Характеристика аллелофонда и дифференциация пород и популяций медоносной пчелы с использованием микросателлитов
Paetkau, D. Genetic assignment methods for the direct, real time estimation of migration rate: a simulation-base exploration of accuracy and power / D. Paetkau., R. Slade., M. Burdens // Molecular Ecology. 2004. — V. 13. — P. 55 — 65. Janssen^ P." Evaluation of the DNA fingerprinting method AFLP as a new tool in bacterial taxonomy / P. Janssen, R. Coopman, G. Huys, J. Swings, M. Bleeker, P. Vos… Читать ещё >
Характеристика аллелофонда и дифференциация пород и популяций медоносной пчелы с использованием микросателлитов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)
Содержание
Актуальность темы. Медоносная пчела (Apis т. mellifera L. J является наиболее распространенным представителем рода Apis, обитающим на территории России. С использованием многокомпонентного анализа морфометрических признаков A. mellifera подразделяют на четыре эволюционные ветви (Ruttner, 1978, Ruttner, 1988): А (Южная и Центральная Африка), М (Северная Африка и Западная Европа), С (Север Средиземноморья, Центральная и Восточная Европа) и О (Средиземноморье, Средний и Ближний Восток), объединяющие 26 подвидов (Ruttner, 1992, Sheppard et al., 1997, Sheppard, Meixner, 2003, Meixner et al., 2010), а по некоторым данным (Engel, 1999), 28 подвидов (пород). Ряд подвидов, например, А. т. mellifera, по результатам морфометрического анализа (Cornuet J.M. et al., 1975, 1978) подразделяются на дифференцированные локальные популяции.
Россия обладает богатым генетическим потенциалом пород и популяций пчел. Однако, за последнее время во многих регионах страны из-за отсутствия t, четкой, ^ программы f породного $ районирования / пчел / сокращается^ численность^ чистопородных семей, а также создается угроза полной утраты генофонда ряда пород в результате неконтролируемой метизации (Бородачев A.B., Савушкина Л. Н., 2007, Гранкин H.H., 2008, Кривцов Н. И., 2001, 2008, Николаенко А. Г., Поскряков В. Г., 2000, Поздняков В. Н. и др., 2000).
Например, в Западном Приуралье наблюдается значительная метизация с южными породами (Колбина JI.M., Непейвода С. Н., 2009), что приводит к снижению всех хозяйственно ценных показателей исходных пород. (Saltykova E.S. et al., 2005). Но при этом необходимо отметить, что в России еще сохранились резервы генофонда Apis mellifera L., которые можно использовать для восстановления популяции на границах его естественного ареала (Кривцов Н.И., 2008, Колбина JI.M., Непейвода С. Н., 2009, Сокольский С. С., Савушкина Л. Н., 2006, Юмагужин Ф. Г., 2003).
Для достижения цели работы были поставлены и решены следующие задачи:
1. Разработать мультилокусную систему анализа микросателлитов медоносной пчелы, включающую семь микросателлитных локусов- изучить ее функциональные и потребительские свойства.
2. Дать характеристику аллелофонда среднерусской, карпатской, серой горной кавказской пород медоносной пчелы и дальневосточных пчел по микросателлитным локусам А024, А88, А113, АР043, НВ-С16−05, НВ-ТНЕ-03, НВ-С16−01.
3. Дать оценку степени генетической консолидации и дифференциации изучаемых пород медоносной пчелы на основании анализа их микросателлитных профилей.
4. Выполнить исследование аллелофонда и изучить внутрипородную дифференциацию различных популяций медоносной пчелы среднерусской и карпатской пород. у 5. Изучить аллелофонд пчел типа «Приокский» в сравнении с исходными породами (среднерусской и серойгорной: кавказской), участвующими в его формировании.
Научная новизна исследований. Дана характеристика аллелофонда среднерусской, карпатской и серой горной кавказской пород медоносной пчелы различного происхождения по семи локусам микросателлитов. Проведен анализ наблюдаемой и ожидаемой степеней гетерозиготности, показателей F-статистики, как в целом по панели микросателлитов, так и по отдельным локусам. Выполнен анализ степени генетической дифференциации пород и внутрипородных популяций, охарактеризованы генеалогические связи между ними. Оценена степень интродукции исходных пород в популяции медоносной пчелы типа «Приокский».
