Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Компоненты серотонинергической системы и их функциональная взаимосвязь в раннем развитии моллюсков и костистых рыб

Диссертация: Компоненты серотонинергической системы и их функциональная взаимосвязь в раннем развитии моллюсков и костистых рыб
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Моллюски являются старейшим объектом исследований физиологической роли моноаминов (Sakharov, 1994), начиная с изучения нейротрансмиггерной функции серотонина (S.-Rozsa and Graul, 1964; Gerschciii’oid and Siefani, 1 >" o?) и заканчивая ролью 5-НТ в процессах обучения и памяти (Squire and Kandel, 2008). Функциональное значение серотонина в регуляции локомоции на ранних стадиях развития зародышей… Читать ещё >

Компоненты серотонинергической системы и их функциональная взаимосвязь в раннем развитии моллюсков и костистых рыб (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. ВВЕДЕНИЕ
    • 1. 1. Актуальность проблемы
    • 1. 2. Цель и задачи исследования
    • 1. 3. Научная новизна работы
    • 1. 4. Научно-практическая ценность
    • 1. 5. Апробация работы
  • ГЛАВА 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Серотонинергическая система
      • 2. 1. 1. Общие сведения о серотонине
      • 2. 1. 2. Синтез серотонина
      • 2. 1. 3. Метаболизм серотонина
        • 2. 1. 3. 1. Метаболизм серотонина у позвоночных животных
        • 2. 1. 3. 2. Метаболизм серотонина у беспозвоночных животных
        • 2. 1. 3. 3. Метаболизм серотонина у моллюсков
        • 2. 1. 3. 4. у-глутамил конъюгация и активность трансглутаминаз
      • 2. 1. 4. Серотониновые транспортеры
        • 2. 1. 4. 1. Мембранный серотониновый транспортер
        • 2. 1. 4. 2. Везикулярный моноаминовый транспортер
      • 2. 1. 5. Рецепторы серотонина
        • 2. 1. 5. 1. Типы рецепторов
        • 2. 1. 5. 2. Сигнальные механизмы
      • 2. 1. 6. Серотонилирование
    • 2. 2. Серотонин в раннем развитии
      • 2. 2. 1. Серотонин в половой систем самок и созревание ооцитов
        • 2. 2. 1. 1. Немертины
        • 2. 2. 1. 2. Полихеты
        • 2. 2. 1. 3. Моллюски
        • 2. 2. 1. 4. Иглокожие
        • 2. 2. 1. 5. Костистые рыбы
        • 2. 2. 1. 6. Амфибии
        • 2. 2. 1. 7. Млекопитающие
      • 2. 2. 2. Серотонин в зародышах на стадиях дробления и гаструляции
        • 2. 2. 2. 1. Изменение уровня серотонина в клетках зародышей в ходе развития
        • 2. 2. 2. 2. Локализация серотонина в зародышах на ранних стадиях развития
        • 2. 2. 2. 3. Роль серотонина в регуляции процессов дробления и гаструляции
        • 2. 2. 2. 3. 1 Первичноротые
        • 2. 2. 2. 3. 2 Вторичноротые
  • ГЛАВА 3. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Метод имму, но цитохимического окрашивания
    • 3. 2. Метод обратной транскрипции и полимеразной цепной реакции
    • 3. 3. Метод Вестерн блот анализа
    • 3. 4. Трансмиссионная электронная миксроскопия
    • 3. 5. In situ гибридизация
    • 3. 6. Статистическая обработка
  • ГЛАВА 4. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ
    • 4. 1. 5-НТ в нормальном развитии
      • 4. 1. 1. Распределение 5-НТ в дробящихся зародышах мидии
      • 4. 1. 2. Распределение 5-НТ в дробящихся зародышах большого прудовика
      • 4. 1. 3. Распределение 5-НТ в дробящихся зародышах данио
      • 4. 1. 4. Обсуждение
    • 4. 2. Синтез и транспорт 5-НТ в клетках дробящихся зародышей
      • 4. 2. 1. Синтез и транспорт 5-НТ в дробящихся зародышах мидии
      • 4. 2. 2. Синтез и транспорт 5-НТ в дробящихся зародышах большого прудовика
      • 4. 2. 3. Выброс 5-НТ из клеток дробящихся зародышей большого прудовика
      • 4. 2. 4. Синтез и транспорт 5-НТ в дробящихся зародышах данио
      • 4. 2. 5. Обсуждение
    • 4. 3. Экспрессия компонентов серотонинергической системы в развитии данио
      • 4. 3. 1. Исследование экспрессии компонентов серотонинергической системы на уровне синтеза мРНК
      • 4. 3. 2. Экспрессия рецептора 5-НТ 1Аа в развитии данио
      • 4. 3. 3. Обсуждение
    • 4. 4. Нарушения развития. вызванные фармакологической модуляцией компонентов серотонинергической системы
      • 4. 4. 1. 5-НТР-индуцированная экзогаструляция у большого прудовика
      • 4. 4. 2. Сезонное изменение чувствительности зародышей большого прудовика к 5-НТР
      • 4. 4. 3. Нарушения развития, вызванные фармакологической модуляцией компонентов серотонинергической системы в дроблении костистых рыб
        • 4. 4. 3. 1. Данио
        • 4. 4. 3. 2. Обыкновенный вьюн
      • 4. 4. 4. Действие хлорпромазина на организацию мембранного трафика в бластомерах вьюна и большого прудовика
        • 4. 4. 4. 1. Большой прудовик
        • 4. 4. 4. 2. Обыкновенный вьюн
      • 4. 4. 43. Обсуждение
      • 4. 4. 5. Обсуждение
    • 4. 5. Анализ функциональных взаимосвязей между компонентами серотонинергической системы в раннем развитии большого прудовика
      • 4. 5. 1. Экспериментальные данные
      • 4. 5. 1. Обсуждение

