Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Адренорецепторные механизмы формирования терморегуляторных реакций и модуляции иммунного ответа под влиянием быстрого охлаждения

Диссертация: Адренорецепторные механизмы формирования терморегуляторных реакций и модуляции иммунного ответа под влиянием быстрого охлаждения
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Предыдущие исследования свидетельствуют о том, что динамическая активность периферических термочувствительных афферентов играет важную роль в управлении функциональными системами, вовлеченными в поддержание температурного гомеостаза (Козырева, Верхогляд, 1997; Ko2yreva, 1997; Kozyreva et al., 2001), а также в изменении гормонального статуса организма при холодовом воздействии (Козырева и др… Читать ещё >

Адренорецепторные механизмы формирования терморегуляторных реакций и модуляции иммунного ответа под влиянием быстрого охлаждения (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • 1. ТЕРМОРЕГУЛЯЦИЯ ПРИ ХОЛОДОВОМ ВОЗДЕЙСТВИИ
    • 1. 1. Основные принципы терморегуляции
      • 1. 1. 1. Афферентное звено системы терморегуляции
      • 1. 1. 2. Эффекторное звено системы терморегуляции
  • 2. УЧАСТИЕ СИМПАТОАДРЕНАЛОВОЙ СИСТЕМЫ В РЕАКЦИИ ОРГАНИЗМА НА ОХЛАЖДЕНИЕ
  • 3. ВЗАИМОДЕЙСТИВИЕ НЕРВНОЙ И ИММУННОЙ СИСТЕМ
    • 3. 1. Участие симпатической нервной системы в иммунном ответе
    • 3. 2. Влияние катехоламинов на клетки иммунной системы
    • 3. 3. Участие p-адренорецепторов в модуляции иммунологических реакций
    • 3. 4. Участие а-адренорецепторов в модуляции иммунологических реакций
  • 4. ВЛИЯНИЕ ОХЛАЖДЕНИЯ НА ИММУННЫЙ ОТВЕТ
  • МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • 1. ТЕРМОРЕГУЛЯТОРНЫЕ РЕАКЦИИ В ОТВЕТ НА БЫСТРЫЕ ОХЛАЖДЕНИЯ РАЗНОЙ ГЛУБИНЫ В НОРМЕ И ПРИ ДЕЙСТВИИ БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫХ ВЕЩЕСТВ
    • 1. 1. Влияние неглубокого и глубокого быстрого охлаждения на терморегуляторные параметры
    • 1. 2. Влияние норадреналина на терморегуляторные параметры при быстром охлаждении разной глубины
    • 1. 3. Влияние ои-адреноблокатора (верапамила) на терморегуляторные параметры при быстром охлаждении разной глубины
    • 1. 4. Влияние а2-адреноблокатора (йохимбина) на терморегуляторные параметры при быстром охлаждении разной глубины
    • 1. 5. Влияние Р-адреноблокатора (обзидана) на терморегуляторные параметры при быстром охлаждении разной глубины
  • 2. ИЗМЕНИЛ ПАРАМЕТРОВ ИММУННОГО ОТВЕТА ПОД ВЛИЯНИЕМ БЫСТРОГО ОХЛАЖДЕНИЯ РАЗНОЙ ГЛУБИНЫ, НОР АДРЕНАЛИНА И АДРЕНОБЛОКАТОРОВ
    • 2. 1. Влияние быстрого охлаждения разной глубины на параметры иммунного ответа
    • 2. 2. Влияние ионофоретического введения норадреналина в кожу на иммунный ответ, формирующийся в термонейтральных условиях и после предшествующего быстрого охлаждения разной глубины
    • 2. 3. Действие агадреноблокатора (верапамила) на иммунный ответ, формирующийся под влиянием быстрого неглубокого и глубокого охлаждений
    • 2. 4. Действие а2-адреноблокатора (йохимбина) на иммунный ответ, формирующийся под влиянием быстрого неглубокого и глубокого охлаждения
    • 2. 5. Действие Р-адреноблокатора (обзидана) на иммунный ответ, формирующийся под влиянием быстрого неглубокого и глубокого охлаждения
  • ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • ВЫВОДЫ

Температура — один из важнейших экологических факторов, оказывающий влияние на появление, развитие и существование всех живых организмов. Смена времён года, изменение климатической зоны обитания, смена профессионального труда — всё это связано с изменением температурных условий существования. Освоение человеком Сибири, северных территорий и Южного Приполярья, климатической особенностью которых являются низкие температуры, привлекает особое внимание к вопросам о возможности, пределах и механизмах приспособления человека и животных к холоду. Особенно актуально это для России, как страны с самым холодным климатом. Принципы регулирования и механизмы вовлечения различных эффекторных функций (физиологических систем) в живом организме при изменении внешней и внутренней температуры мало изучены, а иммуномодулирующей роли температурного фактора практически не уделялось внимания.

Реакция организма на воздействие того или иного фактора является комбинацией ответов различных физиологических систем организма. Эта комбинация определяется характером афферентной информации, с помощью которой устанавливается постоянное и точное взаимодействие этих систем между собой, а, следовательно, и отношение целого организма к окружающим условиям (Козырева, Елисеева, 2002; Kozyreva, 2006).

Система терморегуляции, обеспечивающая температурный режим всех процессов, протекающих в живом организме, является одной из важнейших гомеостатических систем. Живой организм воспринимает температуру с помощью терморецепторов, представленных как в центральной, так и периферической нервной системе. При внешнем холодовом воздействии на организм исходным пунктом афферентной информации являются, прежде всего, периферические кожные терморецепторы. Сигнал термочувствительных кожных афферентов, инициирующий термозащитные реакции, зависит от величины, скорости и локализации температурного воздействия. Для каждого из терморецепторов кожи есть определенная область температур, в которой он имеет статическую активность, соответствующую поддерживаемой температуре. Быстрое изменение температуры со скоростью более 0.01−0.02°С/сек, вызывает у терморецепторов динамическую реакцию. Холодовые рецепторы на быстрое охлаждение отвечают резким кратковременным учащением импульсов, после чего частота импульсации уменьшается и поддерживается в соответствии с установившейся температурой.

Предыдущие исследования свидетельствуют о том, что динамическая активность периферических термочувствительных афферентов играет важную роль в управлении функциональными системами, вовлеченными в поддержание температурного гомеостаза (Козырева, Верхогляд, 1997; Ko2yreva, 1997; Kozyreva et al., 2001), а также в изменении гормонального статуса организма при холодовом воздействии (Козырева и др., 1999; Kozyreva et al., 1999). Так, присутствие динамической активности холодовых рецепторов кожи при высоких скоростях охлаждения способствует более ранней активации симпатической нервной системы и уменьшению температурных порогов метаболической реакции организма при действии холода (Козырева, Верхогляд, 1989, 1997; Козырева и др., 1999; Kozyreva 1996, 2000; Kozyreva et al., 1999; Jansky et al., 1996, 1997; Vybiral 2000). Температурные пороги инициируемых термозащитных реакций характеризуют структуру терморегуляторного ответа и являются теми показателями, которые, прежде всего, зависят от активности терморецепторов при воздействии на организм холода или тепла.

Хорошо известно, что в реакциях организма на острое охлаждение непременно участвует симпатоадреналовая система. В литературе представлены данные, полученные разными исследователями, об увеличении активности симпатических волокон и, вследствие этого, повышенном выделении норадреналина при действии холода (Depocas, Behrens, 1978; Jansky. 1995; Kozyreva et al., 1999). В зависимости от глубины охлаждения активация симпатоадреналовой системы может быть различна. Выделившиеся катехоламины, взаимодействуя с адренорецепторами различных эффекторных органов, могут существенно изменить функциональные свойства структур, как вовлеченных в поддержание температурного гомеостаза, так и непосредственно не вовлеченных в этот процесс.

Согласно современным данным, регуляция иммунной системы находится под влиянием внешних факторов, действующих через нервную и эндокринную системы (Felten et al., 1992; Mudden, Felten, 1995; Nagatomi et al., 2000). В литературе имеются немногочисленные данные о том, что холод оказывает влияние и на иммунную систему. Однако, в основном, эти данные получены на животных подвергавшихся одновременно нескольким стрессорным воздействиям и очень глубокому охлаждению одновременно. Как правило, это плавающие в воде животные, испытывающие эмоциональный стресс, мышечную нагрузку и холодовое воздействие (Shu et al., 1993; Iyun, Tomson, 1996; Zhu et al., 1996). Температура тела в таких экспериментах часто вообще не контролировалась. В последнее время появились единичные исследования, свидетельствующие о влиянии холода на состояние иммунной системы человека. Однако вопрос, как изменяется собственно функция иммунной системы — ответ на антиген, в условиях холодового воздействия, остается практически не исследованным.

В связи с известными фактами о вовлечении симпатоадреналовой системы при действии холода на организм, можно полагать, что в модулирующем действии холода на иммунный ответ участвует симпатоадреналовая система. В пользу такого предположения свидетельствуют и представленные в литературе многочисленные факты о влиянии симпатоадренаповой системы и ее медиатора на различные параметры иммунной системы (Felten, Olschowka, 1987; Elenkov, Vizi, 1991; Mudden, Felten, 1995; Elenkov, 2000).

Эффект норадреналина, медиатора симпатической нервной системы, активирующейся при охлаждении, на терморегуляторные реакции и иммунный ответ может осуществляться через различные типы адренорецепторов. Выяснение адренергических механизмов формирования двух важнейших защитных функций организма на холодетерморегуляторной и иммунной, представляется важным. С точки зрения теоретической это позволяет проанализировать соотношение и вовлеченность адренорецепторных структур различных функциональных систем организма при формировании его ответа на холод. Учитывая необходимость для людей и животных осуществлять жизнедеятельность в условиях низких температур, особенно характерных для России, выяснение механизмов поддержания температурного гомеостаза и модуляции иммунного ответа на антиген в этих условиях имеет и практическое значение.

Цель и задачи исследования

.

Целью настоящего исследования являлось — выяснение адренорецепторных механизмов (роли адренорецепторов разного типа) в формировании терморегуляторных реакций и модуляции иммунного ответа в условиях действия холода на организм.

В связи с этим были поставлены следующие задачи:

1. Оценить параметры температурного гомеостаза и реакции иммунного ответа в термонейтральных условиях и при быстрых охлаждениях различной глубины.

2. Оценить модулирующее влияние экзогенного норадреналина на формирование терморегуляторных реакций и модуляцию иммунного ответа в термонейтральных условиях и при быстрых охлаждениях различной глубины.