Практическая значимость. Разработана мультилокусная система генетического анализа медоносной пчелы по микросателлитам, включающая семь маркеров (А024, А88, А113, АР043, НВ-С16−05, НВ-ТНЕ-03 и НВ-С16−01). Показана высокая результативность тест-системы в проведении генетической экспертизы происхождения. Выполнено построение ДНК-профилей и дана характеристика генетической и генеалогической структуры пород медоносной пчелы, разводимых в России: среднерусской, карпатской и серой горной кавказской пород и дальневосточных пчел. Показана возможность дифференциации вышеназванных пород медоносной пчелы на основании анализа их микросателлитных профилей.
Апробация работы. Результаты исследований были доложены и обсуждены: на Международной конференции с элементами научной школы для молодежи «ЕС-Россия:7-ая Рамочная программа в области биотехнологии, сельского, лесного, рыбного хозяйства и пищи», г. Уфа, 29 сентября — 5 октября 2010 г.-
на Конгрессе «Биотехнология: состояние и перспектив развития-2011г.», t 1 Москва, 21−24 марта 2011 г.. V.< ч. t М v, ' * f .
на ежегодных отчетах Центра биотехнологии ' и молекулярной диагностики ГНУ ВИЖ Россельхозакадемии (2009−2012).
Основные положения, выносимые на защиту
1. Предложена мультилокусная система генетического анализа медоносной пчелы, основанная на исследовании полиморфизма 7 локусов микросателлитов, и лабораторный регламент на ее производство.
2. Показана результативность системы в проведении генетической экспертизы происхождения пчел.
3. Установлены различия в аллельных профилях пчел среднерусской, карпатской, серой горной кавказской пород по семи микросателлитам.
4. Выполнена оценка степени генетической дифференциации изучаемых пород и внутрипородных популяций медоносной пчелы.
5. Оценена степень интродукции аллелофонда исходных пород в популяции медоносной пчелы типа «Приокский».
Публикации результатов исследований. По материалам диссертации опубликовано 7 научных работ, в т. ч. 5 статей в журналах, рекомендованных бюллетенем ВАК.
Структура и объем работы. Диссертация написана на 144 страницах, состоит из разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы исследований, результаты и обсуждение, выводы, практические предложения, список литературы, содержит 39 таблиц и 33 рисунка.
Список литературы включает 167 источников, в т. ч. 127 на иностранном языке.
1. Билаш, Г. Д. К методике изучения экстерьерных признаков у медоносных пчёл / Г. Д. Билаш., В. Т. Желтякова // Сб. Достижения науки и передовой опыт в пчеловодстве. — М.: Колос. — 1966. — с. 15−16.
2. Билаш, Г. Д. Селекция пчел / Г. Д. Билаш, Н. И. Кривцов // М.: Агропромиздат. -1991. с. 304.
3. Бородачев, A.B. Состояние генофонда среднерусских пчел / A.B. Бородачев, J1.H. Савушкина // Пчеловодство.-2007. № 5. — с. 12−14.
4. Вейр, Б. Анализ генетических данных /Б.Вейр // пер. с англ. Д. В. Зайкина, А. И. Пудовкина, А. Н. Татаренкова. М.: Мир, 1995. 400 с.
5. Глазко, В. И. Проблемы использования ДНК-технологий у животных. /В.И. Глазко// Сельскохозяйственная биология. 1998. — № 4. — С. 33−42.
6. Гранкин, H.H. Тип среднерусских пчел «Орловский» /H.H. Гранкин // Пчеловодство. 2008. — № 4. — с. 8−9.
7. Животовский, Л. А. Популяционная биометрия./Л.А. Животовский// М.: Наука, 1991.-271 с.
8. Саттаров, В.Н. ДНК-анализ в пчеловодстве / В. Н. Саттаров, А. Г. Николенко, М. Г. Мигранов // Пчеловодство. 1989. — № 3. — С. 14 — 15.
9. Сокольский, С. С. Сохранение генофонда серых горных кавказских пчел / С. С. Сокольский, Л. Н. Савушкина. // Пчеловодство. 2006. — № 2. — С. 17 -18.
10. Чугунова, Л. Г. Препарат из трутневого расплода и физиологическая работоспособность при гипотиреозе / Л. Г. Чугунова, Л. А. Бурмистрова., А. Н. Рябков // Пчеловодство. 1999. — № 2. — С. 52.
11. Чудинов, О. С. Оптимизация RAPD-технологии для изучения генетического полиморфизма ДНК-генома различных пород пчел. / О. С. Чудинов, В. Н. Поздняков, А. Б. Абрамова, В. Т. Какпаков, Р. Б. Козин // Сельскохозяйственная биология.- 1999. № 6. С.47−56.
