Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Культивирование клеток кожи, предназначенных для заместительной терапии, на полимерных плёнках

Диссертация: Культивирование клеток кожи, предназначенных для заместительной терапии, на полимерных плёнках
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Структура и распределение коллагена на поверхности пленок зависит от условий его нанесения и влияет на поведение взаимодействующих с ним клеток. Наилучшие распределение кератиноцитов по поверхности пленки, их рост, морфология и пространственная организация цитоскелета достигаются при нанесении коллагена в фибриллярной форме. Разработанные полилактидные пленки в условиях культуры и при внесении… Читать ещё >

Культивирование клеток кожи, предназначенных для заместительной терапии, на полимерных плёнках (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Биоматериаловедение — междисциплинарный подход к изучению полимеров
    • 1. 2. Полимеры медико-биологического назначения
    • 1. 3. Тканевая инженерия
      • 1. 3. 1. Принципы и методы тканевой инженерии
      • 1. 3. 2. Основные требования к полимерам в тканевой инженерии
    • 1. 3. 3 Синтетические биодеградируемые полимеры
    • 1. 4. Строение кожи и способы лечения повреждений кожного покрова
      • 1. 4. 1. Строение кожного покрова
    • 1. 4. 2 Строение коллагена и его свойства
    • 1. 4. 3 Подготовка клеточного продукта для трансплантаций
      • 1. 4. 4. Формирование полимерных матриц для культивирования клеток
    • 1. 5. Взаимодействие клеток с полимерной поверхностью скаффолда
    • 1. 6. Модификация полимерного субстрата
      • 1. 6. 1. Физические способы модификации
      • 1. 6. 2. Химические способы модификации полимерной поверхности
  • Глава 2. Объекты и методы исследования
    • 2. 1. Приготовление материалов и реагентов
      • 2. 1. 1. Синтез поли (В, Ь-лактида)
      • 2. 1. 2. Формирование плёнок методом полива из раствора
      • 2. 1. 3. Получение тонких полимерных плёнок
      • 2. 1. 4. Гидрофобизация покровных стёкол
      • 2. 1. 5. Получение пористых плёнок из смеси полилактида (ПЛ) и полиэтиленгликоля (ПЭГ)
      • 2. 1. 6. Получение коллагена
    • 2. 2. Модификация поверхности полилактидных пленок
      • 2. 2. 1. Нанесение коллагена на полимерный субстрат
      • 2. 2. 2. Модификация полилактидных плёнок лизином
    • 2. 3. Методы исследования
      • 2. 3. 1. Измерение гидрофильно-гидрофобных характеристик поверхности полимерной плёнки методом пластинок Вильгельми
      • 2. 3. 2. Оценка количества растворённого ПЭГ по потере массы
      • 2. 3. 3. Определение концентрации полиэтиленгликоля в водных растворах
      • 2. 3. 4. Определение оксипролина в коллагене
      • 2. 3. 5. Определение концентрации коллагена
      • 2. 3. 6. Выявление структуры коллагена
    • 3. 7. Нингидриновый метод анализа
    • 2. 3. 8 Ядерный магнитный резонанс
    • 2. 3. 9 Сканирующая электронная микроскопия
    • 2. 4. Выделение клеток кожи и анализ их поведения на исследуемых субстратах
      • 2. 4. 1. Выделение и культивирование первичных фибробластов
      • 2. 4. 2. Выделение и культивирование первичных кератиноцитов
      • 2. 4. 3. Оценка состояния клеток на полимерных плёнках
      • 2. 4. 4. Адгезия фибробластов
      • 2. 4. 5. Анализ структуры актинового цитоскелета
  • Глава 3. Результаты
    • 3. 1. Синтез поли (Б, Ь-лактида)
    • 3. 2. Получение полимерных плёнок из полилактида разными способами
      • 3. 2. 1. Плёнки, полученные методом полива из раствора
      • 3. 2. 2. Полимерные плёнки, полученные на покровном стекле
    • 3. 3. Влияние условий получения полимерных плёнок на взаимодействие фибробластов с полимерной поверхностью полилактидной плёнки
    • 3. 4. Исследование деградации полилактидных плёнок in vitro
    • 3. 5. Исследование деградации полилактидных плёнок in vivo
    • 3. 6. Модификация полилактидной плёнки
    • 3. 6. 1. Нанесение коллагена на полилактидную матрицу
      • 3. 6. 2. Влияние покрытия полимерных пленок коллагеном на поведение культивируемых кератиноцитов
    • 3. 7. Формирование пористых плёнок на основе смеси полилактида и полиэтил енгликоля
      • 3. 7. 1. Исследование скорости растворения ПЭГ
      • 3. 7. 2. Культивирование кератиноцитов на плёнках, приготовленных на основе смеси ПЛ и ПЭГ
      • 3. 7. 3. Модификация коллагеном пористых плёнок и культивирование на них кератиноцитов
    • 3. 8. Модификация полилактидных плёнок раствором лизина
  • Глава 4. Обсуждение результатов
  • Выводы

Разработка технологий лечения повреждённых органов и тканей методами заместительной клеточной терапии является перспективным направлением современной регенеративной медицины. В основе этого метода лечения лежит введение в организм пациента стволовых или дифференцированных клеток, которые замещают утраченные. Для этой цели используют культивируемые клетки, которые выделяют из костного мозга и тканей самого пациента или здоровых доноров.