3. Оценить модулирующее влияние аг, а2-, p-адреноблокаторов на формирование терморегуляторных реакций и модуляцию иммунного ответа в термонейтральных условиях и при быстрых охлаждениях различной глубины.

Положения, выносимые на защиту.

1. Температурный фактор оказывает влияние как на системы организма, вовлеченные в поддержание температурного гомеостаза, так и на системы, не принимающие в этом непосредственного участия. Иммуномодулирующая роль предшествующего иммунизации быстрого охлаждения зависит от его глубины и может быть как стимулирующей (неглубокое охлаждение), так и угнетающей (глубокое охлаждение).

2. Параметры терморегуляторных реакций на охлаждение, а также модулирующий эффект холодового воздействия на иммунный ответ контролируются различными типами адренорецепторов.

3. Реализация различных составляющих терморегуляторной реакции организма в условиях быстрого охлаждения, когда формирование эффекторных реакций происходит с участием динамической и статической компонент периферических терморецепторов, происходит с вовлечением разных типов адренорецепторов. Развитие констрикторной реакции кожных сосудов и сократительного термогенеза осуществляется преимущественно через сцадренорецепторы, усиление несократительного термогенеза через p-адренорецепторы.

4. Влияние холодового воздействия на антителообразующую функцию В-клеток селезенки осуществляется преимущественно через а2- и p-адренорецепторы. Стимуляция антителообразования при неглубоком охлаждении реализуется через а2-адренорецепторы, тогда как ее угнетение при глубоком охлаждении происходит при участии Р-адренорецепторов.

Научная новизна работы.

В результате проведённых исследований впервые было установлено:

1. В зависимости от глубины быстрое охлаждение может оказывать разнонаправленное влияние на иммунную систему организма. Предшествующее иммунизации неглубокое охлаждение стимулирует, а глубокое охлаждение, наоборот, угнетает антителообразующую функцию В-клеток селезенки.

2. Ионофоретическое введение экзогенного норадреналина в кожу в области приложения холодового стимула влияет на структуру терморегуляторного ответа, изменяя не только величины, но и температурные пороги холодозащитных реакций, инициируя более раннее развитие сосудистой и метаболической реакций. В то же время, дополнительное введение норадреналина, изменяет характер модулирующего влияния быстрого охлаждения на иммунный ответ.

3. Блокада cti-адренорецепторов, угнетая формирование констрикторной реакции кожных сосудов и сократительного термогенеза при действии холода на организм, не изменяет влияние глубокого и неглубокого быстрого охлаждения на антителообразующую функцию клеток селезёнки.

4. Блокада а2-адренорецепторов приводит к уменьшению температурных порогов и усилению обеих компонент метаболического ответа на холод — сократительного и несократительного термогенеза. Это сопровождается отменой стимулирующего влияния неглубокого быстрого охлаждения на антителообразующую функцию клеток селезёнки, но повышением уровня гемагглютининов.

5. Блокада (3-адренорецепторов, угнетая несократительный термогенез, приводит к усилению сократительного термогенеза. На фоне Р-адреноблокатора устраняется угнетающее влияние глубокого охлаждения на антителообразующую функцию клеток селезёнки и, в этих условиях, наоборот, быстрое охлаждение (как неглубокое, так и глубокое) оказывает стимулирующее влияние на антителообразование в селезенке и повышает уровень гемагглютининов крови.

Теоретическое и практическое значение работы.

Работа посвящена актуальной проблеме взаимодействия терморегуляторной и иммунной систем при холодовых воздействиях на организм, а также роли в этих процессах адренорецепторов разных типов. Получены новые фундаментальные знания о механизмах формирования терморегуляторного ответа и иммунного ответа при охлаждении. Показана роль ар, а2- и |3-адренорецепторов в функционировании терморегуляторной системы и их участие в формировании иммунного ответа при охлаждении. Получены новые данные о влиянии глубины охлаждения на изменение антителообразующей функции селезёнки и уровень гемагглютининов крови, а также о воздействии адреноблокаторов на эти иммунологические параметры. На основании полученных результатов предложено теоретическое объяснение участия адренорецепторов в развитии терморегуляторных реакций и модуляции иммунного ответа при быстром охлаждении, вовлекающем как динамическую, так и статическую активность холодовых рецепторов кожи.

Полученные результаты могут быть полезны при разработке методов вакцинации, трансплантационных технологий, а также для профессионального отбора и создания условий труда для людей, вынужденных по состоянию здоровья принимать лекарственные препараты верапамил и обзидан, механизм действия которых, как известно, опосредован блокадой соответственно ct|- и p-адренорецепторов. Полученные результаты используются при чтении лекций по физиологии студентам Новосибирского Государственного Университета.

Апробация работы.

Основные результаты были представлены на XVIII съезде физиологического общества им. Павлова И. П. (Казань, 2001 г.) — International Conference on Enviromental Ergonomics — 10 (Fukuoka, Japan, 2002) — IV съезде физиологов Сибири (Новосибирск, 2002) — XIX съезде физиологического общества им. Павлова И. П. (Екатеринбург, 2004 г.), Международном симпозиуме «Physiology and Pharmacology of Temperature Regulation» (Rhodos, Greece, 2004), V съезде физиологов Сибири (Томск, 2005) — Международном симпозиуме по адаптивной медицине (Москва, 2006).

Результаты работы опубликованы в 12 печатных трудах, из них статей в отечественных журналах — 2, зарубежных — 5.

Объём и структура диссертации.

Диссертация изложена на 161 страницах, включая 25 рисунков, 13 таблиц, и состоит из введения, обзора литературы, описания методов исследования и условий постановки экспериментов, результатов собственных исследований, обсуждения, выводов и библиографического указателя, включающего 324 работы.

выводы.

1. Температурный фактор оказывает влияние как на системы организма, вовлеченные в терморегуляторный ответ, так и на системы, не принимающие в нем непосредственного участие. Быстрое охлаждение может оказывать двоякое влияние на иммунную систему организма в зависимости от глубины охлаждающего воздействия, предшествующего иммунизации: неглубокое охлаждение стимулирует, а глубокое — угнетает антителообразующую функцию В-клеток селезенки.

2. Ионофоретическое введение экзогенного норадреналина влияет на структуру терморегуляторного ответа — ускоряет развитие сосудистой и метаболической холодозащитных реакций, в структуре метаболического ответа значительно усиливает несократительный термогенез. Норадреналин, оказывая влияние на иммунный ответ уже в термонейтральных условиях, может изменить влияние на него охлаждающего воздействия.

3. Блокада а|-адренорецепторов: а) приводит к значительному угнетению констрикторной реакции кожных сосудов и подавлению холодового сократительного термогенеза, что обусловливает усиление несократительного термогенезаб) не изменяет характер модулирующего влияния быстрого охлаждения разной глубины на параметры антителообразования в селезенке и крови.

4. Блокада а2-адренорецепторов: а) не изменяя сосудистую реакцию организма на быстрое охлаждение, приводит к уменьшению температурных порогов и усилению обеих компонент метаболического ответа на холодсократительного и несократительного термогенезаб) устраняет стимулирующий эффект неглубокого быстрого охлаждения на антителообразующую функцию клеток селезенки, повышая при этом уровень циркулирующих антител крови.

5. Блокада Р-адренорецепторов: а) не изменяя параметров сосудистой реакции, приводит к изменению структуры метаболического ответа: угнетает несократительный и стимулирует сократительный термогенезб) снимает угнетающее влияние глубокого охлаждения и усиливает стимулирующий эффект неглубокого охлаждения и на антителообразующую функцию клеток селезенкив) способствует стимулирующему влиянию охлаждения на количество гемагглютинов крови.

6. В условиях быстрого охлаждения организма, когда формирование эффекторных реакций происходит с участием динамической и статической компонент периферических терморецепторов, реализация различных составляющих реакции терморегуляторной и иммунной систем происходит с вовлечением разных типов адренорецепторов: а) развитие констрикторной реакции кожных сосудов и сократительного термогенеза осуществляется через ар адренорецепторы, усиление несократительного термогенеза через Р-адренорецепторы.