12. Шареева З. В. Изучение генетической структуры северной части ареала башкирской популяции Apis Mellifera Mellifera L / З. В. Шареева, P.A. Ильясов, Н. Г. Кутлин, A.B. Поскряков, А. Г. Николенко.// Вестник ОГУ. 2009. -№ 6. — С. 427−428.
13. Шекшуев, А. Я. Характеристика морфобиологических и хозяйственно полезных признаков простых и сложных гибридов пчёл. /А.Я. Шекшуев// Пчеловодство. 1965. — № 8. — С. 25−26.
14. Юмагужин, Ф. Г. Охрана и селекция бурзянской пчелы. /Ф.Г. Юмагужин // Пчеловодство и апитерапия. 2003. — № 1. — С. 22.
15. Allendorf, F.W. The problems with hybrids: setting conservation guidelines./ F. W Allendorf, R. F Leary, P Spurell, J.K. Wenburg// Trends in Ecology and Evolution. 2001. — № 16. — P. 613−622.
16. Anglany P. Heteroduplex formation in polymerase chain reaction./ P. Anglany, L. Picci, C. Camporese, P Zacchello // Am.J.Hum. Genet. 1995. — № 47. — P. 169−170.
17. Arias, M.C. Molecular philogenetics of honey bee subspecies (Apis mellifera L.) inferred from mitochondrial DNA sequence / M.C. Arias, W.S. Sheppard.// Molecular philogenetics and evolution. 1996. — V. 5. — V. 3. P. — 557−566.
18. Becker, J. Combined mapping of AFLP and RFLP markers in barley/ J. Becker, P. Vos, M. Kuiper, F. Salamini and M. Heun // Mol. Gen.Genet. 1995. 249. -P.65−73.
19. Blanchetot, A. Genetic relatedness in honeybees as astablished by DNA fingerprinting. / A. Blanchetot// Journal of Heredity. 1991. — № 82. P. — 391−396.
20. Boehringer Mannheim: PCR Applications Manual. Germany: Boehringer Mannheim GmbH, Biochemica, 1995. 194 p.
21. Brown, W.M. Mitochondrial DNA sequences of primates: tempo and mode of evolution / W.M. Brown, E.M. Prager, A. Wang, A.C. Wilson // J. Mol. Evol. 1982. -V. 18. P. -225−239.
22. Bunn, C.L. Cytoplasmic Inheritance of Chloramphenicol Resistance in Mouse Tissue Culture Cells / C.L. Bunn, C.W. Douglas, J.M. Eisenstadt. // PNAS. -1974.-V. 71.-P. 1681−1685.
23. Bunn, C.L. Cytoplasmic Inheritance of Chloramphenicol Resistance in Mouse Tissue Culture Cells / C.L. Bunn, C.W. Douglas, J.M. Eisenstadt. // PNAS. -1974.-V. 71.-P. 1681−1685.
24. Cann, R.L. Mitochondrial DNA and Human Evolution / R.L. Cann, M Stoneking, A.C. Wilson // Nature. 1987. — V. 325. — P. 31−36.
25. Canovas, F. Microsatellite variability reveals bee-keeping influences on Iberian honeybee populations / F. Canovas, P. De la Rua, J. Serrano, J. Galian // Apidology. -2010. V. 8.-P. 17.
26. Carlson, D.A. Identification of Africanized and European honeybees using extracted hydrocarbons/ D.A. Carlson, A. B Bolten // BuU.Entomol. Soc.Am. 1983. -№ 30. -P. 32−35.
27. Clarke, K.E. The Africanization of honeybees (Apis mellifera L.) of the Yucatan: A study of a massive hybridization event across time / K.E. Clarke, T.E. Rinderer, P. Franck, J.G. Quezada-Euan, B.P. Oldroyd // Evolution. 2002. — № 56. — P. 1462−1474.
28. Clary, D.O. The mitochondrial DNA molecule of Drosophila yakuba: nucleotide sequence, gene organization, and genetic code / D.O. Clary, D.R. Wolstenholme // J. Mol. Evol. 1985. — V.22. — P. 252−271.
29. Collins, A.M. Colony defense by Africanized and European honeybees / A.M. Collins, T.E. Rinderee, J. Harbo, A.B. Bolten // Science. 1982. — № 218. — P. 7274. , — ¦ ,.
30. Comuet, J.-M.'L. Reproduction, genetique et selection de Tabelle! /J.-M. L Comuet // Bull. Tech. Apicol. 1983. — V. 10. — P. 13−36.
31. Corley, J. Sperm utilization in honey bees as detected by M13 fingerprints. / Corley J., M. Rabinovich, M. Seigelchiefer, J. Zorzopulos, E. Corley // DNA Fingerprinting: State of the Science, 1993. P. 355−362.
