Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Ксеноновая анестезия у нейрохирургических больных

Диссертация: Ксеноновая анестезия у нейрохирургических больных
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Объём и структура диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, 6 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Первая глава представляет собой литературный обзор. Вторая глава посвящена материалам и методам исследования, а также особенностям методики и технического обеспечения ксеноновой анестезии по закрытому контуру. Третья, четвертая, пятая и шестая… Читать ещё >

Ксеноновая анестезия у нейрохирургических больных (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Ctjv02 — содержание кислорода в оттекающей от мозга венозной крови
  • Dajv02 — артерио-венозная разница по кислороду
  • EtC02 — концентрация углекислого газа в конце выдоха
  • Fi02 — фракция кислорода во вдыхаемой газовой смеси
  • РаС02 — парциальное давление углекислого газа в артериальной крови
  • PjvC02 — парциальное давление углекислого газа в оттекающей от мозга венозной крови
  • Ра02 — парциальное давление кислорода в артериальной крови
  • Pjv02 — парциальное давление кислорода в оттекающей от мозга венозной крови rS02 — регионарное насыщение гемоглобина кислородом в венозной крови мозга
  • Sa02 — насыщение гемоглобина кислородом в артериальной крови
  • Sjv02 — насыщение гемоглобина кислородом в оттекающей от мозга венозной крови
  • Список сокращений
  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Ксеноновая анестезия в общей хирургии
    • 1. 2. Ксеноновая анестезия в нейрохирургии
  • Глава 2. Клиническая характеристика обследованных больных, методы исследования, особенности методики и технического обеспечения ксеноновой анестезии
    • 2. 1. Особенности технического обеспечения анестезии по закрытому контуру и характеристика аппаратуры для ксеноновой анестезии
    • 2. 2. Методика ксеноновой анестезии по закрытому контуру
    • 2. 3. Адаптированная методика ксеноновой анестезии по закрытому контуру, использованная в исследовании динамики параметров интракраниальной системы
    • 2. 4. Клиническая характеристика обследованных больных
    • 2. 5. Методы исследования
    • 2. 6. Проведенные исследования и их объём
  • Глава 3. Изменение ВЧД и ЦПД на этапах ксеноновой анестезии
  • Глава 4. Изменение мозгового кровотока на этапах ксеноновой анестезии
  • Глава 5. Изменение кислородного статуса и метаболизма мозга на этапах ксеноновой анестезии
  • Глава 6. Изменение ЭЭГ на этапах ксеноновой анестезии
  • Заключение
  • Выводы 113 Практические рекомендации
  • Список литературы

Актуальность темы

В последнее время, как в России, так и во всем мире возрождается интерес к ксенону. Множество положительных эффектов ксенона, в отсутствие доказанных побочных эффектов, позволяет предположить широкое распространение ксеноновой анестезии в недалеком будущем. Говоря о достоинствах ксенона как анестетика, следует отметить, что ксенон лишен токсического, тератогенного, мутагенного, канцерогенного, аллергогенного и эмбриотоксического действия [Буров Н.Е. с соавт., 1993, 1998, 1999, 2000]. Наоборот, он обладает умеренным иммуностимулирующим действиемэкологически чист и безопасен и, что немаловажно, не представляет угрозы для персонала операционной. Ксенон уже называют «идеальным анестетиком XXI века» [Буров Н.Е. с соавт., 2000; Hahn С et al, 1995; Morita S et al, 1994; Preckel В et al, 2004]. Кардиопротективные свойства [Preckel В et al, 2004; Weber NC et al, 2005, 2006] и способность поддерживать стабильность показателей системной гемодинамики делают ксенон анестетиком выбора у соматически отягощенных больных с высоким анестезиологическим риском [Буров Н.Е. с соавт., 2000; Baumert JH et al, 2005; Goto T et al, 2004; Hettrick DA et al, 1998; Hofland J et al, 2001; Lockwood GG et al, 2006; Luttropp HH et al, 1993; Marx T et al, 1997].

В то же время, длительно существующее мнение о ксеноне как об ингаляционном анестетике, повышающем внутричерепное давление, препятствовало внедрению ксеноновой анестезии в нейрохирургии. Сегодня представления о возможности применения ингаляционных анестетиков, и в том числе ксенона, в нейрохирургии изменилисьв составе многокомпонентной сбалансированной анестезии успешно внедрены изофлуран и севофлуран. Результаты современных исследований влияния ксенона на основные параметры интракраниальной системы делают допустимым применение ксенона у нейрохирургических больных [Darby JM et al, 1998, 1999; Laitio RM et al, 2007, 2009; Schmidt M et al, 2001, 2002, 2005]. Опубликованы данные о нейропротективном действии ксенона in vivo в условиях ишемии-гипоксии [Dingley J et al, 2006; Ma D et al, 2002, 2005, 2006; Natale G et al, 2006; Rajakumaraswamy N et al, 2006; Sanders RD et al, 2005; Wilhelm S et al, 2002]. Физико-химические свойства ксенона обеспечивают восстановление сознания через несколько минут после прекращения ингаляции ксенона. Это позволяет проводить неврологический осмотр на операционном столе, что повышает шансы раннего выявления и эффективного устранения послеоперационных осложнений. В сравнении с другими анестетиками ксенон зарекомендовал себя наиболее управляемым [Буров Н.Е.с соавт., 2000; Goto Т et al, 1997, 2000; Rasmussen LS et al, 2006]. Быстрота восстановления сознания, стабильность гемодинамики и нейропротективные свойства приближают ксенон к анестетику выбора в нейроанестезиологии. Однако до сих пор не проводились клинические исследования влияния ксенона на внутричерепное давление, церебральное перфузионное давление, мозговой кровоток, кислородный гомеостаз и энергетический метаболизм головного мозга, судорожную активность мозга и нативную ЭЭГ в условиях многокомпонентной и моноанестезии ксеноном на различных этапах анестезии. В приведенных выше работах, посвященных влиянию ксенона на головной мозг, оцениваются эффекты ингаляции ксенона в различных концентрациях. Анестезия отличается от ингаляции этапностью и взаимодействием ксенона с другими анестетиками. Без всестороннего поэтапного изучения ксеноновой анестезии её внедрение в нейрохирургическую практику не представляется возможным. Возникает необходимость проследить изменение основных параметров ннтракраниалъной системы на протяжении анестезии — от внутривенной индукции через комбинированную с внутривенной анестезию во время насыщения ксеноном к моноанестезии ксеноном, что определило цель и задачи настоящего исследования.

