Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Электрохимические холинэстеразные сенсоры на основе модифицированных углеродных электродов

Диссертация: Электрохимические холинэстеразные сенсоры на основе модифицированных углеродных электродов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Это открывает возможности создания интегрированных аналитических систем, способных осуществлять функции непрерывного или периодического контроля в автономном режиме. Немаловажно, что большинство химических сенсоров чрезвычайно просты в использовании и могут найти самое широкое применение в повседневной жизни (контроль качества пищевых продуктов, загрязнения почв и питьевой воды, биохимические… Читать ещё >

Электрохимические холинэстеразные сенсоры на основе модифицированных углеродных электродов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ
  • 2. ПРИМЕНЕНИЕ МОДИФИКАТОРОВ В СОЗДАНИИ БИОСЕНСОРОВ НА ОСНОВЕ ГРАФИТОВЫХ ЭЛЕКТРОДОВ (Литературный обзор)
    • 2. 1. Общая характеристика углеродных электродных материалов и электродов на их основе
    • 2. 2. Модификация печатных электродов медиаторами электронного переноса
    • 2. 3. Иммобилизация фермента на графитовых электродах
    • 2. 4. Другие способы модификации
  • 3. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
    • 3. 1. Материалы и реагенты
    • 3. 2. Приборы и оборудование
    • 3. 3. Методы исследования
      • 3. 3. 1. Изготовление и модификация электродов
      • 3. 3. 2. Иммобилизация ферментов
      • 3. 3. 3. Потенциометрические биосенсоры
      • 3. 3. 4. Амперометрические биосенсоры
      • 3. 3. 5. Измерение содержания пестицидов — ингибиторов ХЭ и обратимых эффекторов фермента
  • 4. ВЛИЯНИЕ МОДИФИКАТОРА НА ОПЕРАЦИОННЫЕ ХАРАКТЕРИСТИКИ ЭЛЕКТРОХИМИЧЕСКИХ ХОЛИНЭСТЕРАЗНЫХ СЕНСОРОВ
    • 4. 1. Потенциометрические и амперометрические холинэстеразные сенсоры на основе иемодифицированных преобразователей
      • 4. 1. 1. Потенциометрические сенсоры на основе сурьмяных электродов
      • 4. 1. 2. Амперометрические сенсоры на основе планарных графитовых электродов
    • 4. 2. Холинэстеразные потенциометрические сенсоры, модифицированные полианилином
    • 4. 3. Модификация преобразователей каликсаренами и салщилальдиминме-такрилатами
    • 4. 4. Использование берлинской лазури в составе биферментного сенсора
  • 5. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА БИОСЕНСОРОВ В ОПРЕДЕЛЕНИИ ОСТАТОЧНЫХ КОЛИЧЕСТВ ФОСФОРОРГАНИЧЕСКИХ И КАРБАМИНАТ-НЫХ ПЕСТИЦИДОВ
    • 5. 1. Сравнительная характеристика влияния различных факторов на чувствительность определения пестицидов с помощью холинэстеразных биосенсоров
    • 5. 2. Применение холинэстеразных сенсоров для контроля остаточного содержания пестицидов в виноградном соке
  • 6. ВЫВОДЫ
  • СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ БИБЛИОГРАФИЧЕСКИХ ИСТОЧНИКОВ

СПИСОК УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ И СОКРАЩЕНИЙ АХИ — ацетилхолин иодид АХХ — ацетилхолин хлорид АТХИ — ацетилтиохолин иодид- АТХХ — ацетилтиохолин хлорид АХЭ — ацетилхолинэстераза БТХИ — бутирилтиохолин иодид БТХХ — бутирилтиохолин хлорид БХИ — бутирилхолин иодид БуХЭ — бутирилхолинэстераза- ХЭ — холинэстераза

Стт — предел обнаружения, М или мг/л- С1 — концентрация ингибитора, М или мг/л- I — ингибитор-

I, % - степень ингибирования фермента- г — коэффициент регрессии- Б — субстрат ферментативной реакции.

Актуальность работы. Создание высокочувствительных сенсоров, способных быстро и надежно регистрировать присутствие биологически активных соединений в объектах аналитического контроля, является одним из приоритетных направлений развития современной аналитической химии [1−3]. Не подменяя существующие методы физико-химического анализа (хроматомасс-спектрометрия, высокоэффективная жидкостная хроматография, спектральные методы), химические и биохимические сенсоры позволяют получить предварительную информацию о качественном и количественном составе среды при минимальной пробоподготовке, а в ряде случаев — по месту пробоотбора.

Это открывает возможности создания интегрированных аналитических систем, способных осуществлять функции непрерывного или периодического контроля в автономном режиме. Немаловажно, что большинство химических сенсоров чрезвычайно просты в использовании и могут найти самое широкое применение в повседневной жизни (контроль качества пищевых продуктов, загрязнения почв и питьевой воды, биохимические тесты и др.). Создание и практическое использование высокоселективных и чувствительных сенсоров, таким образом, существенно расширяет сферу применения химического анализа и может рассматриваться как один из универсальных подходов к улучшению качества среды обитания человека.

Не случайно даже в развитых индустриальных странах разработке новых селективных сенсоров уделяется первостепенное внимание, а производство сосредоточено в руках крупнейших кампаний, производящих аналитическое оборудование (BioAnalytical Systems, Metrohm, EkoTech и др.).

Использование биологических компонентов в составе сенсоров — один го эффективных приемов повышения селективности и чувствительности определения биологически активных соединений. Это достигается благодаря высокой специфичности биохими6 ческого распознавания, протекающего непосредственно на поверхности сенсора и сочетающегося с высокой чувствительностью регистрации продуктов этого взаимодействия.

Соответствующие специализированные аналитические устройства — биосенсорынаходят практическое применение в клиническом анализе, экоаналитическом контроле, биотехнологии, анализе генетического материала и т. д. [4,5]. Несмотря на то, что биосенсоры составляют лишь 2% мирового рынка химических сенсоров, их доля постоянно возрастает, а в некоторых секторах (ДНК-сенсоры) — может стать определяющей. Дальнейший прогресс в области биосенсорики требует, прежде всего, улучшения операционных характеристик биосенсоров — стабильности биологического компонента, упрощения процедуры регистрации сигнала и его интерпретации, исключения мешающего влияния макрокомпонентов пробы и т. д. [6].

Если селективность биохимического распознавания определяется в основном биологическим компонентом, то характеристики регистрации этого распознавания зависят, прежде всего, от способа включения биологического компонента в состав биосенсора, т. е. совокупностью факторов, определяющих контакт преобразователя и биокомпонента и способ регистрации сигнала. Использование современных «интеллектуальных» материалов с регулируемыми свойствами в перспективе позволит существенно расширить аналитических возможности биосенсоров, далеко выйдя за пределы, установленные природой [7].

