Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Антигенные свойства возбудителей чумы крупного рогатого скота и плотоядных, диагностика и специфическая профилактика инфекций

Диссертация: Антигенные свойства возбудителей чумы крупного рогатого скота и плотоядных, диагностика и специфическая профилактика инфекций
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящее время в различных странах мира, в том числе в России и в Казахстане, для серологической диагностики чумы КРС в основном используются РСК, РДП, МФА, ИФА, РИГА и РН. Несмотря на различие этих методов по чувствительности, условиям, необходимым для их постановки, срокам, в течение которых может быть получен результат исследований, применение их в комплексе позволяет в течение 3 суток… Читать ещё >

Антигенные свойства возбудителей чумы крупного рогатого скота и плотоядных, диагностика и специфическая профилактика инфекций (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК ИСПОЛЬЗУЕМЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Краткая характеристика представителей рода Morbillivirus
    • 1. 2. Краткая характеристика чумы крупного рогатого скота
    • 1. 3. Лабораторные методы диагностики чумы крупного рогатого скота
    • 1. 4. Краткая характеристика чумы плотоядных
    • 1. 5. Лабораторные методы диагностики чумы плотоядных
    • 1. 6. Методы экспрессной диагностики вирусных инфекций
    • 1. 7. Средства и методы профилактики чумы плотоядных

Актуальность проблемы. В общем комплексе мероприятий по борьбе с инфекционными заболеваниями сельскохозяйственных животных особое место отводится своевременной диагностике, основанной на обнаружении и идентификации возбудителя инфекции или специфических антител и плановой или вынужденной иммунизации восприимчивого поголовья животных.

Одной из наиболее опасных болезней парнокопытных животных является чума КРС, которая наноит значительный экономический ущерб животноводству. Благодаря применению строгих противоэпизоотических мероприятий, все страны бывшего СССР длительное время сохраняли стойкое благополучие по этой инфекции [1], однако в ноябре 1989 года чума КРС был зарегистрирована в южных районах Грузии, в июне-июле 1991 года это заболевание было отмечено среди скота в Читинской области, а в октябре этого же года среди яков в Республике Тува. (В последних двух случаях скот выпасался на пастбищах Монголии).

Широкие хозяйственные связи Казахстана с неблагополучными и угрожаемыми по чуме КРС странами дальнего (Турция, Монголия) и ближнего (Горный Алтай и Тува в России) зарубежья, отсутствие плановых мероприятий против чумы КРС на границе с Россией, создают угрозу заноса этой инфекции в эту страну.

Опыт работы по диагностике и ликвидации вспышек чумы КРС в Грузии, Читинской области и Республике Тува показал, что при малейшем подозрении на эту инфекцию необходимо использовать комплекс серологических методов диагностики, в том числе простых, применимых в полевых условиях экспресс-методов, позволяющих в течение 1−5 часов получить достоверный результат исследований.

В настоящее время в различных странах мира, в том числе в России и в Казахстане, для серологической диагностики чумы КРС в основном используются РСК, РДП, МФА, ИФА, РИГА и РН [2]. Несмотря на различие этих методов по чувствительности, условиям, необходимым для их постановки, срокам, в течение которых может быть получен результат исследований, применение их в комплексе позволяет в течение 3 суток поставить окончательный диагноз на это заболевание. Однако практическое применение указанных реакций во многих случаях требует создания специальных условий для их постановки и наличия соответствующего оборудования, а также относительно значительных сроков для анализа.

Исходя из вышеизложенного, изыскание новых простых и доступных в постановке, специфичных и чувствительных экспрессных методов диагностики чумы КРС остается весьма важной задачей, решение которой позволит при необходимости в более короткий срок поставить диагноз на эту инфекцию и своевременно принять соответствующие противоэпизоотические меры.

Другим представителем рода Morbillivirus является возбудитель чумы плотоядных, вызывающий опасное заболевание пушных зверей и собак, во многих случаях заканчивающееся летально. Чума плотоядных распространена повсеместно во многих странах мира, в том числе и в СНГ.

В последние годы в наших странах все большее развитие принимают пушное звероводство, декоративное и служебное собаководство, которым чума плотоядных наносит большой урон.

В отношении диагностики чумы плотоядных ветеринарные специалисты испытывают значительные затруднения. Несмотря на то, что для научно-исследовательских целей разработаны и применяются серологические методы диагностики этой инфекции, отсутствие в продаже коммерческих диагностических препаратов сдерживает их использование практическими ветеринарными работниками. Поэтому в основном диагноз на чуму плотоядных устанавливают на основании анализа клинических симптомов, патологоанатомических изменений и эпизоотологических данных, которые во многом сходны с таковыми при некоторых других заболеваниях плотоядных животных (инфекционный гепатит, энтериты вирусной этиологии и т. д.). В результате диагноз может быть поставлен неверный и, как следствие, меры борьбы с заболеванием оказываются неэффективными.

Практически единственным лабораторным методом диагностики чумы плотоядных, применимым в практических условиях, является гистологический метод обнаружения специфических телец-включений в слизистой оболочке мочевого пузыря больных животных. Данный метод является высокоспецифичным, так как тельца-включения в слизистой оболочке мочевого пузыря павших пушных зверей и собак встречаются только при репродукции в ее клетках вируса чумы плотоядных. Однако с внедрением в практику живых вирусвакцин против этого заболевания было установлено, что вакцинный вирус также вызывает образование аналогичных телец-включений. Дифференцировать поствакцинальные тельца-включения от постинфекционных стало практически невозможно.

В связи с этим, разработка и совершенствование специфических средств и методов лабораторной диагностики чумы плотоядных, применимых в ветеринарной практике, является также весьма актуальной проблемой.

С целью специфической профилактики чумы плотоядных в бывшем СССР и за рубежом разработаны монои поливалентные вакцины, как аттенуированные, так и инактивированные. Хорошо зарекомендовали себя такие вакцинные препараты, как Вакчум, 668-КФ, ЭПМ. Однако в основном они готовятся на основе куриных эмбрионов или первично-трипсинизированных клеточных культур, что снижает технологичность их производства и существенно повышает себестоимость вакцин. Кроме того, в первые годы после распада СССР и ухудшения экономических связей с Россией — основным производителем биологических препаратов для Казахстана — поставка в страну профилактических препаратов против чумы плотоядных практически прекратилась и звероводство и собаководство Казахстана оказались незащищенными от этого опасного заболевания. В последнее время через коммерческие структуры возобновился завоз в Казахстан вакцин против чумы плотоядных, но, во-первых, в основном они ориентированы на применение в собаководстве (поступают в мелкой расфасовке) и, во-вторых, имеют высокую цену. Поэтому разработка высокотехнологичного метода изготовления вакцинного препарата против чумы плотоядных, применимого как для собак, так и для пушных зверей, и освоение его выпуска на биопредприятиях Республики Казахстан также остается весьма актуальной задачей.

ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЙ. Целью исследований явились изучение иммунобиологических свойств полевых изолятов вирусов чумы КРС и плотоядных и разработка и внедрение простых, обладающих высокой специфичностью и чувствительностью, методов диагностики чумы КРС и плотоядных, а также высокоиммуногенной, ареактогенной, технологичной в процессе изготовления живой культуральной вирусвакцины против чумы плотоядных.

Для достижения намеченной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Изучить антигенные свойства выделенных полевых изолятов вирусов чумы КРС и плотоядных в сравнении с эталонными штаммами вирусов.

2. Изучить эпизоотические особенности циркулирующих в странах СНГ и Казахстане возбудителей чумы КРС и плотоядных.

3. Сравнить иммунобиологические свойства возбудителей морбилливирусных инфекций животных.

4. Разработать методы приготовления диагностических препаратов (антигенов, сывороток и иммуноглобулинов) при чуме КРС и плотоядных.

5. Разработать способы изготовления диагностикумов для БА88-системы, РАМ и РАЛ, пригодных для обнаружения вирусного антигена в инфицированном материале и специфических противовирусных антител в иммунных сыворотках и на их основе отработать схемы постановки серологических реакций.

6. Определить диагностическую ценность разработанных средств и методов диагностики чумы КРС и плотоядных.

7. Определить возможность использования для диагностики и профилактики чумы плотоядных средств и методов, применяемых для этих целей при чуме КРС.

8. Разработать технологию производства вирусвакцины против чумы плотоядных и внедрить ее на одном из биопредприятий Республики Казахстан.

9. Определить сроки формирования и продолжительность иммунитета после вакцинации животных разработанным препаратом, условия его применения и методы контроля.

10. Испытать эффективность применения разработанной вакцины против чумы плотоядных в производственных условиях.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА РАБОТЫ. Получены данные по антигенным свойствам полевых изолятов вирусов чумы КРС и плотоядных, циркулирующих на территории стран СНГ и Казахстана.

Изучены в сравнительном аспекте антигенные свойства некоторых представителей рода Morbillivirus. Установлены критерии их антигенного сходства и различия. Определен преимущественный тропизм антигена вируса чумы плотоядных в зависимости от формы течения заболевания.

Впервые разработаны такие методы диагностики чумы КРС и плотоядных, как DASS-система и РАМ для обнаружения вирусного антигена и РАЛ для обнаружения противовирусных антител.

Впервые получен вирулентный штамм вируса чумы плотоядных, обладающий высокой степенью патогенности как для пушных зверей, так и собак.

Разработана технология приготовления живой культуральной вирусвакцины против чумы плотоядных на основе перевиваемой клеточной линии, определены ее основные иммунобиологические показатели.

Новизна исследований подтверждена получением Предварительных патентов на изобретения Национального Патентного ведомства Республики Казахстан на «Способ экспресс-диагностики чумы плотоядных» от 15.04.1998 г. за N 6115, «Способ получения комплексного культурального антигена вируса чумы плотоядных для серологических реакций» от 15.07.1998 г. за N 6426 и «Штамм Canine Distemper Morbillivirus „Шуский“, применяемый для приготовления и контроля вакцин против чумы плотоядных» от 15.05.1998 г. за N 6194.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЦЕННОСТЬ РАБОТЫ. Впервые предложены такие методы лабораторной диагностики чумы КРС, как микромодификации РСК, DASS-система и РАМ для обнаружения вирусного антигена и РАЛ для ретроспективной диагностики и контроля напряженности иммунитета.

Впервые предложен способ получения комплексного культурального антигена вируса чумы плотоядных для серологических реакций.

Впервые предложены экспресс-методы диагностики чумы плотоядных — РАМ для обнаружения вирусного антигена в органах и тканях больных и павших животных и РАЛ с целью ретроспективной диагностики заболевания.

Полученный вирулентный штамм «Шуский» вируса чумы плотоядных депонирован в коллекции культур микроорганизмов НИСХИ НЦ БТ Республики Казахстан (коллекционный номер П/К 12−93).

В результате выполнения диссертационной работы разработана нормативно-техническая документация:

— Временная инструкция по изготовлению и контролю диагностикума для твердофазного МФА на сефарозном иммуносорбенте при чуме КРС, утверждена директором НИСХИ 02.11.1989 г.;

— Временное наставление по постановке и применению твердофазного МФА на сефарозном сорбенте для лабораторной диагностики чумы КРС и индикации возбудителя болезни, утверждено директором НИСХИ 02.11.1989 г.;

— Технические условия «Набор препаратов для диагностики чумы КРС и индикации возбудителя болезни в твердофазном МФА на сефарозном иммуносорбенте», утверждены директором НИСХИ 15.01.1991 г.;

— Временная инструкция по изготовлению и контролю диагностикума для РАМ при чуме КРС, утверждена директором НИСХИ 17.12.1990 г.;

— Временное наставление по постановке и применению РАМ для диагностики чумы КРС, утверждено директором НИСХИ 17.12.1990 г.;

— Технические условия «Набор препаратов для диагностики чумы КРС методом РАМ», утверждены директором НИСХИ 15.01.1991 г.;

— Временная инструкция по изготовлению и контролю диагностикума для РАЛ при чуме КРС, утверждена директором НИСХИ 17.12.1990 г.;

— Временное наставление по постановке и применению РАЛ для ретроспективной диагностики чумы КРС, утверждено директором НИСХИ 17.12.1990 г.;

— Технические условия «Набор препаратов для ретроспективной диагностики чумы КРС методом РАЛ», утверждены директором НИСХИ 15.01.1991 г.;

— Временная инструкция по изготовлению и контролю вирусвакцины сухой культуральной против чумы плотоядных.