Цель и задачи исследования

Целью исследования является изучение возможности и безопасности применения ксеноновой анестезии по закрытому контуру у нейрохирургических больных на основании данных клинических, функциональных и лабораторных исследований, а также оптимизация анестезиологического пособия на основе ксенона в условиях закрытого контура во время нейрохирургических операций. Задачи исследования:

1. Оценить практические возможности, удобство использования, технические трудности и безопасность применения ксеноновой анестезии по закрытому контуру при нейрохирургических вмешательствах.

2. Изучить изменения показателей церебральной гемодинамики на этапах ксеноновой анестезии по закрытому контуру. На основании исследования СОг реактивности (гипокапнической пробы) проанализировать сохранность химической регуляции мозгового кровотока во время моноанестезии ксеноном.

3. Изучить изменения показателей кислородного статуса и метаболизма головного мозга на этапах ксеноновой анестезии по закрытому контуру.

4. Изучить изменение биоэлектрической активности головного мозга на этапах ксеноновой анестезии по закрытому контуру. На основании гипервентиляционной пробы выявить наличие или отсутствие у ксенона в анестетической концентрации эпилептогенных свойств.

Научная новизна. Впервые выполнен клинический анализ и на его основе классификация существующей наркозно-дыхательной аппаратуры для проведения ксеноновой анестезии по закрытому контуру.

Впервые выполнено развернутое клиническое исследование церебральных эффектов ксенона и динамики ключевых показателей интракраниальной системы по ходу ксеноновой анестезии, обосновывающее целесообразность и безопасность её применения при нейрохирургических операциях. У одних и тех же больных выполнено сравнение церебральных эффектов ксенона и основного применяемого в нейрохирургии анестетика — пропофола. Показано, что по ходу ксеноновой анестезии на различных её этапах (денитрогенизация в условиях анестезии пропофолом, переходный этап насыщения ксеноном, моноанестезия ксеноном в равновесном состоянии) у больных без исходной внутричерепной гипертензии и выраженных нарушений церебральной гемодинамики не происходит клинически значимого изменения ВЧД, ЦПД и МК. Продемонстрировано, что во время моноанестезии ксеноном сохраняется химическая регуляция мозгового кровотока, и наблюдаемый незначительный подъём ВЧД во время моноанестезии ксеноном в равновесном состоянии может быть устранен с помощью гипервентиляции. Выявлена неоднозначная реакция ВЧД на ингаляцию ксенона у больных с внутричерепной гипертензией. Показано благоприятное влияние ксенона на кислородный статус и церебральный метаболизм головного мозга, проявляющееся снижением потребления кислорода и глюкозы. Продемонстрировано, что ксенон вызывает изменения биоэлектрической активности головного мозга, соответствующие адекватной анестезии, не провоцирует пароксизмальную активность, но и не маскирует изначально имеющиеся признаки раздражения, являясь «электрически нейтральным» анестетиком. Практическое значение. Выполненные исследования позволили безопасно и обоснованно внедрить анестезиологическое пособие на основе современного перспективного анестетика ксенона в практику нейроанестезиологии. Реализация результатов работы. Методика ксеноновой анестезии в настоящее время внедрена в практику НИИ нейрохирургии им. акад. Н. Н. Бурденко РАМН и активно используется в повседневной работе. Разработанная при нашем непосредственном участии методика ксеноновой анестезии утверждена в составе комплексной медицинской технологии «Использование дыхательной кислородно-ксеноновой смеси в комплексной профилактике, лечении и реабилитации» зарегистрированной в Федеральной службе по надзору в сфере здравоохранения и социального развития (регистрационное удостоверение №ФС 2007/200) и является базовой для проведения ксеноновой анестезии в различных областях хирургии. Разработанная в рамках диссертационной работы классификация специальной наркозно-дыхательной аппаратуры используется в различных клиниках для подбора оборудования для ксеноновой анестезии.

Апробация работы. Результаты проведённой работы были доложены на Всероссийском конгрессе анестезиологов-реаниматологов 26 октября 2007 г. (первая премия в постерной сессии), на конференции анестезиологов-реаниматологов медицинских учреждений МО РФ «Ксенон и инертные газы в медицине» 24 апреля 2008 г., на съезде Европейской ассоциации анестезиологов ESA в Копенгагене 1 июня 2008 г., на Всероссийском образовательном конгрессе анестезиологов-реаниматологов «Современные достижения и будущее анестезиологии-рениматологии в Российской Федерации» 29 октября 2008 г., в качестве авторской лекции в Университете Южной Калифорнии 16 января 2009 г., на сессии Ученого совета НИИ нейрохирургии им. акад. Н. Н. Бурденко РАМН 19 марта 2009 г., на сессии МНОАР 27 марта 2009 г., на съезде Европейской ассоциации анестезиологов ESA в Милане 7 июня 2009 г. (2 доклада).

Публикации. По теме диссертации было опубликовано 11 печатных работ: 3 статьи в медицинском периодическом журнале, 1 статью в сборнике конференции и 7 тезисов в научных сборниках, материалах отечественных и зарубежных съездов, конференций и симпозиумов.

Объём и структура диссертации. Диссертационная работа состоит из введения, 6 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций и списка литературы. Первая глава представляет собой литературный обзор. Вторая глава посвящена материалам и методам исследования, а также особенностям методики и технического обеспечения ксеноновой анестезии по закрытому контуру. Третья, четвертая, пятая и шестая главы содержат результаты исследований. Диссертация изложена на 124 страницах машинописного текста и содержит 20 таблиц и 27 рисунков (в том числе 11 графиков). Список библиографии содержит 200 источников.

Выводы.

I 1. Ксеноновая анестезия является современным эффективным и безопасным методом, обеспечивающим адекватную анестезию при всех видах нейрохирургических I вмешательств.

2. В настоящее время проведение ксеноновой анестезии по закрытому контуру может I быть сопряжено с рядом технических проблем, связанных с расчетом потребления и доставкой кислорода и ксенона в условиях закрытого контура. Наиболее I безопасным и удобным при проведении ксеноновой анестезии по закрытому контуру является использование аппаратов с автоматическим поддержанием концентраций кислорода и ксенона.

3. Ксеноновая анестезия у больных без внутричерепной гипертензии не оказывает I значимого влияния на ВЧД. В сравнении с пропофолом, ксенон вызывает повышение ВЧД на несколько мм рт.ст., при этом значения ВЧД и ЦПД остаются в В пределах нормы. Гипервентиляция вызывает быстрое снижение ВЧД, что свидетельствует о сохранности химической регуляции мозгового кровотока и I возможности контроля ВЧД путем регулирования внутричерепного объёма крови.

4. Ксеноновая анестезия у больных без выраженных нарушений церебральной гемодинамики не оказывает значимого влияния на мозговой кровоток. В сравнении с пропофолом, ксенон не изменяет мозговой кровоток. Мозговой кровоток.