Углеродные материалы как нельзя лучше подходят для направленной модификации свойств биосенсоров и улучшения их операционных и аналитических характеристик. Благодаря разнообразию электрохимических и механических свойств, легкости включения дополнительных компонентов, технологичности формирования электродов различного размера и конфигурации углеродные материалы и композиции на их основе — идеальный материал для создания биосенсоров нового поколения.

Однако для реализации этих преимуществ требуются исследования, направленные на поиск оптимальных сочетаний модификаторов и биологических компонентов, на ус7 тановление механизма влияния тех или иных модификаторов на характеристики биосенсора.

Включение в состав биосенсора холинэстеразы связано с широкой изученностью данного фермента, в том числе в составе биосенсоров, что позволяет надежно выделить вклад модификатора в поведение биосенсора. Кроме того, холинэстераза дает возможность оценки влияния модификаторов на определение и субстратов ферментов, и их эффекторов — фосфорорганических и карбаминатных пестицидов, относящихся к необратимым ингибиторам холинэстеразы.

Целью настоящей работы явилось создание и широкая сравнительная характеристика электрохимических холинэстеразных сенсоров на основе модифицированных углеродных электродов с целью установления влияния модификатора на регистрируемый сигнал, операционные и аналитических характеристики биосенсоров и возможности их практического использования в анализе реальных объектов экоаналитического контроля.

Для достижения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

— разработать новые методы модификации графитовых и стеклоуглеродных электродов производными каликсаренов и различными полимерными материалами и использовать полученные преобразователи для иммобилизации холинэстераз из различных источников;

— изучить влияние модификаторов (полианилин, тетрацианохинодиметан, берлинская лазурь, 1,3-дизамещенные каликс[4]арены и салицилальдиминметакрилат) на условия регистрации сигнала в потенциометрическом и амперомехрическом режимах в стационарных и проточно-инжекционных условиях;

— установить механизм влияния модификаторов на аналитические характеристики определения субстратов и ингибиторов холинэстераз- 8 дать сравнительную характеристику разработанных холинэстеразных сенсоров в определении фосфорорганических и карбаминатных пестицидов в модельных водных растворах и виноградном соке.

Научная новизна работы заключаются в том, что: предложен новый тип модификаторов электрохимических преобразователей (производные каликс[4]аренов, салицилальдиминметакрилат), позволяющий улучшить характеристики определения субстратов холинэстераз за счет селективного сорбционного накопления тиохолина — продукта ферментативной реакции — на поверхности сенсорапоказана возможность использования биосенсоров для высокочувствительной регистрации соединений, образующих комплексы типа гость-хозяин с участием 1,3-дизамещенных каликс[4]аренов, иммобилизованных на поверхности преобразователейпредложено использовать асимметрических ферментсодержащих мембран с белковым поверхностным слоем для повышения чувствительности определения фосфорорганических пестицидов — ингибиторов холинэстераз и установлен механизм влияния покровного слоя на поведение биосенсоровразработаны высокочувствительные потенциометрические сенсоры на основе углеродных электродов, модифицированных полианилином, отличающиеся супернернстовским наклоном электродной функции и улучшенными аналитическими характеристиками определения субстратов и ингибиторов холинэстераз.

Практическая значимость работы состоит в том, что: разработаны простые и удобные в использовании методы поверхностной модификации печатных графитовых и стеклоуглеродных электродов для создания холинэстеразных потенциометрических и амперометрических сенсоров с улучшенными характеристикамипредложены методики высокочувствительного определения органических кислот и следовых количеств металлов с помощью холинэстеразных сенсоров, модифицированных каликсаренамиразработаны высокочувствительные способы определения остаточных количеств фос-форорганических и карбаминатных пестицидов в виноградном соке без дополнительного концентрирования или предварительного отделения мешающих компонентов пробыпредложены простые и удобные в эксплуатации проточные ячейки и системы проточно-инжекционного определения субстратов и ингибиторов холинэстераз с планарными графитовыми электродами в качестве преобразователя сигнала.

На защиту выносятся: результаты исследования влияния 1,3-дизамещенных каликсаренов и М-алкокси-фенилсалицилальдимин метакрилата на сигнал амперометрического холинэстеразного сенсора и вывод о сорбционном механизме формирования сигнала, связанном с накоплением тиохолина на поверхности электродасравнительное изучение поведения биосенсоров, отличающихся по условиям иммобилизации фермента и регистрации сигнала, и вывод о превалирующем влиянии распределения компонентов на границе мембрана-раствор на аналитические характеристики определения субстратов и ингибиторов ферментасоздание высокочувствительного потенциометрического сенсора на основе планарно-го графитового или стеклоуглеродного электрода, модифицированного полианилином, и холинэстеразы, иммобилизованной в парах глутарового альдегидаопределение рабочих условий пробоподготовки и количественная оценка влияния макрокомпонентов виноградного сока на сигнал амперометрических и потенциомет-рических холинэстеразных сенсоров и вывод о возможности прямого определения остаточных количеств пестицидов в виноградном соке на уровне установленных международных норм ЕС.

Апробация работы. Результаты исследований докладывались на Итоговой научной конференции Казанского государственного университета (2002 г.), Всероссийских конференциях «Экоаналитика-98. Анализ объектов окружающей среды» (Краснодар, 1998), «Актуальные проблемы аналитической химии» (Москва, 2002 г.), Международном конгрессе по аналитической химии (Москва, 1997), 7 Международной конференции по электроанализу ESEAC'98 (Коимбра, Португалия, 1998), 3 Семинаре INCO-Copernicus «Биосенсоры для прямого определения загрязнения окружающей среды в полевых условиях» (Коимбра, Португалия, 1998), И Российско-японском симпозиуме по аналитической химии (Москва, 2000 г.), 16 Международном симпозиуме по биоэлектрохимии (Братислава, Словакия, 2000), 7 Международном симпозиуме по кинетическим методам анализа (Бухарест, Румыния, 2001), 6 Азиатской конференции по аналитической химии ASIANALYSIS 6 (Токио, Япония, 2001), 12 Международной конференции по аналитической химии EUROANALYSIS 12 (Дортмунд, Германия, 2002), Международной конференции по электрохимическим сенсорам (Матрафюред, Венгрия, 2002).

Основные результаты изложены в 7 статьях и 11 тезисах докладов.