32. Cornuet, J.-M. Population genetics / J.-M. Cornuet // Bee Genetics and Breeding: Academic Press Orlando, FL. 1986. — P. 235−254.
33. Cornuet, J.-M. Etude biometrique de deux populations d’abeilles cevenoles / J.-M. Cornuet, J. Fresnaye, P. Lavie // Apidologie. 1978. — 9. — P. 41−55.
34. Cornuet, J.M. Discrimination et classification de populations d’abeilles P partir de caracteres biometriques / J.M. Cornuet, J. Fresnaye, L. Tassencourt // Apidologie. 1975. -№ 6. — P. 145−187.
35. Cornuet, J.M. Putative origin and function of the intergenic region between COI and COII of Apis mellifera L. mitochondrial DNA / J.M. Cornuet, L. Garnery, M. Solignac // Genetics. 1991. — V. 128. — P. 393−403.
36. Cornuet, J.-M. Etude biometrique decolonies d’abeilles d’Espagne et du Portugal / J.-M. Cornuet, J. Fresnaye. //Apidologie. 1989. — V. 20. — P. 93−101.
37. Crozier, R.H. Genetical structure of social insect populations / R.H. Crozier // Evolution of Social Behavior: Hypotheses and Empirical Tests. 1980. -P. 129−146.
38. Crozier, R.H. The COI and COII region of honey-bee mitochondrial DNA: evidence for variation in insect mitochondrial rates / R.H. Crozier, Y.C. Crozier, A.G. Mackinlay // Mol. Biol. Evol. 1989. — V. 6. — P. 399−411.
39. Crozier R.H. The cytochrome b and ATPase genes of honeybee mitochondrial DNA / R.H. Crozier, Y.C. Crozier // Mol. BioL Evol. 1992. — V. 9. — P. 474−482.
40. De la Rua, P. Microsatellite analysis of non-migratory colonies of Apis mellifera iberica from south-eastern Spain / P. De la Rua., J. Galian, J. Serrano, R.F.A. Moritz //J. Zool. Syst. Evol. Res. 2002. — № 40. — P. 164−168.
41. De Salle, R Tempo and mode of sequence evolution in mitochondrial DNA of Hawaiian Drosophila / R. De Salle, T. Freedman, E.M. Prager, A.C. Wilson.// J. Mol. Evol. 1987. — V. 26. — P.157−164.
42. Desjardins, P. Sequence and gene organizationof the chicken mitochondrial genome. A novel gene order in higher vertebrates / P. Desjardins, R. Morais // J. Mol. Biol. 1990. — V. 212. — P. 599−634.
43. Engel, M.S. The taxonomy of resent and fossil honey bees (hymenoptera: ApidaeApis) / M.S. Engel // J. Hym. Res. 1999. — № 8 (2). — P. 165−196.
44. Estoup, A. Precise assessement of the number of matings and of relatedness in honey bee colonies / A. Estoup, M. Solignac, J.M. Cornuet // Proc. R. Soc. Lond. B. Biol. Sei. 1994. -№ 258. P. 1−7.
45. Estoup, A. Characterization of (GT)n and (CT) microsatellites in two insect species: Apis mellifera and Bombus Terrestris i A. Estoup, M. Solignac, M. Harry, J.-M. Cornuet / Nucleic Acids Res. 1993. — № 21. — P. 1427−1431.
46. Fondrk, M.K., Page R.F., Hunt Paternity analysis of worcer honey bees using Random Amplified Polimorphic DNA / M.K. Fondrk,, R.F. Page // Naturwissenschaften. 1993. — № 80. — P. 226−231.
47. Franck, P. Genetic diversity of the honeybee in Africa: microsatellite and mitochondrial data / P. Franck, L. Garnery, A. Loiseau., B. P. Oldroyd, H. R. Hepburn., M. Solignac, J.-M. Cornuet // Heredity. 2001. — V. 86. — P. 420−430.
48. Franck, P. Molecular conformation of a fourth lineage in honeybees from Middle-East / P. Franck, L. Garnery, M. Solignac, J.-M. Cornuet.// Apidologie. -2000b.-Vol. 31.-P. 167−180.
49. Franck, P. The origin of west European subspecies of honeybees (Apis mellifera): new insights from microsatellite and mitochondrial data / P. Franck, L. Garnery, M. Solignac, J.-M. Cornuet // Evolution. 1998. — Vol. 52. — P. 1119−1134.
50. Garnery, L. Evolutionary history of the honeybee Apis mellifera inferred from mitochondrial DNA analysis / L. Garnery, J.-M.Cornuet, M. Solignac // Mol.Ecol. 1992. — № 1. — P. 145−154.
