. Эффективные схемы медикаментозной терапии в зависимости от вида цистита.
Первая группа (БАКТЕРИАЛЬНЫЙ ЦИСТИТ) Цели лечения:
Снизить тяжесть и продолжительность клинических признаков в течение острых периодов бактериального цистита. Увеличить интервалы между рецидивами. Лечение:
Противомикробные препараты. Сульфаниламиды резорбтивного действия препараты короткого действия. Уросульфан назачали в дозировке 1 г 3 раза в сутки четыре дня подряд. Антибактериальное средство широкого спектра действия — байтрил 2,5% -0,2мл/кг подкожно -5дней.Гомеопатическое средство, которое оказывает спазмолитическое, мочегонное и противовоспалительное действие — кантарен (табл.)-1тх3р в день-14 дней. Фитопрепарат — цистон-0,5тх2р в день — 7дней. Вторая группа (ИДИОПАТИЧЕСКИЙ ЦИСТИТ) Несмотря на многолетние исследования, истинная причина ИЦК остается неизвестной, что затрудняет выбор стратегии лечения. Цели лечения:
Снизить тяжесть и продолжительность клинических признаков в течение острых периодов идиопатического цистита. Увеличить интервалы между рецидивами. Лечение:
Обезболивающие и противовоспалительные препараты
— поскольку цистит проявляется весьма болезненно, часто назначаются обезболивающие и противовоспалительные препараты. В качестве обезболивающего средства назначали ацетилсалициловую кислоту 10мг/кг.В качестве противовоспалительного препарата использовали дексаметазон (дексазон). Дексаметазон — синтетический глюкокортикоид — по действию на организм близок к другим глюкокортикостероидам, но более активен, оказывает сильное противовоспалительное и антиаллергической действие. По эффективности 0,5 мг дексаметазона соответсвует примерно 3,5 мг преднизолона, 15 мг гидрокортизона или 17,5 мг кортизона. Следовательно, он в 7 раз активнее преднизолона и в 35 раз — кортизона. Дозировка была: внутрь 0,25 мг 2 раза в сутки 3 дня. Антидеприссант — для лечения тревоги — амитриптилин (элавил). Общая Начинали лечение с минимальной дозировки начальная доза 1,7 мг/кг два раз в день и увеличивали ее каждые две недели до максимальной 4 мг/кг. Прием препарата месяц.
Всем хозяевам животных рекомендовалось обильное питье для своих питомцев. Обильное питье — цель повышения объема потребления воды состоит в получении менее концентрированной мочи для снижения раздражающего действия на стенки мочевого пузыря. Изменение окружающей обстановки — помогает снизить тревожность кошек и убирает причины возникновения стресса. Лоток — поддержание лотка в максимально чистом состоянии. Все, что может помешать использованию лотка, будет способствовать задержке мочи. Это, в свою очередь, может привести к повышенной стимуляции сенсорных волокон внутри мочевого пузыря составляющими мочи. Добавление гликозаминогликана
— помогает восстановить слой защитный слой на уротелии мочевого пузыря, который поврежден у кошек с циститом. Цистофан — 2 капсулы ежедневно в качестве начального курса в течение 2 недель, затем по 1 капсуле каждый день в течение месяца. Коррекции рациона (использование консервированных кормов вместо сухих и стимуляция потребления воды) Третья группа (ЦИСТИТ ВСЛЕДСТВИИ МКБ) Характеризуется наличием камней в мочевыделительном канале, которые затрудняют выделение мочи. В большинстве случаев присоединяется бактериальная инфекция. Цели лечения:
Извлечь камни из мочевыделительного канала, борьба с инфекцией. Лечение:
Ретроградное промывание мочевыводящих путей водой под давлением с последующей цистотомией. Из мочевого пузыря извлекают камни. Обезболивающие препараты.
Противовоспалительные препараты — НПВС, бупренорфин. Антибиотикотерапия — цефалексин. Обязательно в курс лечения входила диетотерапия. Отказ от сухих кормов. Питание рекомендовалось малыми порциями, полноценное. Результаты проведенного лечения по данным общего клинического анализа мочи.