Структура и объем диссертации

Диссертационная работа изложена на 145 страницах машинописного текста, включает 43 рисунка и 9 таблиц. Состоит из введения, 4 глав, выводов и списка использованных библиографических источников, включающего 185 ссылок на отечественные и зарубежные работы.

1. Найдено, что использование новых модификаторов углеродных электродов (полиани лин, замещенные калике[4]арены, салицилальдиминметакрилаты, берлинская лазурь) по зволяет в широких пределах и направленно варьировать операционные и аналитических характеристики холинэстеразных сенсоров, расширяет круг определяемых соединений и снижает влияние матрицы на определение фосфорорганических и карбаминатных пести цидов в растительном материале. Разработанные биосенсоры отличаются повышенной стабильностью сигнала (время жизни до 6 месяцев в сухих условиях) и чувствительно стью к субстратам и ингибиторам холинэстераз.2. 1,3-Дизамещенные каликсарены и замещенные салицилальдиминметакрилаты обеспе чивают сорбционное накопление продукта ферментативной реакции — тиохолина — на по верхности электрохимического преобразователя. Это позволяет снизить потенциал изме рения сигнала, повысить чувствительность определения субстрата, а также предложить новые способы определения щавелевой кислоты и ионов металлов, участвующих в обра зовании комплексов «гость-хозяин», в микромолярном диапазоне концентраций.3. Использование полианилина, допированного камфорсульфоновой кислотой, позволило создать потенциометрический холинэстеразный сенсор, отличающийся высокой чувстви тельностью к субстратам и ингибиторам холинэстеразы в сочетании с пониженной чувст вительностью к буферной емкости и рН среды.4. Сравнительная характеристика холинэстеразных сенсоров, отличающихся по способу регистрации сигнала, природе модификатора, удельной активности и источнику фермента, показала, что определяющее влияние на аналитические характеристики определения пес тицидов оказывают процессы переноса вещества через границу мембрана-раствор.5. Применение асимметричных мембран с поверхностным слоем инертного белка и про точно-инжекционный режим измерения позволяют повысить селективность определения гидрофобных пестицидов в присутствии других эффекторов фермента.6. Созданные потенциометрические и амперометрические сенсоры в найденных рабочих условиях пробоподготовки и ингибирования позволяют проводить определение фосфо рорганических и карбаминатных пестицидов в водных растворах на уровне пх (10-^-10−5) М и до 5 мкг/л — в виноградном соке без предварительного разделения или концентрирова ния.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.А. Химический анализ без лаборатории: тест-методы.// Вестник РАН. 1997.Т.67.№ 6. 508−513.
  2. Kutner W., Wang J., L’her М., Buck R.B. Analytical aspects of chemically modified electrodes: classification, critical evaluation and recommendations.// Pure Appl. Chem. 1998. V.70. P.1301−1318.
  3. Czaban J.D. Electrochemical sensors in analytical chemistry: yesterday today tomorrow.//Anal.Chem. 1985. V.57. P.345A-356A.
  4. Dennison M.J., Turner A.P.F. Biosensors for environmental monitoring.// Biotech.Adv. 1995.V.13.P.1−12.
  5. Vo-Dinh Т., Cullum B.M., Stokes D.L. Nanosensors and biochips: frontiers in biomoleculardiagnostics.// Sensors Actuators B. 2001. V.74. P.2−11.
  6. Katakis I., Dominguez E. Characterization and stabilization of enzyme biosensors.// Trends inAnal.Chem. 1995. V.14. P.310−319.
  7. Maciver M.A., Nelson M.E. Towards a biorobotic electrosensory system.// AutonomousRobots. 2001. V. l l. P.263−266.
  8. В.Й., Ясайтис Ю. Ю., Кулис Ю. Ю. Амперометрические ферментные электродына основе углеродистых материалов./ ВИНИТИ. Вильнюс, 1984. 31 с.
  9. Pesin L.A. Structure and properties of glass-like carbon.// J.Mater.Ssci. 2002. V.37. P. l — 28.
  10. Cui G., Yoo J.-H., Lee J.-S., Yoo J., Uhm J.-H., Cha G.-S., Nam H. Effect of pre-treatmenton surface and electrochemical properties of screen-printed carbon paste electrodes.// Analyst. 2001.V.126.P.1399−1403
  11. Koncki R., Glab S., Dziwulska J., Palchetti I., Mascini M. Disposable strip potentiometricelectrodes with solvent-polymeric ionselective membranes fabricated using screen-printing technology.//Anal.Chim.Acta. 1999. V.385. P.451−459.
  12. Gang Cui, Jae Hyun Yoo, Joung Su Lee, Jina Yoo, Jung Нее Uhm, Geun Sig Cha, Hakhyun Nam. Effect of pre-treatment on the surface and electrochemical properties of screenprinted carbon paste electrodes.// Analyst. 2001. V.126. P.1399−1403.
  13. Wang J., Tian В., Nascimento V.B., Angnes L. Performance of screen-printed electrodes fabricated from different inks.//Electrochim.Acta. 1998. V.43. N 23. P. 3459−3465.
  14. Ю.Ю., Разумас В. Й. Биокатализ в электрохимии органических соединений.Вильнюс: Мокслас, 1981. 168 с.
  15. Trijueque J., Garciajareno J.J., Navarrolaboulais J., Sanmatias A., Vicente F. Ohmic drop ofPrussian-blue/graphite plus epoxy electrodes.// Electrochim.Acta. 1999. V.45. № 4−5. P.789−795.
  16. Pemberton R.M., Hart J.P. Electrochemical behaviour of triclosan at a screen-printed carbonelectrode and its voltammetric determination in toothpaste and mouthrinse products.// Anal. Chim. Acta. 1999. V.390. P.107−115.
  17. Palchetti I., Cagnini A., Mascini M., Turner A.P.F. Characterisation of screen-printed electrodes for detection of heavy metals.// Mikrochim.Acta. 1999. V.131. P.65−73.
  18. Brainina K., Henze G., Stojko N., MalakhovaN., Faller C. Thick-film graphite electrodes instripping voltammetry.// Fresenius.J.Anal.Chem. 1999. V.364. P.285−295.