7. В модулирующем влиянии холода на антителообразующую функцию В-клеток селезенки участвуют преимущественно а2- и Р-адренорецепторы. Стимуляция антителобразования при неглубоком охлаждении реализуется через а2-адренорецепторы, тогда как ее угнетение при глубоком охлаждении происходит при участии Р-адренорецепторов. Через а2- и p-адренорецепторы реализуется также угнетающее действие симпатической нервной системы на уровень гемагглютининов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.Р., Лазарев А. И., Прокопенко Л. Г., Утешев Б. С. Иммуномодулирующее действие активаторов обмена углеводов и липидов при остром холодовом стрессе //Экспер. и клин, фармакол. -2002.-Т. 65, № 3. С. 50−55.
  2. Ю.И., Григорьев В. Н., Летягин Ф. Ю., Робинсон М. В., Сапин М. Р., Труфакин В. А., Шурлыгина А. В., Юрина Н. А. Функциональная морфология иммунной системы. Новосибирск. 1987. — 235с.
  3. В.Н., Лапша В. И., Стрелецкая Л. Р. Изменение содержания катехоламинов и энергетического обмена в миокарде у крыс при холодовых и эмоциональных стрессах //Физиол. журн. СССР. 1989. -Т.75. — С. 542−547.
  4. Л.В., Ильюченок Р. Ю. Моноэргические системы в регуляции иммунных реакций. Новосибирск. 1983. — 242 с.
  5. Д.Х., Хейлетт Д.Дж., Колер К. Влияние катехоламинов на ионную проницаемость клеточных мембран. В кн.: Рецепторы клеточных мембран для лекарств и гормонов. М.: Медицина, — 1983. -С.102−119.
  6. Л.С. Участие серотонинергической системы и надпочечников в регуляции динамики и соотношения Т- и В-розеткообразующих клеток в иммуногенезе //Иммунология. 1984, № 4. — С. 43−46
  7. Л.С. Пути реализации иммуномодулирующих эффектов медиаторов //Бюлл. эксп. биол. и мед. 1993, № 4. — С. 401−404.
  8. К.П. Общая энергетика, теплообмен и терморегуляция. В кн.: Основы энергетики организма. Т.1. Л.: Наука. -1990.
  9. К.П. Основные принципы регуляции температурного гомеостаза. Физиология терморегуляции. Руководство по физиологии. -Л.: Наука. 1984. — С. 113−138.
  10. Ю.Кац М. М., Лаврецкая Э. Ф. Рецепторы биогенных аминов мозга: структура, механизмы функционирования и взаимодействия с физиологически активными веществами. Биоорганическая химия (Итоги науки и техники). — 1986. — Т. 8. — С. 1−228.
  11. П.Козлов В. А., Кудаева О. Т., Наумова Е. Н., Елисеева Т. В. Методическое руководство по применению метода локального гемолиза к статистическому оцениванию результатов. Новосибирск: СО АМН СССР. — 1988. — 15 с.
  12. В.Л., Прахе И. В. Влияние блокаторов кальциевых каналов на температуру у мышей//Пат. физиол. и экспер. терапия. 1997, № 1. — С. 26−28.
  13. Т.В., Якименко М. А. Влияние адаптации к холоду на импульсную активность кожных терморецепторов //Физиол. журн. СССР. 1979. — Т. 65, № 11.-С. 1598−1602.
  14. Н.Козырева Т. В., Якименко М. А. Чувствительность кожных холодовых рецепторов к норадреналину у контрольных и адаптированных к холоду крыс //Физиол. Журн. СССР. 1984. — Т. 70, № 3. — С. ЗЗ 1−338.
  15. Т.В., Верхогляд Л. А. Функциональное значение динамической активности холодовых рецепторов кожи //Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1989. — LXXV, № 1. — С. 117−122.
  16. Т.В. Статическая и динамическая активность холодовых рецепторов кожи при инфузии норадреналина //Нейрофизиология. -1990.-Т. 22, № 1,-С. 69−75.
  17. П.Козырева Т. В. Терморецепция при адаптации организма к холоду. -Автореф. дисс. докт. биол. наук. 1991. — 33 с.
  18. Т.В., Верхогляд Л. А. Влияние скорости разогревания на общий метаболизм организма и тонус кожных сосудов //Физиол. журн. СССР. 1991. — Т. 77, № 1. — С.110−115.
  19. Т.В. Модуляция функциональных свойств терморецепторов кожи //Нейрофизиология. 1992. — Т. 24, № 5. — С. 542−552.
  20. Т.В., Верхогляд Л. А. Адаптация к холоду и структура терморегуляторного ответа при медленном и быстром охлаждении //Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1997. — Т. 83, № 11−12. — С. 137−142.
  21. Т.В., Ткаченко Е. Я., Козарук В. П. Влияние модуляции кожных терморецепторов норадреналином на терморегуляторный ответ при охлаждении //Бюлл. СО РАМН. 1997, № 3. — С. 29−34.
  22. Т.В., Ткаченко, Е.Я., Козарук В. П., Латышева Т. В., Гилинский М. А. Особенности реакции симпатоадреналовой системы крыс при разных типах охлаждения //Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1999. — Т. 85, № 11.- С. 1434−1439.
  23. Т.В., Елисеева Л. С., Вавилин В. А. Влияние скорости и глубины охлаждения на иммунный ответ и содержание кортикостерона в плазме крови //Росс, физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 2000. — Т. 86, № 12.-С. 1618−1623.
  24. Т.В., Елисеева Л. С. Иммунный ответ и содержание кортикостероидов при различных режимах охлаждения //Бюлл. экспер. биол. и мед. 2002.- Т. 133, № 4. — С. 184−187.
  25. Т.В., ЕлисееваЛ.С., Злыгостева С. В. Охлаждающее воздействие в разные периоды иммуногенеза и антигенсвязывающая функция клеток селезенки у крыс //Росс, физиол. журн. 2003. Т. 84, N 1.-С. 83−89.
  26. Т.В., Ткаченко Е. Я., Елисеева JI.C., Симонова Т.Г., Козарук
  27. B.П.,. Гонсалес Е. В, Ломакина С. В. Роль терморецепции в функциональных изменениях эффекторных систем при термических воздействиях на организм //Бюлл. СО РАМН. 2004, № 2. — С. 123−130.
  28. Е.А., Шхинек Э. К. Проблема нейрогуморальной модуляции функции иммунной системы. В кн.: Гормоны и иммунная система. Л.: Наука. — 1988. — С. 5−35.
  29. К.Ф. функциональное состояние симпатоадреналовой системы при кратковременном и длительном воздушном охлаждении ненаркотизированных крыс. В кн.: Нейрогуморальные механизмы реакции организма на охлаждение. Л. — 1973. Вып. 121. — С. 79.
  30. А.Я. Молекулярная иммунология. М.: Высшая школа. -1985.-287 с.
  31. Минут-Сорохтина О. П. Физиология терморецепции. М.: Медгиз. -1972.
  32. Минут-Сорохтина О. П. Современное состояние изучения терморецепции //Физиол. журн. СССР. 1979. — Т. 65. — С. 1562−1569.
  33. П.А., Черток В. М. Гистофизиология сосудистых механизмов мозгового кровообращения. М.: Медицина. — 1980. — 199с.
  34. А.Д. Вегетативная рефлекторная дуга. Л.: Наука. — 1978. -231с.
  35. А.Д., Пушкарев Ю. П. Характеристика медиаторных превращений. Л.: Наука. — 1980. — 222 с.
  36. А.Д. Автономный (Вегетативный) тонус. Нейрофизиологический аспект //Успехи физиол. наук. 1986. — Т. 17.1. C. 3−22.
  37. Ю.Ф., Хаскин В. В. Адренергический контроль термогенеза при экспериментальной и природной адаптации животных к холоду // Успехи физиол. наук. 1979. — Т. 10. — С. 121−142.
  38. Р.В. Иммунология. М. Медицина. — 1982. — 368 с.
  39. П.В., Шимановский Н. Л. Рецепторы. М.: Медицина. — 1987. -398 с.
  40. Е.М. Функция симпатоадреналовой системы и обмен катехоламинов при охлаждении. В кн.: Морфо-физиол. и биохим. Механизмы адаптации животных к факторам среды. Краснодар. -1972.- С. 245−245.
  41. Е.Я. Влияние биогенных аминов на терморегуляторные реакции организма при различны способах введения. В кн.: IY съезд физиологов Сибири: Новосибирск. 2002. — С. 275−276.
  42. .С., Боровкина И. Л., Быстрова Н. А., Авакян А. Р. Иммуномодулирующее действие препаратов, А и Е при глубоком локальном охлаждении //Экспер. и клин, фармакол. 2001. — Т.64 (3). -С.56−60.
  43. Я.С. Изучение синтеза антител одиночными клетками к растворимым белкам //Бюлл. экспер. биол. и мед. 1966. — Т. 12. — С. 8892.
  44. Н.А. Антиген-независимые морфологические изменения в лимфоидных органах в условиях стресса и изменений гормонального фона. В кн.: Функциональная морфология иммунной системы. -Новосибирск: Наука. 1987. — С. 95−109.
  45. М.А., Ткаченко Е. Я., Иванов К. П., Слоним А. Д. О повышении теплопродукции мышечных сокращений под влиянием норадреналина//ДАН СССР. 1971. — Т. 200.- С 1007—1008.
  46. М.А. Установочная точка температурной регуляции и ее физиологическое значение. Матер. XIII съезда Всесоюз. Физиол. общества им. И. П. Павлова. Л.: Наука.- 1979. — С. 388−390.
  47. Aarstad Н., Gaudernack G., Seljelid R.J. Stress causes reduced natural killer cell activity in mice //Scand. J. Immunol. 1983. — Vol.18. — P.461−464.
  48. Abbas A.K., Murphy K.M., Sher A. Functional diversity of helper T lymphocytes //Nature. 1996. — Vol. 383. — P. 787−793.
  49. Abraham E. Hemorrhage increases cytokine expression in lung mononuclear cells in mice: Involvement of catecholamines in nuclear factor-kappaB regulation and cytokine expression //J. Clin. Invest. 1997. — Vol. 99. — P. 1516−1524.
  50. Ackerman K.D., Felten S.Y., Bellinger D.L., FeJten D.L., Noradrenergic sympathetic innervation of the spleen: III. Development of innervation in the rat spleen //J. Neurosci. Res. 1987. — Vol. 18. — P. 49−54.
  51. Ader R., Cohen N. Behaviorally conditioned immunosuppression and murine systemic lupus erythematosus //Science. 1982. — Vol.215. — P. 1534−1536.
  52. Ader R., Felten D., Cohen N. Interactions between the brain and the immune system //Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1990. — Vol. 30. — P. 561−602.