1.1 Актуальность проблемы. Каждый год выходит огромное количество работ, посвященных регуляторным функциям моноаминов, ферментов их синтеза и деградации, транспортеров и рецепторов. Была показана роль серотонина и дофамина не только как классических нейромедиаторов, но и как факторов, участвующих в регуляции развития (Voronezhskaya et al., 2004; Lauder and Krebs, 2010), а также гуморальных факторов, регулирующих течение самых разных процессов, начиная с ранних стадий органогенеза (Pino et al., 2004; Levin ei al., 2006) и заканчивая нормальными и патологическими процессами во взрослых организмах (Berger et al., 2009).

Одним из наиболее изученных мояоаминов является серотонин (5-гидрокеигрипгамин, 5-hydroxytryptamine, 5-НТ). Известно, что 5-НТ широко распространён среди эукариот: выполняет регуляторные функции у растений (Muich et al., 2001), одноклеточных простейших (McGowan et al., 1985) и примитивных многоклеточных животных, не имеющих нервной системы (Czakei, 2006).

В конце 50-х — начале 60-х годов было впервые обнаружено, что некоторые моноамины и другие низкомолекулярные вещества, являющиеся нейромедиаторами, присутствую! на стадиях раннего развития задолго до появления нервной системы (Numanoi, 1955; Бузников, Манухин, 1961). В дальнейшем было показано, что 5-НТ содержится в ооцитах и дробящихся эмбрионах животых самой разной систематической принадлежности: полихет (Emanuelsson, 1974), яемертиь, (Buznikov et al., 1964) голожаберных моллюсков (Buzrukov ei al., 2003) — головохордовых (Candiani et al., 2001), иглокожих (Buznikov et al., 1964;, амфибий (Fukumoro et al., 2005a), птиц (Emanuelsson, 1988) и млекопитающих (Basu ei al., 2008).

В экспериментальных работах было продемонстрировано, что 5-НТ вовлечён в регуляцию широкого спектра процессов на донервных стадиях развития у самых разных животных. В половой системе взрослых беспозвоночных и позвоночных через серотонинергическую систему происходит модуляция процесса созревания ооцитов (Stricker and Smythe, 2000; Lawrence and Soame, 2009; Buznikov et al., 1993; Cerda et al., 1995) и сперматозоидов (Dufau et al., 1993), а также стимуляция подвижности сперматозоидов при оплодотворении (Fujinoki, 2011). В дроблении у морских ежей (Buznikov et al., 2005) и голожаберных моллюсков (Buznikov et al., 2003) нарушение нормальной работы ранней серотонинергической системы приводит к остановке делений дробления. 5-НТ задействован в установлении право-левой полярности у зародышей амфибий (Fukumoto et al., 2005а, 2005bBeyer et al., 2012). Несмотря на растущее количество экспериментальных фактов, многие аспекты и механизмы функционирования серотонинергической системы на раиних, донервных стадиях развития, остаются практически неисследованными.

Большинство работ, лосзящённых 5-НТ, выполняется преимущественно в рамках парадигмы рецепторкого действия моноаминов. Однако, в последние десятилетия было показано, чю механизмы действия 5-НТ также включают в себя сложные многокомпонентные системы, в которых важную роль играет баланс 5-НТ внутри и снаружи клеток (Waither, 2006; Duerschmied and Bode, 2009). Такие системы могут существовать как в пределах единичных клеток, так и быть разнесены на тканевом, органном и даже организменном уровне (Paulrnariii ti al., 2009), позволяя говорить о 5-НТ как о системном интегративьом модуляторе (Sakharov, 1990). Такие идеи высказывались и раньше для нейральных процессов (Сахаров, 1990; Сахаров, 2012), однако именно сейчас они получают всё больше экспериментальных подтверждений и распространяются также на процессы, реализующиеся вне нервной системы. В этом контексте, развитие является одним из ключевых моментов реализации подобных системных регуляций.

Больше ¿-сето данных в литературе имеется о ранней серотонинергической сисхеме млекопитающих (Burden and Lawrence, 1973; Neiison et al., 2000; ll’kova et al., 2004; Amireaali and Dube, 2005aHinckley et al.,.