Вакчум-НИСХИ", утверждена начальником ГУВ МСХ РК 17.05.1993 г.;

— Временное наставление по применению вирусвакцины культуральной сухой против чумы плотоядных «Вакчум-НИСХИ», утверждено начальником ГУВ МСХ РК 17.05.1993 г.;

— Технические условия «Вирусвакцина против чумы плотоядных „Вакчум-НИСХИ“», утверждены начальником ГУВ МСХ РК 17.05.1993 г.

Опубликованы «Рекомендации по лабораторной диагностике чумы плотоядных с использованием средств и методов диагностики чумы КРС».

В НИСХИ принято рационализаторское предложение «Автоматизация учета микромодификаций РСК при диагностике чумы КРС».

Получено решение ГУВ МСХ РК о разработке опытных партий вакцины против чумы плотоядных «Вакчум-НИСХИ» и начале ее промышленного производства (2 млн. доз в год) от 17.05.1993 г.

Предложены усовершенствованные схемы лабораторной диагностики чумы КРС и плотоядных, позволяющие установить предварительный диагноз на эти заболевания в течение 1−2 часов с момента поступления проб материала на исследование.

ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ.

На курсах усовершенствования ветеринарных врачей-вирусологов республиканских и областных ветеринарных лабораторий в г. Покров Владимирской области (февраль, 1990 г.) методам диагностики чумы КРС обучено 38 специалистов.

Разработанные средства и методы диагностики чумы КРС использованы при экспертизе патологического материала в очагах эпизоотий заболевания в Грузии, Читинской области и Республике Тува, разработанные средства и методы диагностики чумы КРС и чумы плотоядных внедрены в практику работы лабораторий диагностики вирусных инфекций и болезней плотоядных и пушных зверей НИСХИ.

Изданы рекомендации по лабораторной диагностике чумы плотоядных с использованием средств и методов диагностики чумы КРС (Семипалатинск, 1997).

Науно-техническим советом ГУВ МСХ Республики Казахстан утверждена нормативно-техническая документация на изготовление, контроль и применение вакцины сухой живой культуральной против чумы плотоядных «Вакчум-НИСХИ» (Алматы, 1993).

С 1992 года на базе НИСХИ НЦ БТ Республики Казахстан организовано опытно-промышленное производство вирусвакцины против чумы плотоядных «Вакчум-НИСХИ», применяемой в звероводческих хозяйствах и клубах собаководства Казахстана и Кыргызстана.

Полученный вирулентный штамм «Шуский» вируса чумы плотоядных используется в НИСХИ для разработки инактивированной вакцины.

По заданию ГУВ МСХ СССР в 1990 году разработаны «Правила отбора и транспортировки проб патологического материала при подозрении на чуму КРС» и «Набор инструментов для отбора и транспортировки проб патологического материала при подозрении на чуму КРС», которые вошли в качестве приложений в «Методические указания по лабораторной диагностике чумы КРС и идентификации возбудителя болезни».

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ.

Материалы диссертации доложены на заседаниях Ученого совета НИСХИ (1988;1993 годы), межлабораторных заседаниях сотрудников института (1987;1992 годы), научной конференции НИСХИ (1988 год), научно-практической конференции преподавателей и сотрудников Семипалатинского ЗВИ (1990 год), четвертой Всесоюзной конференции «Научные основы технологии промышленного производства ветеринарных биологических препаратов» (Москва, 1991 год), научной конференции «Вопросы ветеринарной вирусологии, микробиологии и эпизоотологии» (Покров, 1992 год), международной проблемной конференции «Актуальные проблемы вирусологии» (пгт Гвардейский, 1994 год), межвузовской научно-практической конференции «Проблемы морфологии, биологии и экологии животных в Казахстане», посвященной 150-летию со дня рождения Абая Кунанбаева (Семипалатинск, 1995 год), научно-практических конференциях преподавателей и сотрудников Государственного университета «Семей» (1997, 1998 и 1999 годы), Международной научно-практической конференции «Аграрная наука на рубеже веков» (Акмола, 1997 год), Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы сельскохозяйственной биотехнологии» (пгт Гвардейский, 1998 год) и на заседаниях научно-технического совета ГУВ МСХ Республики Казахстан (1993 и 1995 годы).

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

1. Изучение иммунобиологических характеристик полевых изолятов возбудителей чумы КРС и плотоядных.

2. Изучение иммунобиологического родства возбудителей морбилливирусных инфекций животных.

3. Способы изготовления диагностических препаратов для твердофазного МФА (ОА88-системы), РАМ и РАЛ при чуме КРС и эффективность применения этих методов.

4. Разработка и совершенствование средств и методов диагностики чумы плотоядных и эффективность их применения.

5. Разработка и внедрение технологии изготовления вирусвакцины против чумы плотоядных на основе перевиваемой культуры клеток и эффективность ее применения.

6. Способ получения высокоиммуногенного вирулентного штамма вируса чумы плотоядных.

5. ВЫВОДЫ.

1. Полевые изоляты вируса чумы КРС, вызвавшие заболевание животных в Грузии, Читинской области и Республике Тува, различаются по степени патогенности, но имеют общую антигенную структуру. В их составе обнаружены комплементфрпссирующрш, преципитирующий и рибонуклеопротеидный антигены, перекрёстно реагирующие в серологических реакциях с сыворотками, полученными на эталонные штаммы вируса.

2. Антигенная структура изолятов вируса чумы плотоядных, вызывающих различные формы течения заболевания, идентична. В её составе имеются комплементфиксирующий, преципитирующий и рибонуклеопротеидный антигены, имеющие степень антигенного родства с эталонными штаммами вируса от 82,1 до 100%.

3. Тропизм антигена вируса чумы плотоядных в органах и тканях больных и павших животных зависит от формы течения заболевания. Постоянно вирусспецифический антиген обнаруживается в органах лимфоидной системы организма. При смешанной форме болезни вирусный антиген накапливается в тканях органов всех систем. В нервной, дыхательной системах и желудочно-кишечном тракте антиген вируса обнаруживается при вовлечении в патологический процесс соответствующих органов.

4. Вирусы чумы КРС и плотоядных имеют общий преципитирующий, сходный комплементфиксирующий и различающийся (степень антигенного родства 35,8%) рибонуклеопротеидный антигены.

5. Средства и методы лабораторной диагностики чумы КРС можно использовать с целью диагностики чумы плотоядных. Применение вирусвакцины против чумы КРС из штамма К3770 для профилактики чумы плотоядных неэффективно.

6. Микромодификации РСК для диагностики чумы КРС и плотоядных позволяют в 10 раз сократить расход компонентов реакции, а в тепловом варианте, кроме того, обеспечить экспрессность получения результатов (2−3 часа).

7. БАБЗ-система при чуме КРС позволяет обнаруживать вирусспецифический антиген в испытуемых пробах в течение 5−6 часов с момента доставки патологического материала на исследование. DASS-система по чувствительности превосходит РДСК в 1,5−2, а РДП в 30−40 раз.

8. Реакция агглютинации микродиспсрсии при чуме КРС и плотоядных позволяющие обнаруживать специфические антигены в вируссодержащих органотканевых и культуральных материалах в течение 5−6 минут. РАМ по чувствительности превосходит РДСК в 2−4, а РДП в 50−70 раз.

9. Реакция агглютинации латекса при чуме КРС и плотоядных позволяет обнаруживать вирусспецифические антитела в сыворотках крови вакцинированных и переболевших телят, свиней, коз, пушных зверей и собак в течение 8−10 минут. PAJI по чувствительности превосходит РДСК в 1,5−4 раза, но ниже чувствительности РН в 5−15 раз.

10. Технология приготовления комплексного культурального антигена вируса чумы плотоядных для серологических реакций заключается в концентрировании в 100 раз центрифугированием заражённой вакцинным штаммом «Рокборн» вируса чумы плотоядных культуры клеток Vero, выращенной в роллерных сосудах, с последующей очисткой препарата двукратным термолизисом и осаждением клеточного детрита повторным центрифугированием.

11. Схема получения диагностической гипериммунной сыворотки при чуме плотоядных заключается в трёхкратной иммунизации щенков собак органотканевым материалом, содержащим антиген вируса чумы плотоядных, в возрастающих дозах, с интервалом между инъекциями в 7 суток.

12. С учётом разработанных средств и методов лабораторной диагностики чумы КРС и плотоядных усовершенствованы схсмы лабораторной диагностики этих инфекций, использование которых позволяет устанавливать предварительный диагноз на заболевания в течение 1−5 часов с момента поступления проб патологического материала на исследование.

13. Иммунизация собак и пушных зверей разработанной вирусвакциной против чумы плотоядных «Вакчум-НИСХИ» в прививочной дозе 2000 ТЦД обеспечивает наступление невосприимчивости животных к контрольному заражению на 14−21.

229 сутки после вакцинации продолжительностью не менее года. Наличие в сыворотках крови привитых животных вируснейтрализующих антител в титрах от 1:4 и выше обеспечивает их невосприимчивость к контрольному заражению.

Вакцинный вирус не теряет свои иммуногенные свойства на протяжении 20 последовательных пассажей в культуре клеток Vero.

Хранение лиофилизированного вакцинного препарата при температуре (4±-1)°С существенно не снижает его специфическую активность в течение года. Растворённый препарат не теряет своих свойств в течение двух часов при температуре хранения (20±-2)°С.

14. Контрольный вирулентный штамм «Шуский» вируса чумы плотоядных патогенен как для пушных зверей, так и собак, не снижающий свои вирулентные свойства в течение 3 последовательных пассажей в культуре клеток Vero. Его использование в процессе проверки вакцин против чумы плотоядных позволяет значительно снизить материальные затраты за счёт применения щенков беспородных собак вместо высокоценных пушных зверей.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

На основании результатов проведённых исследований разработаны следующие инструктивные документы:

1. Временная инструкция по изготовлению и контролю диагностикума для твёрдофазового МФА на сефарозном иммуносорбенте (рАЗБ-система) при чуме КРС, 1989 г., (приложение 1).

2. Временное наставление по постановке и применению твёрдофазового МФА на сефарозном сорбенте (ОА88-система) для лабораторной диагностики чумы КРС и индикации возбудителя болезни, 1989 г., (приложение 2).

3. Технические условия «Набор препаратов для диагностики чумы КРС и индикации возбудителя болезни в твердофазном МФА на сефарозном иммуносорбенте», 1991 г., (приложение 3).

4. Временная инструкция по изготовлению и контролю диагностикума для реакции агглютинации микродисперсии (РАМ) при чуме КРС, 1990 г., (приложение 4).

5. Временное наставление по постановке и применению реакции агглютинации микродисперсии (РАМ) при диагностике чумы КРС,.

1990 г., (приложение 5).

6. Технические условия «Набор препаратов для диагностики чумы КРС методом реакции агглютинации микродисперсии», 1991 г., (приложение 6).

7. Временное наставление по постановке и применению реакции агглютинации латекса (РАЛ) для ретроспективной диагностики чумы КРС, 1990 г., (приложение 7).

8. Временная инструкция по изготовлению и контролю диагностикума для реакции агглютинации латекса (РАЛ) при чуме КРС, 1990 г., (приложение 8).

9. Технические условия «Набор препаратов для ретроспективной диагностики чумы КРС методом реакции агглютинации латекса»,.

1991 г., (приложение 9).

По заданию Главного управления ветеринарии МСХ СССР были разработаны «Правила отбора и транспортировки проб патологического материала при подозрении на чуму КРС» и «Набор инструментов для отбора и транспортировки проб патологического материала при подозрении на чуму КРС», которые вошли в качестве приложений в Методические указания по лабораторной диагностике чумы КРС и идентификации возбудителя болезни (приложения 10 и 11).

Подготовлено и принято в НИСХИ рационализаторское предложение «Автоматизация учёта микромодификаций РСК при диагностике чумы КРС» (приложение 12).

Подготовлены и опубликованы Рекомендации по лабораторной диагностике чумы плотоядных с использованием средств и методов диагностики чумы крупного рогатого скота (приложение 13).