При оценке органолептических свойств мочи было выявлено, что у пролеченных кошек она в 100% случаев имела соломенно-желтый цвет, была прозрачной, с нерезким специфическим запахом. Среднее значение pH мочи составляло5,9 ± 0,10. Реакция тест полосок на лейкоциты, нитриты, белок, глюкозу, кетоны, уробилиноген, билирубин и кровь была отрицательной.
Заключение
по главе III. При цистите моча у исследуемых кошек былакрасного цвета (56%), практически всегда мутная (89%), с резким запахом крови (44%), или почти без запаха (44%). Была выявлена достоверная лейкоцитурия (500,00 ± 0,00 лейкоцитов на 1 мкл мочи) и гематурия (166,70 ± 41,67 эритроцитов на 1 мкл мочи), а такжепоявление уробилиногена (7,56 ± 2,99 мкмоль/л) вмоче (р<0,05). Билирубин (+) обнаруживался у 33,3%кошек. Удельный вес урины составлял 1,015 — 1,030г/мл, pH 6,44 ± 0,29, а нитриты обнаруживались в 16,7% случаев. Кетоны не выявлялись в моче ни у здоровых, ни у больных кошек. У всех животных после проведенного курса консервативной терапии в зависимости от этиологии циститаотмечалась положительная клинико-лабораторная динамика. Глава IV. Обсуждение результатов.
Таким образом, кошки с циститом, исследованные в клиниках г. Санкт-Петербург, составили 6−8% от общего числа патологий заразной и незаразной этиологии. Среди патологий мочевыделительной системы наиболее часто у кошек диагностировали уролитиаз (40%) и цистит (38%). Основныепричины возникновения цистита у кошек, по данным анамнеза, — высококалорийное питание, избыточное побелку и жирам, малоподвижный образ жизни в условиях города. Предрасполагающие факторы — мужской пол, стерилизация, возраст животных (старше 4 лет). Наиболее подвержены заболеванию были помесные породы, что согласуется с данными, приведенными в зарубежных источниках. Диагностика и дифференциальная диагностика заболеваний мочевого пузыря проводились специалистами ветеринарных клиник на основании клинических, гематологических, биохимических исследований сыворотки крови и мочи и при необходимости дополнялись ультразвуковым исследованием (УЗИ) органов брюшной полости и почек. При цистите моча у исследуемых кошек былакрасного цвета (56%), практически всегда мутная (89%), с резким запахом крови (44%), или почти без запаха (44%). Была выявлена достоверная лейкоцитурия (500,00 ± 0,00 лейкоцитов на 1 мкл мочи) и гематурия (166,70 ± 41,67 эритроцитов на 1 мкл мочи), а такжепоявление уробилиногена (7,56 ± 2,99 мкмоль/л) вмоче (р<0,05). Билирубин (+) обнаруживался у 33,3%кошек. Удельный вес урины составлял 1,015 — 1,030г/мл, pH 6,44 ± 0,29, а нитриты обнаруживались в 16,7% случаев. Кетоны не выявлялись в моче ни у здоровых, ни у больных кошек. После проведенного лечения животных во всех группах по данным клинического анализа мочи выявлено, что у пролеченных кошек она в 100% случаев имела соломенно-желтый цвет, была прозрачной, с нерезким специфическим запахом. Среднее значение pH мочи составляло5,9 ± 0,10. Реакция тест полосок на лейкоциты, нитриты, белок, глюкозу, кетоны, уробилиноген, билирубин и кровь была отрицательной.
Заключение
.
По данным исследования интерстициальный цистит является распространенным заболеванием мочевыделительной системы кошек, составляя от общего числа циститов 90%.Несбалансированное питание наряду с полом (мужской), возрастом животных, малоподвижный образ жизни, беспородность являются основные причинами возникновения цистита у кошек. Выявление этиопатогенетических причин возникновения цистита у кошек с последующим проведением соответствующей адекватной терапии ведет к выздоровлению с нормализацией клинико-лабораторному показателей (по результатам клинического анализа мочи).Списоклитературы.
Виноградова О. Ю. Клинико-морфологические изменения при хронической почечной недостаточности кошек и методы коррекции: автореф. дис. … канд.
вет. наук / Саратовский государственный аграрный университет им. Н. И. Вавилова. Саратов, 2012. 23 с. Громова О. В.