  19. Armstrong-James M., Millar J. Carbon fibre microelectrodes.// J.Neurosci. Methods. 1979.V.l.P.279−287.
  20. Cagnini A., Palchetti L, Mascini M., Turner A.P.F. Ruthenized screen-printed choline oxidase-based biosensors for measurement of anticholinesterase activity.// Microchim.Acta.1995. V.121.P.155−166. •
  21. Bachmann T.T., Shmid R.D. A disposable multieiectrode biosensor for rapid simultaneousdetection of the insecticides paraoxon and carbofuran at high resolution.// Anal.Chim.Acta. 1999. V, 401.P.95−103.
  22. Albareda-Sirvent M., Merkoc A.. Alegret S. Configurations used in the design of screenprinted enzymatic biosensors. A review.// Sensors Actuators B. 2000. V.69. P. 153−163
  23. Clark L.C., Lyons C. Electrode systems for continuous monitoring in cardiovascular surgery.//Ann.N.Y.Acad.Sci. 1962. V.102. P.29−45.
  24. Abassa A.K., Harta J.P., Cowella D.C., Chappell A. Development of an amperometric assayfor NH4 based on a chemically modified screen-printed NADH sensor.// Anal.Chim.Acta.1998. V.373. P.1−8.
  25. Avramescu A., Noguer T., Magearu V., Marty J.-L. Chronoamperometric determination ofD-lactate using screen-printed enzyme electrodes.// Anal.Chim.Acta. 2001. V.433. P.81−88.
  26. Avramescu A., Noguer T., Avramescu M., Marty J.-L. Screen-printed biosensors for the control of wine quality based on lactate and acetaldehyde determination.// Anal.Chim.Acta. 2002. V.458. P.203−213.
  27. Sprules S.D., Hartley I.C., Wedge R., Hart J.P., Pittson R. A disposable reagentless screenprinted amperometric biosensor for the measurement of alcohol in beverages.// Anal.Chim.Acta. 1996. V.329. P.215−221.
  28. Silber A., Hampp N., Schuhmann W. Poly (methylene blue)-modified thick-film gold electrodes for the electrocatalytic oxidation of NADH and their application in glucose biosensors.// Biosens.Bioelectron.1996. V. l l. № 3. P.215−223.
  29. Kataky R., Bryce M.R., Goldenberg L., Hayes S., Nowak A. A biosensor for monitoringformaldehyde using a new lipophilic tetrathiafulvalene-tetracyanoquinodimethane salt and a polyurethane membrane.// Talanta. 2002. V.56. P.45158.
  30. Herschkovitz ?., Eshkenazi I., Campbell C.E., Rishpon J. An electrochemical biosensor forformaldehyde.// J.Electroanal.Chem. 2000. V.491. P. 182−187.
  31. Karyakin A.A., Karyakina E.E., Schuhmann W., Schmid H.-L. Electropolymerized azines: Part II. In a search of the best electrocatalyst of NADH oxidation. // Electroanalysis. 1999. V. l. № 8. P.553−557.
  32. Hong M.-Y., Chang J.-Y., Yoon H.C., Kim. Development of a screen-printed amperometricbiosensor for the determination of L-lactate dehydrogenase level.// Biosens.Bioelectron. 2002. V.17. P.13−18.
  33. Wang J., Chen Q., Pedrero M., Pingarron J.M. Screen-printed amperometric biosensor forglucose and alcohols based on ruthenium-dispersed carbon inks. // Anal.Chim.Acta. 1995. V.300. P.111−116.
  34. Zhang C, Gaoa Q., Aizawa M. Flow injection analytical system for glucose with screenprinted enzyme biosensor incorporating Os-complex mediator.// Anal.Chim.Acta. 2001. V.426. P.33−41.
  35. Hu T., Zhang X.-E., Zhang Z.-P. Disposable screen-printed enzyme sensor for simultaneousdetermination of starch and glucose.// Biotech.Techniques.1999. Y.13. P.359−362.
  36. Ge F., Zhang X.-E., Zhang Z.-P., Zhang X. -M. Simultaneous determination of maltose andglucose using a screen-printed electrode system.// Biosens.Bioelectron. 1998. V. 13. N.3−4. P.333−339.
  37. Guo Y., Guadalupe A.R. Screen-printable surfactant-induced sol-gel graphite composites forelectrochemical sensors.// Sensors.Actuators.1998. B.46. P.213−219.
  38. Tu Y.-F., Chen H.-Y. A nano-molar sensitive disposable biosensor for determination of Dopamine.// Biosens.Bioelectron. 2002. V.17. P.19−24.
  39. Hart J.P., Abass A.K., Cowell D. Development of disposable amperometric sulfur dioxidebiosensors based on screen printed electrodes.// Biosens.Bioelectron. 2002. V.17. P.389−394.
  40. Abass A.K., Hart J.P., Cowell D. Development of an amperometric sulfite biosensor basedon sulfite oxidase with cytochrome c, as electron acceptor, and a screen-printed transducer.// Sensors.Actuators. 2000. B.62. P. 148−153.
  41. Boujtita M., Hart J.P., Pittson R. Development of a disposable ethanol biosensor based on achemically modified screen-printed electrode coated with alcohol oxidase for the analysis of beer.// Biosens.Bioelectron. 2000. V.15. P.257−263.
  42. Young S.J., Hart J.P., Dowman A.A., Cowell D.C. The non-specific inhibition of enzymesby environmental pollutants: a study of a model system towards the development of electrochemical biosensor arrays.// Biosens.Bioelectron. 2001. V.16. P.887−894.
  43. Miertus S., Katrlik J., Pizzariello A., Stredansky M., Svitel J., Svorc J. Amperometric biosensors based on soUd binding matrices applied in food quality monitoring.// Biosens. Bioelectron. 1998. V.13.R911−923.
  44. Karyakin A.A., Karyakina E.E. Prussian blue-based 'artificial peroxidase' as a transducer forhydrogen peroxide detection. Application to biosensors.// Sensors and Actuators. 1999. B.57. P.268−273.
  45. O’Halloran M.P., PravdaM., Guilbault G.G. Prussian blue bulk modified screen-printedelectrodes for H2O2 detection and for biosensors.// Talanta. 2001. V.55. P.605−611.
  46. Strehlitz B., Griindig B., Kopinke H. Sensor for amperometric determination of ammonia andammonia-forming enzyme reactions.// Anal.Chim.Acta. 2000. V.403. P. l 1−23.
  47. Hart A.L., Collier W.A., Janssen D. The response of screen-printed enzyme electrodes containing cholinesterases to organo-phosphates in solution and from commercial formulations.// Biosens.Bioelectron. 1997. V.12. №.7. P.645−654.