Разработаны и утверждены начальником Главного управления ветеринарии МСХ Республики Казахстан инструктивные документы на вакцину против чумы плотоядных:

1. Временная инструкция по изготовлению и контролю вирусвакцины сухой культуральной против чумы плотоядных «Вакчум-НИСХИ», 1993 г., (приложение 14).

2. Временное наставление по применению вирусвакцины сухой культуральной против чумы плотоядных «Вакчум-НИСХИ», 1993 г., (приложение 15).

3. Технические условия «Вирусвакцина сухая культуральная против чумы плотоядных „Вакчум-НИСХИ“», 1993 г., (приложение 16).

В Патентном ведомстве Республики Казахстан получены Предварительные патенты на следующие изобретения:

1. Способ получения комплексного культурального антигена вируса чумы плотоядных для серологических реакции (приложение 17).

2. Способ экспресс-диагностики чумы плотоядных (приложение 18).

3. Штамм «Шуский» Canine Distemper Morbillivirus, применяемый для изготовления и контроля вакцин против чумы плотоядных (приложение 19).

Соискатель выражает глубокую признательность сотрудникам Научно-исследовательского сельскохозяйственного института Национального центра по биотехнологии МНиВО Республики Казахстан С. М. Мамадалиеву, В. Л. Зайцеву, Л. Н. Пасечникову, А. М. Русановой, В. М. Матвеевой, Н. В. Вяткиной, У. Ж. Керембековой, М. Б. Орынбаеву,.