Актуальность работы. Восстановление целостности повреждённой ткани требует создания нормального микроокружения для трансплантируемых клеток, способствующего их размножению, дифференцировке и созданию нормальных структур тканей. В организме создание такого микроокружения обеспечивают белки внеклеточного матрикса. Эти белки и в частности коллаген, используют, поэтому, при культивировании клеток и при создании клеточных композиций для дальнейшей трансплантации в поврежденные ткани пациента. При переносе клеток из культуральных сосудов в раны возникают, однако, проблемы сохранения их пространственной организации и функциональных свойств. Они связаны, прежде всего, с недостаточной механической прочностью клеточных ассоциаций и с неизбежным повреждением клеток в результате ферментативной обработки при отделении клеточных пластов от поверхности сосудов, в которых их культивируют.

Размножение и рост клеток на полимерных матрицах, обладающих достаточной механической прочностью и имеющих определённую пространственную архитектуру, может способствовать формированию структурной основы дифференцирующихся тканей. Поэтому в последнее время при создании клеточных продуктов, необходимо использовать полимеры, для обеспечения сохранения исходного состояния межклеточных контактов и поверхностных рецепторов клеток. В зависимости от практических задач к таким полимерам предъявляется ряд требований, в том числе, биосовместимость и способность рассасываться в процессе восстановлении структуры ткани. Таким образом, в настоящее время сформировалась новая междисциплинарная область науки — тканевая инженерия, которая включает в себя принципы и методы инженерии, химии, физики и клеточной биологии. В основе тканевой инженерии лежит культивирование клеток на искусственных полимерных матрицах.

Одним из приоритетных направлений тканевой инженерии является восстановление структурной целостности повреждённых кожных покровов, возникающих в результате ожогов, трофических язв и другого рода повреждений. Культивирование кератиноцитов на полимерных матрицах и последующая трансплантация сформировавшегося клеточного пласта вместе с такой матрицей в организм позволяет исключить процедуру обработки клеток протеолитическими ферментами. Перенесённая в организм биодеградируемая полимерная матрица со временем рассасывается, а клетки способствуют восстановлению кожных покровов.

Целью работы являлся поиск оптимальных условий для культивирования клеток кожи на биодеградируемых полимерных плёнках, сформированных на основе поли (0,Ь-лактида) для заместительной клеточной терапии.

В процессе исследования были решены следующие задачи:

1. Подобраны оптимальные условия для культивирования клеток кожи на полил актидных плёнках.

2. Разработаны условия нанесения коллагена на поверхность полимерных плёнок и исследовано взаимодействие клеток с различными его структурными формами (молекулярной и фибриллярной).

3. Проведена модификация поверхности полимерных плёнок введением аминогрупп и оценка их влияния на степень распластанности клеток.

4. Отработаны условия формирования пористых плёнок для свободного доступа к клеткам питательных веществ и отвода продуктов метаболизма.

5. Определена скорость деградации плёнок в условиях культивирования клеток и после имплантации их в организм лабораторных животных.

Выводы.

1. Разработанные нами биодеградируемые полимерные плёнки на основе полилактида позволяют культивировать на них кератиноциты человека и получать многослойные пласты клеток для последующей трансплантации без предварительной ферментативной обработки.

2. Биосовместимость полученных пленок, способствующая прикреплению и росту клеток, достигается путем модификации их поверхности коллагеном I типа или лизином.

3. .Структура и распределение коллагена на поверхности пленок зависит от условий его нанесения и влияет на поведение взаимодействующих с ним клеток. Наилучшие распределение кератиноцитов по поверхности пленки, их рост, морфология и пространственная организация цитоскелета достигаются при нанесении коллагена в фибриллярной форме.

4 Путём смешивания полилактида с полиэтиленгликолем 6000 (ПЭГ), и удалением последнего из готовой матрицы можно получить пористые плёнки, которые улучшают взаимодействие клеток с окружающей средой при их культивировании и после переноса пласта на рану.