Ранняя диагностика, лечение и профилактика уролитиаза кошек: автореф. дис. … канд. вет. наук / Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К. И.
Скрябина. М., 2003. 6 с. Громова О. В., Челночников Д. Ю. Ранняя диагностика мочекаменной болезни у кошек и собак // Российский ветеринарный журнал. 2005.
№ 2. С. 15−16.Демкин В. В. Гемотропные микоплазмозы (гемоплазмы, гемобартонеллы) кошек и собак // Российский ветеринарный журнал. Мелкие домашние и дикие животные. — 2014. — №.
4. — С. 23−28.Динченко О. И. Особенности уролитиаза собак и кошек в условиях мегаполиса: распространение, этиология, патогенез, диагностика и терапия: автореф. дис. … канд. вет. наук / Российский университет дружбы народов. М., 2005. 20 с. Ермолаева А.
В. Морфологические и функциональные показатели у котов при уролитиазе: автореф. дис. … канд. биол. наук / Ставропольский государственный аграрный университет. Ставрополь, 2005. 24 с. Кайдановская Н.
А. Морфосонографические корреляты почек у кошек в норме и при патологии: автореф. дис. … канд. биол. наук / Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К. И. Скрябина. М., 2009.
20 с. Козлов Е. М. Заболевание нижних отделов мочевыводящих путей у кошек // Вестник ветеринарной медицины. 2002. № 1. С.
15−16.Колмыкова О. В. Клинико-морфологическая характеристика вторичной ретинопатии при хронической почечной недостаточности у кошек: автореф. дис. … канд. вет. наук / Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им.
К. И. Скрябина. М., 2008. 17 с. Комарова Т. А. Совершенствование методики доплерографического исследования ренальной гемодинамики у кошек: автореф.
дис. … канд. вет. наук / Северо-Кавказский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт Российской академии сельскохозяйственных наук. Ростов-на-Дону, 2011. 22 с. Кротенок А.
В. Уролитиаз у кошек и меры борьбы с ним: автореф. дис. … канд. вет. наук / Воронежский государственный университет им. К. Д. Глинки.
Воронеж, 2003. 10 с. Леонард Р. А. Гломерулонефриты кошек: современные методы диагностики, лечения и профилактики. Клинико-морфологическое исследование. Челябинск, 2010. 77 с. Летов И.
И. Рентгенодиагностика мочеполовой системы мелких домашних животных: автореф. дис. … канд. вет. наук / Ставропольский государственный аграрный университет. Воронеж, 2005. 24 с. Лефевр С. Клинические проявления хронической болезни почек у кошек и собак // Veterinary Focus. 2013.
№ 23.
3. C. 26−27.Мелешков С. Ф. Морфофункциональные особенности органов мочеотделения у домашних котов в норме и при различных формах мочекаменной болезни: автореф. дис. … д-ра вет. наук / Омский государственный аграрный универсистет. Омск, 2010. 40 с. Некрасова И.
И. Активность ферментов почек кошек в постнатальном онтогенезе // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н. Э. Баумана. 2010. Т.
201. С. 291−295.Некрасова И. И. Морфометрические показатели некоторых органов мочевыделительной системы кошек // Научное обеспечение инновационного развития животноводства: сб. науч. тр. по материалам Междунар.
науч.
практ. конф., посвященной 60-летию ректора ФГОУ ВПО Ижевской ГСХА, доктора сельскохозяйственных наук, профессора А. И. Любимова / Ижевская государственная сельскохозяйственная академия. Ижевск, 2010. С.
335−337.Некрасова И. И. Морфометрические показатели почек кошек // Морфология. 2009. Т.
136, № 4. С.105−106.Некрасова И. И., Квочко А. А. Динамика массы почек кошек в раннем онтогенезе // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний сельскохозяйственных животных: сб. науч. тр. по материалам 71-й науч.
практ. конф. (Ставрополь, 17−19 апреля 2007) / СтГАУ. Ставрополь, 2007.
Нефрология и урология собак и кошек / Под ред. Д. Байнбриджа и Д. Эллиота. — М.: Аквариум, 2003. ;
272 с. Рей С. М. Наследственные и врождённые заболевания почек у кошек // Veterinary Focus. 2013. № 23.