I достоверно снижается на фоне гипервентиляции, что подтверждает сохранность его химической регуляции во время анестезии ксеноном.

5. В сравнении с пропофолом, ксенон снижает потребление головным мозгом кислорода и глюкозы, что свидетельствует о снижении уровня метаболизма I головного мозга.

6. В сравнении с пропофолом, ксенон не изменяет биоэлектрическую активность мозга. Ксенон не вызывает судорожную активность, но и не маскирует имеющиеся признаки раздражения структур мозга, обусловленные нейрохирургической патологией. 1 т 114.

Практические рекомендации.

1. В целях безопасности при проведении высокотехнологичных нейрохирургических I вмешательств ксеноновую анестезию желательно проводить на наркознодыхательных аппаратах с автоматической подачей свежего газа и поддержанием концентраций кислорода и ксенона.

2. Оптимальной концентрацией ксенона в контуре в условиях закрытого контура является концентрация 65%, соответствующая 1 МАК ксенона и позволяющая обеспечить адекватную анестезию в условиях адекватной оксигенации.

I 3. Способность ксенона снижать метаболизм головного мозга позволяет рекомендовать ксеноновую анестезию для нейрохирургических вмешательств, сопряженных с риском церебральной ишемии, или для пациентов, у которых существует высокой риск церебральной ишемии при проведении анестезиологического пособия.