  48. Hartley I.C., Hart J.P. Amperometric measurement of organophosphate pesticides using ascreen-printed disposable sensor and biosensor based on cobalt phtalocyanine.// Anal. Proc. Incl. Anal. Comm. 1994. V.31. P.333−337.
  49. Skladal P. Detection of organophosphate and carbamate pesticides using disposable biosensors based on chemically modified electrodes and immobilized Cholinesterase.//Anal. Chim. Acta.1992. V.269. P.281−287.
  50. Nunes G.S., Skladal P., Yamanakac H., Barcelo D. Determination of carbamate residues incrop samples by cholinesterase-based biosensors and chromatographic techniques.//Anal.Chim. Acta. 1998. V.362. P.59−68.
  51. Montesinos T., Perez-Munguia S., Valdez F., Marty J.-L. Disposable Cholinesterase biosensor for the detection of pesticides in water-miscible organic solvents.// Anal.Chim.Acta. 2001. V.431.P.231−237.
  52. Kulys J., D’Costa E.J. Printed amperometrcic sensor based on TCNQ and Cholinesterase.//Biosens.Bioelectron. 1991. Y.6. P. 109−115.
  53. Wang G., Pamidi P.V.A. Disposable screen-printed electrodes for monitoring hydrazines.//Talanta.-1995.-V.42.-N.3.-P .463−467.
  54. Myler S., Eaton S., Higson S.P.J. Poly (o-phenylenediamine) ultra-thin polymer-film composite membranes for enzyme electrodes.// Anal.Chim.Acta. 1997. V.357. P.55−61.
  55. Palchetti I., Cagnini A., Carlo M.D., Coppi C, Mascini M. , Tumer A.P.F. Determination ofanticholinesterase pesticides in real samples using a disposable biosensor.// Anal.Chim.Acta. 1997. V.337. P.315−321.
  56. Cagnini A., Palchetti I., Lionti I., Mascini M., Tumer A.P.F. Disposable ruthenized screenprinted biosensors for pesticides.// Mon.Sens.Act. 1995. V.24−25. P.85−89.
  57. Kroger S., Setford S.J., Tumer A.P.F. Assessment of glucose oxidase behaviour in alcoholicsolutions using disposable electrodes.//Anal.Chim.Acta. 1998. V.368. P.219−231.
  58. Wang J., Chen Q., Pedrero M., Pingarron J.M. Screen-printed amperometric biosensor forglucose and alcohols based on mthenium-dispersed carbon inks.// Anal.Chim.Acta. 1995. V.300. P.111−116.
  59. Su Y., Cagnini A., Mascini M. Screen-printed biosensor alkaline phosphatase-based for enviromental appHcations.//Chem.Anal. 1995. V.40. P.579−585.
  60. Wang J., Chen Q., Pedrero M., Pingarron J.M. Screen-printed amperometric biosensor forglucose and alcohols based on mthenium-dispersed carbon inks.// Anal.Chim.Acta. 1995. Y.300. P.111−116.
  61. Zen J.-M., Chung H.-H., Kxmiar A.S. Flow injection analysis of hydrogen peroxide on copper-plated screen-printed carbon electrodes.//Analyst. 2000. V.125. P.1633−1637.
  62. Garjonyte R., Malinausks A. Amperometric sensor for hydrogen peroxide based on CU2Oand CuO modified carbon electrodes.// Fresenius J.Anal.Chem. 1998. V.360. P.122−123.
  63. Rajendran V., Csoregi E., Okamoto Y., Gorton L. Amperometric peroxide sensor based onhorseradish peroxidase and toluidine blue 0-acrylamide polymer in carbon paste.// Anal. Chim. Acta 1998. V.373.P.241−251.
  64. Miao Y., Tan S.N. Amperometric hydrogen peroxide biosensor with silica sol-gel/chitosanfilm as immobilization matrix.// Anal.Chim.Acta. 2001. Y.437. P. 87−93.
  65. O’Connell P. J., O’SuUivan C.K., Guilbault G.G. Electrochemical metalUsation of carbonelectrodes.// Anal.Chim.Acta. 1998. V.373. P.261−270.
  66. De Mattos I.L., Gorton L., Ruzgas Т., Karyakin A.A. Sensor for hydrogen peroxide based onPrussian Blue modified electrode: improvement of operational stability.// Anal.Sci. 2000. V.16. P.795−798.
  67. Д., Гуревич К. Г. Биокинетика. Практический курс. М: Фаир-Пресс, 1999. 720 с.
  68. Hart J.P., Wring S.A. Recent developments in the design and application of screen-printedelectrochemical sensors for biomedical, environmental and industrial analysis.// Trends in Anal.Chem. 1997. V.16. № 2. R 89−103.
  69. Hart A.L., Cox H., Janssen D. Stabilization of lactate oxidase in screen-printed enzymeelectrodes.// Biosens.Biolectron. 1996. V.1'1. №.8. P.833−837.
  70. Collier W.A., Janssen D., Hart A.L. Measmement of soluble L-lactate in dairy productsusing screen-printed sensors in batch mode.// Biosens.Biolectron. 1996. V. l 1. J^ o 10. P.10 411 049.
  71. Hart A.L., Matthews C, Collier W.A. Estimation of lactate in meat extracts by screenprinted sensors.//Anal.Chim.Acta. 1999. V.386. P.7−12.
  72. Hart A.L., Collier W.A. Stability and function of screen printed electrodes, based on cholinesterase, stabilised by a co-polymer: sugar alcohol mixture.// Sensors.Actuators.1998. B.53. P.111−115.
  73. Albareda-Sirvent M., Merko9I A., Alegret S. Thick-film biosensors for pesticides by screenprinting of graphite-epoxy composite and biocomposite pastes.// Sensors. Actuators. 2001. B 79. P.48−57.
  74. Wang J., Nascimento V.B., Kane S.A., Rogers K., Smyth M.R., Angnes L. Screen-printedtyrosinase-containing electrodes for the biosensing of enzyme inhibitors.// Talanta. 1996. V.43. P.1903−1907.
  75. Galan-Vidal C.A., Munoz J., Dominguez C, Alegret S. Glucose biosensor strip in a threeelectrode configuration based on composite and biocomposite materials applied by planar thick film technology.// Sensors.Actuators.-1998.-B.52.-P.257−263.
  76. Park J.-K., Yee H.-J., Lee K.S., Lee W.-Y., Shin M.-C, Kim T-H., Kim S.-R. Determinationof breath alcohol using a differential-type amperometric biosensor based on alcohol dehydro genase.//Anal.Chim.Acta. 1999. V.390. P.83−91.
  77. Patel N.G., Erlenkotter A., Cammann K., Chemnitius G.-C. Fabrication and characterizationof disposable type lactate oxidase sensors for dairy products and clinical analysis.// Sensors. Actuators. 2000. B 67. P. 134−141.