Показать весь текст

Список литературы

  1. И.А., Таршис М. Г. География болезней животных зарубежных стран. -М.: Колос, 1971.-200 с.
  2. Г. А., Сюрин В. Н. Чума крупного рогатого скота.// Лабораторная диагностика вирусных болезней животных./ Под ред. Сюрина В.Н.- М.: Колос, 1972.-е. 91−100.
  3. Scott R.G., Taylor W.P., Rossiter Р. В/ Manual on the diagnosis of rinderpest.// FAO Anim. Prod, and Health Sera, Rome.- 1986.-N 23.-p.52−54.
  4. B.M. Эволюция вирусов.- M.: Медицина, 1990.- с. 143−153.
  5. Yamanouchi К. Comparative aspects of pathogenicity of measles, canine distemper and rinderpest viruses.//Jap. J. Med. Sci. Biol.- 1980.-v.33.- p.41−46.
  6. Bussel R.H. et al. Measles, canine distemper and respiratory syncytial virions and nucleocapsids. A comparative study of their structure, polypeptide and nucleic acid composition.// Med. Microbiol., Immunol., 1974.-160.-N2/3.-p. 105−124.
  7. B.H., Белоусова P.B., Соловьёв Б. В. и др. Методы лабораторной диагностики вирусных болезней животных.: Справочник.- М.:Агропромиздат, 1991.- с. 397−401.
  8. В.Н., Фомина Н. В. Частная ветеринарная вирусология.- М.: Колос, 1979.- с.245−257.
  9. Roberts J.A. A study of the antigenic relationship between human measles virus and canine distemper virus.// J. of Immunology.- 1965.-94.-N 4.- p.622−628.
  10. Hsu D., Yamanaka M., Miller J. et al. Cloning of the fusion gene of rinderpest virus: Comparative sequence analysis with other morbilliviruses.//Virology, 1988.- 166.-N l.-p. 149−153.
  11. Orvell C., Norrby E. Further studies on the immunologic reactions among measles, distemper and rinderpest viruses.// J.Immunol., 1974.-113.-N6, p. 1850−1858.
  12. Sato Т., Hayami M., Yamanouchi K. Analysis of structural proteins of measles, canine distemper and rinderpest viruses.// Jap. J. Med. Sci. Biol.-1981.-34.-N 6.- p. 355−364.
  13. Waters D.J., Bussel R.H. Polypeptide composition of measles and canine distemper viruses.// Virology, 1973/-55.-N 2.- p.554−557.
  14. Scaggs J.W. Antigenic relationship between viruses of canine distemper and measles.// The Epidem. Signif. of J.A.V.M, A., I960, — 136.- N 3.-p.8−11.
  15. Warren J. The relationships of the viruses of measles, canine distemper and rinderpest.// Adv.Vir.Res.-1960.-7.-p.26−60.
  16. Millick S.G., Ramachandran S.P. Observation on aspects of cross relationships between rinderpest, measles and canine distemper.// Ind. Vet.J., 1985.-62.-N 12.-p. 1088−1090.
  17. Diallo A. et al. Comparison of protein induced in cells infected with rinderpest and peste des petits ruminants viruses.// J. Gen.Virol., 1987.-68.-N 7.- p. 2033−2038.
  18. Bhavani K. et al. Preparation and characterization of monoclonal antibodies to nucleocapsed protein N and H glycoprotein of rinderpest vims.// Virus Res., 1989.- v. 12.- N 4, — p. 331−348.
  19. Girandon P., Wild T.P. Differentination of measles virus strains and a strain of canine distemper virus by monoclonal antibodies.// J. Gen. Virol., 1981.-57.-N 1.- p. 179−183.
  20. McCullough K.C. et al. Monoclonal antibodies against morbilliviruses.// Rev. Sci. et Tech. Off. Ehizoot., 1986.-5.-N 2.- p. 411−427.
  21. Gilbert Y., Mornet P., Gouffon Y. Comportement humoral du boeuf et du lapin envers l’inoculation de virus de Carre: ses rapports avec l’immunisation countre le virus bovipestique normal ou modifie.// Bull. Acad. Vet., 1960.-33.-5.-p. 305−316.
  22. Goret P. et al. Neutralization du virus de la maladie de Carre par le serum countre la peste bovine.// Bull. Acad. Vet., 1959.-3l.-5.-p. 287 296.
  23. Goret P. et al. Echec des essais de prevention et de traitment de la maladie de Carre par le serum countre la peste bovine.// Bull. Acad. Vet., 1960.-33.- p. 343−347.
  24. Goret P., Provost A., Villemot J.M. Nouvelles recherche sur l’immunization croisee maladie de Carre. Peste bovine.// Bull. Acad. Vet., 1961.-34.-p. 193−196.
  25. Baker J.A. Measles vaccine for protection of dogs against canine distemper.// J. Amer. Vet. Med. Ass., 1970.-156.-N 12.-Part 1, — p. 17 431 746.
  26. Brown A.L. Canine distemper-measles vaccination: studies on three particle aspects.// Canine Practice, 1975.-2.-N 3.-p. 47−50.
  27. Brown A.L., McCarthy R.E. Relationship between measles and canine distemper viruses determination by delayed type hypersensitivity reaction in dogs.//Nature, 1974, — 248.- 5446.- p. 344−345.
  28. Dudley J.M., Nixon A., Mumford A.M. Distemper and measles vaccine a comparative trial.// J. Small Anim. Pract., 1978.-19.- N 8.- p.463−468.
  29. Gilden D.H., Wellish M., Rorbe L.B. et al. Canine distemper virus infection of weanling mice. Pathogenesis of CNS disease.// J. Neurol.Sci., 1981.- 52.- N 2−3.- p. 327−339.
  30. Strating A. Measles vaccine in dogs: Efficacy against aerosol challenge with virulent canine distemper virus.// J. Am. Vet. Med. Ass., 1975.-167.-N 1.-p. 59−62.
  31. Appel M.J.G. et al. Measles virus and inactivated distemper virus induce incomplete immunity to canine distemper.// Arch. Virology, 1984.- 82.-p. 73−82.
  32. H.E., Ревенок Н. Д., Шройт И. Г. и др. Изучение иммунологического сродства вирусов кори и чумы собак.- М.: Вопр. вирусол., I960.- № 5.- с. 73−76.
  33. Н.И. Чума крупного рогатого скота.// Карантинные и малоизвестные болезни животных./ Под ред. Бакулова И.А.- М.: Колос, 1983.-с. 71−77.
  34. Ф.П. Профилактика и мероприятия по ликвидации чумы крупного рогатого скота.- М.: Ветеринария, 1995.- № 8.- с. 27−31.
  35. Aciro S. Susceptibility of cattle, buffaloes and swine in Cambodia to lapinized-avinized rinderpest virus.// Vet. Inst. Anim. Hlth. Quart.-1971.-v. 11, N 3.- p. 134−144.
  36. Babiker A. A natural outbreak of rinderpest involving sheep, goats and cattle in Sudan.// Bull. Epiz. Dis. Afr.- 1973.- v. 21.- N 4.- p. 421−428.37. Bull. WHO-OIE 1988.38. Bull. WHO-OIE 1989.
  37. Bull. WHO-OIE 1990−1995 years.
  38. Johnson P.H., Ritchil J.S. A vims associated with pseudorinderpest in Nigeria draft goats.// Bull. Epiz. Dis. Afr.- 1968.- v. 16.- N 4.- p. 411 417.
  39. Krishna R.C. Rinderpest and riderpestlike diseases in India. Epizootology, diagnosis and control.// Bull. Off. Inst. Epiz.- 1973.- v. 79,-N5−6,-p. 512−518.
  40. Ф.П., Курченко Г. А., Шепель Н. Г. Новые средства профилактики и меры борьбы с чумой крупного рогатого скота.-М.: Ветеринария, 1992.- № 3.- с. 31−33.
  41. Ф.П., Никишин И. В., Карпов Г. М. и др. Выделение и идентификация вируса чумы крупного рогатого скота в Грузии.-М.: Ветеринария, 1993.- № 3.- с. 19−21.
  42. B.JI. Электронномикроскопическое исследование вируса чумы КРС.- Дис.- канд. биол. н., пгт Гвардейский: НИСХИ, 1971.-151с.
  43. В.Н., Белоусова Р. В., Фомина Н. В. Ветеринарная вирусология.- М.: Агропромиздат, 1986.- с. 397−401.
  44. В.Н., Белоусова Р. В., Фомина Н. В. Диагностика вирусных болезней животных.: Справочник.- М.: Агропромиздат, 1991.- с.с. 85, 209−220, 228−237, 429.
  45. А.И., Афанасьев П. Д. и др. Изучение устойчивости вируса чумы КРС во внешней среде.- пгт Гвардейский: НИСХИ.-1965.- 17 с.
  46. П.Д., Кирюхин Р. А., Пасечников JI.H. и др. Отчёт по теме «Изучение устойчивости во внешней среде сухой рецептуры, разработанной на основе вируса чумы КРС.- пгт Гвардейский: НИСХИ.- инв.№ 160/о-1973.- 47 с.
  47. И.Г. Изучение некоторых биологических свойств эпизоотических штаммов вируса чумы КРС.- Дис.- канд. вет. н.-Отар-2: НИСХИ,-196 с.
  48. Plowright W. Studies on the pathogenesis of rinderpest in experimental cattle. II. Proliferation of the virus in different tissue following intranasal infection.// J. Hyg.- 1964.- v. 62.- N 2.- p. 257−281.
  49. А.И. Серологическая диагностика чумы крупного рогатого скота и индикация возбудителя. Автореф. дис.-докт.вет.н., Покров, 1972.- 50 с.
  50. А.И. Использование РСК для диагностики чумы крупного рогатого скота и индикации её возбудителя.- пгт Гвардейский: НИСХИ, 1963, инв.№ 74.
  51. А.И. Обнаружение специфического антигена вируса чумы КРС методом РСК.- пгт Гвардейский: НИСХИ, 1965, инв.№ 388.
  52. А.И. Динамика накопления комплементсвязывающих антител к вирусу чумы КРС у вакцинированных и переболевших животных.// Сборник трудов НИСХИ, 1966, т.1.- с. 48−54.
  53. А.И., Ануфриева J1.A., Абелян К. Е. Чума крупного рогатого скота. Диагностика, профилактика и меры борьбы,-Ереван: Зак. филиал ВНИЯИ, 1987, инв.№ 794/т.- 156 с.
  54. А.И., Карасёва Е. М. Диагностика чумы КРС у экспериментально заражённых животных различными штаммами этого возбудителя.// Сборник трудов НИСХИ, 1966, т.1.- с. 48−54.
  55. А.И., Карасёва Е. М. и др. Разработка и усовершенствование серологических методов диагностики чумы крупного рогатого скота.- пгт Гвардейский: НИСХИ.- 1964.- инв.№ 84.
  56. А.И., Лукьянова З. М. и др. Диагностика чумы КРС у овец в экспериментальных условиях.// Сборник трудов НИСХИ, 1968, т. III, вып. I.- с. 162−170.
  57. А.И., Усикова С. М. и др. Патоморфологические изменения в органах и тканях овец при экспериментальном заражении вирусом чумы КРС.// Сборник трудов НИСХИ, 1968, т. III, вып. I.- с. 109−116.
  58. Н.И. Чума.// Патологоанатомическая диагностика болезней крупного рогатого скота./ Под ред. Шишкова В. П. и др.-М.: Агропромиздат.- 1987.-е. 137−140.
  59. Методические указания по лабораторной диагностике чумы КРС и идентификации возбудителя болезни.- пгт Гвардейский: НИСХИ, 1990.-31 с.
  60. А.Ф. Реакция непрямой гемагглютинации в диагностике чумы КРС и идентификации её возбудителя.- Дис.- канд. вет. н., пгт Гвардейский, 1979.- 258 с.
  61. Nakamura I. The complement fixation test and its application to the diagnosis of rinderpest.// J. Сотр. Path, and Their.- 1959.- v. 69.- N 1.-p. 457−464/
  62. Mullick S.G., Ramachandran S.P. Simple procedure for detection of soluble antigen in rinderpest by complement-fixation test.// Ind. Vet. J.-1983.-v. 60.-N l.-p. 1−5.
  63. Методические рекомендации по изучению клеточного иммунитета у свиней при вирусных инфекциях.- Покров: ВНИИВВиМ, 1988.74 с.
  64. В.П. Реакция диффузиозной преципитации в диагностике чумы КРС.- Дис.- канд. биол. н., Отар-2: НИСХИ, 1966.- 170 с.
  65. Wafula J.S., Wennay Н.М. Development and distribution of rinderpest virus antigen in experimentally infected goats.// Vet. Rec.- 1988.- v. 123.-N8.-p. 199−200.
  66. Provost A., Joubert L. Modalites et technique modernes du diagnostic experimental de la peste bovine.// Rev. Elev. Pays Trop.- 1973.- v. 26.-N4.- p. 383−396.
  67. Bansal R.P., Uppal P.K. et al. Quick diagnosis of rinderpest by detection of antigen by counter-immunoelectrophoresis.// Ind. J. Anim. Sci.-1981.- v. 51.-N8.- p. 766−769.
  68. Korman A., Rowe L., Taylor W. Detection of rinderpest antigen by agar gel diffusion and counter-immunoelectrophoresis.// Trop. Anim. Prod.-1−83.-v. 15,-p. 83−85.
  69. Л.А. Разработка и сравнительное изучение непрямых иммунофлуоресцентного и иммуноферментного методов в диагностике чумы КРС.- Дис.- канд. биол. н.- пгт Гвардейский: НИСХИ, 1977.- 164 с.
  70. Kataria R.S., Majumadar S.S., Shrivastava S.W. Demonstration of specific precipitinogen in skin lesions in a case of rinderpest.// Ind. Vet. j. 1974.- v.51.- N 11−12.- p. 736−737.
  71. Ishii S., Watanabe M. An rinderpest hemagglutination test of rinderpest virus.// Nath. Inst. Anim. Hlth. Quart.- 1971.- v. 11.- N 2 .- p. 55−63.
  72. Bansal R.P., Joshi R.C., Kumar S.A. A note on the use of buffalo calf kidney cultures for proliferation of tissue culture rinderpest virus.// Ind. J. Anim. Sci.- 1975.- v. 45.- N 11, — p. 913−914.