4. Способность ксенона не усугублять и не маскировать очаги раздражения I позволяет рекомендовать ксеноновую анестезию для нейрохирургических вмешательств с нейрофизиологическим мониторингом.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Л.Н., Смольников В. П. 1962. Наркоз ксеноном у человека. Вестник АМН СССР: 22−5
  2. Н.Е., Потапов В. Н., Макеев Г. Н. Ксенон в анестезиологии. М. Пульс. 2000
  3. Дюк Д. Секреты анестезии. М. МЕДпресс-информ. 2005.
  4. И.З., Буров Н.Е, Хрыкова У. И., Алексеева Л. М., Глушкова Т. Д. 2006. Медико-экономическая оценка ксеноновой анестезии. Клиническая анестезиология и реаниматология 3: 16−20
  5. Н.В., Мадорская Р. Я. 1947. О наркотическом действии ксенона. Физиол. журнал СССР 34: 131−4
  6. Н.В. Биологическое действие газов под давлением. Л. Медицина. 1941.
  7. Н.В. Общее учение о наркозе и наркотиках. Л. Медицина. 1958.
  8. В.В., Печерица В. В. Современная ингаляционная анестезия. М. ГЭОТАР-МЕД. 2003
  9. А.Ю. Анестезия у пострадавших с черепно-мозговой травмой// Интенсивная терапия черепно-мозговой травмы. М. 2004
  10. А.З., Салалыкин В. И. Нейроанестезиология. М. Медицина. 1977
  11. Д.Э., Михаил С. М. Клиническая анестезиология. М. Бином. 2000
  12. МЗ РФ. РМАПО. Наркоз ксеноном. Методические рекомендации. М. 2003
  13. А.А. Показатели мозгового кровотока, метаболизма и ионного состава крови и ликвора у нейрохирургических больных в раннем послеоперационном периоде. Дисс. канд. мед. наук. М. 1980
  14. П., Бракко Д. 1999. Патофизиология мозгового кровообращения. Российский журнал анестезиологии и интенсивной терапии: 13−5
  15. М.И., Пасько В. Г., Таубаев Б. М., Стец В. В. 2006. Опыт применения ксеноновой анестезии в Главном военном клиническом госпитале им. акад. Н. Н. Бурденко. Клиническая анестезиология и реаниматология 3: 58−64
  16. Abraini JH, David HN, Lemaire M. 2005. Potentially neuroprotective and therapeutic properties of nitrous oxide and xenon. Ann N Y Acad Sci 1053: 289−300
  17. Abraini JH, David HN, Nicole O, MacKenzie ET, Buisson A, Lemaire M. 2004. Neuroprotection by nitrous oxide and xenon and its relation to minimum alveolar concentration. Anesthesiology 101: 260−1- author reply 1
  18. Almeida AN, Tavares C, Tibano A, Sasaki S, Murata KN, Marino R, Jr. 2005. Dexmedetomidine for awake craniotomy without laryngeal mask. Arq Neuropsiquiatr 63: 748−50
  19. EL. 2001. Xenon as neuroprotectant in acute stroke? Med Hypotheses 56: 2278
  20. Ard J, Doyle W, Bekker A. 2003. Awake craniotomy with dexmedetomidine in pediatric patients. JNeurosurg Anesthesiol 15: 263−6
  21. Ard JL, Jr., Bekker AY, Doyle WK. 2005. Dexmedetomidine in awake craniotomy: a technical note. Surg Neurol 63: 114−6- discussion 6−7
  22. AA. 1993. Rate of cerebrospinal fluid formation, resistance to reabsorption of cerebrospinal fluid, brain tissue water content, and electroencephalogram during desflurane anesthesia in dogs. J Neurosurg Anesthesiol 5: 178−86
  23. Basu A, Krady JK, Levison SW. 2004. Interleukin-1: a master regulator of neuroinflammation. JNeurosci Res 78: 151−6
  24. J. 1994. Low flow anesthesia., Anaesthesist 43: 194−210
  25. J. 2001. Low flow systems with and without nitrous oxide. Anasthesiol Intensivmed Notfallmed Schmerzther 36: 648−51
  26. JA. 1996. Low-flow anaesthesia. Eur J Anaesthesiol 13: 432−5
  27. JA. 1997. Low-flow anaesthesia: the sensible and judicious use of inhalation anaesthetics. Acta Anaesthesiol ScandSuppl 111: 264−7
  28. JA. 1999. Low-flow anesthesia: theory, practice, technical preconditions, advantages, and foreign gas accumulation. JAnesth 13: 166−74
  29. JA. 2005. New and alternative delivery concepts and techniques. Best Pract Res Clin Anaesthesiol 19: 415−28
  30. Baum JA, Aitkenhead AR. 1995. Low-flow anaesthesia. Anaesthesia 50 Suppl: 37−44
  31. Baumert JH, Falter F, Eletr D, Hecker KE, Reyle-Hahn M, Rossaint R. 2005. Xenon anaesthesia may preserve cardiovascular function in patients with heart failure. Acta Anaesthesiol Scand 49: 743−9
  32. Baumert JH, Hecker KE, Hein M, Reyle-Hahn M, Horn NA, Rossaint R. 2005. Effects of xenon anaesthesia on the circulatory response to hypoventilation. Br J Anaesth 95: 16 671
  33. Baumert JH, Hecker KE, Hein M, Reyle-Hahn SM, Horn NA, Rossaint R. 2005. Haemodynamic effects of haemorrhage during xenon anaesthesia in pigs. Br J Anaesth 94: 727−32
  34. Baumert JH, Reyle-Hahn M, Hecker K, Tenbrinck R, Kuhlen R, Rossaint R. 2002. Increased airway resistance during xenon anaesthesia in pigs is attributed to physical properties of the gas. Br J Anaesth 88: 540−5
  35. Baur CP, Klingler W, Jurkat-Rott K, Froeba G, Schoch E, et al. 2000. Xenon does not induce contracture in human malignant hyperthermia muscle. Br J Anaesth 85: 712−6
  36. AD. 1997. Low and minimal flow inhalational anaesthesia. Can J Anaesth 44: 643−52- quiz 52−3
  37. Bedi A, McBride WT, Armstrong MA, Murray JM, Fee JP. 2002. Xenon has no effect on cytokine balance and adhesion molecule expression within an isolated cardiopulmonary bypass system. Br J Anaesth 89: 546−50
  38. Bedi A, McCarroll C, Murray JM, Stevenson MA, Fee JP. 2002. The effects of subanaesthetic concentrations of xenon in volunteers. Anaesthesia 57: 233−41
  39. Behnke JP VO. 1939. Respiratory resistance, oil, water, solubility and mental effects of argon compared with helium and nitrogen. Amer J Physiol 126: 409−15
  40. Bekker AY, Kaufman B, Samir H, Doyle W. 2001. The use of dexmedetomidine infusion for awake craniotomy. Anesth Analg 92: 1251−3
  41. Block F BI, Nolden-Koch M. 2001. Inflammation contributes to the postponed ischemic neuronal damage following treatment with glutamate antagonists in rats. Neourosci Lett 298: 103−6
  42. Boomsma F, Rupreht J, Man in’t Veld AJ, de Jong FIT, Dzoljic M, Lachmann B. 1990. Haemodynamic and neurohumoral effects of xenon anaesthesia. A comparison with nitrous oxide. Anaesthesia 45: 273−8
  43. Brauer P, Kochs E, Werner C, Bloom M, Policare R, et al. 1998. Correlation of transcranial Doppler sonography mean flow velocity with cerebral blood flow in patients with intracranial pathology. JNeurosurg Anesthesiol 10: 80−5
  44. Burov NE, Arzamastsev EV, Kornienko L, Kudimova LA. 2002. Influence of xenon on reproductive function. Anesteziol Reanimatol: 71−2
  45. Burov NE, Arzamastsev EV, Kornienko L, Kudimova LA. 2002. Investigation of the teratogenic and embryotoxic action of xenon. Anesteziol Reanimatol: 69−70