5. Разработанные полилактидные пленки в условиях культуры и при внесении в экспериментальные раны лабораторных животных являются не токсичными и обладают удовлетворительной скоростью резорбции, и, следовательно, могут быть использованы в технологиях клеточной заместительной терапии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.К. Абаев, В.Е. Капуцкий, Адарченко А. А. Новый перевязочный материал для лечения гнойных ран // Здравоохранение. 1995. № 11.
  2. . и др. «Молекулярная биология клетки». Т. 1, 2. Мир, 1994 г.
  3. В. П., Осипов О. П., Санников С. Г., Торсуев Д. М. Исследование смачивания фторополимеров И Химия и компьютерное моделирование. Бутлеровские сообщения. 2002. № 6, с/ 47−50
  4. А.Ю., Зорин И. М. Деструкция полимеров, ее роль в природе и современных медицинских технологиях // Успехи химии. 2006. № 75. стр. 151 165.
  5. Е.А. Углеродный материал нового поколения в эндопротезировании костей и суставов. Пермь: Изд-во Пермс. ун-та. 1993. 64 с.
  6. Р. М., Батырбеков Е. О., Сулейменов И. Э., Бектуров Е. А., Жубанов Б. А. Полимерные биоматериалы Алматы. 2005
  7. Н.А., Попова Т. Н., Артюхов В. Г. Биохимия: Учебник / Воронеж: Изд. Вор. гос. ун. 2002. 696 с.
  8. В. В., Осипов Б. П., Осипова Н. Н. Льняное сырье в изделиях медицинского и санитарно-гигиенического назначения // Рос. хим. ж. (Ж. Рос. хим. об-ва им. Д. И. Менделеева). 2002, т. XLVI, № 2
  9. В.Е., Адарченко А. А., Собенчук О. П., Красшьников И. П. Изучение антимикробных свойств целлюлозы и других полимерных материалов, модифицированных хлоргексидином // Антибиотики и химиотерапия. 1991. № 3.
  10. К.А., Штейнгард М. З. Сополимеры в стоматологии // М.: Медицина. 1982. 247 с.
  11. И.Н. Структура и функции эпидермиса// М.: Медицина. 1979.
  12. В. И., Перский Е. Э.б Утевская Л. А. Возрастная и эволюционная биохимия коллагеновыз структур. Киев: Наукова думка. 1977. 279 стр.
  13. М. Г., Лысенков Н. К. Анатомия человека С-Пб: «Гиппократ», 1999. 704 с.
  14. Г. А. Биодеструктируемые полимеры. Киев: Наукова Думка. 1990. 160 с.
  15. Т.А., Юркштович Т. Л., Герасимович Г. Н., Капуцкий Ф. Н. Современные препараты на основе производных целлюлозы в клинической практике//Медицина. 1996. V. 5. С. 39−43.
  16. О. Г., Калмыкова Н. В., Кухарева Л. В., Воронкина И. В., Блинова М. И., Пинаев Г. П. Выделение популяции базальных кератиноцитов человека путём их селективной адгезии к белкам внеклеточного матрикса // Цитология 2006. т. 48. № 10. стр. 841−847
  17. Дж.М., Шилдс Д. Молекулярная биология клетки. М.:Изд-во Бином, 2003.
  18. Физическая химия: Учебник для вузов. М.: Химия. 2000. 320с.
  19. ХэмА., КормакД. Гистология. М.: Мир. 1983.С. 191.
  20. М.С. Цианакрилатные клеи в травмотологии и ортопедии // М.: Медицина. 1976. 102 с.
  21. Ю.А., Кухарева Л. В., Зорин И. М., Соловьев А. Ю., Блинова М. И., Билибин А. Ю., Пинаев Г. П. Культивирование фибробластов кожи человека на полимерной полилактидной подложке // Цитология. 2006. т.48. № 2. с.161−168.
  22. Ю.А., Кухарева Л. В., Зорин И. М., Блинова М. И., Билибин А. Ю., Пинаев Г. П. Взаимодействие культивируемых клеток кожи с разными структурными формами коллагена, нанесённого на полилактидную матрицу // Цитология, 2007, т.49, № 1, с.32−39.
  23. М. И. Полимеры медико-биологического назначения // М.: Академкнига. 2006. 400 с.
  24. Aldwinckle T.J., Ahkong Q.F., Bangham A.D., Fisher D., Lucy J.A. Effects of poly (ethylene glycol) on liposomes and erythrocytes. Permeability changes and membrane fusion //Biochim. Biophys. Acta. 1982. V. 689. P. 548−560.
  25. Amiji, M- Park, K. Prevention of protein adsorption and platelet adhesion on surfaces by PEO/PPO/PEO triblock copolymers. Biomaterials. 1992−13(10):682−692.
  26. Amulya K. Saxena A. K., Benvenuto M., Marler J., Joseph P. Vacanti J. P. Skeletal Muscle Tissue Engineering Using Isolated Myoblasts on Synthetic Biodegradable Polymers: Preliminary Studies // Tissue Engineering 1999. V. 5. № 6. P.525 531.
  27. Andrade J.D., Hlady V. Protein adsorption and materials biocom-patibility: a tutorial review and suggested hypotheses // Adv. Polym. Sci. 1986. V. 79. P. 1−63.
  28. Ashammakhi N., Rokkanen P. Absorbable polyglycolide devices in trauma and bone surgery//Biomaterials. 1997. V. 18. P. 3−9.
  29. Barrera D., Zylstra E., Lansbury P., Langer R. Copolymerization and degradation of poly (lactide acid) // Macromolecules. 1995. V. 28. P. 425 -432
  30. Behravesh E., Yasko A.W., Engle P. S., Mikos A.G. Synthetic biodegradable polymers for orthopaedic applications // Clin Orthop. 1999 V. 36. P. 118−185.
  31. Bell E., Ehrlich H. P., Buttle D. Nakatsuji T. Living tissue formed in vitro and accepted as a skin equivalent tissue of full thickness // Science. 1981. V. 211. P. 1052−1054
  32. Belkas J.S., Munro C.A., Shoichet M.S., Johnston M., Midha R. Long-term in vivo biomechanical properties and biocompatibility of poly (2- hydroxyethyl methacrylate-co-methyl methacrylate) nerve conduits // Biomaterials. 2005. V. 26. P. 1741−1749.