  53. Allen D.E., Gelai M. Alpha 2-adrenoceptor antagonism attenuates the diuretic response to acute cold exposure //Am. J. Physiol. 1993. — Vol. 265. — P. R689-R696.
  54. Andersson K.-E. Drugs blocking adrenoceptors //Acta Med. Scand. 1982. -Suppl. 665. — P. 9−17.
  55. Aviles H., Monroy F.P. Immunomodulatory effects of cold stress on mice infected intraperitoneally with a 50% lethal dose of Toxoplasma gondii //Neuroimmunomodulation. 2001. — Vol. 9(1). — P.6−12.
  56. Baerwald С., Graefe С., von Wichert P. Krause A. Decreased density of adrenergic receptors on peripheral blood mononuclear cells in patients with rheumatoid arthritis //J. Rheumatol. 1992. — Vol. 19. — P. 204−210.
  57. Baker A.J., Fuller R.W. Loss of response to beta-adrenoceptor agonists during the maturation of human monocytes to macrophages in vitro //J. Leukocyte Biol. 1995. — Vol. 57. — P. 395−400.
  58. Banks W.A., Kastin A.J. Saturable transport of peptides across the blood-brain barrier//Life Sci. 1987. — Vol. 41. — P. 1319−1338.
  59. Banks W.A., Kastin A.J. Blood to brain transport of interleukin links the immune and central nervous systems //Life Sci. 1991. — Vol. 48. — P. 117 121.
  60. Bazhenov Iu.I. Mikhailova L.R. The participation of brain noradrenergic structures in thermoregulation during cold adaptation //Fiziol. Zh. SSSR.im.I.M.Sechenova. 1990. — Vol. 76, № 4. — P. 523−527.
  61. Belousova G.P. Oxygen tension in the skeletal muscles of rats adapted to the cold //Fiziol. Zh. SSSR. im I.M. Sechenova. 1983. — Vol. 69, № 1. — P. 122 126.
  62. Bellinger D.L., Felten S.Y., Collier T.J., Felten D.L. Noradrenergic sympathetic innervation of the spleen: IV. Morphometric analysis in adult and aged F344 rats //J. Neurosci. Res. 1987. — Vol. 18. — P. 55−59.
  63. Bellinger D.L., Felten S.Y., Felten D.L. Maintenance of noradrenergic sympathetic innervation in the involuted thymus of the aged Fischer 344 rat //Brain Behav. Immun. 1988. — Vol. 2. — P. 133−150.
  64. BeIlinger D.L., Lorton D., Felten S.Y., Felten D.L. Innervation of lymphoid organs and implications in development, aging, and autoimmunity //Int. J. Immunopharmacol. 1992. — Vol. 14, № 3. — P. 329−344.
  65. Benham C.D., Gunthorpe M.J., Davis J.B. TRPV channels as temperature sensors //Cell Calcium 2003. — Vol. 33. — P.479−487.
  66. Bergmann M., Sautner T. Immunomodulatory effects of vasoactive catecholamines //Wien Kin. Wochenschr. 2002. — Vol. 114. — P. 752−761.
  67. Bergquist, J., Tarkowski, A., Ekman, R., Ewing, A. Discovery of endogenous catecholamine in lymphocytes and evidence for catecholamine regulation of lymphocyte function via an autocrine loop //Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. — P. 12 912−12 916.
  68. Bermudez L.E., Wu M., Young L.S. Effect of stress-related hormones on macrophage receptors and response to tumor necrosis factor //Lymphokine Res. 1990. — Vol. 9. — P. 137−145.
  69. Besedovsky H.O., del Rey A. Immune-neuro-endocrine interactions: facts and hypothesis //Endocrin. Rev. 1996. — Vol. 17, № 1. — P. 64−102.
  70. Blennerhassett M.G., Bienenstock J. Sympathetic nerve contact causes maturation of mast cells in vitro //J. Neurobiol. 1998. — Vol. 35, № 2. — P. 173−182.
  71. Bligh J. Neuronal models of mammalian temperature regulation. In: Essays on temperature regulation. Ed. Bligh J., Moore R.E. 1972. — P. 105−120.
  72. Bly J.E., Clem L.W. Temperature-mediated processes in teleost immunity: in vitro immunosuppression induced by in vivo low temperature in channel catfish //Vet Immunol. Immunopathol. 1991. — Vol. 28. — P.365−377.
  73. Borda E.S., Genaro A.M., Cremaschi G.A., Sales M.E., Stein-Borda L. Beta-adrenergic inhibitory effect of alloimmune antibody on isolated oviductal tract of mice //Eur. J. Pharmacol. 1984. — Vol. 100, № 2. — P. 195 200.
  74. Braun H.A., Schaffer K., Wissing H. Theories and models of temperature transduction. In: Thermoreception and Thermoregulation. Ed. Bligh J., Voigt. K. Springer Verlag — Berlin — New York — London — Paris. — 1990. -P.19−29.
  75. Brenner I., Shek P.N., Zamecnik J., Shephard R.J. Stress hormones and the immunological responses to heat and exercise //Int. J. Sports Med. 1998. -Vol. 19, № 2. — P. 130−143.
  76. Brenner I., Castellani J.W., Gabaree C., Young A.J., Zamechik J., Shephard R.J., Shek P.N. Immune changes in human during cold exposure: effects of prior heating and exercise //J. Appl.Physiol. 1999. — Vol. 2- P. 699−710.
  77. Brodde O-E., Mitchel M.C. Adrenergic and muscarinic receptors in the human heart//Pharmacol. Rev. 1999. — Vol. 51. (Issue 4). — P. 651−690.
  78. Bruck K., Wunnenberg W., Gallmeier H., Ziehm B. Shift of threshold temperature for shivering and heat pelypnea as a model of thermal adaptation //Pflug. Arch. 1970. — Vol. 321. — P. 159−172.
  79. Bruck К., Zeisberger E. Adaptive changes in thermoregulation and their neuropharmacology. basis //Pharmacol. Ther. 1986. — Vol. 35. — P. 163 215.
  80. Bruk K., Zeisberger E. Adaptive changes in thermoregulation and their neuropharmacological basis //Pharmac. Ther. 1987. — Vol. 35. — P.163−215.
  81. By.und D.B., Eikenberg D.C., Hieble J.P., Langer S.Z., Lefkowitz J.R., Minneman K.P., Molinoff P.B., Ruffolo R.R., Trendelenburg U. International Union of Pharmacology nomenclature of adrenoreceptors //Pharmacol. Rev. 1994. — Vol. 46. — P. 121−136.
  82. Cabanac M. Thermoregulation //Ann. Rev. Physiol. 1975. — Vol. 37. — P. 415−439.
  83. Cao L., Hudson C.A., Lawrence D.A. Acute cold/restraint stress inhibits host resistance to Listeria monocytogenes via beta 1-adrenergic receptors //Brain Behav Immun. 2003. — Vol. 17, № 2. — P. 121−133.
  84. Carpenter D.O. Membrane potential produced directly by the Na pump in Aplisia neurons //Сотр. Biochem. Physiol. 1970. — Vol. 35. — P. 371−385.
  85. Cazaux C. A, Sterin-Borda L., Gorelik G., Cremaschi G.A. Down-regulation of beta-adrenergic receptors induced by mitogen activation of intracellularsignaling events in lymphocytes //FEBS Lett. 1995. — Vol. 364. — P. 120 124.
  86. Cheng G.J., Morrow-Tesch J.L., Beller D.I., Levy E.M., Black P.H. Immunosuppression in mice induced by cold water stress //Brain Behav Immun. 1990. — Vol. 4, № 4. — P.278−291.
  87. Cicho M., Chadzinska M., Ksiazek A., Konarzewski M. Delayed effects of cold stress on immune response in laboratory mice //Proc. R. Soc. Lond Biol. Sci. 2002. — Vol. 269. — P. 1493−1497.
  88. Chotani M.A., Flavahan S., Mitra S., Daunt D., Flavahan N.A. Silent alpha (2C)-adrenergic receptors enable-induced vasoconstriction in cutaneous arteries //Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 2000. — Vol. 278. — P. H1075−83.
  89. J. E., Lysle D. Т., Kucinski B. J., Rabin B. S. Evidence that shock-induced immune suppression is mediated by adrenal hormones and peripheral b-adrenergic receptors //Pharmacol. Biochem. Behav. 1990. -Vol.36. — P. 645−651.
  90. Cupic V., Colic M., Vucevic D., Varagic V.M. Immunomodulatory effect of xylazine, an alpha (2) adrenergic agonist, on rat spleen cells in culture HI. Neuroimmunol. 2001. — Vol. 113, № 1. — P. 19−29.
  91. Davies S.N., Goldsmitt G.E., Hellon R.F., Mitchel D. Facial sensitivity to rates of temperature change. Neurophysiological and psychological evidence from cats and humans //J. Physiol. 1983. — Vol. 344, № 1. — P. 161−175.
  92. Davies S.N., Goldsmitt G.E., Hellon R.F., Mitchel D. Sensory processing in a thermal afferent pathways //J. Neurophysiol. 1985. — Vol. 53. — P. 429 434.
  93. Depocas F., Behrens W.A. Levels of noradrenaline in plasma during Thermogenesis induced by cold-exposure or by noradrenaline infusion in warm- and cold-acclimated rats. In: Effect of thermogenesis. Basel, Stuttgart. 1978. — P. 135−146.
  94. De Blasi B.A., Parruti G., Sailese M. Regulation of G protein-coupled receptor kinase subtypes in activated T lymphocytes. Selective increase of beta-adrenergic receptor kinase 1 and 2 //J. Clin. Invest. 1995. — Vol. 95. -P. 203−210.
  95. Dobbs С. M., Vasquez M., Glaser R., Sheridan J. F. Mechanisms of stress-induced modulation of viral pathogenesis and immunity //J. NeuroimmunoJ. 1993. — Vol. 48. — P. 151−160.
  96. Duclaux R., Kenshalo D.R. Response characteristics of cutaneous warm receptors in monkey //J. Neurophysiol. 1980. — Vol. 43. — P. 1−15.
  97. Duclaux R., Schafer K., Hensel H., Response of cold receptors to low skin temperature in nose of the cat HI. Neurophysiol. 1980. — Vol. 43. — P. 1571−1577.
  98. Elenkov I.J., Vizi E.S. Presynaptic modulation of release of noradrenaline from the sympathetic nerve terminals in the rat spleen //Neuropharmacology 1991. — Vol. 30. — P. 1319−1324.
  99. Elenkov I.J., Kovacs K., Duda E" Stark E., Vizi E.S. Presynaptic inhibitory effect of TNF-alpha on the release of noradrenaline in isolated median eminence //J. Neuroimmunol. 1992. — Vol. 41. — P. 117−120.