  73. Muraffer U. et al. A serological survey on cattle vaccination with tissue culture adapted Kabete «O» strain of rinderpest virus.// J. Vet. Bacterid.- 1973.- v. 4.- N 3−4.- p. 11−19.
  74. Rossiter P.B., Yessett D.M., Holmes M. Micro ELISA test for detecting antibodies to rinderpest virus antigens.// Trop. Anim. Hlth. Prod.- 1981.-N 14.- p. 113−116.
  75. К.Ф. Люминесцентная диагностика инфекционных болезней животных.- М.: Колос, 1975.- сс. 17−19, 50−51, 81−82.
  76. М.А., Кузьмин Н. А. Люминесцентный анализ в ветеринарии.- М.: Колос, 1979.- с. 193−195.
  77. Provost A. Peste bovine et immunofluorescence.// Bull. Off. Inst. Epiz.-1970.-N9−10.-p. 916−920.
  78. X. Иммунофлуоресценция.// Иммунологические методы./ Под ред. Фримеля Г.: Пер. с нем.- М.: Медицина, 1987.- с. 128−148.
  79. Krishnaswamy S., Keshavamuthry В., Sundarajan S. The use of the direct immunoperoxidase test to direct the multiplication of rinderpest virus in bovine kidney cell culture.// Vet. Microbiol.- 1981.-N6.-p.23−29.
  80. М.Б., Пасечников Л. Н., Матвеева B.M. и др. Иммуноферментный метод выявления антигена вируса чумы КРС на основе моноклональных антител.// Актуальные проблемы вирусологии.-Ч.1.-ПГТ Гвардейский, 1994.- с. 155−156.
  81. Bansal R.P., Ioshii R.C. et al. Обнаружение антигена вируса чумы КРС методом латексагглютинации.// Acta Virologica.- 32.- 1988.- N 5.-2.-p. 275−277.
  82. Н.И., Зайцев В. Л., Родионов А. В. Радиоиимуноанализ вирусов чумы КРС и оспы овец.- пгт Гвардейский: НИСХИ, 1982.-инв. № 525/д.- с. 58−61.
  83. С.С. Чума собак.- М.: Ветеринария, 1951.- № 9.- с. 18−36.
  84. Fankhauser R. Hundestaupe Geschichte einer Krankheit.// Schweiz. Arch. Tierheilk.- 1982.- 124.- N 5.- p. 245−256.
  85. С.Я., Петров A.M. Болезни пушных зверей.- М.: Сельхозиздат, 1962.- с. 82−99.
  86. Е.П., Майоров А. И., Чижов В. А. и др. Болезни пушных зверей./ Под ред. Е. П. Данилова.- М.: Колос, 1984.- с. 36−47.
  87. Э.Г., Никишин И. В., Карпов Г. М. Ультраструктура вируса чумы плотоядных.// Вир. бол. с/х ж-ных.- Владимир, 1995.-с. 17.
  88. Blixenkrone М.М., Bohm J., Lund E. Udbrud of hundesuge blandt in Norgronland.// Dansk. Vetlidsskr., 1989.- 72.- N 9.- p. 488−497.
  89. Current C. Distemper vims infecting Mediterranean dolphins.// The Newsletter of Discovery and Innovation, 1990.- 4.- N 9.- p. 4.
  90. Т.Н., Лескова B.P., Новожилов С. С. и др. Нейтрализующие морбилливирус антитела в популяции байкальских нерп.- М.: Вопр. вирусол., 1993.- № 1.- с. 28−30.
  91. B.C. и др. Чума плотоядных в популяции байкальской нерпы.- М.: Журн. микробиол.- 1990.- № 9.- с. 52−56.
  92. A.M., Борисова Т. И., Зорин В. Л. и др. Выделение морбилливируса от байкальской нерпы и его предварительная характеристика.- М.: Вопр. вирусол., 1991.- № 1.- с. 57−59.
  93. Hall A.J., Pomeroy P.P., Harwood J. The descriptive epizootology of phocine distemper in the UK during 1988/89.// Sci. Total Environ.-1992.- 115.-N 1−2.- p. 31−44.
  94. Ishikawa H. et al. Canine distemper infection on Pusa Sibirica in captivity.// J. Jap. Ass. Zool. Gard. and Aquariums.- 1988.- 30.- N 3.- p. 71−75.
  95. Orvell C., Blixenkrone M.M., Svansson V. et al. Immunological relationships between phocid and canine distemper virus studied with monoclonal antibodies.// J. Gen. Virol.- 1990.- 71.- N 9.- p. 2085−2092.
  96. Osterhaus A.D.M. et al. Seal vaccination success.// Nature, 1989.- 1.-21.-p. 6202.
  97. Visser I.K.G. et al. Vaccination of harbor seals against phocid distemper with two different inactivated canine distemper virus vaccines.// Vaccine, 1989, — 7.-N 6.- p. 521−526.
  98. Visser I.K.G., Kumarev V.P., Orvell C. et al. Comparison of two morbilliviruses isolated from seals during outbreaks of distemper in North West Europe and Siberia.// Arch. Virol.- 1990.- 111.- N 3−4.- p. 149−164.
  99. Blixenkrone M.M. et al. Infection studies in mink with seal derived morbillivirus.// Ar. Vir., 1989.- 106.-N 1−2.-p. 165−170.
  100. С.И. Показатели половозрастной и породной восприимчивости собак к чуме.// Диагностика, лечение и профилактика инфекц. бол. ж-ных Казахстана.- Алматы, 1989.- с. 60−63.
  101. В.А. Чума.// Инфекционные и инвазионные болезни собак./ Под ред. Любашенко С.Я.- М.: Госсельхозиздат, 1956.- с. 3−55.
  102. В.А., Сытая А. С. Чума у соболей.- М.: Кролиководство и звероводство, 1963.- № 8.- с. 14−17.
  103. Appel M.J.G. Pathogenesis of canine distemper.// Amer. J. Vet. Res., 1969.-30.-N7.-p. 1167−1182.
  104. Н.И. Чума.// Патологоанатомическая диагностика вирусных болезней животных./ Под ред. Н. И. Архипова.- М.: Колос, 1984.-с. 78−82.
  105. Г. П. Чума плотоядных.// Патологоанатомическая диагностика вирусных болезней животных./ Под ред. Н. И. Архипова.-М.: Колос, 1984, — с. 168−171.
  106. Appel M.J.G., Gillespine J.H. Canine distemper virus.// Virol. Monogr., 1972.-N 11.- 96 p.
  107. Silveria D. et al. Inclusoes cytoplasmaticas do virus da cinomose.// Arg. Esc. Vet. Un. Fed. Min. Ger., 1979.-31.- N2.-p. 107−111.
  108. H.C., Крикун В. А., Усков B.H. Получение иммунных сывороток для люминесцентной диагностики чумы плотоядных.// Пробл. пушн. звер. и кроликов.- т. XIII, 1974.- с. 241−243.
  109. Ш. С., Карпов Г. М., Вишняков И. Ф. Получение сывороток свиней против вируса чумы плотоядных и их использование в диагностике данной болезни.// Вир. бол. с/х ж-ных.- Владимир: ВНИЯИ, 1995.- с. 49.
  110. Miry C., Ducatelle R. et al. Immunoperoxidase study of canine distemper virus pneumonia.// Res. in Veter. Sei., 1983.- 34.- N 2.- p. 145−148.
  111. Schmidt P. et al. Production of antibodies to canine distemper virus in chicken eggs for immunohystochemistry.// J. Vet. Med. Ser. В.- 1989.-36.-N9.-p. 661−668.
  112. Ю.Ф., Чижов В. А. Использование РДП при изготовлении и контроле эмбрион-вирус-вакцин против чумы плотоядных.// Труды ВГНКИ, — М., 1974.- 20.- с. 18−22.
  113. Kolbi S., Schuller W. Zur Diagnostik von viralen Erkrankungen beim Hund.// Wien. Tierarztl. Mschr., 1988.- 75.- N 4.- p. 138−144.
  114. Kolbi S., Schnabel H., Mikula M. Staupeinfection als todesursacbei dachsen in Osterreich.// Tierarz. Prax., 1990.- v. 8.- N 1.- p. 81−84.
  115. Kovac S. Virus psinky a diagnostika ochorenia.// Veterinarstvi. 1979.-29.-N ll.-p. 510−511.
  116. В.И. О серологической диагностике чумы плотоядных у собак и пушных зверей.// Труды ВГНКИ.- М., 1973.- т. XIX.- с. 5257.
  117. А.Л., Воробьёва З. Г. Диагностика чумы плотоядных.- М.: Ветеринария, 1993ю- № 2 .- с. 53−54.
  118. Back J.W. Single serum-sample diagnosis of canine viral diseases.// Veter. Med. Small Anim. Clin., 1983.- 78.- N 9.- p. 1393−1396.
  119. Blixenkrone M.M. Detection of intracellular canine distemper virus antigen in mink inoculated with an attenuated or a virulent strain of canine distemper virus.// Amer. J. Vet. Res., 1989.- 50.- N 9.- p. 16 161 620.
  120. C.B., Маралинская Е. И., Чаплыгина H.M. Экспериментальное заражение соболей вирусом чумы плотоядных.- М.: Ветеринария, 1991.- № 2.- с. 33−34.
  121. Chappus G. La maladie de Carre et son diagnostic de laboratorie.// Anim. Compagnie. 1974.- 9.- 4.- p. 321−337.
  122. Kovacs G., Moscari E., Sztojkov V. et al. Szopornyicajarvany nagyuzemi nyerctenues-zetben. 1. Jarvanytani es diagnosztikai tapasztalatck.// Maguar allatorv, Lapja, 1983.- 38.- N 5.- p. 305−308.
  123. Reed С.A., Daly Z.A., Stroch L.A. Evaluation of a latex agglutination test for herpes simplex virus (HSV) antigen.// Abst. Ann. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1986.- p. 23−28.
  124. Samol S. Badania nad wyrkywaniem zakazen wirusem nosowki metoda przeciwcial fluoryzujacych u psow.// Med. Wet.- 1978.- 34.- N 3.- p. 138−141.
  125. Г. П. и др. Иммуноморфологическая реакция у норок при вакцинации против чумы плотоядных.// Тр. 5 Всесоюзн. н.-мет. конф. по пат. анат. с/х ж-ных.- Тбилиси: 1973.- с. 295−297.
  126. Ducatelle R., Coussement W., Hoorens J. Demonstration of canine distemper viral antigen in parafm sections, using an unlabelled antibody-enzyme method.// Amer. J. Vet. Res., 1980.- 41N 11.- p. 1860−1862.
  127. Hewicker, Damsch S. et al. Detection of canine distemper viral antigen in formalinfixed and parafm-embedded tissue of a fitch (Mustella putorius), using an immunoperoxidase technique.// Dtsch. Tier. Wochenschr., 1990.- 97.- N 2.- p. 85−88.
  128. Noon K.F. et al. Enzyme-linked immunosorbent assay for evaluation of antibody to canine distemper virus.// Amer. J. Vet. Res.- 1980.- 41.- N 4.- p. 605−609.
  129. Bernard S.L., Shen D.T., Gorham J.R. Antigen requirements and specificity of enzyme-linked immunosorbent assay for detection of canine IgG against canine distemper viral antigens.// Am. J. Vet. Res., 1982.- 43.- N 12, — p. 2266−2269.
  130. В.Д., Зорина А. И. Новое в вакцинации собак против чумы плотоядных.- М.: Ветеринария, 1995.- № 10.- с. 50−51.
  131. Appel M.J.G., Harris W.V. Antibody titers in domestic ferret gills and their kits to canine distemper virus vaccine.// J. Amer. Vet. Med. Ass., 1988.- 193.-N3.-p. 332−333.
  132. Ogunkoya A.B., Bunn Т.О., Muhsin M.A. A serological survey of canine distemper in Nigerian dogs.// Bull. Anim. Hlth. Prod. Afr.-1985.-33.- p. 273−274.
  133. Fontaine J. Epreuvec de sero-neutralisation «in ovo» et de sero-protection «in vivo», appliques su titrage des anticorps dans la maladie de Carre.// Bull. Acad. Vet., 1959.- 32.- N 1.- p. 89−96.
  134. М.А., Поморцев Г. Н., Петровичева О. Д. Значение цветной химической реакции в диагностике чумы плотоядных.- М.: Ветеринария, 1961.- N 12.- с. 3−12.
  135. Blixenkrone М.М. Hundesuge diagnostik En oversight over diagnostiske metoder.// Dansk. Veterinaeridsskr., 1988.- 71.- N 6 .- p. 325−331.
  136. Hapkins R., Das P. Latex agglutination test for detection of Australia antigen among blood donors and patients.// J. Clin. Pathol.- 1974.- v. 27.-N l.-p. 40−44.
  137. A.E., Кузовлева О. Б., Туманова A.E. Получение белковых комплексов (иммуносорбентов) в виде суспензий, способных присоединять большие количества антител.- М.: Биохимия, 1961.т. 26.- № 5.- с. 934−942.
  138. Capel P.J.A. A quantitative immunofluorescent method based a the covalent coupling protein to sepharose beads.// J. Imm. Meth.- 1974.- v. 5., N2.-p. 165−178.
  139. Capel P.J.A. The defined antigen substrate spheres (DASS-system) and foam of its applications.// Ann. N-Y Acad. Sci.- 1975.- v. 245.- p. 108 119.
  140. Deelder A.M., Ploem J.S. An immunofluorescence reaction for Fasciola Hepatica using the defined antigen substrate spheres (DASS-system).// J. Immunol. Meth.- 1974.- v. 4.- p. 239−251.
  141. Deelder A.M., Ploem J.S. An immunofluorescence reaction for Shistosoma mounsoni using the defined antigen substrate spheres (DASS-system).// Exp. Parasitol.- 1975.- v. 37.- p. 173−178.
  142. К.JI. Современные методы приготовления различных люминесцирующих сывороток.// Иммунохимический анализ./ Под ред. Зильбера Л.А.- М.: Медицина, 1968.- с. 202−223.
  143. К.Л., Походзей И. В. Приготовление сефарозных пневмококковых диагностикумов и их использование в клинике легочных заболеваний.- М.: Журн. микробиол., 1978.- № 3.- с. 7579.
  144. К.Л., Чахава О. В., Чумак Л. Г. Применение иммуносорбентов для определения специфичности и активности люминесцирующих сывороток.- М.: Журн. микробиол., 1969.- № 10,-с. 21−26.