  33. Bero M., JKasperczyk, ZJJedlinski. Coordination polymerization of lactides// Makromol Chem. 1990. V. 191. P. P. 2287- 2296.
  34. Bertrand P., Jonas, A., Laschewsky, Legras R. XJltrathin polymer coatings by complexation // Macromol. Rapid Commun. 2000,. V. 21. P. 319−348.
  35. Brady J.M., Outright D.E., Miller R.A. Resorption rate, route, route of elimination, and ultrastructure of the implant site of polylactic acid in the abdominal wall of the rat//J. Biomed. Mater. Res. 1973. V. 7. P. 155−166.
  36. Brach del Prever E.M., Costa L., Crova M., Dallera A., Gallinaro P., Camino G. Luda M.P. Unacceptable biodegradation of UHMWPE in vivo // Biomaterials. 1996. V.17. P.873−878.
  37. Branham G.H., Thomas J.R. Skin grafts // Otolaryngol. Clin. North. Am. 1990. V. V. 23. P. 889−897.
  38. Briesewitz R., Epstein M. R., Marcantonio E. E. Expression of native and truncated forms of the human integrin alpha 1 subunit // J. Biol. Chem. 1993. V. 268. P. 2989−2996.
  39. Buck, C., Horwitz A.F. Cell surface receptors for extracellular matrix molecules //Annu. Rev. Cell Biol. 1987. V. 3. P. 179−205.
  40. Analysis of the Integrin Subunit 10, a 1-associated Collagen Binding Integrin Expressed on Chondrocytes // J. Biol. Chem. 1998 V. 273. P. 20 383−20 389.
  41. Carver N., Leigh I.M. Keratinocyte grafts and skin equivalents // Int. J. Dermatol. 1991. V. 30. P.540−551.
  42. Chabot F., Vert M., ChapeUe S. Configuration structures of lactic acid stereocopolymers as determined by 13C-1 H-NMRJ. // Polymer. 1983. V. 24. P. 5359.
  43. Chujo. K., Kobayashi. H., Suzuki. J., Tokuhara S. Physical and chemical characteristics of polyglycolide//Makromol. Chem. 1967. V. 100
  44. Cima L.G., Vacanti, J.P., Vacanti, C., Tissue engineering by cell transplantation using degradable polymer substrates // J. Biomech. Eng. 1991. V. 113. P. 143.
  45. Clyde G., Hardwick C. Extracellular Matrix Contraction by Choroidal Fibroblasts: Inhibition by Staurosporine // Investigative Ophthalmology & Visual Science. 1994. V. 35. № 2.
  46. Dai N.T., Williamson M.R., Khammo N., Adams E, F., Coombes A, G., Composite cell support membranes based on collagen and polycaprolactone for tissue engineering of skin // Biomaterials. 2004. V. 25. P. 4263−4271
  47. Decher G., Hong, J.-D. //Ber. Bunsen-Ges. 1991. V. 95. P. 1430. Decher G. Fuzzy Nanoassemblies: Toward Layered Polymeric Multicomposites Science. 1997. V. 227. P. 1232−1237
  48. Deschler D.G., Hayden R.E. Head and neck reconstruction // Neuroimag Clin N Am. 1996. V. 6. P. 505−514.
  49. Dubois Ph., Jacobs C., Jerome R., Teyssie Ph. Macromolecular engineering of polylactones and polylactides. 4. Mechanism and kinetics of lactide homopolymerization by aluminum isopropoxide // Macromolecules. 1991. V. 24. P. 2266−2270.
  50. Duvernoy V. A., Malm Т., Ramstrom J. A biodegradable patch used as a pericardial substitute after cardiac surgey: 6- and 24-month evaluation with CT // Thorac. Cardiovasc. Surg. 1995. Y.43. № 5. P. 271−274
  51. Ellis D.L., Yannas I. V. Recent advances in tissue synthesis in vivo by use of collagen-glycosaminoglycan copolymers // Biomaterials. 1996. V. 17. P. 291—299.
  52. Evans G.R.D., Brandt K, Widmer S. In vivo evaluation of poly (L-lactic acid) porous conduits for peripheral nerve regeneration I I Biomaterials 1999. V. 20. P. 1109−1115.
  53. Finley J. IV., Friedman M. Chemical methods for available lysine // Cereal Sci. 1973. V. 50. P. 101−105.
  54. Freedlander E. New forms of skin grafting: from the laboratory to the clinic I I HospMed. 1998. V.59. P. 484−487.
  55. Gan D., Lu S., Cao W. W. Formation of nanoporous poly (aryl amide ether) (PAAE) films by selective removal of poly (ethylene glycol) (PEG) from PEG/PAAE composite films // European Polymer Journal. 2004. V. 40.№ 11.P.2481−2486.
  56. Garric X., Molus J.-P., Garreau H., Guilhou J.-J. Vert M. Human skin cell cultures onto PLA50 (PDLLA) bioresorbable polymers: Influence of chemical and morphological surface modifications // J. Biomed. Mat. Res. 2005. V. 72. P. 180−189.
  57. Gogolewski S., Pennings A.J. An artificial skin based on biodegradable mixtures of polylactides and polyurethanes for full-thickness skin wound covering // Makromol. Chern. Rapid. Commun. 1983. V. 4. P. 675−680
  58. Gonsalves К. E., Jin S., Baraton M. Synthesis and surface characterization offunctionalized polylactide copolymer microparticles // Biomaterials. 1998. V. 19. P. 1501−1505.
  59. Gopferich A. Mechanisms of polymer degradation and erosion // Biomaterials. 1996. V. 17. P. 103−114
  60. Groth Т., Altankov G., Kolsz K. Adhesion ofhuman peripheral blood lymphocytes is dependent on surface of wettabilty and protein preadsorption // Biomaterials. 1994. V. 15. P. 423-^28.
  61. Gugala Z., Gogolewski S. Protein adsorption, attachment, growth and activity of primary rat osteoblasts on polylactide membranes with defined surface characteristics //Biomaterials. 2004 V. 25. P. 2341−51.