  100. Elenkov I.J., Hasko G., Kovacs K.J., Vizi E.S., Modulation of lipopolysaccharide-induced tumor necrosis factor-alpha production by selective alpha- and beta-adrenergic drugs in mice //J. Neuroimmunol. -1995.-Vol. 61.-P. 123−131.
  101. Elenkov I J., Hoffman J., Wilder R.L. Does differential neuroendocrine control of cytokine production govern the expression of autoimmune diseases in pregnancy and the postpartum period? //Mol. Med. Today. 1997.-Vol.3.-P. 379−383.
  102. Elenkov I J., Webster E., Papanicolaou D.A., Fleisher T.A., Chrousos G.P., Wilder R. L, Histamine potently suppresses human IL-12 and stimulates 1L-10 production via H2 receptors //J. Immunol. 1998. — Vol. 161.-P. 2586−2593.
  103. Elenkov I.J., Chrousos G.P. Stress hormones, Th|/Th2 patterns, pro/anti-inflammatory cytokines and susceptibility to disease //Trends. Endocrinol. Metab. 1999. — Vol. 10. — P. 359−368.
  104. Elenkov I.J., Webster E.L., Torpy D.J., Chrousos G.P. Stress, corticotropin-releasing hormone, glucocorticoids, and the immune/inflammatory response: Acute and chronic effects //Ann. N.Y. Acad. Sci. 1999. — Vol. 876. — P. 1−13.
  105. Elenkov I.J. The Sympathetic Nerve An Integrative Interface between Two Supersystems: The Brain and the Immune System //Pharmacol. Rev. — 2000. -Vol. 52. — P. 595−638.
  106. Fearon D.T., Locksley R.M., The instructive role of innate immunity in the acquired immune response //Science 1996. — Vol. 272. — P. 50−54.
  107. Feldman R.D., Hunninghake G.W., McArdle W.L. Beta-adrenergic-receptor-mediated suppression of interleukin 2 receptors in human lymphocytes //J. Immunol. 1987. — Vol. 139. — P. 3355−3359.
  108. Felten D.L., Livnat S., Felten S.Y., Carlson S.L., Bellinger D.L., Yeh P. Sympathetic innervation of lymph nodes in mice //Brain Res. Bull. -1984. Vol. 13. — P. 693−699.
  109. Felten D.L., Felten S.Y., Carlson S.L., Olschowka J.A., Livnat S. Noradrenergic and peptidergic innervation of lymphoid tissue //J. Immunol. 1985. — Vol. 135. — P. 755−765.
  110. Felten S.Y., Bellinger D.L., Collier T.J., Coleman P.D., Felten D.L. Decreased sympathetic innervation of spleen in aged Fischer 344 rats И Neurobiol Aging. 1987b. — Vol. 8. — P. 159−165.
  111. Felten S.Y., Olschowka J. Noradrenergic sympathetic innervation of the spleen: II. Tyrosine hydroxylase (TH)-positive nerve terminals form synaptic-like contacts on lymphocytes in the splenic white pulp //J. Neurosci. Res. 1987. — Vol. 18. — P. 37−48.
  112. Felten D.L., Felten S.Y., Bellinger D.L., Lorton D. Noradrenergic and peptidergic innervation of secondary lymphoid organs: Role in experimental rheumatoid arthritis //Eur. J. Clin. Invest. 1992. — Vol. 22. — P. 37−41.
  113. Flavahan N.A., Lindblad L.E., Verbeuren T.J., Shepherd J.T., Vanhoutte P.M. Cooling and alpha-1- and alpha-2-adrenergic responses in cutaneous veins: role of receptor reserve //Am. J. Physiol. 1985. — Vol. 249. — P. 950−955.
  114. Flavahan N.A., Vanhoutte P.M. Effect of cooling on alpha-1- and alpha-2-adrenergic responses in canine saphenous and femoral veins //J. Pharmacol. Exp. Ther. 1986b. — Vol. 238. — P. 139−147.
  115. Foster D.O. Participation of alpha-adrenoreceptors in brown adipose tissue thermogenesis in vivo //Int. J. Obes. 1985. — Vol. 9, № 2. — P. 25−29.
  116. Frank J.W., Carroll J.A., Allee G.L., Zannelli M.E. The effects of thermal environment and spray-dried plasma on the acute-phase response of pigs challenged with lipopolysaccharide //J. Anim Sci. 2003. — Vol. 81, № 5.-P. 1166−1174.
  117. Fujiwara R., Shibata H., Komori Т., Yokoyama M.M., Okazaki Y. The mechanisms of immune suppression by high-pressure stress in mice //J. Pharm. Physiol. -1999. Vol. 52. — P. 1397−1404.
  118. Gadient R.A., Otten U. Postnatal expression of interleukin-6 (IL-6) and IL-6 receptor (IL-6R) mRNAs in rat sympathetic and sensory ganglia //Brain Res. 1996. — Vol. 724. — P. 41−46.
  119. I.T., Нас E.E., Szreder Z.A. Comparative study on the effect of verapamil and prazosin on the thermoregulatory responses induced by cold or exogenous noradrenaline //Gen. Pharmacol. 1991. — Vol. 22, № 3. -P. 475−478.
  120. Gets J., Monroy F.P. Effects of alpha- and beta-adrenergic agonists on Toxoplasma gondii infection in murine macrophages //J. Parasitol. 2005. -Vol. 91, № 1. — P.193−195.
  121. Goldberg M.R., Hollister A.S., Robertson D. Influence of yohimbine on blood pressure, autonomic reflexes, and plasma catecholamines in human //Hypertension. 1983. — Vol. 5, № 5. — P. 772−778.
  122. Goldshtein M.M. Characteristics of the beta-adrenoreceptors on the splenic B-lymphocytes of mice immunized with a protein antigen //Bull. Eksp. Biol. Med. 1987. — Vol. 104, № 10. — P. 500−502.
  123. Griffin J.D., Kaple M.L., Chow A.R., Boulant J.A. Cellular mechanisms for neuronal thermosensitivity in the rat hypothalamus //J. Physiol. (London). 1996. — Vol. 492. — P.231−242.
  124. Griffin J.D., Central thermosensitivity and the integrative responses of hypothalamic neurons //J. Therm. Biol. 2004. — Vol. 29, № 7/8. — P. 327 331.
  125. Griffin J.D., Saper C.B., Bouland J.A. Synaptic and morphological characteristics of temperature sensitive and -insensitive rat hypothalamic neurons //J. Physiol. (London) — 2004. — Vol. 537 — P. 521−535.
  126. Guimaraes S., Moura D. Vascular adrenoreceptors: An Update //Pharmacol. Rev. 2001. — Vol. 53. — P. 319−356.
  127. Guler A.D., Lee H., Iida Т., Shimizu I., Tominaga M., Caterina M. Heat-evoked activation of the ion channel, TRPV4 //J. Neurosci. 2002. -Vol. 22. — P. 6408- 6414.
  128. Gunn T.R., Gluckman P.D. The endocrine control of the onset of thermogenesis at birth //Bailliers Clin. Endocrinol.Metab. 1989. — Vol. 3, № 3.- P. 869−886.
  129. Gutierrez E.G., Banks W.A., Kastin A.J. Murine tumor necrosis factor alpha is transported from blood to brain in the mouse //J. Neuroimmunol. -1993.-Vol. 47.-P. 169−176.
  130. Guz L., Kozinska A. Influence of temperature on the immune response of carp to lipopolysaccharide and whole cell Aeromonas bestiarum vaccines //Pol. J. Vet Sci. 2003. — Vol. 6. — P.18−20.
  131. Hammel H.T., Regulation of internal body temperature //Am. Rev. Physiol. 1968. — Vol. 30. — P. 641−710.
  132. Hanson D.F. Fever and the immune response: the effects of physiological temperature on primary murine splenic T-cell responses in vivo //J. Immunol. 1993. — Vol. 151. — P. 436−442.
  133. Hanson D.F. Fever, temperature, and the immune response //Ann. N.Y. Acad. Sci. Thermoregulation. Ed. C.M. Blatteis. 1997. P. 453−464.
  134. Harada K., Ohashi K., Fujimura A., Kumagai Y., Ebihara A. Effect of alpha-adrenoceptor antogonists, prazosin and urapidil, on figner vasoconstrictor response to cold stimulation //Eur. J. Clin. Pharmacol. -1996.-Vol. 49.-P. 371−375
  135. Hart R.P., Liu C., Shadiack A.M., McCormack R.J., Jonakait G.M. An mRNA homologous to interleukin-1 receptor type I is expressed in cultured rat sympathetic ganglia //J. Neuroimmunol. 1993. — Vol. 44. — P. 49−56.
  136. Hasko G., Elenkov I.J., Visi E.S. Presynaptic receptors involved in the modulation of release of noradrenaline from the sympathetic nerve terminals of the rat thymus //Immunol. Lett. 1995b. — Vol. 47. — P. 133 137.
  137. Hasko G., Nemeth Z.H., Szabo C., Zsilla G., Salzman A.L., Vizi E.S. Isoproterenol inhibits 11−10, TNF-alpha, and nitric oxide production in RAW 264.7 macrophages //Brain Res. Bull. 1998a. — Vol. 45. — P. 183−187.
  138. Hasko G., Szabo C. Regulation of cytokine and chemokine production by transmitters and co-transmitters of the autonomic nervous system //Biochem. Pharmacol. 1998. — Vol. 56. — P. 1079−1087.
  139. Hasko G., Szabo C., Nemeth Z.H., Salzman A.L., Vizi E.S. Stimulation of beta-adrenoceptors inhibits endotoxin-induced IL-12 production in normal and IL-10 deficient mice //J Neuroimmunol. 1998c. -Vol. 88.-P. 57−61.
  140. Hennig J., Laschefski U., Becker H., Rammsayer Т., Netter P. Immune cell and Cortisol responses to physically and pharmacologically induced lowering of core body temperature //Neuropsychobiology. 1993. -Vol. 28. — P. 82−86.
  141. Hensel H. Neural processes in thermoregulation //Physiol. Rev. -1973. Vol. 53, № 4. — P. 948−1017.
  142. Hensel H., Andres K.H., von During M. Srtucture and function of cold receptors//Pflug. Arch. 1974. — Vol. 352. — H. 1−10.
  143. Hensel H. Neural processes in long term thermal adaptation //Fed. Proc. — 1980. — Vol. 40, № 14. — P. 2830−2834.
  144. Hensel H., Schaffer K. Static and dynamic activity of cold receptors in cats after long-term exposure to various temperatures //Pflug. Arch. 1982. -Vol. 392, № 3. — P. 291.
  145. Hetier E., Ayala J., Bousseau A., Prochiantz A. Modulation of interleukin-1 and tumor necrosis factor expression by beta-adrenergic agonists in mouse ameboid microglial cells //Exp. Brain Res. 1991. — Vol. 86. P. 407−413
  146. Hodgson R.M., Clothier R.H., Ruden L.N., Balls. The effects of alpha and beta adrenergic agents on spleen cell antigen binding in four amphibian species //Eur. J. Immunol. 1978. — Vol. 8, № 5. — P. 348−351.