  145. Knapp W., Haaijman J.J. et al. Microfluorometry evalution of conjugate with the defined antigen substrate spheres (DASS-system).// Ann. N-Y Acad. Sci.- 1975.- v. 245.- p. 94−107.
  146. Knapp W., Ploem J.S. Microfluorometry of Ag-Ab interaction in immuofluorescence using the defined antigen substrate spheres (DASS-system).// J. Immunol. Meth.- 1974.- v. 5, N 3.- p. 259−273.
  147. Zlotowicz Ch., Graebert A. et al. Immunofluorescentserologishe Diagnostik aviar Leucosen unter Anvendung des DASS-Systems.// Vet. Med.- 1986.- v. 41.- N 1.- p. 457−460.
  148. Т.Э. Индикация вирусов в объектах внешней среды и патологическом материале на модели вируса лихорадки долины Рифт с помощью флуорометрических методов.- Дис.- канд. биол. н., Покров, 1988.- с. 12−87.
  149. Matheka H.D., Mussgay М. Activated sepharose as an adsorbent to antibodies of foot-and-mouth disease virus and its use an immunosorbent type and subtype differentiation.// Arch. ges. Virusforsch.- 1969.- v. 27.- p. 13−22.
  150. Golley M.E., Wang C.-H., Ekenberg S.G. et al. Particle concentration fluorescence immunoassay (PCFIA): a new, rapid immunoassay technique with high sensitivity.// J. Immunol. Meth.- 1974.- v. 67.- p. 21−35.
  151. В.А., Каральник Б. В. Способ сенсибилизации эритроцитов.- А.С. СССР № 614 377.
  152. Ю.И., Журов С. А. и др. Использование микрометода иммунофлуоресцентного анализа для определения антигенов вируса гриппа и клещевого энцефалита.- М.: Журн. микробиол., 1987, — № 1.- с. 77−80.
  153. С.А. Оценка пригодности эритроцитарных тест-препаратов для стандартизации противогриппозных флуоресцирующихантител.// Вирусные инфекции, сборник.- Свердловск, 1979.- с. 3239.
  154. С.А., Васерин Ю. И. Эритроцитарные тест-препараты для стандартизации флуоресцирующих антител и серологической диагностики гриппа.- М.: Журн. микробиол., 1985.- № 1.- с. 81−84.
  155. С.А., Лялюк Б. М., Васерин Ю. И. Способ приготовления тест-системы для оценки противовирусных конъюгатов.- А.С. СССР № 700 110.
  156. О.И., Алексеев В. В. Количественная иммунофлуоресценция. Аспекты практического применения.- М.: Журн. микробиол., 1986.- № 5.- с. 94−99.
  157. К.Г., Чибисова В. А. и др. Новый количественный метод определения иммуноглобулина Е с помощью специфического сефарозного иммуносорбента и люминесцентного микроскопа Люмам И-3.- М.: Иммунология, 1981.- № 1.- с. 85−88.
  158. Haaijaman J.J., Bloemen F.J. Microfluorometric immunoassay with antigens bound to sepharose beads.// Ann. N-Y Acad. Sci.- 1975.- v. 254.- p. 137−150.
  159. Skhawarter A. Fluorescence microscopy sample mounting method and structure.// Pat. USA 902 609.
  160. Wilson M., Muligan S., Raison R. A new microspherebased immunofluorescence assay for antibodies to membrane-associated antigens.// J. Immunol. Meth.- 1988.- v. 107.- N 2.- p. 231−237.
  161. Н.Ф., Кисилёв A.O. Реакция пластинчатой окрашенной латекс-микроагглютинации для выявления противококлюшных антител в слюне.- М.: Лаб. дело, — 1990, № 6.- с. 61−63.
  162. В.К., Бахарев В. Н. и др. Иммобилизация ферментов на монодисперсных латексах.- М.: Биотехнология, 1989.- № 5−6.- с. 729−734.
  163. З.Г., Фокина Е. Н. Экспериментальные основы реакции латекс-агглютинации.- М.: Клин. лаб. диагн., 1992.- № 7−8.- с. 6062.
  164. И., Гримова Н. и др. Новое диагностическое средство для определения беременности Севатест ХГ-латекс.// Диагностические средства в медицине.- Прага, 1987.- 6 с.
  165. Al-Kijaj M., Schonthal H. Latex agglutination test and HAA.// Brit. Med.J.- 1972.- v. 3.- N 5829.- p. 769.
  166. Arya S.C. Latex agglutination test using a monoclonal antibody for rotavirus detection in stool specimens under adverse conditions.// Ann. Inst. Pasteur./ Viral.- 1988.- v. 139.- p. 305.
  167. Aymard M., Quash L., Million J. Determination of antineuraminidase antibody titers in human sera by inhibition of the agglutination of fetuin-latex by influenza viruses.// J. Biol. Stand.- 1982.- v. 10.- N 2, — p. 125 133.
  168. Bonacker L., Stark J. Latex-agglutination, a rapid screening method for detection of hepatitis-associated antigen.// Progress in immunological standartization.- Basel et al., 1982.- v. 5.- p. 70−74.
  169. Bonacker L., Stark J. Latex-agglutination eine schnelle Screeningsmethode zur Nachweis des HAAs.// Klin. Wschr.- 1972.- N 50.-p. 166.
  170. Brade H., Klein M., Schmidt W. Bildung und Persistenz latex-agglutinationschemmender Antikorper in Resusaffen nach Infektion mit Cozciovirus Typ B4.//Z. Immunforsh.- 1976.- v. 151.- N 5, — p. 461−465.
  171. Sever J., Tran N. et al. Rapid latex agglutination test for rubella antibody.// J. Clin. Microbiol., 1983.- v. 17.- N 1.- p. 52−54.
  172. Weissfeld A., Sonnenwirth A. New latex agglutination test for rapid determination of rubella immune status.// J. Clin. Microbiol.- 1983.- v. 16.-N5.-p. 971−972.
  173. H.A. Реакция агглютинация латекса.// Иммунологическая диагностика вирусных инфекций./ Под ред. Перадзе Т. В., Халонена П.- М.: Медицина, 1985.- с. 121−143.
  174. Abbot A.D. et al. A rapid latex particle agglutination assay for the detection on herpes simplex virus antibody in human serum.// Austr. Ann. Meet. Amer. Soc. Microbiol.- 1987.- N 1−6.- p. 348.
  175. C.K., Лукин Ю.В, 0 Фидлер Л. М. и др. Приготовление IgG-диагностикума на основе окрашенных полиакролеиновых латексов для применения в реакции агглютинации латекса.- М.: Журн. микробиол., 1990, № 5−6.- с. 259−261.
  176. Quash L.A., Niveleau А. et al. Immunolatex visualization of cell surface Forssman and polyamine antigenes.// Exp. Cell Res.- 1976.- v. 98.- p. 253−262.
  177. Quash L.A., Rocha A. et al. The preparation of latex particles with covalently bound polyamines, IgG and measles agglutination test.// J. Immunol. Meth.- 1978.- v. 22.- N 112.- p. 165−174.
  178. Wild Т., Quash L.A. et al. The use of measles latex reagent for the determination of measles antibodies and specific test for multiple sclerosis.// Med. Microbiol. Immunol.- 1978.- v. 166.- N lA .- p. 219 226.
  179. И.П., Джавадов Э. Д. Серологическая диагностика болезни Марека.- М.: Ветеринария, 1991.- № 9.- с. 33−36.
  180. С.С., Носков Ф. С., Шелухина Э. М. Выявление антигена ВИЧ и антител к нему с помощью теста агглютинации с отечественным латексом.- М.: Вопр. вирусол., 1990.- № 3.- с. 245 248.
  181. И.С., Умнова Н. С., Желудков М. М. и др. Использование реакции агглютинации латекса для диагностики бруцеллёзной инфекции.- М.: Журн. микробиол., 1991.- № 7, — с. 61−63.
  182. Е.П., Тартаковский И. С., Радченко О. В. и др. Метод пассивной агглютинации полимерных дисперсий для диагностики легионеллёза.- М.: Журн. микробиол., 1991.- № 11.- с. 41−43.
  183. Г. А., Обухова В. Р., Шаноян Н. К. Органические и неорганические сорбенты антител для приготовления арбовирусных диагностикумов.// Тез. докл. 16 Всес. съезда микробиол. и иммунологов. Ч.З.М., 1977.- с. 210−211.
  184. К. Агглютинация латекса.// Иммунологические методы./ Под ред. Г. Фримеля.: Пер. с нем.- М.: Медицина, 1987, — с. 219−221.
  185. А.В., Бурлев В. А. и др. Оценка чувствительности и специфичности теста агглютинации частиц латекса для выявления антигена гепатита В.// Эпидемиология и профилактика вирусного гепатита.-Таллинн, 1976.- с. 134−135.
  186. Casai N., Strati I., Copelivici J. Trends in the rapid diagnosis of viral infections.// Rev. Roum Med. Virol.- 1983, — v. 34, N 2.- p. 131−149.
  187. Fayrman S., Nakasone A., Aarnaes S. et al. Fluorescence immunoassay and passive latex agglutination as alternatives to hemagglutination inhibition for detecting rubella immune status.// Clin. Microbiol.- 1983.-v. 17.-p. 685−688.
  188. Freemen S., Clark L. et al. Evalution of a latex agglutination test for detecting of antibodies to rubella virus in selected sera.// J. Clin. Microbiol., 1983.-v. 18.-N l.-p. 193−198.
  189. Fuji Z. Sensitized polystyrene latex for diagnosis of influenza prepared by binding S-antigens of influenza virus to latex.// Pat. Jap. N 55 030.
  190. Gaeger N.C. et al. Immunoassay using colorable latex particles.// Pat. USA N4837168.
  191. Leach I., Ruck B. Detection of HAA by the latex agglutination test.// Brit. Med. J.- 1971.- N 4, — p. 597−598.
  192. Liwky L., Horvath B. Detection of hepatitis B surface antigen by latex agglutination.// Pat. USA 3 992 517.
  193. Manthey K.F., Kreutz F.H. Latex-test zum Nachweis des hepatitis-assoziirten Antigens.// Dtsch. Med. Whsch.- 73.- 98.- p. 2070.
  194. Maraussen O.F., Lundstrem T. A new micromethod for the latex agglutination test.// Z. Pflanzensch. und Pflanzenkr.- 1975.- v. 82.- N 89.- p. 547−548.
  195. Parikh L., Sorensen T. Detection and titration of viruses and antibodies using latex.// Pat. USA 3 826 613.
  196. Parish C., Higgins T. Latex bead resetting method for cell surface antigens.// J. Immunol. Meth.- 1982.- v. 53.- N 3.- p. 367−372.
  197. Pothier P., Limone F. et al. Development and preliminary evaluation of a latex agglutination test using a monoclonal antibody for rotavirus detection in stool specimens.// Ann. Inst. Pasteur./ Virol.- 1987.- v. 138.-p. 523−526.
  198. Remington J., Eimstad W., Araujo F. Detection of immunoglobulin M antibodies with antigen-tagged latex particles an immunosorbent assay.// J. Clin. Microbiol.- 1983.- v. 17, — N 5.- p. 939−941.
  199. Sanekata T., Yoshida Y., Okada H. Detection of rotavirus in feces by latex agglutination.// J. Immunol. Meth.- 1981.- v. 41.- N 3.- p. 377−385.
  200. Schmidt W.A., Brade H., Klein M. Der Latex-Agglutinationshemmtest -eine Methode zur shnellen Antikorperbestimmung nach Enterovirus-Infection.// Dtsch. Med. Whschr.- 1974.- N 99.- p. 2099−2103.
  201. Schmidt W.A., Klein M. A new method for the determination of virus specific IgG and IgM antibodies.// Arch. Virol.- 1980.- v. 66.- N 1.- p. 67−70.
  202. Schmidt W.A., Klein M., Brade H. Der Latex-IgM-Test in der Virusdiagnostik: Bestimmung von Zytomegalie-Antikorper.// Zbl. Bact. J. Abt. Orig. A.- 1981, — v. 250.- N 1−2.- p. 25−33.
  203. Siegel H., Klein M., Schmidt W. The latex agglutination test virus diagnostic: Identification of poliomyelitis and Coxackie viruses.// Zbl. Bact. J. Abt. Orig. A.- 1979.- v. 245.- N 3.- p. 271−275.
  204. Ю.П., Серна Ф. Р. Латексный тест в диагностике внутриутробной инфекции.- М.: Лаб. дело, 1974.- № 11.- с. 682−684.
  205. Caroajal С., Dibella J., Stincer М. Analysis and comparison of two methods to detect hepatitis В antigen.// Amer. J. Clin. Path.- 1976.- v. 65.- N 4.- p. 547−549.
  206. Debby A.H., Abbot A.A. et al. Evaluation of a latex particle agglutination assay for the detection of cytomegalovirus antibody in patient serum.// J. Clin. Microbiol.- 1989.- v. 27.- N 27.- p. 2878−2879.
  207. Destimter J. Two Latex test for Australia antigen in subjects with and without hepatitis.// Wox. Sang. Suppl.- 1973.- N 24.- p. 88−94.
  208. Grandien M. et al. Latex agglutination test for adenovirus diagnosis in diarrhea disease.// J. Med. Virol.- 1987.- v. 23.- N 4.- p. 311−316.
  209. Inrena Th.J., Iritani B. Rapid detection of group С streptococci from animals by latex agglutination.// J. Clin. Microbiol.- 1987.- v. 27.- N 2.-p. 309−312.
  210. Oreskes J., Singer J. The mechanism of particulate carrier reactions. 1. Adsorbtion of human gamma-globulin to polystyrene latex particles.// J. Immunol- 1961.- v. 86.- N 3.- p. 338−343.
  211. Wilms K. Latex-Test zur Bestimmung der «Hepatitis Associated Antigen"(HAA).// Folia Haemotol.- 1973.- v. 99.- p. 385−389.