  46. Burov NE, Arzamastsev EV, Kornienko L, Terekhova OA, Eliseeva IL. 2002. Study of immunodepressive and allergic effects of xenon. Anesteziol Reanimatok 71−2
  47. Burov NE, Dzhabarov DA, Ostapchenko DA, Kornienko L, Shulunov MV. 1993. Clinical stages and subjective sensations in xenon anesthesia. Anesteziol Reanimatok 711
  48. Burov NE, Ivanov GG, Ostapchenko DA, Dzhabarov DA, Kornienko L, Shulunov MV. 1993. Hemodynamics and function of the myocardium during xenon anesthesia. Anesteziol Reanimatok 57−9
  49. Burov NE, Kornienko L, Arzamastsev EV, Korotich AN, Golubykh VL. 1998. Study of xenon toxicity in a subchronic experiment., Anesteziol Reanimatok 58−60
  50. Burov NE, Kornienko L, Dzhabarov DA, Mironova, II, Morozova VT, et al. 1993. Effect of xenon anesthesia on morphology and the blood coagulation system. Anesteziol Reanimatok 14−8
  51. Burov NE, Kornienko L, Makeev GN, Potapov VN. 1999. Clinical and experimental study of xenon anesthesia. Anesteziol Reanimatok 56−60
  52. Burov NE, Makeev GN, Potanov VN, Kornienko L. 1997. Alternative means for reducing the cost of xenon anesthesia. Anesteziol Reanimatok 71−4
  53. Burov NE, Molchanov IV, Nikolaev LL, Rashchupkin AB. 2003. The method of low-flow xenon anesthesia. Anesteziol Reanimatok 31−4
  54. Burov NE, Molchanov IV, Potapov VN, Nikolaev LL. 2005. Perspective in the development and supply of equipment for xenon anesthesia. Med Tekh: 13−8
  55. Calzia E, Stahl W, Handschuh T, Marx T, Froba G, et al. 1999. Respiratory mechanics during xenon anesthesia in pigs: comparison with nitrous oxide. Anesthesiology 91: 1378−86
  56. Calzia E, Stahl W, Handschuh T, Marx T, Froba G, ct al. 1999. Continuous arterial P (02) and P (C02) measurements in swine during nitrous oxide and xenon elimination: prevention of diffusion hypoxia. Anesthesiology 90: 829−34
  57. Casey ND, Chandler J, Gifford D, Falter F. 2005. Microbubble production in an in vitro cardiopulmonary bypass circuit ventilated with xenon. Perfusion 20: 145−50
  58. Chieregato A, Fainardi E, Tanfani A, Martino C, Pransani V, et al. 2003. Mixed dishomogeneous hemorrhagic brain contusions. Mapping of cerebral blood flow. Acta Neurochir Suppl 86: 333−7
  59. Chon D, Simon BA, Beck КС, Shikata H, Saba OI, et al. 2005. Differences in regional wash-in and wash-out time constants for xenon-CT ventilation studies. Respir Physiol Neurobiol 148: 65−83
  60. Coburn M, Kunitz O, Baumert JH, Hecker K, Haaf S, et al. 2005. Randomized controlled trial of the haemodynamic and recovery effects of xenon or propofol anaesthesia. Br J Anaesth 94: 198−202
  61. Coburn M, Kunitz O, Baumert JH, Hecker K, Rossaint R. 2005. Patients' self-evaluation after 4−12 weeks following xenon or propofol anaesthesia: a comparison. Eur J Anaesthesiol 22: 870−4
  62. JP. 2006. Imaging of cerebral blood flow and metabolism. Curr Opin Anaesthesiol 19: 473−80
  63. Cucchiara R BS, Michenfelder J. 1998. Clinical neuroanesthesia: Churchill Livingstone. 701 pp.
  64. Cullen SC, Gross EG. 1951. The anesthetic properties of xenon in animals and human beings, with additional observations on krypton. Science 113: 580−2
  65. Darby JM, Nemoto EM, Yonas H, Melick J. 1991. Stable xenon does not increase intracranial pressure in primates with freeze-injury-induced intracranial hypertension. J Cereb Blood Flow Metab 11: 522−6
  66. Darby JM, Yonas H, Pentheny S, Marion D. 1989. Intracranial pressure response to stable xenon inhalation in patients with head injury. Surg Neurol 32: 343−5
  67. David HN, Ansseau M, Lemaire M, Abraini JH. 2006. Nitrous oxide and xenon prevent amphetamine-induced carrier-mediated dopamine release in a memantine-like fashion and protect against behavioral sensitization. Biol Psychiatry 60: 49−57
  68. Dingley J, King R, Hughes L, Terblanche C, Mahon S, et al. 2001. Exploration of xenon as a potential cardiostable sedative: a comparison with propofol after cardiac surgery. Anaesthesia 56: 829−35
  69. Dingley J, Tooley J, Porter H, Thoresen M. 2006. Xenon provides short-term neuroprotection in neonatal rats when administered after hypoxia-ischemia. Stroke 37: 501−6
  70. Dinse A, Fohr KJ, Georgieff M, Beyer C, Bulling A, Weigt HU. 2005. Xenon reduces glutamate-, AMPA-, and kainate-induced membrane currents in cortical neurones. Br J Anaesth 94: 479−85
  71. Du С HR, Scernansky C, Hsu C, Choi D. 1996. very delayed infarction after mild focal cerebral ischemia: a role for apoptosis? J Cereb Blood Flow Metab 16: 195−201
  72. Dutton RC, Zhang Y, Stabernack CR, Laster MJ, Sonner JM, Eger EI, 2nd. 2003. Temporal summation governs part of the minimum alveolar concentration of isoflurane anesthesia. Anesthesiology 98: 1372−7
  73. Eger EI, 2nd, Laster MJ, Gregory GA, Katoh T, Sonner JM. 2003. Women appear to have the same minimum alveolar concentration as men: a retrospective study. Anesthesiology 99: 1059−61
  74. Eger EI, 2nd, Liao M, Laster MJ, Won A, Popovich J, et al. 2006. Contrasting roles of the N-methyl-D-aspartate receptor in the production of immobilization by conventional and aromatic anesthetics. Anesth Analg 102: 1397−406
  75. Elsersy H, Sheng H, Lynch JR, Moldovan M, Pearlstein RD, Warner DS. 2004. Effects of isoflurane versus fentanyl-nitrous oxide anesthesia on long-term outcome from severe forebrain ischemia in the rat. Anesthesiology 100: 1160−6
  76. Everett LL, van Rooyen IF, Warner MH, Shurtleff HA, Saneto RP, Ojemann JG. 2006. Use of dexmedetomidine in awake craniotomy in adolescents: report of two cases. Paediatr Anaesth 16: 338−42
  77. Fink H, Blobner M, Bogdanski R, Hanel F, Werner C, Kochs E. 2000. Effects of xenon on cerebral blood flow and autoregulation: an experimental study in pigs. Br J Anaesth 84: 221−5
  78. Frietsch T, Bogdanski R, Blobner M, Werner C, Kuschinsky W, Waschke KF. 2001. Effects of xenon on cerebral blood flow and cerebral glucose utilization in rats. Anesthesiology 94: 290−7
  79. Froeba G, Marx T, Pazhur J, Baur C, Baeder S, et al. 1999. Xenon does not trigger malignant hyperthermia in susceptible swine. Anesthesiology 91: 1047−52
  80. Furuya Y, Hlatky R, Valadka AB, Diaz P, Robertson CS. 2003. Comparison of cerebral blood flow in computed tomographic hypodense areas of the brain in head-injured patients. Neurosurgery 52: 340−5- discussion 5−6