  147. Hodgson R.M., Clothier R.H., Balls M. Adrenoreceptors, cyclic nucleotides, and the regulation of spleen cell antigen binding in urodele and anuran amphibians //Eur. J. Immunol. 1979. — Vol. 9, № 4. — P. 289−293.
  148. Idova G., Cheido M., Devoino L. Modulation of the immune response by changing neuromediator systems activity under stress //Int. J. Immunopharmacol. 1997. — V. 19, N9−10. — P. 535−540.
  149. Iggo A. Cutaneous thermoreceptors in primates and sub- primates //J. Physiol. 1969. — Vol. 200. — P. 403−430.
  150. Iggo A. Cutaneous and subcutaneous sense organs //Brit. Med. Bull. -1977.-Vol. 33.-P. 97−102.
  151. Irike M., Kozawa E. Patterns of differentiation in various sympathetic efferents induced by Hypoxic and by central thermal stimulation in decerebrated rabbits //Pflug. Arch. 1976. — Vol. 362. — P. 101−108.
  152. Isova Т., Ohira H., Murashima S. Reactivity of immune, endocrine and cardiovascular parameters to active and passive acute stress //Biol Psychol. 2004. — Vol. 65, № 2. — P.101−120.
  153. Iyun B.F., Tomson G. Acute respiratory infections-mothers percentions of etiology and treatment in south-western Nigeria //Soc. Sci. Med. 1996. — Vol. 42. — P. 437−445.
  154. Jankovic B.D., Janezic A., Popeskovic L, Brown adipose tissue and immunity. Effect of neonatal adipectomy on humoral and cellular immune reactions in the rat //Immunology. 1975. — Vol. 28. — P. 597−609.
  155. Jansky L. Non-shivering thermogenesis and its thermoregulatory significance //Biol Rev Camb Philos Soc. 1973. — Vol. 48, № 1. — P.85−132.
  156. Jansky L. Thermoregulatory responses to cold stress of various intensity //Arch Exp Veterinarmed. 1984. — Vol. 38, № 3. — P.353−358.
  157. Jansky L. Humoral Thermogenesis and its role in maintaining energy balance //Physiol. Rev. 1995. — Vol. 75. — P. 237−259.
  158. Jansky L-, Vybiral S., Stich V., Sramek P., Kvitek J., Lesna I., Simeckova M. Human humoral thermogenesis In: Annals of the New York Academy of Sciences. Thermoregulation. Ed. C. Blatteis. 1997. — Vol. 813. — P. 689−696.
  159. Jensen J., Brors O., Dahl H.A. Different beta-adrenergic receptors density in defferent rat skeletal muscle fibre types //Pharmacol. Toxicol. -1995.-Vol. 76. P. 380−385.
  160. Jordt S.-E., McKemy D.D., Julius D. Lessions from peppers and peppermint: the molecular logic of thermosensation //Curr. Opin. Neurobiol. -2003.-Vol. 13.-P. 1−6.
  161. Kable J.W., Murrin C., Bylund D.B. In vivo gene modification elucidates subtype-specific functions of (^-adrenergic receptors //Pharmacol. Exp. Ther. 2000. — Vol. 293. — P. 1−7.
  162. Kaliner M., Orange R.P., Austen K.F. Immunological release of histamine and slow reacting substance of anaphylaxis from human lung. IV Enhancement of cholinergic and alpha adrenergic stimulation Hi. Exp. Med. 1972.-Vol. 136. -P. 556−670.
  163. Kalsner S. Presynaptic receptors and autonomic effectors //Ann. N.Y. Acad. Sci. 1990. — Vol. 604. — P. 23−39.
  164. Kasprowicz D.J., Kohm A.P., Berton M.T. Stimulation of the В cell receptor, CD86 (B7−2), and the (^-adrenergic receptor intrinsically modulates the level of IgGl and IgE produced her В cell //J. Immunol. -2000.-Vol. 165.-P. 680−690.
  165. Kenshalo D.R., Duclaux R. Response characteristics of cutaneous cold receptors in the monkey //J. Neurophysiol. 1977. — Vol. 86. — P. 902−910.
  166. Kharkevich D.D., Kadagizde Z.G. Effect of the stimulation of lymphocyte adrenoreceptors on antitumor immunity in vitro //Farmacol. Toksikol. 1989. — Vol. 52, № 1. — P. 61−64.
  167. Kizaki Т., Oh-ishi S., Ohno H. Acute cold stress inducted suppressor macrophages in mice //J. Appl. Physiol. 1996. — Vol. 81. — P. 393−399.
  168. Kohm A.P., Sanders V.M. Suppression of antigen-specific Th2 cell-dependent IgM and IgGl production following norepinephrene depletion in vivo //J. Immunol. 1999. — Vol. 162. — P. 5299−5308.
  169. Kohm A.P., Sanders V.M. Norepinephrine: a messenger from the brain to the immune system //Immunol. Today. 2000. — Vol. 21. — P. 539 542.
  170. Kohm A.P., Sanders V.M. Norepinephrine and beta 2-adrenergic receptor stimulation regulate CD4+ T and В lymphocyte function in vitro and in vivo //Pharmacol Rev. 2001. — Vol. 53, № 4. — P. 487−525.
  171. Kolpakov V.V., Ananyev V.N., Fateeva N.M., Zhidkikh A.S. Adreno-and cholinoreactivity of the vascular system under the influence of low temperature //Int. J. Circumpolar. Health. 2001. — Vol. 60, № 4. — P. 506 511.
  172. Koff W.C., Dunegan M.A. Neuroendocrine hormones suppress macrophage-mediated lysis of herpes simplex virus-infected cells //J. Immunol. 1986. — Vol. 136. — P. 705−709.
  173. Kozlov V.K., Arkhangel’skaia S.L., Vasil’eva E.F. Beta-adrenoreceptors on the surface membranes of lymphocytes and macrophages //Biul. Eksp. Biol. Med. 1978. — Vol. 85, № 6. — P. 723−725.
  174. Kozyreva T.V. Modulating of the functional properties of skin thermoreceptors. //Neurophysiology (Kiev). 1992. — Vol. 24, № 5. — P. 350 357.
  175. Kozyreva T.V., Pierau Fr.-K. Effect to cold adaptation and noradrenaline on thermosensitivity of rat hypothalamic neuron studied in vitro //Neurophysiology. 1994. — Vol. 26, № 3. — P. 142−146.
  176. Kozyreva T.V. Cooling rate and threshold of metabolic and heat loss responses before adaptation to cold and after it. In: Environmental
  177. Ergonomics: Recent progress and new frontiers. Ed. Y. Epstein Freund Publishing House, Ltd. (London), 1996, p. 251−254.
  178. Kozyreva T.V. Two periods in the response of the skin cold receptors to intravenous infusion of noradrenaline. In: Annals of the New York Academy of Sciences. Thermoregulation. Ed. C. Blatteis. 1997. — Vol. 813. -P. 176−183.
  179. Kozyreva T.V., Tkachenko E.Ya., Kozaruk V.P., Latysheva T.V., Gilinsky M.A. The effects of slow and rapid cooling on catecholamine concentration in arterial plasma and skin //Am. J. Physiol. Regul. Integr. -1999. Vol. 45, № 6. — RI668-RI672.
  180. Kozyreva T.V. The functional significance of the dynamic activity of skin thermoreceptors in physiological responses to cold. In: Environmental Ergonomics. IX. Ed. J. Werner, M. Hexamer. Aacen. Shaker Verlag, Germany, 2000, p. 143−148.
  181. Kozyreva T.V., Eliseeva L.S. Immune response in cold exposures of different types //J. Thermal. Biology. 2000. — Vol. 25. — P. 401−444.
  182. Kozyreva T.V., Tkachenko E.Ya., Eliseeva L.S., Kozaruk V.P., Polyakova E.V. A possible mechanism for noradrenaline involvement in the effector responses to cold exposure //J. Thermal. Biology. 2001. — Vol. 26. -P. 505−512.
  183. Kozyreva T.V. Neurophysiological aspects of the long-term adaptation to cold in mammals: The role of central and peripheral thermoreceptors //J. Therm. Biol. 2006. — Vol. 31. — P. 105−114.
  184. Kulinskii V.I., Medvedev A.I., Kuntsevich A.K. Stimulation of mitochondrial oxidative enzymes in acute cooling and its catecholamine mechanisms //Vopr. Med. Khim. 1986. — Vol. 32, № 5. — P. 84−889.
  185. Langer S.Z. Presynaptic regulation of the release of catecholamines //Pharmacol. Rev. 1980. — Vol. 32. — P.337−362.
  186. LeBlanc J., Lafrance L., Villemaire A., Roberge C., Vallieres J., Rousseau S. Catecholamines and cold adaptation //Environment. Physiol. -1972.-P. 71−76.
  187. Linden A. Increased interleukin-8 release by beta-adrenoceptor activation in human transformed bronchial epithelial cells //Br. J. Pharmacol.- 1996.-Vol. 119.-P. 402−406.
  188. Liu В., Qin F. Functional control of cold and menthol-sensitive TRPM8 ion channels by phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate //J. Neurosci.- 2005. Vol. 25, № 7. — P. 1674−1681.
  189. Lunemann J.D., Buttgereit F., Tripmacher R., Baerwald C.G., Burmester G.R., Krause A. Norepinephrine inhibits energy metabolism of human peripheral blood mononuclear cells via adrenergic receptors //Biosci Rep. 2001. — Vol. 21, № 5. — P. 627−635.
  190. MacKinnon A.C., Spedding M., Brown C.M. ci2-Adrenoceptors: more subtypes but fewer functional differences //Trends. Pharmaco. Sci. -1994.-Vol. 15.- P. 119−123.
  191. Madden K.S., Sanders V.M., Felten D.L. Catecholamine influences and sympathetic neural modulation of immune responsiveness //Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol. 1995. — Vol. 35. — P. 417−448.
  192. Madden K.S., Felten D.L. Experimental basis for neural-immune interactions //Physiol. Rev. 1995. — Vol. 75. — P. 77−106.
  193. Madden K.S. Catecholamines, sympathetic innervation, and immunity //Brain, Behavior, and Immunity. 2003. — Vol. 17. — P. 5−10.
  194. Maestroni G.J., Conti A. Noradrenergic modulation of lymphohematopoiesis //Int. J. Immunopharmacol. 1994b. — Vol. 16. — P. 117−122.
  195. Maestroni G.J., Conti A., Pedrinis E. Effect of adrenergic agents on hematopoiesis after syngeneic bone marrow transplantation in mice //Blood. 1992.-Vol. 80.-P. 1178−1182.