  78. Patel N.G., Meier S., Cammann K., Chemnitius G.-C. Screen-printed biosensors using different alcohol oxidases.// Sensors.Actuators. 2001. B 75. P. lOl-UO.
  79. Erlenkotter A., Kottbus M., Chemnitius G.-C. Flexible amperometric transducers for biosensors based on a screen printed three electrode system.// J.Electroanal.Chem. 2000. V.481. P.8294.
  80. Olschewski H., Erlenkotter A., Zaborosch C, Chemnitius G.-C. Screen-printed enzyme sensors for L-lysine determination.// Enzyme.Microb.Technol. 2000. V.26. P.537−543.
  81. Schumacher J.T., Munch I., Richter T., Rohm I., Bilitewski U. Investigations with respect tostabilization of screen-printed enzyme electrodes.// J.Molecular.Catalysis B. 1999. V.7. P.67−76.
  82. Kim E.J., Haruyama T., Yanagida Y., Kobatake E., Aizawa M. Disposable creatinine sensorbased on thick-film hydrogen peroxide electrode system.// Anal.Chim.Acta.1999. V.394. P.225 231.
  83. Mulchandani A., Chen W., Mulchandani P., Wang J., Rogers K.R. Review: Biosensors fordirect determination of organophosphate pesticides.//Biosens.Bioelectron. 2001. V.16. P.225 230.
  84. Mulchandani A., Mulchandani P., Chen W., Wang J., Chen L. Amperometric thick-film stripelectrodes for monitoring organophosphate nerve agents based on inunobilized organophosphorus hydrolase.// Anal. Chem. 1999. V.71. P.2246−2249.
  85. Albareda-Sirvent M., Merkofi A., Alegret S. Pesticide determination in tap water and juicesamples using disposable amperometric biosensors made using thick-film technology.// Anal. Chim. Acta. 2001. V.442. P.35−44.
  86. Chenmitius G.C., Bilitewski U. Development of screen-printed enzyme electrodes for theestimation of fish quality.// Sensors. Actuators B. 1996. V.32. P.107−113.
  87. Carsol M.-A., Volpe G., Mascini M. Amperometric detection of uric and hypoxanthine withXanthine oxidase immobilized and carbon based screen-printed electrode. Application for fish freshness determination.// Talanta. 1997. V.44. P.2151−2159.
  88. Martorell D., Cespedes P., Martinez-Fabregas E., Alegret S. Amperometric determination ofpesticides using a biosensor based on a polishable graphite-epoxy biocomposite.// Anal.Chim. Acta. 1994. V.290. № 3. P.343−348.
  89. Goodson L.H., Jacobs W.B., Davis A.W. An immobilized cholinesterase product for use inthe rapid detection of enzyme inhibitors in air or water.// Anal.Biochem. 1973. V.51. J^ «2. P.362−367.
  90. Goodson L.H., Jacobs W.B. Immobilized enzymes for detection and monitoring of organophosphates and carbamates.// Enzyme Eng.- New York.: Plenum Press. 1977. V.2. P.55−69.
  91. Akhtara P., Devereauxb H.A., Downarda A.J., O’Sullivana B., Powell K.J. Portable fractionation device and screen-printed electrode for measurement of reactive aluminium in envi ronmental samples.// Anal.Chim.Acta.1999. V.381. P.49−59.
  92. Honeychurch K.C., Hart J.P., Cowell D.C. Voltammetric studies of lead at a l-(2-pyridylazo)-2-naphthol modified screen-printed carbon electrode and its trace determination in water by stripping voltammetry.//Anal.Chim.Acta. 2001. V.431. P.89−99.
  93. Honeychurch K.C., Hart J.P., Cowell D. C, Arrigan D.W.M. Voltammetric studies of leadat calixarene modified screen-printed carbon electrodes and its trace determination in water by stripping voltammetry.// Sensors. Actuators B 2001. V.77. P.642−652.
  94. Koncki R., Glab S., Dziwulska J., Palchetti I., Mascini M. Disposable strip potentiometricelectrodes with solvent-polymeric ionselective membranes fabricated using screen-printing tech nology.//Anal.Chim.Acta. 1999. V.385. P.451−459.
  95. Volf R., Shishkanova T.V., Matejka P., Hamplova M., Krai V. Potentiometric anion response of poly (5,15-bis (2-aminophenyl)porphyrin) electropolymerized electrodes.// Anal.Chim. Acta. 1999. V.381. P. 197−205.
  96. Koncki R., Mascini M. Screen-printed ruthenium dioxide electrodes for pH measurements.//Anal.Chim.Acta. 1997. V.351. P.143−149.
  97. Walcerz I., Glab S., Koncki R. Potentiometric enzyme electrode in a flow injection systemfor the determination of urea in human serum samples.// Anal.Chim.Acta. 1998. V.369. JVb 1−2. R129−137.
  98. Kanungo M., Kumar A., Contractor A.Q. Studies on electropolymerization of aniline in thepresence of dodecyl sulfate and its application in sensing urea.// J.Electroanal.Chem. 2002. V.528. P.46−56.
  99. Xu J.J., Zhou D.M., Chen H.Y. Amperometric determination of ascorbic acid at a novel"self-doped» polyaniline modified microelectrode.// Fresenius J.Anal.Chem. 1998. V.362. P.234 238.
  100. Zhang X., Ogorevc B., Wang J. Solid-state pH nanoelectrode based on polyaniline thin filmelectrodeposited onto ion-beam etched carbon fiber.// Anal.Chim.Acta 2002. V.452. P. 1−10.
  101. Jin Z., Su Y., Duan Y. Development of a polyaniline-based optical ammonia sensor.// Sensors Actuators B. 2001. V.72. P.75−79.
  102. Koul S., Chandra R., Dhawan S.K. Conducting polyaniline composite: a reusable sensormaterial for aqueous ammonia.// Sensors Actuators B. 2001. V.75. P.151−159.
  103. Raffa D.L., Battaglini F. Novel conducting polyaniline bearing functional groups.//J.Electroanal.Chem. 2001. V.504. P.120−124.
  104. Athawale A.A., Kulkami M.V. Polyaniline and its substituted derivatives as sensor for aliphatic alcohols.// Sensors Actuators B. 2000. V.67. P.3−177.
  105. Gerard M., Chaubey A., Malhotra B.D. Application of conducting polymers to biosensors.//Biosens.Bioelectron. 2002. V. 17. P.345−359.