  81. Goto T, Hanne P, Ishiguro Y, Ichinose F, Niimi Y, Morita S. 2004. Cardiovascular effects of xenon and nitrous oxide in patients during fentanyl-midazolam anaesthesia. Anaesthesia 59: 1178−83
  82. Goto T, Nakata Y, Ishiguro Y, Niimi Y, Suwa K, Morita S. 2000. Minimum alveolar concentration-awake of Xenon alone and in combination with isoflurane or sevoflurane. Anesthesiology 93: 1188−93
  83. Goto T, Nakata Y, Morita S. 2002. The minimum alveolar concentration of xenon in the elderly is sex-dependent. Anesthesiology 97: 1129−32
  84. Goto T, Nakata Y, Saito H, Ishiguro Y, Niimi Y, et al. 2000. Bispectral analysis of the electroencephalogram does not predict responsiveness to verbal command in patients emerging from xenon anaesthesia. Br JAnaesth 85: 359−63
  85. Goto T, Saito H, Nakata Y, Uezono S, Ichinose F, Morita S. 1997. Emergence times from xenon anaesthesia are independent of the duration of anaesthesia. Br J Anaesth 79: 595−9
  86. Goto T, Saito H, Shinkai M, Nakata Y, Ichinose F, Morita S. 1997. Xenon provides faster emergence from anesthesia than does nitrous oxide-sevoflurane or nitrous oxide-isoflurane. Anesthesiology 86: 1273−8
  87. Grocott HP, Sato Y, Homi HM, Smith BE. 2005. The influence of xenon, nitrous oxide and nitrogen on gas bubble expansion during cardiopulmonary bypass. Eur J Anaesthesiol 22: 353−8
  88. Grogono. 1996. Practical guides for low-flow and closed circuit anesthesia. Presented at 11th world congress of anesthesiologists, Sydney
  89. Hahn С WF, Stork J, Rath T, Schulte am Esch J. 2001. Effects of xenon on cerebral blood flow velocities are time-dependent. Anesthesiology 95
  90. Hanne P, Goto T, Nakata Y, Ishiguro Y, Morita S. 2005. Nitrogen accumulation during closed circuit anesthesia depends on the type of surgery. J Clin Anesth 17: 504−8
  91. Hartmann A, Dettmers C, Schuier FJ, Wassmann HD, Schumacher HW. 1991. Effect of stable xenon on regional cerebral blood flow and the electroencephalogram in normal volunteers. Stroke 22: 182−9
  92. Hassler W, Chioffi F. 1989. C02 reactivity of cerebral vasospasm after aneurysmal subarachnoid haemorrhage. Acta Neurochir (Wien) 98: 167−75
  93. Hecker K, Baumert JH, Horn N, Rossaint R. 2004. Xenon, a modern anaesthesia gas. Minerva Anestesiol 70: 255−60
  94. Hecker KE, Baumert JH, Horn N, Reyle-Hahn M, Heussen N, Rossaint R. 2003. Minimum anesthetic concentration of sevoflurane with different xenon concentrations in swine. Anesth Analg 97: 1364−9
  95. Hecker KE, Reyle-Hahn M, Baumert JH, Horn N, Heussen N, Rossaint R. 2003. Minimum alveolar anesthetic concentration of isoflurane with different xenon concentrations in Swine. Anesth Analg 96: 119−24, table of contents
  96. Heiss WD, Forsting M, Diener HC. 2001. Imaging in cerebrovascular disease. Curr Opin Neurol 14: 67−75
  97. Hettrick DA, Pagel PS, Kersten JR, Tessmer JP, Bosnjak ZJ, et al. 1998. Cardiovascular effects of xenon in isoflurane-anesthetized dogs with dilated cardiomyopathy. Anesthesiology 89: 1166−73
  98. K. 2006. Special cases: ketamine, nitrous oxide and xenon. Best Pract Res Clin Anaesthesiol 20: 69−79
  99. Ho SS, Lam WW, Ng SC, Lam MK, Chan MT, et al. 2005. Cerebral vasoreactivity: a comparison of color velocity imaging quantification and stable xenon-enhanced CT. AJR Am J Roentgenol 184: 948−52
  100. Hoffman EA, Chon D. 2005. Computed tomography studies of lung ventilation and perfusion. ProcAm Thorac Soc 2: 492−8, 506
  101. Hofland J, Gultuna I, Tenbrinck R. 2001. Xenon anaesthesia for laparoscopic cholecystectomy in a patient with Eisenmenger’s syndrome. Br J Anaesth 86: 882−6
  102. Homi HM, Yokoo N, Ma D, Warner DS, Franks NP, et al. 2003. The neuroprotective effect of xenon administration during transient middle cerebral artery occlusion in mice. Anesthesiology 99: 876−81
  103. Horn NA, Hecker KE, Bongers B, Baumert HJ, Reyle-Hahn SM, Rossaint R. 2001. Coagulation assessment in healthy pigs undergoing single xenon anaesthesia and combinations with isoflurane and sevoflurane. Acta Anaesthesiol Scand 45: 634−8
  104. Horn P, Vajkoczy P, Thome C, Muench E, Schilling L, Schmiedek P. 2001. Xenon-induced flow activation in patients with cerebral insult who undergo xenon-enhanced CT blood flow studies. AJNR Am JNeuroradiol 22: 1543−9
  105. Нот P, Vajkoczy P, Thome C, Quintel M, Roth H, et al. 2000. Effects of 30% stable xenon on regional cerebral blood flow in patients with intracranial pathology. Keio J Med 49 Suppl 1: A161−3
  106. Hoshi T, Fujii Y, Takahashi S, Toyooka H. 2000. Effect of xenon on diaphragmatic contractility in dogs. Can J Anaesth 47: 819−22
  107. Hoshi T, Fujii Y, Toyooka H. 2002. Comparative effects of xenon and nitrous oxide on diaphragmatic contractility in dogs. Acta Anaesthesiol Scand 46: 699−702
  108. Inoue Y, Shiozaki T, Tasaki O, Hayakata T, Ikegawa H, et al. 2005. Changes in cerebral blood flow from the acute to the chronic phase of severe head injury. J Neurotrauma 22: 1411−8
  109. Ishiguro Y, Saito H, Nakata Y, Goto T, Terui K, et al. 2000. Effect of xenon on endotracheal tube cuff. J Clin Anesth 12: 371−3
  110. Ishizaki K, Yoon DM, Yoshida N, Yamazaki M, Arai K, Fujita T. 1995. Intrathecal administration of N-methyl-D-aspartate receptor antagonist reduces the minimum alveolar anaesthetic concentration of isoflurane in rats. Br J Anaesth 75: 636−8
  111. Ishizaki K, Yoshida N, Yoon DM, Yoon MH, Sudoh M, Fujita T. 1996. Intrathecal^ administered NMDA receptor antagonists reduce the MAC of isoflurane in rats. Can J Anaesth 43: 724−30
  112. Junck L, Dhawan V, Thaler HT, Rottenberg DA. 1985. Effects of xenon and krypton on regional cerebral blood flow in the rat. J Cereb Blood Flow Metab 5: 126−32
  113. Jungwirth B, Gordan ML, Blobner M, Schmehl W, Kochs EF, Mackensen GB. 2006. Xenon impairs neurocognitive and histologic outcome after cardiopulmonary bypass combined with cerebral air embolism in rats. Anesthesiology 104: 770−6
  114. Ke YC, Ho ST, Yi HD, Li CY, Wang JJ, et al. 2006. Closed-circuit anesthesia preserves skin blood flow during surgery. Acta Anaesthesiol Taiwan 44: 25−30
  115. Koerner IP, Brambrink AM. 2006. Brain protection by anesthetic agents. Curr Opin Anaesthesiol 19: 481−6