51. Garnery, L. Genetic biodiversity of the West European honey bee (Apis mellifera mellifera and Apis mellifera iberica). I. Mitochondrial DNA / L. Garnery, P. Franck, E. Baudry // Genetics, Selection and Evolution. 1998a. — V. 30. — P. 31−47.
52. Garnery, L. Mitochondrial DNA variation in Moroccan and Spanish honey bee populations / L. Garnery, E.H. Mosshine., B.P. Oldroyd, J.-M. Cornuet.// Mol. Ecol. 1995.-V. 4. — P.465−471.
53. Garnery, L. A simple test using restricted PCR-amplified mitochondrial DNA to study the genetic structure of Apis mellifera L / L. Garnery, M. Solignac, G. Celebrano, L-M. Cornuet // Experientia. 1993. — V. 49. — P. 1016−1021.f r.
54. Haberl, M. Triand tetranucleotide microsatellite loci in honey bees (Apisi.
55. Hall, H. G. DNA" differences found between Africanized and European honeybees / H. G. Hall // Proc.Natl.Acad.Sci. 1986. — № 83. — P.4874−4877.
56. Hall, H. G. Further characterization of nuclear DNA RFLPs markers that distinguish African and European honeybees / H. G. Hall // Arch Insect Biochem Physiol. 1992. — № 19. — P. 163−175.
57. Hall, H.G. Genetic characterization of honeybees through DNA analysis. In: The African Honey Bee / H. G. Hall /Westview Press. Boulder. CO. 1991. — P. 4573.
58. Hall, H.G. Parental analysis of introgressive hybridization between African and European honeybees using nuclear DNA RFLPs / H. G. Hall // Genetics. 1990. -V. 125.-P. 611−621.
59. Hall, H.G. Distinguishing African and European honeybee matrilines using amplified mitochondrial DNA / H.G. Hall, D.R. Smith // Proc. Natl. Acad. Sci: U.S.A. -1991.-V. 88.-P. 4548−4552.
60. Harrison, R.G. Animal mitochondrial DNA as a genetic marker in population and evolutionary biology / R.G. Harrison // Trends Ecol. Evol. 1989. — V. 4.-P. 6−11.
61. Hill, M. PCRbased fingerprinting using AFLPs as a tool for studying genetic relationships in Lactuca spp / M. Hill, H. Witsenboer, M. Zabeau, P. Vos, R. Kesseli, R. Michelmore // Theor. Appl. Genet. 1996. — V.93. -P.1202−1210.
62. HsuChen, C.-C, A cluster of four transfer RNA genes in mosquito mitochondrial DNA / C.-C. HsuChen, D.T. Dubin // Biochem. Int. 1984. — V. 8. — P. 385−391.
63. Hunt, G.J. A lineage map of the honey bee, Apis mellifera, based on RAPD markers / G.J. Hunt, R.E. Page //Genetics. 1995. — V. 139. — P. 1371−1382.
64. Itenov, K. Nucleotide sequence differences in the honey-bee subspecies Apis mellifera mellifera and Apis mellifera ligustica / K. Itenov, B.V. Pedersen // Tidsskrift for planteavl. Bind. 1991. — V. 95. — P. 101−103.
65. Jamieson, A. Comparisons of three probability formulae for parentage exclusion / A. Jamieson, St.C.S. Taylor // Animal Genetics.-1997. V 28. P. 397−400.
66. Janssen^ P." Evaluation of the DNA fingerprinting method AFLP as a new tool in bacterial taxonomy / P. Janssen, R. Coopman, G. Huys, J. Swings, M. Bleeker, P. Vos, M. Zabeau, K. Kersters // Microbiology. 1996, — V.142. — P. 1881−1893.
67. Jensen, A.B. Honeybee conservation: a case story from Lasso Island, Denmark / A.B. Jensen, B.V. Pedersen // Sustainable Bee Breeding. Northern Bee Books. Mytholmroyd. Hebden Bridge. 2004 (in press).
68. Jermstad, K.D. Development of random amplified polymorfic DNA markers for genetic mapping in Pacific yew (Taxus brevifolia) / Jermstad K. D // Can.J.For.Res. 1996. V. — 26. P. 497−503.
69. Kambhampati, S. Random amplified polimorphic DNA of mosquito species and populations (Diptera, Culicidae): techniques, statistical analysis and applications. / S. Kambhampati, C.W. Black, K.S. Rai // J. Med.Entomol. 1992. — V. 29.-P. 936−945.