  106. Palmizano P., Zambonin P.G., Centonze D. Amperometric biosensors based on electrosynthesised polymeric films.//Fresenius J./nal.Chem. 2000. V.366. P. 586−601.
  107. Wang H., Mu S. Bioelectrochemical characteristics of cholesterol oxidase immobilised in apolyaniline film.// Sensors Actuators B. 1999. V.56. P.22−30.
  108. Karyakin A.A., Vuki M., Lukachova L.V., Karyakina E.E., Orlov A.V., Karpachova G.P., Wang J. Processible polyaniline as an advanced potentiometric pHh transducer. Application to biosensors.//Anal.Chem. 1999. V.71. P.2534−2540.
  109. Koncki R., Leszczynsky P., Hulanicki A., Glab S. Urea sensors based on glass pH electrodes with physically immobilized urease.//Anal.Chim.Acta. 1992. V.257. № 1. P.67−72.
  110. Bartlett P.N., Wallace E.N.K. The oxidation of /3-nicotinamide adenine dinucleotide (NADH) at poly (aniline)coated electrodes. P.II. Kinetics of reaction at poly (aniline) — poly (styrenesulfonate) composites.//J.Electroanal.Chem. 2000. V.486. P.23−31.
  111. Tatsuma T., Ogawa T., Sato R., Oyama N. Peroxidase incorporated sulfonated polyanilinepolycation complexes for electrochemical sensing of H2O2.// J. Electroanal. Chem. 2001. V.501. R180−185.
  112. MacDiarmid A.G., Epstein A. Polyanilines: a novel class of conducting polymers.// FaradayDiscuss. Chem. Soc. 1989. P. 317−332.
  113. Kataku R., Parker D. Cyclodextrins in electroanalysis. / In: Chemical and biological sensorsand analytical electrochemical methods. ProcSymp.Electrocehm.Soc. 1997. (Eds. Ricco A.J., Vanysek P., Horvai G., Silca A.F.) V.97−19. P.524−537.
  114. Е.Б., Евтюгин Г. А., Искандеров P.P., Латьшова В. З. Потенциометрические сенсоры для определения ингибиторов холинэстераз.// Журн.аналит.хим. 1996. Т.51.№ 5. 561−565.
  115. Gogol E.V., Evtugyn G.A., Marty J.-L., Budnikov H.C., Winter V.G. Amperometric biosensors based on nafion coated screen-printed electrodes for the determination of cholinesterase inhibitors.// Talanta. 2000. V.53. № 2. P.379−389.
  116. Ivanov A.N., Evtugyn G.A., Gyurcsanyi R.E., Toth K., Budnikov H.C. Comparative investigation of electrochemical cholinesterase biosensors for pesticide determination. // Anal.Chim.Acta. 2000. V.404. № 1. P.55−65.
  117. H.H., Новожилов К.В, Белан СР., Пылова Т. Н. Справочник по пестицидам. М.: Химия, 1985. 352 с.
  118. Н.Н. Пестициды. Химия, технология и применение. М.: Хнмия, 1987.712 с.
  119. Справочник по пестицидам. Гигиена применения и токсикология./ Под ред. ПавловаА.П. Киев: Урожай, 1986.432 с.
  120. И. Ионы, электроды, мембраны. М.: Мир, 1983.
  121. Glab S., Hulaaicki А., Edwall G., Ingman F. Metal-metal oxide and metal oxide electrodesas pH sensors.// Crit. Rev. Anal. Chem. 1989. V.21. № 1. P.29−46.
  122. А.П., Кузнецова Л. П., Моралев Н., Розенгарт Е. В., Эпштейн Л. М. Холинэстеразы наземных животных и гидробионтов. Владивосток: ТИНРО, 1997.- 466 с.
  123. Е.Б., Евтюгин Г. А. Применение холинэстераз в аналитической химии.//Журн.аналит.химии. 1992. Т.47. № 8. 1358−1378.
  124. Skladal Р. Biosensors based on cholinesterase for detection of pesticides.// Food Technol.Biotechnol. 1996. V.34. К" 1. P.43−49.
  125. Rippeth J.J., Gibson T.D., Hart J.P., Hartley I.C., Nelson G. Flow-injection detection incorporating a screen-printed disposable amperometric biosensor for monitoring organophosphate pesticides.// Analyst. 1997. V.122. P.1425−1429.
  126. Rehak M., Snejdarkova M., Hianik T. Acetylcholine minisensor based on metal-supportedlipid bilayers for determination of environmental pollutants.// Electroanalysis. 1997. V.9. № 14. R 1072−1077.
  127. La Rosa C, Pariente F., Hernandez L., Lorenzo E. Amperometric flow-through biosensorfor the determination of pesticides.//Anal.Chim.Acta. 1995. V.308. P.129−136.
  128. Turdean G., Peter I., Popescu I.C., Oniciu L. An acetylcholinesterase amperometric microbiosensor for the detection of dipterex.// Rev. Roumane de Chimie. 1997. V.42. № 9. P.879−883.
  129. Guenther A., Bilitewski U. Characterisation of inhibitors of acetylcholinesterase by anautomated amperometric flow-injection system.// Anal.Chim.Acta. 1995. V.300. P. l 17−125.
  130. Skladal P., Nunes G.S., Yamanaka H., Ribeiro M.L. Detection of carbamate pesticides invegetables samples using cholinesterase-based biosensors.// Electroanalysis. 1997. V.9. № 14. R1083−1087.
  131. Gogol E.V., Evtugyn G.A., Marty J.-L., Budnikov H.C., Winter V.G. Amperometric biosensors based on nafion coated screen-printed electrodes for the determination of cholinesterase inhibitors.//Talanta. 2000. V.53. № 2. P.379−389
  132. Doretti L., Ferrara D., Lora S., Palma G. Amperometric biosensor involving covalent immobilization of choline oxidase and butyrylcholinesterase on a methacrylate-vinylene carbonate co-polymer.// Biotechnol. Appl. Biochem. 1999. V.29 (Pt 1). P.67−72.
  133. Gerrieri A., Debenedetto G.E., Palmisano F., Zambonin P.G. Amperometric sensor for choline and acetylcholine based on a platinum electrode modified by a co-srosslinked bienzymic system.//Analyst. 1995. V.120. № 11. P.2731−2736.
  134. Garguilo M.G., HuynhN., Proctor A., Michael A.C. Amperometric sensors for peroxide, choline, and acetylcholine based on electron transfer between horseradish peroxidase and a redox polymer.//Anal Chem. 1993. V.65. № 5. P.523−528.
  135. Bemabei M., Chiavarini S., Cremisini C, Palleschi G. Anticholinesterase activity assay bya choline biosensor: application in water analysis.// Biosensors Bioelectronics. 1993. V.8. P.265 271.
  136. Kok F.N., Bozoglu F., Hasirci V. Construction of acetylcholinesterase — choline oxidasebiosensor for aldicarb determination.//Biosens.Bioelectron. 2002. V.17. P.531−539.