  62. Halpem B. D., Tong Y.-C. In: Encycl. of Polymer Sci. and Eng // Willey: New-York. 1986. V.9. P.486−508.
  63. Han D. K., Hubbell J. A. Lactide-based poly (ethylene glycol) polymer networks for scaffolds in tissue engineering //Macromolecules. 1996. V. 29. P. 5233— 5235.
  64. Hansbrough J.F., Morgan J., Greenleaf G., Parikh M, Nolte C., Wilkins L. Evaluation of Transplanted Tissue-Engineered Oral Mucosa Equivalents in Severe Combined Immunodeficient Mice I I J. Burn. Care Rehabil. 1994. V. 4. P. 15−20.
  65. Hentze H.-P., Antonietti M. New polymers for molecular biotechnology // Reviews in Molecular Biotechnology. 2002. V. 90. P. 27−35.
  66. Herold D.A., Keil K., Brims D.E. Oxidation of polyethylene glycols by alcohol dehydrogenase //Biochem. Pharmacol. 1989. V. 38. P. 73−76.
  67. Hoffmann A.S. Biologically functional materials. In: Ratner BD, Hoffman AS, Schoen FJ, Lemons JE, editors // Biomaterials science: an introduction to materials in Medicine 1996. New York: Academic Press. 1996. p. 124−30.
  68. Hollahan J.R., Stafford B.B., Falb R.D., Payne S.T. Attachment of amino groups to polymers surfaces by radiofrequency plasmas // J. Appl. Polym. Sci. 1969. V. 13. P. 807−816.
  69. Hong Y., Gao C.Y., Xie Y., Gong Y.H., Shen J.C. Collagen-coated polylactide microspheres as chondrocyte microcarriers // Biomaterials. 2005. V. 26. P. 63 056 313.
  70. Hua Y., Hua Y.S., Topolkciraev V., Hiltnera A., Baera E. Aging of poly (lactide)/poly (ethylene glycol) blends // Polymer. 2003 V. 44. P. 5711−5720.
  71. Huang J., Lisowski M.S., Runt J., HallE.S., KenR.T., BuehlerN., LinJ.S. Crystallization and Microstructure of Poly (L-lactide-co-meso-lactide) Copolymers // Macromolecules. 1998 V. 31. P. 2593−2599.
  72. Ни Y., Rogunova M., Topolkaraev V., Hiltner A., Baer E. Poly (lactide) with low stereoregularity// Polymer. 2004. V. 44. P. 5701−5710.
  73. Hutmacher D. W. Polymeric scaffolds in tissue engineering, bone and cartilage // Biomaterials. 2000. V. 21. P. 2529−2543.
  74. Jacobson B. S, Branton D. Plasma membrane: rapid isolation and exposure of the cytoplasmic surface by use of positively charged beads // Science 1977. V. 195. P. 302−304.
  75. J eon S.I., Andrade J.D. Protein-surface interactions in the presence of polyethylene oxide II. Effect of protein size // J. Colloid. Interface. Sci. 1991. V. 142. P. 159−166.
  76. Jin S., Gonsalves K.E. Synthesis of functionalized polylactide and it graft copolymers with polyethylene glycol) // Polymer. 1998. V. 39. P. 5155−5162
  77. Kadler К E., Holmes D. F., Trotter J. A., Chapman J. A. Collagen fibril formation // Biochem. J. l 996 V. 316. P. 1−1 1.
  78. Karp J.M., Shoichet M.S., Davies J.E. Bone formation on two dimensional poly (D, L-lactide-co-glycolyde) (PLGA) films and three-dimensional PLGA tissue engineering scaffolds in vitro // J. Biomed Mater Res. 2003. V.64. № 2. P. 388−396.
  79. Kawai, K- Suzuki, S- Tabata, Y- Ikada, Y- Nishimura, Y. Accelerated tissue regeneration through incorporation of basic fibroblast growth factor-impregnated gelatin microspheres into artificial dermis // Biomaterials. 2000−21:489−499
  80. Khang G., Choee J.-H., Rhee J.M., Lee H.B. Interaction of different types of cells on physicochemically treated poly (L-lactide-co-glycolide) surfaces // J. Appl. Polym. Sci. 2002. V. 85. P. 1253−1262.
  81. KimS-S., GwakS-J., Cha Yong Choi, Kim B-S. Skin regeneration using keratinocytes and dermal fibroblasts cultured on biodegradable microspherical polymer scaffolds // Journal of biomedical materials research. 2005. V. 75B. № 2. p. 369−377.
  82. Kishida A., Iwata H., Tamada Y., Ikada Y. Cell behaviour on polymer surfaces grafted with non-ionic and ionic monomers //Biomaterials. 1991. V. 12. P. 786−792.
  83. Kiss E. l, Vargha-Butler E.I. Novel method to characterize the hydrolytic decomposition of biopolymer surfaces // Colloids and Surfaces B. 1999. V. 15. № 3. P. 181−193.
  84. Kricheldorf H. R. Syntheses and application of polylactides // Chemosphere. 2001. V.43.P. 49−54.
  85. Kricheldorf H.R., Krieiser-Saunders I., Boettcher C. Polylactones: 31. Sn (II)octoate-initiated polymerization of L-lactide: a mechanistic study // Polymer. 1995. V. 36. P. 1253- 1259.
  86. J.T., Carlsson J., Lin J.N., Caldwell K.D. Chemical modification of surface active poly (ethylene oxide)-poly (propylene oxide) triblock copolymers // Bioconjugate. Chem. 1996. V. 7. P. 592−599.
  87. S.M., Garreau II, Vert M. Structure-property relationships in the case of the degradation of massive aliphatic poly-(o-hydroxy acids) in aqueous media. Part 1: poly-(DL-lactic acid) //J. Mater. Sci. 1990. V. 1. P. 123−130.
  88. S., Vert M. Biodegradation of aliphatic polyesters. In: Gilead GSD, editor. Biodegradable polymers, principles and application. London: Chapman and Hall. 2003. p 43−87
  89. Ma Z.W., Gao C.Y., Ji J., Shen J.C. Protein immobilization on the surface of poly (l-lactic acid) films for improvement of cellular interactions // Eur Polym. J. 2002.V. 38. P. 2279.