  116. Kuroda Y, Strebel S, Rafferty C, Bullock R. 1993. Neuroprotective doses of N-methyl-D-aspartate receptor antagonists profoundly reduce the minimum alveolar anesthetic concentration (MAC) for isoflurane in rats. Anesth Analg 77: 795−800
  117. Lachmann B, Armbruster S, Schairer W, Landstra M, Trouwborst A, et al. 1990. Safety and efficacy of xenon in routine use as an inhalational anaesthetic. Lancet 335: 1413−5
  118. Laitio RM, Kaisti KK, Laangsjo JW, Aalto S, Salmi E, et al. 2007. Effects of xenon anesthesia on cerebral blood flow in humans: a positron emission tomography study. Anesthesiology 6:12%-ЪЪ
  119. Lawrence JLI, Loomis WF, Tobias CA, Turpin FH. 1946. Preliminary observations on the narcotic effect of xenon with a review of values for solubilities of gases in water and oils. J Physiol 105: 197−204
  120. Liotti M, Martin CC, Gao JH, Roby JW, Mayberg HS, et al. 1997. Xenon effects on regional cerebral blood flow assessed by 150-H20 positron emission tomography: implications for hyperpolarized xenon MRI. J Magn Reson Imaging 7: 761−4
  121. Lockwood GG, Franks NP, Downie NA, Taylor KM, Maze M. 2006. Feasibility and safety of delivering xenon to patients undergoing coronary artery bypass graft surgery while on cardiopulmonary bypass: phase I study. Anesthesiology 104: 458−65
  122. Luginbuhl M, Petersen-Felix S, Zbinden AM, Schnider TW. 2005. Xenon does not reduce opioid requirement for orthopedic surgery. Can JAnaesth 52: 38−44
  123. Ma D, Hossain M, Chow A, Arshad M, Battson RM, et al. 2005. Xenon and hypothermia combine to provide neuroprotection from neonatal asphyxia. Ann Neurol 58: 182−93
  124. Ma D, Hossain M, Pettet GK, Luo Y, Lim T, et al. 2006. Xenon preconditioning reduces brain damage from neonatal asphyxia in rats. JCereb Blood Flow Metab 26: 199−208
  125. Ma D, Wilhelm S, Maze M, Franks NP. 2002. Neuroprotective and neurotoxic properties of the 'inert' gas, xenon. Br JAnaesth 89: 739−46
  126. Mack PF, Perrine K, Kobylarz E, Schwartz TH, Lien CA. 2004. Dexmedetomidine and neurocognitive testing in awake craniotomy. JNeurosurg Anesthesiol 16: 20−5
  127. Magnant J, Vecellio L, de Monte M, Grimbert D, Valat C, et al. 2006. Comparative analysis of different scintigraphic approaches to assess pulmonary ventilation. J Aerosol Med 19: 148−59
  128. Marx T, Froeba G, Wagner D, Baeder S, Goertz A, Georgieff M. 1997. Effects on haemodynamics and catecholamine release of xenon anaesthesia compared with total i.v. anaesthesia in the pig. Br JAnaesth 78: 326−7
  129. KH. 1935. Beitrage zur theorie der narcose. Biochem. Z211: 1−2
  130. KH. 1937. Contribution to the theory of narcosis. France Faraday Soc.
  131. Mizuno K, Sumiyoshi R. 1998. Air contamination of a closed anesthesia circuit. Acta Anaesthesiol Scand 42: 128−30
  132. Moore ТА, 2nd, Markert JM, Knowlton RC. 2006. Dexmedetomidine as rescue drug during awake craniotomy for cortical motor mapping and tumor resection. Anesth Analg 102: 1556−8
  133. S. 1993. An application of statistics to closed circuit anesthesia practice. Masui 42:1411
  134. Morita S, Goto T, Niimi Y. 1994. Closed circuit anesthesia: a perspective in clinical practice. Masai 43: 746−52
  135. Morita S, Goto T, Niimi Y. 1994. Closed circuit anesthesia: its foundation and application. Masai 43: 915−20
  136. Morita S, Saito H, Hayashi T, Goto T, Niimi Y. 1995. Measurements of ventilatory parameters during closed circuit anesthesia—comparisons with semiclosed circuit, high-flow anesthesia. Masai 44: 210−5
  137. Nagele P, Metz LB, Crowder CM. 2005. Xenon acts by inhibition of non-N-methyl-D-aspartate receptor-mediated glutamatergic neurotransmission in Caenorhabditis elegans. Anesthesiology 103: 508−13
  138. Nakata Y, Goto T, Ishiguro Y, Terui K, Niimi Y, Morita S. 1999. Xenon suppresses the hypnotic arousal in response to surgical stimulation. J Clin Anesth 11: 305−9
  139. Nakata Y, Goto T, Niimi Y, Morita S. 1999. Cost analysis of xenon anesthesia: a comparison with nitrous oxide-isoflurane and nitrous oxide-sevoflurane anesthesia. J Clin Anesth 11:477−81
  140. Nakata Y, Goto T, Saito H, Ishiguro Y, Terui K, et al. 2000. Plasma concentration of fentanyl with xenon to block somatic and hemodynamic responses to surgical incision. Anesthesiology 92: 1043−8
  141. Natale G, Cattano D, Abramo A, Forfori F, Fulceri F, et al. 2006. Morphological evidence that xenon neuroprotects against N-methyl-DL-aspartic acid-induced damage in the rat arcuate nucleus: a time-dependent study. Ann N YAcad Sci 1074: 650−8
  142. Nishikawa K, Maclver MB. 2000. Excitatory synaptic transmission mediated by NMDA receptors is more sensitive to isoflurane than are non-NMDA receptor-mediated responses. Anesthesiology 92: 228−36
  143. Ogata J, Shiraishi M, Namba T, Smothers CT, Woodward JJ, Harris RA. 2006. Effects of anesthetics on mutant N-methyl-D-aspartate receptors expressed in Xenopus oocytes. J Pharmacol Exp Ther 318: 434−43
  144. Park KW, Dai HB, Metais C, Comunale ME, Sellke FW. 2002. Isoflurane does not further impair microvascular vasomotion in a rat model of subarachnoid hemorrhage. Can JAnaesth 49: 427−33
  145. P. 2004. No magic bullets: the ephemeral nature of anesthetic-mediated neuroprotection. Anesthesiology 100: 1049−51
  146. Plougmann J, Astrup J, Pedersen J, Gyldensted C. 1994. Effect of stable xenon inhalation on intracranial pressure during measurement of cerebral blood flow in head injury. J Neurosurg 81: 822−8
  147. Preckel B, Weber N, Schlack W. 2004. Xenon noble gas with organprotective properties. Anasthesiol IntensivmedNotfallmedSchmerzther 39: 456−62
  148. Rajakumaraswamy N, Ma D, Hossain M, Sanders RD, Franks NP, Maze M. 2006. Neuroprotective interaction produced by xenon and dexmedetomidine on in vitro and in vivo neuronal injury models. Neurosci Lett 409: 128−33
  149. Rasmussen LS, Schmehl W, Jakobsson J. 2006. Comparison of xenon with propofol for supplementary general anaesthesia for knee replacement: a randomized study. Br J Anaesth 97: 154−9
  150. Reinelt H, Marx T, Schirmer U, Luederwald S, Topalidis P, Schmidt M. 2002. Diffusion of xenon and nitrous oxide into the bowel during mechanical ileus. Anesthesiology 96: 512−3
  151. Reinelt H, Marx T, Schirmer U, Schmidt M. 2001. Xenon expenditure and nitrogen accumulation in closed-circuit anaesthesia. Anaesthesia 56: 309−11