70. Kauhausen-Keller, D. Morphometrical control of pure race breeding of honeybee (Apis mellifera L.) / D. Kauhausen-Keller, R. Keller // Apidologie, 1994. -V. 25. P. 133−143.
71. Kaya, Z. Linkage mapping in red pine (Pinus brutia Ten.) using random amplified polimorphic DNA (RAPD) genetic markers / Z. Kaya, D.B. Neale // Silvae Genet. 1995. — V. 44. P. 110−116.
72. Lobo, J. A. Morfometric, isozymand mitochondrial variability of African honeybees in Costa Rica / J. A. Lobo // Heredity. 1995. — V. 75. — P. 133 — 141.
73. Lobo, J.A. Highly polymorphic DNA markers in an Africanized honey bee population in Costa Rica / J.A. Lobo,.// DNA Genetics and Molecular Biology. 2000. -V. 23 M.2.-P. 317−322.
74. Maier, D. 1996. The use of AFLP fingerprinting for the detection of genetic variation infungi / D. Majer, R. Mithen, B.G. Lewis, P. Vos and R-P. Oliver // Mycological Res. 1996. — V. 100. — P. 1107−1111.
75. Maul, V. Morphometric studies with pure bred stock of Apis mellifera carnica Pollmann from Hessen / V. Maul, A. Hahnle // Apidologie. 1994. — V. 25. P. 119−132.
76. Meixner, M.D. Mitochondrial DNA polymorphisms in honey bee subspecies from Kenya / M.D. Meixner, M.C. Arias, W.S. Sheppard.// Apidologie. -2000.-V. 31.-P. 181−190.
77. Meixner, M.D. Asymmetrical distribution ofmitochondrial DNA polymorphism between 2 introgressing honey bee subspecies // M.D. Meixner, W.S. Sheppard, J. Poklukar // Apidologie. 1993. — V. 24. — P. 147−153.
78. Moritz, R.F. Oligonucleotide DNA fingerprintingdiscriminates seperand half-systers in honeybee colonies (Apis mellifera L.) / R.F. Moritz., M.S. Meusel, M. Haberl // Naturwissenschaften. 1991. — V. — 78. — P. 422−424.
79. Mullis, K. Specific enzymatic amplification ofDNAw vitro: the polymerase chain reaction / K. Mullis, F. Faloona, S. Scharf, R. Saiki, G. Horn, H. Erlich / Cold Spring Harb. Symp. Quant. Biol. 1986. — V. 51. — P. 263−273.
80. Nagamine, C M. A PGR artifact: generation of heteroduplex / CM. Nagamine, K. Chan, Y.F. Chris Lau // Am.J.Hum.Genet. 1989. — V. 45, — P. 337−339.
81. Nagley, P. Coordination of gene expression in the formation of mammalian mitochondria / P. Nagley // Trends Genet. 1991. — V. 7. P. 1−4.
82. Nei, M. Genetic polymorphism and the role of mutation in evolution / M. Nei, R. Koehn // Evolution Genes and Proteins. 1983. — P. 165- 90.
83. Okimoto, R. The mitochondrial genomes of two nematodes, Caenorhabditis elegans and Ascaris suum / R. Okimoto, J.L. Macfarlane, D.O. Clary D.R. Wolstenholme//Genetics.- 1992.-V. 130.-P. 471−498.
84. Oldroyd, B.P. Colony relatedness in agregations of Apisdorsata Fabricius (Heminoptera, Apidae) / B.P. Oldroyd, K.E. Osborne, M. Mardan // Insects sociaux. -2000. V. 47. — P. 94−95.
85. Oldroyd, B.P. Genetic characterization of the bees of Kangaroo island, South Australia / B.P. Oldroyd., W.S. Sheppard, J.A. Syelzer // J. Apicult. Res. 1992. -V.3.-P. 141−148.
86. Paar, J. Genetic structure of an Apis dorsata population: the significance of migration and colony aggregation / J. Paar., B.P. Oldroyd, E. Huettinger, G. Kastberger // Journal of Heredity. 2004. — V. 95. — № 2. — P. 119−126.
87. Palmer, M.R. Turkish honeybees: genetic variation and evidence for a fourth lineage of Apis mellifera mtDNA / M.R. Palmer, D.R. Smith, O. Kaftanoglu.// J. Hered. -2000. V. 91. — P. 42−46.
88. Paetkau, D. Genetic assignment methods for the direct, real time estimation of migration rate: a simulation-base exploration of accuracy and power / D. Paetkau., R. Slade., M. Burdens // Molecular Ecology. 2004. — V. 13. — P. 55 — 65.