  196. Maimone D., Cioni C., Rosa S., Macchia G., Aloisi F., Annunziata P. Norepinephrine and vasoactive intestinal peptide induce 1L-6 secretion by astrocytes: Synergism with IL-1 beta- and TNF-alpha //J. Neuroimmunol. -1993.-Vol.47.-P. 73−81.
  197. Mallick B.N., Jha S.K., Islam F. Presence of alpha-1-adrenoreceptors on thermosensitive neurons in the medial preoptico-anterior hypothalamic area in rats //Neuropharmacology. 2002. — Vol. 42, № 5. P. 697−705.
  198. Marino F., Cosentino M., Bombelli R., Ferrari M., Lecchini S., Frigo G. Endogenous catecholamine synthesis, metabolism, storage, and uptake in human peripheral blood mononuclear cells //Exp. Hematol. 1999. — Vol. 27. — P. 489−495.
  199. Marz P., Gadient R.A., Otten U. Expression of interleukin-6 receptor (IL-6R) and gpl30 mRNA in PC 12 cells and sympathetic neurons: modulation by tumor necrosis factor alpha (TNF-alpha) //Brain Res. 1996. -Vol. 706.-P. 71−79.
  200. Maxwell G.M., Nobbs S., Fourie F., Bates D.J. Thermogenesis and the effect of injected catecholamines on the oxygen consumption of cafeteria-fed rats //Clin. Exp. Pharmacol. Physiol. 1988. — Vol. 15, № 5. -P. 391−400.
  201. McKemy D.D., Neuhausser W.M., Julius D. Identification of a cold receptor reveals a general role for TRP channels in thermosensation //Nature. 2002. — Vol. 416, № 6876. — P. 52−58.
  202. McKemmy D.D. How cold is it? TRPM8 and TRPAI in the molecular logic of cold // Molec. Pain. 2005. — Vol. 1, № 16. — P. 1−7.
  203. Mekjavic I.B., La Prairie A., Bruke W., Lindborg B. Respiratory drive during sudden cold water immersion //Respiration Physiology. 1987. — Vol. 70.-P. 121−130.
  204. Miles B.A., Lafuse W.P., Zwilling B.S. Binding of alpha-adrenergic receptors stimulates the anti-mycobacterial activity of murine peritoneal macrophages //J. Neuroimmunol. 1996. — Vol. 71. — P. 19−24.
  205. Mohede I.C., van Ark I., Brons F.M., van Oosterhout A.J., Nijkamp F.P. Salmeterol inhibits interferon-gamma and interleukin-4 production by human peripheral blood mononuclear cells //Int. J. Immunopharmacol. -1996.-Vol. 18.-P. 193−201.
  206. Molinari H.H., Greenspan J.D., Kenshalo D.R. The effects rate of temperature change and adapting temperature on thermal sensitivity //Sensory Proc. 1977. — Vol. 1. — P. 354−362.
  207. Molinari H.H., Kenshalo D.R. Effect of cooling rate on the dynamic response of cat cold units //Exp. Neurol. 1977. — Vol. 55. — P. 546−555.
  208. Monroy F.P., Banerjee S.K., Duong Т., Aviles H. Cold stress-induced modulation of inflammatory responses and intracerebral cytokine mRNA expression in acute murine toxoplasmosis Hi. Parasitol. 1999. — Vol. 85 № 5. — P.878−886.
  209. Montell C. Thermosensation: hot findings make TRPNs very cool //Curr. Biol. 2003. — Vol. 13. — P.476−478.
  210. Moraska A., Campisi J., Nguyen K.T., Maier S.F., Watklns L.R., Fleshner M. Elevated IL-1 P-contributes to antibody suppression produced by stress Hi. Appl. Physiol. 2002. — Vol. 93. — P. 207−215.
  211. Mosmann T.R., Sad S. The expanding universe of T-cell subsets: Thl, Th2 and more //Immunol. Today. 1996. — Vol. 17. — P. 138−146.
  212. Moynihan J.A. Mechanisms of stress-induced modulation of immunity //Brain Behav Immun. 2003. — Vol. 17, № 1. — P. 11−16.
  213. Mudden K.S., Felten D.L. Experimental basis for neural-immune interactions //Physiol. Rev. 1995. — Vol. 75. — P. 77−106.
  214. Musso N. R., Brenci S., Indiver, F., Lotti G. L-tyrosine and nicotine induce synthesis of L-dopa and norepinephrine in human lymphocytes Hi. Neuroimmunol. 1997. — Vol. 74. — P. 117−120.
  215. Mustafa S., Thulesius O. Cooling is a potent vasodilator of deep vessels in the rat //Can. J. Physiol. Pharmacol. 2001. — Vol. 79. — P. 899 904
  216. Mustafa S., Thulesius O. Cooling-induced carotid artery dilatation: an experimental study in isolated vessels //Stroke. 2002. — Vol. 33. — P. 256 260.
  217. Nagatomi R., Kaifii Т., Okutsu M., Zhang X., Kanemi O., Ohmori H. Modulation of the immune system by the autonomic nervous system and its implication in immunological changes after training //Exer. Immunol. Rev. -2000. Vol. 6. — P. — 54−74.
  218. Nakamura A., Johns E.J., Imaizumi A., Abe Т., Kohsaka T. Regulation of tumour necrosis factor and interleukin-6 gene transcription by beta2-adrenoceptor in the rat astrocytes //J. Neuroimmunol. 1998. — Vol. 88. -P. 144−153.
  219. Nealen M.L., Gold M.S., Thut P.D., Caterina M.J. TRPM8 mRNA is expressed in a subset of cold-responsive trigeminal neurons from rat //J. Neurophysiol. 2003. — Vol. 90. — P. 515−520.
  220. Ninomiga I.A., Irisawa A., Nisimaru N. Nonuniforty of sympathetic nerve activity to the skin and kidney //Am. J. Physiol. 1973. — Vol. 224. — P. 256−264.
  221. Ninomiga I.A., Fujita S. Reflex effects of thermal stimulation on sympathetic nerve activity to the skin and kidney //Am. J. Physiol. 1976. -Vol. 230.-P. 271−278.
  222. Norris J.G., Benveniste E.N. Interleukin-6 production by astrocytes: Induction by the neurotransmitter norepinephrine //J. Neuroimmunol. -1993.-Vol. 45.-P. 137−145.
  223. Qi M., Zhou Z., Wurster R. D., Jones S. B. Mechanisms involved in the rapid dissipation of plasma epinephrine response to bacterial endotoxin in conscious rats//Am. J. Physiol. 1991. — Vol. 261. -P. R1431-R1437.
  224. Oiu Y., Peng Y.P., Wang J.J. Cellular and molecular mechanisms of regulation of immune functions by catecholamines //J. Neurol. Neurosurg. Psychiatry. 2003. — Vol. 74, № 2. — P. 197−202.
  225. Okazawa M., Takao K., Hori A., Shiraki Т., Matsumura K., Kobayashi S. Ionic Basis of Cold Receptors Acting as Thermostats //J. Neurosci. 2002. Vol. 22, № 10. P. 3994−4001.
  226. Okazawa M., Inoue W., Hori A., Hosokawa H., Kobayashi S. Noxious heat receptors present in cold-sensory cells in rats //Neurosci. Lett. 2004. -Vol. 359, № 1−2.-P. 33−36.
  227. Panina-Bordignon P., Mazzeo D., Lucia P.D., D’Ambrosio D., Lang R., Fabbri L., Self C., Sinigaglia F. Beta2-agonists prevent Thl development by selective inhibition of interleukin 12 //J. Clin. Invest. 1997. — Vol. 100. -P. 1513−1519.
  228. Patapoutian A., Peier A., Stoty G.M., Viswanath V. Thermotrp channels and beyond: mrchanisms of temperature sensation //Nat. Publish. Group. 2003. — Vol. 4. — P. 529−539.
  229. Peier A.M., Moqrich A., Hergarden A.C., Reeve A.J., Andersson D.A. et all. A TRP channel that senses cold stimuli and menthol //Cell. 2002. -Vol. 108, № 5.-P. 705−715.
  230. Persidsky Y. Model systems for studies of leukocyte migration across the blood-brain barrier//J. Neuroviroi. 1999. — Vol. 5. — P. 579−590.
  231. Pierau Fr.-K., Ullrich J., Wurster R.D. Effect of Ca++ and EDTA on the bursting pattern of lingual cold receptors in cats //Proc. Intern. Union. Physiol. Sci. 1977. — Vol. 13. — P. 597.
  232. Pierau Fr.-K. Peripheral Thermosensors. In: Fregly M.J., Blatteis C.M. (Eds.), Handbook of Physiology, Section 4, Enviromental Physiology, Oxford University Press, New York/ Oxford. 1996. — Vol. 1. — P.85−104.
  233. Piotkin S.R., Banks W.A., Kastin A.J. Comparison of saturable transport and extracellular pathways in the passage of interleukin-1-alpha across the blood-brain barrier //J. Neuroimmunol. 1996. — Vol. 67. — P. 4147.
  234. Plotnikov N.Iu., Kulinskii V.I. Importance of catecholamines and various subtypes of beta-adrenoreceptors for resistance of mice to acute, intensive cooling //Vopr. Mev. Khim. 1983. — Vol. 29, № 4. — P. 122−127.
  235. Polonia J., Paiva M.Q., Guimaraes S. Pharmacological characterization of postsynaptic a-adrenoreceptor subtypes in five different dog arteries in vitro //J. Pharmacol. 1985. — Vol. 37. — P. 205−208.
  236. Riedel W., Iriki M., Simon E. Regional differentiation of sympathetic activity during peripheral heating and cooling in anesthetized rabbits //Pflug. Arch. 1972. — Vol. 382. — P. 239−247.
  237. Riedel W., Kozawa E., Iriki M. Renal and cutaneous vasomotor and respiratory rate adjustments to peripheral cold and warm stimuli and to bacterial endotoxine in conscious rabbits //J. Autonom. Nerv. System. -1982,-Vol. 5.-P. 177−194.
  238. Roberts M.F., Chilgren J.D., Zygmunt A.C. Effect of temperature on alpha-adrenoceptor affinity and contractility of rabbit ear blood vessels //Blood Vessels. 1989. — Vol. 26. — P. 185−196.
  239. Rogausch H., Rey A.D., Oertel J., Besedovsky H.O. Norepinephrine stimulates lymphoid cell mobilization from the perfused rat spleen via p-adrenergic receptors //Am. 3. Physiol. 1999. — Vol. 276. — P. R724-R730.
  240. Roth J., Conn C.A., Kluger M.J., Zeiberger E. Kinetics of systemic and intrahypothalamic IL-6 and tumor necrosis factor during endotoxin fever in guinea pigs //Am. Physiol. Soc. 1993. — Vol. 265. — P. R653-R658.
  241. Rothwell N.J., Luheshi G., Toulmond S. Cytokines and their receptors in the central nervous system: physiology, pharmacology, and pathology //Pharmacol. Ther. 1996. — Vol. 69. — P. 85−95.