  90. Martin O., Averous L. Poly (lactic acid): plasticization and properties of biodegradable multiphase systems I I Polymer. 2001. V. 42. P. 6209 6215.
  91. Maruguchi Т., Maruguchi Y., Suzuki S., Matsuda K., Toda K., Isshiki N. An experimental study of novel bioartificial materials applied to glycotechnology for tissue engineering //Plast. Reconstr. Surg. 1994. V. 3. P. 93−98.
  92. Matsuzaka K., Walboomers F. Effect of microgrooved poly-l-lactic (PLA) surfaces on proliferation, cytoskeletal organization, and mineralized matrix formation of rat bone marrow cells // Clin. Oral Impl. Res. 2000. V. 11. P. 325−333.
  93. Mercier 1., Lechaire J.P., Desmouliere A., Gaill F., Aumailley M. Interactions of human skin fibroblasts with monomeric or fibrillar collagens induce different organization of cytoskeleton // Exp. Cell Res. 1996. V. 225. P. 245- 256.
  94. Middleton J.C., Tipton A.J. Synthetic biodegradable polymers as medical devices // Med. Plastics Biomater. Mag. 1998. V. 3. P. 30−35
  95. Middleton J.C., Tipton A.J. Synthetic Biodegradable Polymers as Orthopedic Devices // Biomaterials. 2000. V. 21. P. 2335−2346.
  96. Moisted K. Treatment outcome in cleft lipand palate: issues and perspectives // Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 1999. V. 10. P. 225−239.
  97. Mooney D.J., Powell С., Piana J., Rutherford B. Engineering dental pulp-like tissue in vitro // Biotechnol. Prog. 1996. V. 12. P. 865−868.
  98. Morrison G. Advances in the skin trade // Mechanical. Eng. 1999 V. 121. P. 40−43.
  99. Nakane K., Hata Y, Morita K., Ogihara Т., Ogata N. Porous Poly (L-lactic acid)/Poly (ethylene glycol) Blend Films Journal of Applied Polymer // Science. 2004. V. 94. P. 965−970.
  100. Neumann Т., Hauschka S.D., Sanders J.E. Tissue engineering of skeletal muscle using polymer fiber arrays // Tissue Eng. 2003. V. 9. P. 995−1003.
  101. Nieuwenhuis J. Synthesis of Polylactides, Polyglycolides and their Copolymers // Clin. Mater. 1992. V. 10. P. 59−67.
  102. Nimni M.E., Harkness R.D. Molecular structures and functions of collagens I I In: Nimni M.E. Collagen: V. I. Biochemistry. 1988. CRC Press. Boca Raton. P. 1−79.
  103. Nijenhuis A.J., Grijpma D. W., Pennings A.J. Lewis acid catalyzed polymerization of L-lactide. Kinetics and mechanism of the bulk polymerization // Macromolecules. 1992. V. 25. P. 6419−6424.
  104. Nijenhuis A., Colstee E., Grijpma D.W., Pennings A.J. Synthesis of polylactides, polyglycolides and their copolymers // Polymer 1996. V. 37. P. 58 495 867.
  105. Oakes B. W. Orthopaedic tissue engineering: from labora tory to the clinic // Med. J. Aust. 2004. V. 180. P. 35−38.
  106. Okihara Т., Tsuji M., Kawaguchi A., Katayama K.-I., Tsuji H., Hyon S.-H., Ikada Y. Crystal structure of stereocomplex of poly (i--lactide) and poly (D-lactide) // J Macromol Sci Phys. 1991. V. B30. P. 119−140.
  107. Ophof Ricardo, Maltha Jaap C., Kuijpers-Jagtman Anne-Marie, Von Den Hoff Johannes W. Evaluation of a Collagen-Glycosaminoglycan Dermal Substitute in the Dog Palate // Tissue Engineering. 2007, November 1, 13(11)
  108. Otsuka H., Nagasaki Y., Kataoka K. Surface characterization of functionalizedpolylactid e through the coating with heterobifunctional poly (ethylene glycol)/polylactide block copolymers // Biomacromolecules. 2000. V. 1. P. 39−48.
  109. Papadopoulos G.K., Ouzounis C., Eliopoulos E. RGD sequences in several receptor proteins: novel cell adhesion function of receptors? // Int. J. Biol. Macromol. 1998. V.22. P. 51−57.
  110. Pashkuleva I., Marques A.P. Surface modification of starch based blends using potassium permanganate-nitric acid system and its effect on the adhesion and proliferation of osteoblast-like cells // J. Mater. Sci. Mater. Med. 2005 V. 16. P. 8192.
  111. Penczec S., Duda A., Szymanski R., Biela T. What we have learned in general from cyclic esters polymerization // Macromol. Symp. 2000. V. 153. P. 1−15.
  112. Peters M.C., Mooney D.J. Synthetic extracellular matrices for cell transplantation //Mater. Sci. 1997. V. 250. P. 43.
  113. Phillips T.J. Biologic skin substitutes // J. Dermatol. Surg. Oncol. 1993. V. 19. P. 794−800.
  114. Pomahac В., Svensjo Т., Yao F., Brown H., Eriksson E. Tissue engineering of skin//Crit. Rev. Oral. Biol. Med. 1998. V. 9. P. 333−344.
  115. Prockop D.J., Kivirikko K.I. Collagens: molecular biology, diseases, and potentials for therapy//Annu. Rev. Biochem. 1995. V. 64. P. 403−434.
  116. Quirk R. A., Chan W. C., Davies M.C., Tendler S. J.B., Shakesheff К. M. Poly (L-lysine)-GRGDS as a biomimetic surface modifier for poly (lactic acid) // Biomaterials. 2001 V. 22. P. 865−872.
  117. Quirk R.A., Davies M.C., Tendler S.J.B., Shakeshen K.M. Surface engineering of poly (lactic acid) by entrapment of modifying species // Macromolecules. 2000 V. 33. P. 258−60.
  118. Ramos-e-Silva M., Ribeiro de Castro M. New Dressings, Including Tissue-Engineered Living Skin // Clinics in Dermatology. 2002. V. 20. P. 715−723.