  212. Wilms K., Bader L. et al. Zum Wertigkeit des Latex-Testes als Nachweissmethode des «Hepatitis-B-Antigen» bei Blutspender.// Dtsch. Ges. Wesen.- 1975.- v. 30.- p. 2141−2143.
  213. Yvonnet В., Perrin J., Barin F. et al. Detection de l’antigene HBs grace a un test rapide au latex.// Ann. Microbiol.- 1982.- v. 133.- N 3, — p. 503 504.
  214. Э.К., Баборенко Е. П. Реакция агглютинации латекса при ящуре.// Тезисы докладов ВНИЯИ.- Владимир, 1988.- с. 37.
  215. И.М., Кудрявцев Ф. С., Джавадов Э. Д. Реакция агглютинации латекса для диагностики инфекционного бурсита кур.- М.: Ветеринария, 1990.- № 12.- с. 30−31.
  216. Heymer В., Schemaye W. et al. A latex agglutination test for measuring antibodies to streptococcal mucopeptides.// J. Immunol.- 1973, — v. 111.-N2.-p. 478−554.
  217. Mones M.-L., Klein M. et al. Der Nachweis von Immunoglobulin A mit Hilfe der Latex-Agglutinationstest.// Arztl. Lab.- 1979.- v. 25.- p. 243 246.
  218. Torrance L. Use of protein A to inprox sensitization of latex particles with antibodies to plant viruses.// Ann. Appl. Biol.- 1980.- v. 96.- N 1.-p. 45−50.
  219. Л.И., Иноземцева Л. В., Мусина Л. Т. и др. Разработка и апробация реакции латекс-агглютинации для экспресс-диагностики стафилококковой инфекции.- М.: Журн. микробиол., 1995.- № 6.- с. 73−74.
  220. А.Н., Гнатенко Г. В., Красников Г. А. Реакция агглютинации латекса для обнаружения адгезивного антигена у кишечной палочки.- М.: Ветеринария, 1990.- № 2.- с. 35−37.
  221. А.Г., Ющук Н. Д., Абдурахманова Э. Г. и др. Индикация специфических антигенов Salmonella typhy методом латексной агглютинации.- М.: Журн. микробиол., 1995.- № 4.- с. 8687.
  222. ., Серра Р. Экспресс-диагностика в микробиологии. Настоящее и будущее.- М.- Лаб. дело, 1990.- № 9.- с. 64−67.
  223. Н.А. Применение реакции агглютинации латекса для диагностики паразитарных болезней.// Мед. паразитол., 1982.- № 2.- с. 65−72.
  224. А.А., Самсонов И. М. и др. Методы микроанализа: латексагглютинация и иммуноферментный анализ в диагностикеменингококковой инфекции.- М.: Журн. микробиол., 1987.- № 9.- с. 94−98.
  225. Satoshi Т., Tadamitsu S., Michio J. Method for assaying antigen-antibody reaction and thereof.// Pat. USA 467 045.
  226. Г. И., Ахметова Е. И., Изюмников A.Jl. и др. Исследование реакции агглютинации латекса методом светорассеяния.- М.: Лаб. дело, 1990.- № 5, — с. 55−58.
  227. И.П. Ультраструктурный анализ компонентов реакции латексагглютинации.- М.: Ветеринария, 1992.- № 7−8.- с. 26−29.
  228. И.А. Чума.// Инфекционные и инвазионные болезни собак./ Под ред. Любашенко С .Я.- М.: Госсельхозиздат, 1956.- с. 3−55.
  229. Axthelm М.К., Krakowska S., Gorham J.R. Canine distemper virus: In vivo virulence of in vitro-passage persistent virus strains.// Amer. J. Vet. Res., 1987.- 48.- N 2, — p. 227−234.
  230. Системы культур клеток лёгкого собаки, способ культивирования вирусов и вакцины на их основе.- Пат. США 4 112 068.- 1976.
  231. Corwele H.J.C., Laird Н.М., Wright N.I. et al. Ultrastructural features ofcanine distemper virus infection in a dog kidney cell line.// J. Gen. Virol.- 1974.- 12.- p. 281−292.
  232. Gabassa V.J. Tissue culture propagated canine distemper virus and vaccine thereof.// Pat. USA N 2 965 544.- 1959.
  233. Gorska C. Badania nad wirusem nosowki. 1. Namnasanie wybranych szczepow w hodowli komorek.// Pol. Arch, wet., 1986.- 24.- N 3.- p. 315−328.
  234. Harrison M.J., Smith F.A., Graydon J.J. The virus of canine distemper in cell culture.// J. Compar. Pathol., 1968.- 78, — N 2.- p. 121−139.
  235. К.Ю., Мусиенко М. И., Дудников Л. А. Сравнение эффективности культивирования вакцинных штаммов вируса чумы плотоядных в различных культуральных системах.// Вир. бол. с/х ж-ных.- Владимир, 1995.- с. 49−55.
  236. Metzler А.Е., Higgins R.J., Krakowska S. et al. Virulence of tissue culture-propagated canine distemper virus.// Infection and Immunity, 1980.- 29.-3.-p. 940−944.
  237. Metzler A.E. et al. In vitro propagation of canine distemper virus: Establishment of persistent infection in Vero cells.// Amer. J. Vet. Res., 1984.- 45.-N10.-p. 2211−2215.
  238. Е.И. и др. Персистенция вируса чумы плотоядных в перевиваемых клетках человека.- М.: Вопр. вирусол., 1991.- № 2.- с. 144−146.
  239. Л. Л. и др. Оптимальные условия репродукции вируса чумы плотоядных в клетках линии 4647.- М.: Вопр. Вирусол., 1990.-№ 1.- с. 80−81.
  240. Но С.К., Babiuk L.A. A new plaque system for canine distemper: characteristics of the Green strain of canine distemper virus.// Can. J. Microbiol., 1979.- 25.- N 6, — p. 680−685.
  241. Whetstone C.A., Bunn Т.О., Gourlay J.A. Canine distemper virus titration in ferret peritoneal macrophages.// Cornell. Vet., 1981.- 71.- N 2.-p. 144−148.
  242. Bni H.D., Tobler Z.H., van Peltz F. et al. Canine bladder epithelial cells in culture: Susceptibility to canine distemper and measles viruses.// Amer. J. Vet. Res., 1982, — 43.- N 7.- p. 1268−1270.
  243. В.И. и др. Микроносители для культур клеток.// Культивирование клеток животных и человека.: 3 Всес. совещ.-Пущино, 13−15 февр. 1990.: Тез. докл.- М.: 1990.- с. 90−91.
  244. К.П. Требования, предъявляемые к аттенуированным штаммам вирусов и создаваемым на их основе живым вирусвакцинам.// Акт. пробл. вирусологии.- ч. II.- пгт Гвардейский, 1994.- с. 58−61.
  245. С.А. Об иммунопрофилактике чумы собак.- М.: Ветеринария, 1954.- № 6.- с. 8−14.
  246. А. и др. Изучение биологических свойств вакцины против чумы плотоядных «Вировакс» (Франция).// Стандартизация и контроль качества биопрепаратов, применяемых против инфекц. бол. ж-ных.- Труды ВГНКИ.- М., 1980.- с. 70−74.
  247. Живая культуральная вакцина против чумы собак.- Пат. США 4 224 412.- 1979.
  248. В.А. Разработка технологии изготовления культуральной вакцины против чумы плотоядных из штамма Ш-2.- Шелково, 1974.- 96 с.
  249. Способ получения вирусвакцины против чумы плотоядных.- А.С. СССР № 287 592.- 1978.
  250. Способ приготовления живой вакцины против вирусных заболеваний.- Пат. США 4 071 618.- 1974.
  251. Prydie J. Potency of an attenuated canine distemper vaccine derived from chick embryo cell cultures.// Res. Vet. Sci.- 1968.- N 9.- p. 453 457.
  252. Pryde J. Studies with an attenuated canine distemper vaccine derived from chick embryo cell cultures.// Res. Vet. Sci.- 1968.- N 9.- p. 443 452.
  253. Wawrzkiewicz J., Czerwinska E., Zdun E. Wlasciwosci biologiszne attenuowanego szczepu wirusa nosowki namnazanego na fibroblastach Kurzych w podlozu produkoji wlasnej.// Med. Veter., 1985.- 41.- N 1.-p. 10−13.
  254. Вакцина против чумы собак и способ её приготовления.- Пат. США 5 178 862.- 1993.
  255. Вирусная вакцина против чумы собак.- Пат. США 4 992 272.- 1989 г.
  256. Вирусная вакцина против чумы собак.- Пат. США 4 990 367.- 1990 г.
  257. Ackermann О. Verfahren zur Herstelung einer Vaccine gegen Staupe. Pat. GFRN 1 235 505.- 1965.
  258. Lavender Y.F. Canine distemper virus vaccine.// Pat. USA N 3 836 626.-US CI.-p. 424−89.- 1973.
  259. Способ получения вакцины против чумы плотоядных «Вакчум». -А.С. СССР № 257 072.- 1974.
  260. Вакцина против чумы собак.- Пат. США № 6 836 626.- 1973.
  261. Живая вакцина против чумы плотоядных и способ её получения.-Пат. США 4 004 974.- 1975.
  262. В.П., Курбатов А. В., Миронова JI.JI. и др. Создание экспериментальной вакцины против чумы плотоядных с использованием клеток линии 4647.- М.: Вопр. вирусол., 1990.- № I.-с. 56−58.
  263. К. и др. Аэрозольная вакцинация норок против чумы плотоядных.// Стандарт, и контр, кач. биопреп., примен. против инф. бол. ж-ных.- Труды ВГНКИ.- М., 1980.- с. 65−70.
  264. Gorska С., Gorsky J. Attempts of vaccination of foxes by an aerosol route.// Bull. Veter. Inst, in Pulawy., 1983.- 26.- N 1, — p. 35−39.
  265. GorskaC., Gorsky J. Effects of aerosol and parenteral vaccinations against distemper in polecat and mink farms.// Bull. Veter. Inst, in Pulawy, 1983.- 26, — N 1−4, — p. 27−35.
  266. Г. П. и др. Применение метода иммунопероксидазной метки для обнаружения вируса чумы плотоядных.// Биол. и патол. клеточн. пушн. зверей.- Киров: 1977.- с. 196−197.
  267. Hoover J.P., Baldnoin С.А., Rupprecht С.Е. Serologic response of domestic ferrets to canine distemper and rabies virus vaccines.// J. Am. Veter. Med. Ass., 1989.- 194, — N 2.- p. 234−238.
  268. Krakowska S., Cockerell G., Koestner A. Effects of canine distemper virus infection on lymphoid function in vitro and in vivo.// Infect, and Immun, 1975.- 11.-N5.-p. 1069−1078.
  269. В.И., Метёлкин O.A., Дорофеев B.M. Специфическая профилактика чумы плотоядных в неблагополучных по чуме хозяйствах.// Биол. и вет. в клет. пушн. звер. и пром. кролиководстве.- 1986.- 34.- с. 78−80.
  270. Hulsebos J. Maternal immunity in mink kits to mink virus enteritis and distemper.// Norw. J. Agr. Sci.- 1992.- Suppl. N (9).- p. 405−412.
  271. Gorska C., Gorsky J. Determination of the maximum exposed date for lyophilized anti-virus vaccines based on preparations heated at 56° of 37°.// Tagungsbericht Acad, der Landwirschaftswiss. der DDR, 1984.-228,-p. 209−217.
  272. Vasic В., Vasic N., Mladenovic Z. Uticaj razlicitih temperatura na odrzivost vakcine stenecaka.// Vet. glasnik., 1979.- 33.- N 10.- p. 789 793.
  273. И.И., Снигирёв С. И. Сравнительная эффективность вакцин 668-КФ и Вакчум в специфической профилактике чумы собак.// Диагностика, лечение и проф. инфекц. бол. ж-ных Казахстана.- Алматы, 1989.- с. 64−68.
  274. В.М. Вакцина для собак.- М.: Кролиководство и звероводство, 1993.- № 4.- с. 30−31.
  275. Guerena M.J.A. Pruebas de seguridad con la сера de vims vacunal Lederbe de distemper canino.// Vet. Мех.- 1972.- 23.- N 4.- p. 375.
  276. Appel M.J.G. Reversion to virulence of attenuated canine distemper virus in vivo and in vitro.// J. Gen. Virol., 1978.- 41.- N 2.- p. 385−393.
  277. Вирусные вакцины. Культивирование вируса.- Пат. Великобрит.-1971 г.
  278. Многовалентная вакцина против чумы собак.- Пат. США 5 000 951.1990.
  279. .М., Маликова Л. В., Мергалиев А. А. Разработка методов очистки и концентрирования вируса чумы плотоядных.// Акт. пробл. вирусологии.- ч. 1.- пгт Гвардейский, 1994.- с. 61.
  280. Н.А., Колышкин В. М. Оценка иммуногенности вакцин против чумы плотоядных.- М.: Ветеринария, 1996.- № 2.- с. 56−58.
  281. Goret P. et al. Immune croise entre la maladie de Carre et la peste bovine.// Bull. Acad. Vet.- 1958.-31, — p. 163−166.
  282. Gale C. Measles vims for distemper prophylaxis.// J. Amer. Vet. Med. Ass., 1970.- 156.- N 12.- Part 1.- p. 1751−1752.
  283. Norrby E. et al. Component vaccines containing paramyxovirus glycoproteins.// Vaccines 87: Mod. Appr. New Vaccines: Prev. AIDS and Viral., Bact. and Parasit. Diseases.: proc. Conf., Gold Spring Harbor., N.Y., 1987.-p. 311−315.
  284. Vaccine against rinderpest.// Nature, 1989.- 888.- N 8.- p. 116.
  285. H.A., Нечаева A.C. Гамма-глобулины.- M.: Медицина, 1965.- 78 с.
  286. Н.В. Гамма-глобулины в ветеринарии.- Киев, 1971.- 64 с.
  287. .К., Брандт Д. Ч., Вассали П. Выделение и характеристика иммуноглобулинов, антител и их полипептидных цепей.// Методы исследований в иммунологии./ Под ред. Лефковитса И., Перниса Б.: Пер. с англ.- М.: Мир, 1981.- с. 58−82.
  288. A.M. Белки сыворотки крови при инфекционных болезнях животных.- М.: Колос, 1968.- 168 с.