  137. Guilbault G.G., Kramer D.N., Cannon P.L. Electrochemical determination of organophosphorus compounds.// Anal.Chem. 1962. V.34. P. 1437−1439.
  138. Guilbault G.G., Ivase A. Assay of cholinesterase in an electrode system with immobilizedsubstrate.// Anal.Chim.Acta. 1976. Y.85. № 2. P.295−302.
  139. Stein K., Schwedt G. Comparison of immobilization methods for the development of anacethylcholinesterase biosensor.// Anal.Chim.Acta. 1993. V.272, № 1. P.73−81.
  140. Tran-Minh C, Pandey P.C., Kumaran S, Studies on acetylcholine sensor and its analyticalappHcation based on the inhibition of cholinesterase.//Biosensors. 1990. V.5. № 6. P.461−471.
  141. Г. А., Будников Г. К., Никольская Е. Б. Биосенсоры для определения ингибиторов ферментов в окружающей среде.//Успехи химии. 1999. Т.68. № 12. 1142−1167.
  142. Химия комплексов"гость-хозяин" /Подред. Фегтле Ф., ВебераЭ. М.: Мир, 1988. 511с.
  143. Calixarenes in action / Ed. Mandolini L., Ungaro R. London: Imperial College Press, 1997.
  144. Bohmer V. Calixarenes, macrocycles with (almost) milimited possibilities. //Chem.Int. Ed.Engl. 1995. V.34.P.713−745.
  145. Ludwig R. Calixarenes in analytical and separation chemistry.// Fresenius J.Anal.Chem.2000. V.367.R103−128.
  146. Mlika R., Ben Ouada H., Jaffrezic-Renault N., Dumazet I., Lamartine R., Gamoudi M., Guillaud G. Study of ion-selective evaporated calixarene film used as a sensitive layer on ISFET sensors.// Sensors Actuators B. 1998. V.47. P.43−47.
  147. Cobben P.L., Egbering R.J., Bomer J.G. Ion-selective electrodes based on functionalizedcalixarenes. // J.Amer.Chem.Soc. 1992. V. l 14. P.10 573−10 582.
  148. Wang J., Liu J. Calixarene-coated amperometric detectors // Anal. Chim. Acta. 1994. № 2.P.201−206.
  149. Chan W.H., Shiu K.K., Gu X.G. Ion-selective electrodes in organic analysis- primart amineselective polymeric membrane electrodes based on a calix6. arene ionophore // Analyst. 1993. V.118.R863−867.
  150. Lee A.W.M., Chan W.H., Lam Y.S. Ion-selective electrodes in organic analysis: determination of carboxylic acids via in situ conversation into amines // Analyst. 1995. V.120. P.28 412 844.
  151. Chan W.H., Wong-Leung Y.L. A glucose selective electrode based on calix6. arene andapplication in a human serum assay. //Anal. Letters. 1997. V.30. № 1. P.45−59.
  152. Odashima K., Yagi K. Potentiometrie determination of organic amines by a liquid membrane electrode based on a lipophilic hexaester of calix6.arene. // Anal.Chem. 1993. V.65. R1074−1083.
  153. Г. А., Муслинкина Л. А., Будников Г. К., Казакова Э. Х. Потенциометрическийхолинэстеразый биосенсор с мембраной, модифицированной каликс4.резорцинолареном.// Журн.аналит.хим. 1999. Т.54.№ 4. 418−423.
  154. Stoikova Е.Е., Evtugyn G.A., Beljakova S.V., Khrustalev A.A., Stoikov 1.1., Antipin I.S., Budnikov H.C., Konovalov A.I. 1,3-Disubstituted p-tert-butylcalix4.arenes as cholinesterase inhibitors.// J. Inclusion Phenomena. 2001. Vol-39. № 3−4. P.339−346.
  155. Soto-Bustamante E.A., Griesar K., Schumacher E., Haase W. Synthesis and characterization of a novel liquid crystalline side chain metallopolymer.// Macromol.Chem.Phys. 1998. V.199. P.1337−1342.
  156. А.Г., Блохина C.B., Ольхович M.B., Лоханов В. В. Сорбент на основе мезоморфного комплекса меди в газовой хроматографии органических соединений. // Жури, физ. хим. 1993. Т.67. № 1. 151−154.
  157. О’Брайен Р. Токсичные эфиры кислот фосфора. М.: Мир, 1964. 93−138.
  158. Г. А., Стойкова Е. Е., Искандеров P.P., Никольская Е. Б., Будников Г. К. Электрохимическая пробоподготовка в ферментативном определении ингибиторов холинэстеразы.//Журн.аналит.хим. 1997. Т.52. № 1. 6−10.
  159. Evtugyn G.A., Ivanov A.N., Gogol E.V., Marty J.L., Budnikov H.C. Amperometric flowthrough biosensor for the determination of cholinesterase inhibitors.// Anal.Chim.Acta. 1999. V.385. P.13−21.
  160. Herzsprung P., Well L., Niessner R. Measurement of bimolecular rate constants k of thecholinesterase inactivation reaction by 55 insecticides and of the influence of various pyridiniumoximes onki.//Intern.J.Environ.Anal.Chem. 1992. V.47. P. l81−200.
  161. Л.И., Кузнецова Л. П., Никольская Е. Б., Ягодина О. В. Применение ферментсодержащих мембран для определения органических соединений.// Журн.анал.химии.1992.Т.47.Ж8.С.1478−1483.
  162. Starodub N.F., Kanjuk N.I., Kukla A.L., Shirshov Yu.M. Multi-enzymatic electrochemicalsensopr: field measurements and their optimization.// Anal.Chim.Acta. 1999. V.385. P.461−466.
  163. Imato Т., Ishibashi N. Potentiometric butyrylcholine sensor for organophosphate pesticides.//Biosensors Bioelectronics. 1995. V.IO. № 5. P.435−442.
  164. Bemabei M., Cremisini C, Mascini M., Palleschi G. Determination of organophosphorusand carbamic pesticides with a choline and acetylcholine electrochemical biosensor.// Anal.Letters. 1991. V.24. № 8. R1317−1331.
  165. Nunes G.S., Skladal P., Yamanaka H., Barcelo D. Determination of carbamate residues incrop samples by cholinesterase-based biosensors and chromatographic techniques.// Anal.Chim.Acta. 1998. V.362. № 1. P.59−68.
  166. Further analysis on presence of residues and impact of plant protection products in EU./European Commission and Dutch Ministry for the Environment, 1997.- 307 p.
  167. FQPA-targeted pesticide residue study. Michigan Univeristy — EPA. Michigan, 1999. 91 p.
  168. Report on integrated pest management and related activities supported by the United Statesdepartment on agriculture./ USDA NAPIAP Sub-Committee. May 1998. 21 p.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!