89. Peakall, R. Mark-recapture by genetic tagging reveals restricted movements by bush rats, Rattus fuscipes, in a fragmented landscape / R. Peakall, D. Ebert, R. Cunningham, D.B. Lindenmayer // Journal of Zoology. 2006. — V. 268. P. 207−216.
90. Peer, D.F. Further studies on the mating range of the honey bee / D.F. Peer // Canadian Entomologist. 1957. — V. 89. — P. 108−110.
91. Pinto, A M. Temporal pattern of Africanization in feral honeybee population from Texas inferred from mitochondrial DNA / A.M. Pinto, W.L. Rubink, R.N. Coulson, J.C. Patton, S.J. Johnston // Evolution. 2004. — V. 58. — P. 1047−1055.
92. Polazhek, B. A new, simple method for rearing diploid drones in the honeybee (Apis mellifera L.) / B. Polazhek, P. Neuman, B. Schricker, R.F.A. Moritz // Apidology. 2000. — V. 31. — P.525−530.
93. Pritchard, J. K. Inference of population structure using multilocus genotype"V'ty ^." Vf-. r, ^ .VmSY" ' .Vv.'M .v. 'V"(«1.data / J. K. Pritchard, Ml Stephens, P. Donnelly // Genetics. 2000. — V. 155. — P. 945 959.
94. Quezada-Euan, J.J.G. Hybridization Between European And Africanized Honeybees In Tropical Yucatan, Mexico. II. Morphometric, allozymic and mitochondrial DNA variability in feral colonies / J.J.G. Quezada-Euan // Apidologie. -2000.-V. 31.-P. 443−453.
95. Raffaele, D’O. Genetic characterization of Italian honeybees, Apis mellifera ligustica, based on microsatellite DNA polymorphisms / D’O. Raffaele, M. Alberto, L. Marco., F.A.M. Robin // Apidologie. 2007. — V.38. — P. 207−217.
96. Rowe, D.J. Seven polymorphic microsatellite loci in honeybees (Apis mellifera) / D.J. Rowe, T.E. Rinderer, J.A. Stelzer, B.P. Oldroyd, R.H. Crozier // Insectes sociaux. 1997, — V. 44. — P. 85 — 93.
97. Ruttner, F. Biogeography and taxonomy of honey bees / F. Ruttner / Berlin: Spinger-Verlag, 1988. 288 p.
98. Ruttner, F. Geographical Variability and Classification / F. Ruttner // Bee Genetics and Breeding. Academic Press. 1986. — P. 23−56.
99. Ruttner, F. Naturegeschichte der Honigbienen / F. Ruttner // Miinchen, Ehrenwirth, 1992. 358 p.
100. Ruttner, F.L. Biometricalstatistical analysis of the geographic variability of Apis mellifera L. / F.L. Ruttner, L. Tassencourt, J. Louveaux // Apidologie. 1978. — V. 9.-P. 363−381.
101. Saiki, R.K. Primer directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase / R.K. Saiki, D.H. Gelfand, S. Stoeffel, S. Scharf, G.T. Higuchi, K.B. Mullis, H.A. Erlich. //Science. 1988. — V. 239. — P. 487−491.
102. Satta, Y. Analysis of nucleotide substitutions of mitochondrial DNAs in Drosophila melanogaster and its sibling species / Y. Satta, H. Ishiwa, S.I. Chigusa.// Mol. Biol. Evol. 1987.-V.4.-P. 638−650.
103. Schiff, N.M. Genetic analysis of commercial honey bees (Hymenoptera: Apidae) from the southeastern United States / N.M. Schiff, W.S. Sheppard // J. Econ. Entomol. 1995. -V.88.-№ 5.-P. 1216−1220.
104. Sheppard, W.S. New allozyme variability in Italian honeybees. /W.S. Sheppard, S. H Berlocher // J. Hered. 1985. — V. 76. — P. 45−48.
105. Sheppard, W.S. In search of a better bee / W.S. Sheppard, T.R. Unruh // Goodfruit grower. 2001. — V. 52. — P. 24−26.
106. Sheppard, W.S. Identification of African derived bees in the Americas: a survey of methods / W.S. Sheppard, D.R. Smith // Annals of the Entomological society of America. 2000. V. — 93. — № 2. — P. 159−176.
107. Sheppard, W.S. Gene flow between African and Europaen-derived honey bee populations in Argentina / W.S. Sheppard, T.E. Rinderer, J.A. Mazzoli, J.A. Stelzer, H. Shimanuki // Nature. 1991a. — V. 349. P. 782−784.