  289. И.А. Статистические методы в вирусологических исследованиях.// Руководство по ветеринарной вирусологии./ Под ред. Сюрина В.Н.- М.: Колос, 1966.- с. 390−408.
  290. Haas L., Barret T., Harder T. et al. Detection of phocine distemper virus using the polymerase chain reaction.// Dtsch. tierarztl. Wocheschr., 1990.- 97,-N2.-p. 93−95.
  291. Querfurth L., Paul H. Protein A coated latex-linked antisera reagents for sensitive test permitting the use of antisera unsuitable for the latex test.// Phytopathol. Z.- 1979.- v. 94, — N 30.- p. 282−285.
  292. Диагностический набор применяют для обнаружения специфического антигена вируса чумы КРС в пробах патологического материала от больных и павших животных, в инфицированной культуре клеток, а также в пробах из объектов внешней среды и ветнадзора.
  293. Диагностические препараты, изготовленные в соответствии с настоящей инструкцией, должны отвечать требованиям ТУ-10−09.
  294. ОПИСАНИЕ ТЕХНОЛОГИИ ПОЛУЧЕНИЯ СПЕЦИАЛЬНЫХ
  295. ВИДОВ БИОЛОГИЧЕСКОГО СЫРЬЯ, НЕОБХОДИМОГО ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ИММУНОСОРБЕНТА НА ОСНОВЕ СЕФАРОЗЫ4В
  296. Обработка лабораторной посуды, резиновых изделий иинструментов
  297. В процессе производства иммуносорбента используют колбы, цилиндры, флаконы, пипетки, пробирки, стаканы, резиновые пробки, шприцы, иглы и другую необходимую стеклянную посуду.
  298. В качестве моющих средств применяют тринатрийфосфат, моющий порошок типа «Айна» или «Лотос», кальцинированную и двууглекислую соду, серную и соляную кислоты.21.1. Обработка стеклянной посуды
  299. Показателем чистоты вымытой посуды является равномерное стекание воды со всей поверхности сосудов и отсутствие капель воды на стенках.
  300. Вымытую посуду устанавливают вниз горлышком и сушат в сушильном шкафу.
  301. Посуду, бывшую в употреблении, незагрязнённую парафином и жирами, ополаскивают холодной водой и моют по той же методике.
  302. Посуду, загрязнённую жирами, сначала кипятят в растворе тринатрийфосфата, затем промывают горячей водопроводной и 4-кратно дистиллированной водой.
  303. Пипетки после работы помещают в банку с 3% раствором едкого натра, затем обрабатывают хромовой смесью, тщательно промывают сначала проточной, затем дистиллированной водой и сушат в сушильном шкафу.21.2. Обработка пластмассовых изделий
  304. Пластмассовые изделия замачивают в 1% растворе «Айны» или «Лотоса», затем ершуют, тщательно промывают водопроводной водой и в 3 сменах дистиллированной.
  305. Вымытые изделия переворачивают вниз горлышком на фильтровальную бумагу и высушивают при комнатной температуре.
  306. Обработка резиновых изделий
  307. Ампулы и стеклянную посуду выдерживают в сушильном шкафу при температуре от 180 °C до 200 °C в течение 2 ч. Резиновые пробки и посуду автоклавируют при 15 МИа в течение 30 минут. Шприцы, иглы, резиновые трубки и груши кипятят в течение 40 минут.
  308. Приготовление солевых растворов
  309. Солевые растворы готовят на дистиллированной воде по ГОСТ 6709–72 и бидистиллированной воде.
  310. Раствор 53° спирта готовят путём смешивания 1150 см³ 96° спирта и 1 дм³ бидистиллированной воды (концентрацию спирта в растворах проверяют спиртометром).
  311. Раствор 26° спирта готовят путём разбавления 53° спирта равным объёмом бидистиллированной воды.
  312. Ацетатный буфер № 1 (рН 4,65) готовят путём смешивания равных объёмов 2 М раствора уксусной кислоты и 2 М раствора уксуснокислого натрия.
  313. Ацетатный буфер К» 2 (рН 3,9−4,0) готовят путём смешивания 4,5 объёмов 2 М раствора уксусной кислоты и 1 объёма 2 М раствора уксуснокислого натрия.
  314. ОД М ацетатный буфер (СН3С00Ма-ЗН20) рН 4,0 готовят путёморастворения 18,4 г препарата в 1 дм бидистиллированной воды и добавления 0,5 М ШС1 (2,9,3 г).
  315. ОД М бикарбонатный буфер (ЫаНСОД рН 9,0 готовят путём растворения 8,4 г препарата в 1 дм бил псі и лл и ро ван ной воды и внесения 0,5 М ЫаС1 (29,3 г).
  316. Для промывания иммуносорбента готовят 0,05% раствор твина 20 путём добавления к 100 см³ ФБР 0,05 см³ твина 20.
  317. Раствор мертиолата натрия готовят из расчёта ОД г на 1 дм³ раствора иммуносорбента.
  318. Получение специфических сывороток
  319. Контроль иммунологической активности вирусспецифическихсывороток и иммуноглобулинов
  320. Титры вирусспецифических сывороток и иммуноглобулинов должны быть не менее 1:8 и 1:16 соответственно.
  321. ОПИСАНИЕ ТЕХНОЛОГИЧЕСКОГО ПРОЦЕССА ИЗГОТОВЛЕНИЯ ИМ МУНОСОРБЕНТА НА ОСНОВЕ CNBr1. СЕФАРОЗЫ 4В
  322. Процесс изготовления иммуносорбента включает следующие этапы: а) выделение и контроль специфических к вирусу чумы КРС иммуноглобулинов-б) конъюгация выделенных вирусспецифических и м му, но глобул инов с CNBr-сефарозой 4 В.
  323. Осадок глобулинов отделяют центрифугированием при 17 000 g в течение 15 минут при минус (4±-1)°С и взвешивают. В среднем из 1 л сыворотки получают от 70 до 90 г влажного осадка.1. Второе осаждение
  324. При втором осаждении в осадок выпадает бета-глобулиновая фракция, отделяемая центрифугированием при 17 000 g в течение 15 минут и температуре минус (4+1)°С. В надосадке остаётся гамма-глобулиновая фракция.1. Третье осаждение
  325. Активность полученного препарата иммуноглобулина проверяют в РДП (как указано в п. 2.3,).3.2о Получение и мму косо рбента
  326. Отмытый сорбент переносят в сосуд и добавляют 65 мл ФБР, содержащего 1% БСА и 0,01% мертиолата натрия. Приготовленный иммуносорбент хранят при температуре (4±-1)°С в течение 1 года.
  327. КОНЪЮГАЦИЯ ИММУНОГЛОБУЛИНА С ФЛУОРЕСЦЕИНИЗОТИОЦИАНАТОМ (ФИТЦ)
  328. Для конъюгации используют иммуноглобулины, полученные по п. З.1., и хроматографически чистый ФИТЦ с содержанием основного вещества не ниже 90%.
  329. СПЕЦИФИКАЦИЯ ПРИМЕНЯЕМОГО ОБОРУДОВАНИЯ, МАТЕРИАЛОВ И РЕАКТИВОВ 5.1. Спецификация применяемого оборудования* Наименование оборудования и его техническая характеристика Тип, марка и завод-изготовитель (фирма), ГОСТ, ГУ Кол-во Страна
  330. Ротационная мешалка любого типа 2 СССР
  331. Термостат с водяной рубашкой (120 вт, 220 в) ЗЦ-1125М (медлабтехника) 1 СССР
  332. Вакуум-аппара т для сублимационного высушивания любого типа 1 Франция, ЧССР
  333. Хромото графи ческая колонка размером 1,5×25 см «Фармация» 2 Швеция
  334. Высокоскоростная центрифуга High Speed до 18 000 g М8Е 1 Великобр итания
  335. Магнитная мешалка ММ ЗМ Завод 2 Мукачёво220 в, 50 гц комплектных лабораторий СССР
  336. Люминесцентный микроскоп серии Люмам 1 Ленинград СССР
  337. Стеклопосуда: стаканы ГОСТ 1770–74Е 10 СССРколбы 10 СССРпробирки -««- 100 СССРпипетки ГОСТ 20 202–74Е 100 СССРампулы ГОСТ 18 122–75 ТУ 64−2-241−80 500 СССРшприцы ТУ 46−22−399−74 30 СССР
  338. Иглы ОСТ 64−1-102−73 1А1−16×90 15 100 СССР
  339. Фильтры из ткани Петрянова ФПП-15−1,5 100 СССР
  340. Фильтры капроновые ТУ 15/16 ЭССР 385 100 СССР
  341. Спецификации материалов и реактивов, применяемых для приготовления иммуносорбента и ФИТЦ-глобулинов
  342. Ед. ГОСТ, ТУ, Страна, Квали Расходпрепарата изме фармокопейная фирма фика- на ед.рен. статья ция прод., г.
  343. Агар г Импорт США, Difco — 100
  344. Натрий ацетат 3-водный г ГОСТ 199–88 СССР, Реахим чда 1000
  345. Мертиолат г Импорт ЧССР Хемапол ч 100
  346. Натрий фосфат 2-замещённый 2-водный г ГОСТ 4172–76 СССР чда 2000
  347. Калий фосфат 1-замещённый г ГОСТ 4198–65 СССР ч 2000
  348. Натрий двууглекислый кислый г ГОСТ 4201–79 СССР чда 1000
  349. Натрий углекислый г ГОСТ 4283–79 СССР чда 1000
  350. Глицин г Импорт ФРГ Serva — 1000
  351. Сефадекс 0−50 грубый г Импорт Швеция — 100
  352. Соляная кислота л ГОСТ 3118–77 СССР чда 10
  353. Натрий хлорид г ГОСТ 4233–77 СССР чда 500
  354. Бычий сывороточный альбумин г ТУ 6−09−10 342−75 СССР Биолар 50
  355. Флуоресцеина изотиоцианат г Импорт ФРГ Serva 0,250
  356. Натрия гидроокись г ГОСТ 4328–66 СССР хч 2000
  357. Диметилсульфок сид мл Импорт Австрия 50
  358. Этанол ректификованный л ГОСТ 5962–67 СССР 4
  359. Вода дистиллированная л ГОСТ 6709–72 СССР 100
  360. Твин 20 мл Импорт ФРГ Serva 500
  361. Твин 80 мл Импорт ФРГ Serva — 500
  362. МАРКИРОВКА, УПАКОВКА, УСЛОВИЯ ХРАНЕНИЯ И ТРАНСПОРТИРОВАНИЯ ДИАГНОСТИКУМОВ
  363. При удовлетворительных результатах контрольных проверок лиофилизированных препаратов и ампул на вакуум на них наклеивают этикетки с указанием наименования препарата, объёма, номера серии и контроля, рабочего титра в МФА и срока годности.
  364. Биопрепараты», «Осторожно, хрупкое», «Боится нагрева». Совмещение транспортной маркировки и маркировки, характеризующей данные об упакованной продукции, на одной стороне транспортной тары не допускается.
  365. Препараты для твердофазного МФА (ОА88-системы) транспортируют всеми видами транспорта с соблюдением правил перевозки грузов и багажа, действующих на данном виде транспорта, в плотных упаковках при (4±-2)°С без ограничения.
  366. СХЕМА И МЕТОДЫ КОНТРОЛЯ ПРИ ИЗГОТОВЛЕНИИ ИММУНОГЛОБУЛИНОВЫХ ПРЕПАРАТОВ ДЛЯ ТВЁРДОФАЗНОГО МФА (ОА88-СИСТЕМЫ)
  367. Контроль готового препарата проводят по следующим показателям: комплектность набора, внешний вид, наличие вакуума в ампулах, влажность, растворимость, активность, специфичность, стерильность.
  368. Каждая серия набора должна быть принята Государственным контролёром предприятия-изготовителя.
  369. Качество серии набора устанавливают на основании результатов проверки комплектности и испытаний активности препаратов общей пробы, отобранной из серии.
  370. Определение комплектности набора проводят путём сопоставления маркировочных данных каждой ампулы с перечнем упаковочного листа и данными документа о качестве на указанные серии препаратов.72. КОНТРОЛЬ ВНЕШНЕГО ВИДА
  371. Ампулы проверяют аппаратом «Д'Арсонваль» или другими аналогичными приборами: фиолетово-синее свечение в ампулах с характерным потрескиванием указывает на наличие вакуума.
  372. Влажность определяют по ГОСТ 24 061–80. Влажность препаратов, входящих в набор, должна быть в пределах от 2 до 4%.75. ОПРЕДЕЛЕНИЕ РАСТВОРИМОСТИ
  373. КОНТРОЛЬ АКТИВНОСТИ И СПЕЦИФИЧНОСТИ1. ПРЕПАРАТОВ НАБОРА
  374. Контроль активности и специфичности препаратов, входящих в состав набора, проводят в МФА, 76.1. Контроль активности и специфичности меченого ФИТЦиммуноглобулина
  375. Наличие изумрудно-зелёной флуоресценции в инфицированных препаратах и отсутствие её в контрольных (незаражённая культура клеток) свидетельствует о специфичности приготовленного диагностикума.
  376. ИММУНОСОРБЕНТА ДЛЯ ВА88~СИСТЕМЫ
  377. Определение стерильности проводят согласно «Методическим указаниям по бактериологическому контролю стерильности ветеринарных биологических препаратов», утверждённых ГУВ МСХ СССР 03.06.1980 г. № 115-а. Препарат должен быть стерильным.
  378. ХАРАКТЕРИСТИКА ПРОИЗВОДСТВЕННЫХ ОТХОДОВ, МЕТОДЫ ИХ ОБЕЗЗАРАЖИВАНИЯ И УНИЧТОЖЕНИЯ
  379. ПРАВИЛА БЕЗОПАСНОСТИ РАБОТЫ И ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНОГО РЕЖИМА
  380. Работа в моечном помещении должна проводиться с соблюдением правил техники безопасности работы с электроприборами, моющими средствами, кислотами и щелочами.
  381. УЧЁТ ПРОИЗВОДСТВЕННЫХ ПРОЦЕССОВ
  382. Все результаты работ по изготовлению и контролю иммуносорбента, иммуноглобулинов и антигенов записывают в специальные журналы, прошнурованные и скрепленные печатью учреждения.
  383. ВРЕМЕННОЕ маг. по постановке и применению, на сефарозном сорбенте (Я)її лабораторной диагностики чу. возбудителя бо.» -Г'-' 1 —1. Над"1. НІгііЯ^І
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!