  119. Ray J.A., Doddi N., Regula D., Williams J.A., Melveger A. Polydioxanone (PDS), a novel monofilament synthetic absorbable suture Surg. Gynecol. & Obstet. 1981. V. 153. P. 497−507.
  120. Reed A.M., Gilding D.K. Biodegradable polymers for use surgery-poly (glycolic)/polylactic acid) homeo and copolymers 2. In-vitro degradation // Polymer. 1981. V. 22. P. 494- 504
  121. Rheinwald J.G. Serial cultivation of normal human epidermal keratinocytes // Methods in Cell Biology. 1980. V. 21. P. 229 -254.
  122. Richter A. W., Akerblom E. Antibodies against polyethylene glycol produced in animals //Int. Arch. Allergy. Appl. Immunol. 1983. V. 70. P. 124.
  123. Robert M., Dusser I., Muriel M.P., Noel-Hudson M.S., Aubery M., Wepierre J. Barrier function of reconstructed epidermis at the airliquid interface: influence of dermal cells and extracellular components // Skin Pharmacol. 1997.V. 10. P. 247−260.
  124. SaadB., Hirt T.D., Welti M., Uhlschmid G.K., Neuenschwander P., Suter U.W. Development of degradable polyesterurethanes for medical application: in vitro and in vivo evaluations // J. Biomed. Mater. Res. 1997. V. 36. P. 65−74.
  125. Salgado A.J., Figueiredo J.E., Coutinho O.P., Reis R.L. Biological response to pre-mineralized starch based scaffolds for bone tissue engineering // J Mater Sci Mater Med. 2005. V. 16. P. 267−275
  126. Sato N. Phosphorelay-regulated degradation of the yeast Ssklp response regulator by the ubiquitin-proteasome system // Mol. Cell. Biol. 2003. V. 23. P. 66 626 671.
  127. Schwach G., Coudane J., Engel R., Vert M. Ring opening polymerization of D, L-lactide in the presence of zinc metal and zinc lactate // Polymer international 1999. V. 46 P. 177−182
  128. Schwach G., Coudane J., Engel R., Vert M. Influence of polymerization conditions on the hydrolytic degradation poly (D, L-lactide) polymerized in the presence of stannous octoate or zinc metal //Biomaterials. 2002. V. 23. P. 993−1002.
  129. Scotchford C.A., CasconeM.G., Downes S., GiustiP. Osteoblast attachement to bioartificial polymers//Biomaterials. 1998. V. 19. P. 1.
  130. Sefton M.V., Woodhouse K.A. Tissue engineering // J. Cutan. Med. Surg. 1998. V. 3. P. 1−23.
  131. Sethi, K. K- Yannas, I. V- Mudera, V- Eastwood, M- McFarland, C- Brown, R.A. Evidence for sequential utilization of fibronectin, vitronectin, and collagen during fibroblast-mediated collagen contraction // Wound Repair Regen. 2002−10:397−408
  132. Shelton R.M., Rasmussen A.C., Davies J.E. Protein adsorption at the interface between charged polymer substrate and migrating osteoblasts 11 Biomaterials. 1988. V. 9. P. 24−29.
  133. Shin H.-N., Fang J.-F., Chen J.-H. Reduction in experimental peridural adhesion with adhesion with the use of crosslinked hyaluronate /collagen membrane // J. Biomed. Mater. Res. 2004. V.71B. № 2. P. 421−428
  134. Sims G. E., Snape Т. J. A method for the estimation of polyethylene glycol in plasma protein fractions I I Anal. Biochem. 1980. V. 107. P. 60−63.
  135. Singer I.I., Kawka D. W., Scott S., Mumford R.A., Lark, M. W. The fibonectin cell attachment sequence Arg-Gly-Asp-Ser promotes folcal contact formation during early fibroblast attachment and spreading // J. Cell Biol. 1987. V. 104. P. 573−584.
  136. Sittinger M., Lukanoff В., Burmester G.R., Dautzenberg H. Encapsulation of artificial tissues in polyelectrolyte complexes: preliminary studies // Biomaterials. 1996. V. 17. P. 1049−1051.
  137. Sittinger M., Bujia J., Rotter N., Reitzel D., Minuth W.W., Burmester G.R. Tissue engineering and autologous transplant formation: practical approaches with resorbable biomaterials and new cell culture techniques // Biomaterials. 1996. V.17. P. 237−242.
  138. Sodergard A., Stolt M. Properties of lactic acid based polymers and their, correlation with composition // Prog Polym Sci. 2002. V. 27. P. 1123−1163.
  139. Spassky N. Ring-opening polymerization // Rapra Rev Rep. 1995. V. 8 1. P. 129
  140. Strom C.S., Michalopoulos G. Collagen as a substrate for cell growth and differentiation //Methods Enzymology. 1982. V. 82. P. 544 555.
  141. Sudesh K, Abe H., Doi Y. Synthesis, structure and properties of. polyhydroxyalkanoates: biological polyesters // Progr. Polymer Sci. 2000. V. 25. P. 1503 -1555.
  142. Suh H., Hwang Y.S., Lee J.E., Han C.D., Park J. C. Behavior of osteoblasts on a type I atelocollagen grafted ozone oxidized poly (l-lactic acid) membrane // Biomaterials. 2001. V. 22. P. 219.
  143. Szycher M. Biostability of polyurethane elastomers // J. Biomater. Appl., 1988, V. 3. № 2. P.297−402.
  144. Takada Y., Heinler M. E. The primary structure of the VLA-2/collagen receptor alpha 2 subunit (platelet GPIa): homology to other integrins and the presence of a possible collagen-binding domain. // J. Cell Biol. 1989. V. 109. P. 397−407.
  145. Tang Z. G., Black R. A., Curran J. M., Hunt J. A., Rhodes N. P. and Williams D. F. Surface properties and biocompatibility of solvent-cast polyi -caprolactone. films // Biomaterials V. 25, Issue 19, 2004, P. 4741−4748.