108. Sheppard, W.S. Hybrid status of honey bee populations near the historic origin of Africanization in Brazil / W.S. Sheppard, A.E.E. Soares, D. DeJong, H. Shimanuki // Apidologie. 1991b. — V. 22. — P. 643−652.
109. Sheppard, W.S. Apis mellifera ruttneri, a new honey bee subspecies from Malta / W.S. Sheppard, M.C. Arias, A. Grech, M.D. Meixner// Apidologie. 1997. — V. 28.-P. 287−293.
110. Slatkin, M. A measure of population subdivision based on microsatellite allele frequencies / M. Slatkin // Genetics. 1995. — V. 139. — P. 1463.
111. Smith, D.R. Polymorphisms in mitochondrial DNA of European and Africanized honeybees {Apis mellifera) II / D.R. Smith, W.M. Brown / Experientia. -1988.-Vol. 44.-P. 257−260.
112. Smith, D.R. Neotropical Africanized honey bees have African mitochondrial DNA / D.R. Smith, O.R. Taylor, W.M. Brown //Nature. 1989.-V. 339.-P. 213−215.
113. Suazo, A. Modification of the AFLP Protocol Applied to Honey Bee (Apis melliferaL.) DNA / A. Suazo, H.G. Hall // BioTechniques. 1999. — V. 26. — P.704−709.
114. Suazo, A. Differences between African and European honey bees (Apis mellifera) in Random Amplified Polimorphic DNA (RAPD) / A. Suazo, R. McTieman, H.G. Hall // Journal of Heredity. 1998. — V. 89. — P. 32−36.
115. Suzuki, N. Sequence analysis of the rice dwarf phytoreovirus segment S3 transcript / N. Suzuki, Y. Watanabe, T. Kusano, Y. Kitagawa.// Virology. 1990. — V. 179. P. 455−459.
116. Sylvester, H.A. Electroforetic identification Africanized honeybees / H.A. Sylvester.// J. Apic. Research. 1982. — V. 21. — P. 93−97.
117. Tares, S. Characterization of an unusually conserved Alu highly reiterated DNA sequence family from the honeybee. Apis mellifera / S. Tares, J.-M. Comuet, P. Abad // Genetics. 1993. — V. 134. — P. 1195−1204.
118. Valdes, A.M. Allele friequencies at microsatellite loci: the stepwise mutation model revised / A.M. Valdes, M. Slatkin, N.B. Freiner // Genetics. 1993. — V 133.-P. 737−749.
119. Viard, F. Variation of microsatellite size homoplasy across electromorphs, loci and populations in three invertebrate species / F. Viard, P. Franck, M.-P. Dubois, A. Estoup, P. Jarne // J. Mol. Evol. 1998. — Vol. 47. — P. 42−51.
120. Vos, P. AFLP analysis / P. Vos, M, Kuiper // DNA Markers: Protocols, Applications, and Overviews. 1997. — P. 115−131.
121. Wallace, D.C. Mitochondrial DNA variation in human evolution and disease / D.C. Wallace, M.D. Brown, M.T. Lott // Gene. 1999. — V. 238. — P. 211−230.
122. Weber, J.L. Mutation of humanshot tandem repeats / J.L. Weber, C. Wrong // Hum.Mol.Genet. 1993. — V. 2. — P. 1123−1128.
123. Weir, B.S. Estimating F-statistics for the analysis of population structure / B.S. Weir, C.C. Cockerham // Evolution. 1984. — V. 38. — P. 1358−1370.
124. Welch, J. Fingerprinting genomes using PCR with arbitrary primers / J. Welch, M. McClelland //Nucleic Acid Res. 1990. — V. 15. — № 6. — P. 7213 — 7218.
125. Williams, J.G.K. Genetic Analysis using RAPD markers / J.G.K. Williams, M. K. Hanafeu, J. A. Rafalski // Methods in Enzymology. 1993. — V. 218. — P. 704 740.
126. Wilson, A.C. Mitochondrial clans and the age of our common mother / A. C Wilson, M. Stoneking, R.L. Cann, E.M. Prager, S.D. Ferris, L.A. Wrischnik, R. G Higuchi // Human Genetics. Springer. Berlin. -1987. P. 158−164.
127. Wolstenholme, D.R. Bizarre tRNAs inferred from DNA sequences of mitochondrial genomes of nematode worms / D.R. Wolstenholme, J.L. Macfarlane., R. Okimoto, D.O. Clary, J.A. Wahleithner // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. -1987. V. 84. -P. 1324−1328.
128. Woodward, J. Ligurian bees / J. Woodward // American bee journal. -1993.-V. 133.-P. 124−125.