  242. Rowel L.B. Cardiovascular aspects of human thermoregulation //Circulat. Res. 1983. — Vol. 52. — P. 367−379.
  243. Ruiz-Moreno J.M., Misiuk-Hojlo M., Thillaye В., de Kozak Y. Suppression of experimental autoimmune uveoretinitis by prazosin, an alpha 1-adrenergic receptor antagonist //Curr. Eye. Res. 1992. — Vol. 11. — P. 135−140.
  244. Sanders V.M., Munson A.E. Norepinephrine and the antibody response //Pharmacol. Rev. 1985. — Vol. 37. — P. 229−248.
  245. Sanders V.M., Baker R.A., Ramer-Quinn D.S., Kasprowicz D.J., Trendelenburg A.U., Limberger N., Starke K. The presynaptic alpha-2 autoreceptors in pig brain cortex are alpha-2A //J. Pharmacol. Exp. Ther. -1996.-Vol. 278. P. 462−467.
  246. Sanders V.M., Straub R.H. Norepinephrine, the beta-adrenergic receptor, and immunity //Brain Behav. Immun. 2002. — Vol. 16, № 4. — P. 290−332.
  247. Sanders V.M., Kasprowicz D.J., Swanson-Mungerson M.A. Podojil J.R., Kohm A.P. Adaptive immunity in mice lacking the beta (2)-adrenergic receptor //Brain Behav. Immun. 2003. — Vol. 17, № 1. — P. 55−67.
  248. Schaffer K., Braun H.A., Rempe L. Mechanism of sensory transduction in cold receptors. In: Thermoreception and Thermoregulation. Ed. Bligh J., Voigt. K. Springer Verlag — Berlin — New York — London -Paris. — 1990.-P. 30−36.
  249. Schaffer K., Braun H.A. Modulation of cutaneous cold receptor function by electrolytes, hormones and thermal adaptation //Physiol. Res. -1992. -Vol. 41, № 1.-P. 71−75.
  250. Seiffert K., Hosoi J., Torii H., Ozawa H., Ding W., Camption K., Wadner J.A., Granstein R.D. Catecholamines inhibit the antige-presenting capability of epidermal langerhang cells //J. Immunol. 2002. — Vol. 168. -P. 6128−6135.
  251. Severn A., Rapson N.T., Hunter C.A., Liew F.Y. Regulation of tumor necrosis factor production by adrenaline and beta-adrenergic agonists //J. Immunol. 1992. — Vol. 148. — P. 3441−3445.
  252. Shephard R.J., Shek P.N. Cold exposure and immune function //Can. J. Physiol. Pharmacol. 1998. — Vol. 76. — P. 828−836.
  253. Shivatscheva Т., Misheva M., Minokoshi Y., Shimazu T. Brown adipose tissue proteins impede thymus development in rats //Folia. Biol. -1993.-Vol.41. P. 37−40.
  254. Shu J., Stevenson J.R., Zhou X. Modulation of cellular immune responses by cold water swim stress in the rat //Dev. Сотр. Immunol. -1993.-Vol. 17.-P. 357−371.
  255. Siegmund В., Eigler A., Hartmann G., Hacker U., Endres S. Adrenaline enhances LPS-induced IL-10 synthesis: Evidence for protein kinase A-mediated pathway //Int. J. Immunopharmacol. 1998. — Vol. 20. -P. 57−69.
  256. Sima P., Cervinkova M., Funda D.P., Holub M. Enhancement by mild cold stress of the antibody forming capacity in euthymic and athymic hairless mice //Folia Microbiol (Praha). 1998. — Vol. 43, № 5. — P. 521−523.
  257. Simon E., Pierau Fr.-K., Taylor D.C.M. Central and peripheral thermal control of effectors in homeothermic temperature regulation //Physiol. Rev. 1986. — Vol. 66. — P. 235−300.
  258. Spengler R.N., Allen R.M., Remick D.G., Strieter R.M., Kunkel S.L. Stimulation of alpha-adrenergic receptor augments the production of macrophage-derived tumor necrosis factor //J. Immunol. 1990. — Vol. 145. -P. 1430−1434.
  259. Starke K. Presynaptic a-autoreceptors //Rev. Physiol. Biochem. Pharmacol. 1987. — Vol. 107. — P. 73−146.
  260. Stenberg E.M. Neuroendocrine regulation of autoimmune/inflammatory disease II). Endocrinology. 2001. — Vol. 169. -P. 429−435.
  261. Story G.M., Peier A.M., Reeve A.J., Eid S.R., Mosbacher J., Hricik T.R. et al. ANKTM1, a TRP-like channel expressed in nociceptive neurons, is activated by cold temperature //Cell. 2003. — Vol. 112, № 6. — P. 819 829.
  262. Straub R.H., Westermann J., Scholmerich J., Falk W. Dialogue between the CNS and the immune system in lymphoid organs //Immunol. Today. 1998. — Vol. 19. — P. 409−413.
  263. Subramanian S., Vollmer R.R. Depletion of brown rat norepinephrine content by acute cold exposure adrenoceptor blockade //Pharmacol. Biochem. Behav. 2001. — Vol. 68. — P. 597−602.
  264. Suberville S., Bellocq A., Fouqueray В., Philippe C., Lantz O., Perez J., Baud L. Regulation of interleukin-10 production by beta-adrenergic agonists //Eur. J. Immunol. 1996. — Vol. 26. — P. 2601−2605.
  265. Swanson M.A., Lee W.T., Sanders V.M. IFN-y Production by Thl Cells Generated from Naive CD4+ T Cells Exposed to Norepinephrine II). Immunol. 2001. — Vol. 166. — P. 232−240.
  266. Szelenyi J., Kiss J.P., Puskas Ё., Szelenyi M., Vizi E.S. Contribution of differently localized a2- and р-adrenoceptors in the modulation of TNF-a and IL-10 production in endotoxaemic mice //Ann. N. Y. Acad. Sci. 2000.
  267. Szelenyi J., Kiss J.P., Vizi E.S. Differential involvement of sympathetic nervous system and immune system in the modulation of TNF-a production by a2- and P-adrenoceptors in mice Hi. Neuroimmunol. -2000b. Vol. 103. — P. 34−40.
  268. Szreder Z. The effect of prazosin pretreatment on hyperthermia produced by noradrenaline in rabbits //Gen. Pharmacol. 1991. — Vol. 22, № 3.- P. 475−478.
  269. Szreder Z., Gagalo I. A comparative study on the thermoregulatory effects of prazosin, dihydrobenzperidol and nifedipin on 2,4-dinitrophenol induced hyperthermia in rabbits //Gen Pharmacol. 1991. — Vol. 22, № 6. -P.1139−1142.
  270. Szreder Z. Do central mechanisms participate in the thermoregulatory activity of prazosin? //Gen. Pharmacol. 1992. — Vol. 23, № 6. — P. 11 211 124.
  271. Szreder Z. Comparison between thermoregulatory effects mediated by alpha 1- and alpha-2-adrenoceptors in normothermic and febrile rabbits //Gen. Pharmacol. 1993. — Vol. 24, № 4. — P. 929−941.
  272. Thomas R.S., Electrogenic sodium pump in nerve and muscle cells // Physiol. Rev. 1972. — Vol. 52. — P. 563−594.
  273. Vanhoreffe P.M. Cooling and alpha 1 and alpha 2 — adrenergic responses in Cutaneous veins: Role of receptor reserve //Am. J. Physiol. -1985. — Vol. 249. — P. H950- H955.
  274. Viana F., de la Репа E., Belmonte C. Specificity of cold thermotransduction is determined by differential ionic channel expression //Nat. Neurosci. 2002. — Vol. 5, № 3. — P. 254−260.
  275. Vybiral S., Lesna I., Jansky L., Zeman V. Thermoregulation in winter swimmers and physiological significance of human catecholamine thermogenesis //Exper. Physiol. 2000. — Vol. 85, № 3. — P. 321−326.
  276. Webb P. Thermoregulation into water. In: The physiology and medicine of diving. Ch. 7 Eds. P. Bennet, D. Elliot. London, 1982. P. 300 338.
  277. Webster J.I., Tonelli L., Sternberg E.M. Neuroendocrine regulation immunity //Annu. Rev. Immunol. 2002. — Vol. 20. — P. 125−163.
  278. Weller R.O., Engelhardt В., Phillips M.J. Lymphocyte targeting of the central nervous system: a review of afferent and efferent CNS-immune pathways //Brain Pathol. 1996. — Vol. 6. — P. 275−288.
  279. Woiciechowsky C., Schoning В., Lanksch W.R., Volk H.-D-, Docke W.-D. Catecholamine-induced interleukin-10 release: a key mechanism in systemic immunodepression after brain injury //Critical Care. 1999. -Vol. 3. — P. R107-R111.
  280. Ye J.M., Clark M.G., Colquhoun E.Q. Constant-pressure perfusion of rat hiperlimb show alpha- and beta-adrenergic stimulation of oxygen consumption //AJP. Endocrinology and Metabolism. — 1995. — Vol. 269. Issue 5.-P. E960−968.
  281. Ye J.M., Edwards S.J., Rose R.W., Steen J.T., Clark M.G., Colquhoun E.Q. Alpha-adrenergic stimulation of thermogenesis in a rat kangaroo //AJP.- Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 1996. — Vol. 271, Issue 3.- P. 586-R592.
  282. Zeisberger E., Bruck K. Alteration of shivering threshold in cold- a warm-adapted Cuinea pigs following intrahypothalamic injection of noradrenaline and of an adrenergic alpha-receptor blocking agent //Pflug. Arch. 1976. — Vol. 362. — P. 113−119.
  283. Zeisberger E. Role a central catecholamininergic system in the thermoregulatory threshold deviation. In: New Trends in Thermal Physiology. Eds. Houdas Y. Guieu J.D. Paris. 1978. — P. 22−25.
  284. Zeisberger E. Interruption of negative feedback between peripheral and central noradrenaline systems during fever. In.: Therm. Mech. and Therm. Implicat. Oxford. 1979.
  285. Zeisberger E. The role of noradrenergic systems in thermal adaptation. In.: Biological Adaptation. Ed. Hildebrandt G., Hensel H., Thieme -Stratton, Stuttgart. 1982. — P. 140−147.
  286. Zeisberger E. The role of monoaminergic neurotransmitters in temperature adaptation of homoitherms. In.: BIONA Report. Ed. Laudien H., Fischer G. Verlag, Stuttgart. — 1986 .- P. 109−118.
  287. Zeisberger E. From humoral fever to neuroimmunological control of fever//J. Thermal. Biology. 1999. — Vol. 24. — P. 287−326.
  288. Zigmond R.E., Schwarzschild M. A, Rittenhouse A.R. Acute regulation of tyrosine hydroxylase by nerve activity and byneurotransmitters via phosphorylation //Annu. Rev. Neurosci. 1989. — Vol. 12.-P. 415−461.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!