  146. Tetsuji Y., Yoshiyuki Т., Yoshiharu K. Surface modification of poly (l-lactic acid) film with bioactive materials by a novel direct alkaline treatment process // Jpn. J. Polym. Sci. Technol. 1998. V. 55. P. 328.
  147. Tirrell M., Kokkoli E., Biesalski M. The role of surface science in bioengineered materials. // Surface Science. 2002. V. 500. P. 61 83.
  148. Ueda M., Ebata K., Kaneda T. In vitro fabrication of bioartiflcial mucosa for reconstruction of oral mucosa: basic research and clinical application // Ann. Plast. Surg. 1991. V. 27. P. 540−549.
  149. Ulbrich R., Golbik R., Schellenberger A. Protein, adsorption and leakage in carrier-enzyme systems //Biotechnol. Bioeng. 1991 V. 37. P. 280
  150. Veis A., George A. Fundamentals of interstitial collagen self-assembly // Extracellular Matrix Assembly and Function. Academic Press: San Diego. 1994. P. 15−45.
  151. Veiling Т., Risteli J., Wennerberg K., Mosher D. F., Johansson S. Polymerization of Type I and III Collagens Is Dependent On Fibronectin and Enhanced By Integrins alpha 11 beta 1 and alpha 2beta 1 // J. Biol. Chem. 2002. V. 277. P. 37 377−37 381.
  152. Vert M., Li S. M., Garreau H. Attempts to map the structure and degradation characteristics of aliphatic polyesters derived from lactic and glycolic acids // J. Biomater. Sci. Polym. Ed. 1994. V. 6. P. 639 649.
  153. Viola J., Lai В., Grad O. Abt. Report on The Emergence of Tissue Engineering as a Research Fields //4.0 Development of the Fields. 1987. 2002 -2003.
  154. Wijdeveld M.G., Grupping E.M., Kuijpers-Jagtman A.M., Maltha J.C. Growth of the maxilla after soft tissue palatal surgery at different ages in beagle dogs: a longitudinal radiographic study // J. Oral. Maxillofac. Surg. 1988. V. 46. P. 204−20.
  155. Wijdeveld M.G., Maltha J.C., Grupping E.M., De Jonge J., Kuijpers- Jagtman A.M. A histological study of tissue response to simulated cleft palate surgery at different ages in beagle dogs // Arch. Oral. Biol. 1991. V. 36. P. 837−843.
  156. D. J., Puranen S., Johnson M. S., Heino J. // Int. J. Biochem. Cell Biol. 2004. V. 36. P. 1405−1410.
  157. Wong W. H., Mooney D. J. Synthesis and properties of biodegradable polymers used as synthetic matrices for tissue engineering // Synthetic Biodegradable Polymer Scaffolds. Boston. 1997. P. 51−84.
  158. К. A., Nadire К. В., Busto P., Tiibo R., McPherson J. M., Wentworth B. M. Collagen and its use in the treatment of full-thickness bum injury // Burns. 1998. V. 24. P. 7−17.
  159. Yang J., Bei J.Z., Wang S.G. Improving cell affinity of poly (d, llactide) film modified by anhydrous ammonia plasma treatment // Polym. Adv. Technol. 2002. V. 13. P. 220−226.
  160. Yang J. M, Chen HL, You J W, Hwang J C. Effect of P (/LA-co-SCL) on the compatibility and crystallization behavior of PCL/PLLA blends// Polym. J. 1997. V. 29. P. 657−668
  161. Yang J., Bei J., Wang S. Design of high-speed data transmission system based on fiber channel // Polym. Adv. Technol. 2002. V. 13. P. 220−224.
  162. Yang J., Bei J.Z., Wang S.G. Improving cell affinity of poly (d, llactide) film modified by anhydrous ammonia plasma treatment // Polym. Adv. Technol. 2002. V. 13. P. 220−226.
  163. Ying P., Yu Y., Jin G., Tao Z. Competitive protein adsorption studied with atomic force microscopy and imaging ellipsometry // Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2003. V. 32. № 1. P. 1−10.
  164. Younes. H., Cohn D. Phase Separation in Poly (ethylene glycol)/Poly (lactic acid) Blends//Eur. Polym. Mater. 1988. V. 24. P. 765−773.
  165. Yui N., Dijkstra P. J., Feijen J. Stereo block copolymers of l- and D-lactides // Makromol Chem. 1990. V. 191. P. 481−488.
  166. Zacchi V., Soranzo C., Cmrtivo R., Radice M., Brim P., Abatangelo G. In vitro engineering of human skin-like tissue // J. Biomed. Mater. Res. 1998. V. 40. P. 187 194.
  167. Zalipsky S. Functionalizedpoly (ethyle ne glycol) for preparation of biological relevant conjugates //Bioconjugate. Chem. 1995. V. 6. P. 150−165.
  168. Zdrahala R.J., Zdrahala I.J. Biomedical applications of polyurethanes: a review of past promises, present realities, and a vibrant future // J Biomater. Appl. 1999. V. 14. P. 67−90.
  169. Zhu H., Ji J., TanQ., Barbosa M. A., Shen J. Surface Engineering of Poly (DL-lactide) via Electrostatic Self-Assembly of Extracellular Matrix-like Molecules // Вiomacromolecules. 2003. V. 4. P. 378−38
  170. Zinn M., Witholt B. Occurrence, synthesis and medical application of bacterial polyhydroxyalkanoate //Adv. Drug. Delivery Rev. 2001. V. 53. P. 5−21.
  171. Zoppi R.A., Contant S., Duek E.A.R., Marques F.R., Wada M.L.F., Nunes S.P. Porous poly (L-lactide) films obtained by immersion precipitation process: morphology, phase separation and culture of VERO cells //Polymer. 1999. V. 40. P. 3275−3289.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!