  152. Reinelt H, Schirmer U, Marx T, Topalidis P, Schmidt M. 2001. Diffusion of xenon and nitrous oxide into the bowel. Anesthesiology 94: 475−7- discussion 6A
  153. Rex S, Schaefer W, Meyer PH, Rossaint R, Boy C, et al. 2006. Positron emission tomography study of regional cerebral metabolism during general anesthesia with xenon in humans. Anesthesiology 105: 936−43
  154. Rosenwasser RH, Armonda RA. 2000. Diagnostic imaging for stroke. Clin Neurosurg 46: 237−60
  155. Rudenko MI, Pas’ko VG, Andriushkin VN, Taubaev BM, Potapov VN. 2005. Xenon anesthesia of the abdominal surgery., Voen Med Zh 326: 14−5
  156. Rudenko MI, Potapov VN, Taubaev BM. 2005. The first experience and technical problems of xenon use in anesthesiology., Voen Med Zh 326: 23−8
  157. Rueckoldt H, Vangerow B, Marx G, Haubitz B, Meyer MC, et al. 1999. Xenon inhalation increases airway pressure in ventilated patients. Acta Anaesthesiol Scand 43: 1060−4
  158. Saito H, Saito M, Goto T, Morita S. 1997. Priming of anesthesia circuit with xenon for closed circuit anesthesia. Artif Organs 21: 70−2
  159. Sakaguchi Y, Takahashi S. 2006. Dexmedetomidine. Masui 55: 856−63
  160. Sakamoto S, Nakao S, Masuzawa M, Inada T, Maze M, et al. 2006. The differential effects of nitrous oxide and xenon on extracellular dopamine levels in the rat nucleus accumbens: a microdialysis study. Anesth Analg 103: 1459−63
  161. Sanders RD, Ma D, Maze M. 2005. Anaesthesia induced neuroprotection. Best Pract Res Clin Anaesthesiol 19: 461−74
  162. Sase S, Honda M, Machida K, Seiki Y. 2005. Comparison of cerebral blood flow between perfusion computed tomography and xenon-enhanced computed tomography for normal subjects: territorial analysis. J Comput Assist Tomogr 29: 270−7
  163. Schmidt M, Marx T, Armbruster S, Reinelt H, Schirmer U. 2005. Effect of Xenon on elevated intracranial pressure as compared with nitrous oxide and total intravenous anesthesia in pigs. Acta Anaesthesiol Scand 49: 494−501
  164. Schmidt M, Marx T, Gloggl E, Reinelt H, Schirmer U. 2005. Xenon attenuates cerebral damage after ischemia in pigs. Anesthesiology 102: 929−36
  165. Schmidt M, Marx T, Kotzerke J, Luderwald S, Armbruster S, et al. 2001. Cerebral and regional organ perfusion in pigs during xenon anaesthesia. Anaesthesia 56: 1154−9
  166. Schmidt M, Marx T, Papp-Jambor C, Schirmer U, Reinelt H. 2002. Effect of xenon on cerebral autoregulation in pigs. Anaesthesia 57: 960−6
  167. Schmidt M MT, Armbruster S, Schirmer U, Reinelt H. 2001. Effects on cerebral cell metabolism and cell integrity of xenon anesthesia compared to TIVA/nitrous oxygen and TIVA/oxygen in pigs. Anesthesiology 95
  168. Schmidt M MT, Armbruster S, Schirmer U, Reinelt H. 2001. Pathologic intracranial pressure is not increased further during 75% xenon inhalation and is partially reversible by hyperventilation. Anesthesiology 95
  169. Schwarzkopf K, Schreiber T, Gaser E, Preussler NP, Hueter L, et al. 2005. The effects of xenon or nitrous oxide supplementation on systemic oxygenation and pulmonary perfusion during one-lung ventilation in pigs. Anesth Analg 100: 335−9
  170. Sclabassi RJ, Lofink RM, Guthkelch AN, Gur D, Yonas H. 1987. Effect of low concentration stable xenon on the EEG power spectrum. Electroencephalogr Clin Neurophysiol 67: 340−7
  171. BA. 2005. Regional ventilation and lung mechanics using X-Ray CT. Acad Radiol 12: 1414−22
  172. Solt K, Eger EI, 2nd, Raines DE. 2006. Differential modulation of human N-methyl-D-aspartate receptors by structurally diverse general anesthetics. Anesth Analg 102: 1407−11
  173. Sta Maria N, Eckmann DM. 2003. Model predictions of gas embolism growth and reabsorption during xenon anesthesia. Anesthesiology 99: 638−45
  174. Stabernack C, Sonner JM, Laster M, Zhang Y, Xing Y, et al. 2003. Spinal N-methyl-d-aspartate receptors may contribute to the immobilizing action of isoflurane. Anesth Analg 96: 102−7, table of contents
  175. Suga К, Kawakami Y, Yamashita T, Zaki M, Matsunaga N. 2006. Characterization of 133Xe gas washout in pulmonary emphysema with dynamic 133Xe SPECT functional images. Nucl Med Commun 27: 71−80
  176. S. 1992. Effects of sevoflurane on intracranial pressure and formation and absorption of cerebrospinal fluid in cats. Masai 41: 1434−42
  177. Suttner S, Boldt J. 2000. Low-flow anaesthesia. Does it have potential pharmacoeconomic consequences? Pharmacoeconomics 17: 585−90
  178. Suzuki T, Koyama H, Sugimoto M, Uchida I, Mashimo T. 2002. The diverse actions of volatile and gaseous anesthetics on human-cloned 5-hydroxytryptamine3 receptors expressed in Xenopus oocytes. Anesthesiology 96: 699−704
  179. Suzuki T, Ueta K, Sugimoto M, Uchida I, Mashimo T. 2003. Nitrous oxide and xenon inhibit the human (alpha 7)5 nicotinic acetylcholine receptor expressed in Xenopus oocyte. Anesth Analg 96: 443−8, table of contents
  180. Valtysson j HL, Andine P, Hagberg H, Person L. 1994. Neuropathological endpoints in experimental stroke pharmakotherapy: the importance of both early and late evaluation. Acta Neurochir 129: 58−63
  181. Weber NC, Stursberg J, Wirthle NM, Toma O, Schlack W, Preckel B. 2006. Xenon preconditioning differently regulates p44/42 МАРК (ERK ½) and p46/54 МАРК (JNK ½ and 3) in vivo. Br J Anaesth 97: 298−306
  182. Weber NC, Toma O, Wolter JI, Obal D, Mullenheim J, et al. 2005. The noble gas xenon induces pharmacological preconditioning in the rat heart in vivo via induction of PKC-epsilon and p38 МАРК. Br J Pharmacol 144: 123−32
  183. Weber NC, Toma O, Wolter JI, Wirthle NM, Schlack W, Preckel B. 2005. Mechanisms of xenon- and isoflurane-induced preconditioning a potential link to the cytoskeleton via the MAPKAPK-2/HSP27 pathway. Br J Pharmacol 146: 445−55
  184. Wilhelm S, Ma D, Maze M, Franks NP. 2002. Effects of xenon on in vitro and in vivo models of neuronal injury. Anesthesiology 96: 1485−91
  185. Yamakura T, Harris RA. 2000. Effects of gaseous anesthetics nitrous oxide and xenon on ligand-gated ion channels. Comparison with isoflurane and ethanol. Anesthesiology 93: 1095−101
  186. M. 1996. The influence of intrathecal NMD A receptor antagonist on the isoflurane MAC and on the motor function. Masui 45: 70−6
  187. Zhang P, Ohara A, Mashimo T, Imanaka H, Uchiyama A, Yoshiya I. 1995. Pulmonary resistance in dogs: a comparison of xenon with nitrous oxide. Can J Anaesth 42: 547−53
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!