3. C. 10−16.Романова В. Е. Дизрегуляционная патология при хронической почечной недостаточности у собак и кошек: автореф.
дис. … канд. биол. наук / Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К. И. Скрябина.М., 2011. 19 с. Самородова Н. М. Диагностика и фармакокоррекция уролитиаза плотоядных животных: учебное пособие. ;
СПб.: Лань, 2009. — 320 с. Складнева Е. Ю. Морфофункциональные особенности лимфатического русла мочевого пузыря домашних плотоядных в постнатальном онтогенезе, при уролитиазе и лимфотропной коррекции: автореф. дис. … д-ра вет. наук /.
Хакасский государственный университет им. Н. Ф. Катанова. Красноярск, 2012. 48 с. Слесаренко Н.
А., Кайдановская Н. А. Особенности строения почек новорождённых котят по данным ультразвукового и морфологического исследований // Российский ветеринарный журнал. 2006. № 2. С.
22−25.Соболев В. Е., Жданов С. И. Гликозаминогликаны в комплексной терапии цистита различной этиологии // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии, 2010.
Тимченко Л. Д., Квочко А. Н. Ультразвуковая диагностика уролитиаза у кошек и собак // Животноводство на европейском севере: фундаментальные проблемы и перспективы развития. М. 1996.
С. 201−202.Фарафонтова В. С. Лечение хронической почечной недостаточности у собак и кошек: автореф. дис. … канд. вет. Наук / Санкт-Петербургская государственная академия ветеринарной медицины.
Санкт-Петербург, 2011. 19 с. Швейгхаузер А., Франсе Т. Распространение болезней почек у кошек // Ветеринария. — 2011. — №.
5. — С. 45−46.An epidemiological survey of the feline urological syndrome / Walker A. D., W eaver A. D., A.
nderson R. S. et al. // J ournal of Small Animal Practice. 1977. № 18.
P. 283−301.Bufffington C.A.T. Idiopatic cystitis in domestic cats — beyond the lower urinary tract // J. V et. I ntern. M ed., 2011; 25: 784—796.BuffingtonT.
Заболевания мочевыводящих путей у кошек и стерильный цистит // WalthamFocus. 2013. № 3. Т. 13. С.
21−22.Larson J., Kruger J.M., Wise A.G., Kaneene J.B., Miller R., Fitzgerald S.D., Kiupel M., Maes R.K. Nested Case-Control Study of Feline Calicivirus Viruria, Oral Carriage, and Serum Neutralizing Antibodies in Cats with Idiopathic Cystitis // J. V et. I ntern. M.
ed., 2011; 25 (2): 199—205.Lawler D. F., S jolind W., Collins J. E. I ncidence rates of feline lower urinary tract disease in the United States // Feline Practice. 1985.
№ 15. P. 13−16.Lemberger S. I, Dorsch R, Hauck S.M., Amann B., Hirmer S., Hartmann K., Deeg C.A. Decrease of Trefoil factor 2 in cats with feline idiopathic cystitis // B.J.U. Int., 2011; 107 (4): 670—677.Stella J.L., Lord L.K., Buffington C.A.T. Sickness behaviors in response to unusual external events in healthy cats and cats with feline interstitial cystitis // J. A.
m. V et. M ed. A.
ssoc, 2011; 238 (1): 67—73.Stevenson A. Идентификация кристаллов и уролитов в моче. ПамяткаотWaltham // WalthamFocus. 2013. №.
3. Т. 13. С. 28−29.Weissova T., Northworthy G. F.
eline idiopatic cystitis. in: The feline patient. —E d.: Wiley-Blackwell, 2011. Westropp J.L., Buffington C.A.T. Lower urinary tract disorders in cats / Ettinger S.J., Feldman E.C., et. al. // T extbook of Vet Intern Med.
— S t. L oius, M: Elsevier-Saunders, 2010. Wu C.H, Buffington C. A, Fraser M. O, Westropp J.L. Urodynamic evaluation of female cats with idiopathic cystitis // Am. J. V et.
Res., 2011; Apr; 72 (4): 578—582.Приложение.
Правила приема таблеток у кошек.