2005; Basu et al., 2008). Однако анцестральным для высших многоклеточных животных является развитие зародышей вне материнского организма. Исследование именно таких животных представляется нам ключевым для комплексного понимания роли серотонинергической системы в развитии.

В качестве объектов исследования нами были выбраны удобные для работы и потл горные в биологии развития модели: пресноводный брюхоногий моллюск большой прудовик, костистые рыбы данио и обыкновенный вьюн. Для зти< животных хорошо изучены особенности раннего развития, существу юг методики эффективной работы в условиях лаборатории. В дополнение, кал здин из самых легкодос гу иных объектов среди двустворчатых моллюсков, нами была использована тихоокеанская мидия.

Моллюски являются старейшим объектом исследований физиологической роли моноаминов (Sakharov, 1994), начиная с изучения нейротрансмиггерной функции серотонина (S.-Rozsa and Graul, 1964; Gerschciii’oid and Siefani, 1 >" o?) и заканчивая ролью 5-НТ в процессах обучения и памяти (Squire and Kandel, 2008). Функциональное значение серотонина в регуляции локомоции на ранних стадиях развития зародышей было впервые показано на голожаберных моллюсках (Koshioyants et al., 1961). В последующих работах по изучению функциональной роли 5-НТ на донервных стадии к развишя использовались главным образом также представители голожаберных моллюсков (Бузников, Манухин, 1961). Систематические исследования компонентов серотонинергической системы, в частности, присутствия самого 5-КГ на донервных стдиях развития, функционирования ферментов ею синтеза и транспортеров, у представителей других групп моллюсков г<�е проводились. lia костистых рыбах был выполнен ряд работ о вовлечении 5-НТ в процессы рсинициации мейоза и созревания ооцитов (lwamatsuetal., 1993; Cerda et al., i995, i998- Chauoraj et dl., 2008), было показано участие 5-НТ в нейрои органогенезе (bashamrriaKh, 2007; Airhart er al., 2012). Ещё ранее на основе непрямых методов предположено присутствие 5-НТ в дроблении обыкновенного вьюна (Вигшкоу е1 а1., 1964). Однако данные о присутствии компонентов серотонинергической системы и особенностях их функционирования на стадиях, предшествующих нейруляции, у костистых рыб в современной научной литературе отсутствуют.

ГЛАВА 6. ВЫВОДЫ.

1. 5-НТ присутствует в дробящихся зародышах морского двустворчатого моллюска тихоокеанской мидии, пресноводного брюхоногого моллюска большого прудовика, а также костистой рыбы данио. У моллюсков и данио 5-НТ равномерно распределён между дробящимися бластомерами в пределах зародыша. У данио 5-НТ преимущественно содержится в дробящейся части зародыша, в желтке 5-НТ отсутствует.

2. Все клетки дробящихся зародышей исследованных животных способны синтезировать 5-НТ из непосредственного биохимического предшественника 5-НТР. Возможность синтеза 5-НТ из триптофана у зародышей значительно варьирует, однако у всех исследованных животных подобный синтез представлен на ранних стадиях развития. У данио синтез 5-НТ, локализован в дробящейся части зародыша, но не в желтке.

3. Исследованные животные существенно отличаются по способности к захвату 5-НТ отдельными клетками зародыша. Однако функционирование мембранного транспортера в большей или меньшей степени представлено на ранних стадиях у всех исследованных животных.

4. Молекулярно-биологические данные по экспрессии генов, кодирующих ферменты синтеза, транспорта и деградации 5-НТ, а также рецептора 5-НТ 1Аа подтверждают эксперименты по анализу функциональной активности этих компонентов серотонинергической системы у костистых рыб.

5. Несмотря на активность систем синтеза и транспорта 5-НТ, а также экспрессию генов, кодирующих соответствующие белки, нами не были выявлены значительные специфические нарушения в раннем развитии исследованных костистых рыб, связанные со специфическим модулированием компонентов серотонинергической системы.

6. На основе разработанной модели 5-НТР индуцированной экзогаструляции исследованы взаимосвязи между компонентами серотонинергической системы в раннем развитии большого прудовика. Высказана гипотеза о роли баланса уровня 5-НТ внутри и снаружи клеток. Предложен молекулярный механизм, лежащий в основе долговременных отставленных эффектов 5-НТ. 7. Анализ полученных нами данных о физиологии ранней серотонинергической системы позволяет сделать вывод о модуляторной роли 5-НТ на ранних донервных стадиях развития у исследованных нами моллюсков и костистых рыб.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННЫХ СОКРАЩЕНИЙ.

5-НТ — серотонин, 5-гидрокситриптамин (5-hydroxytryptamine);

5-НТР — 5-гидрокситриптофан (5-hydroxytryptophan), непосредственный биохимический предшественник серотонина;

VMAT — везикулярный моноаминовый транспортер;

SERT — мембранный серотониновый транспортер;

МАО — моноаминоксидаза;

ТРН — триптофангидроксилазасАМР, цАМФ — циклический аденозинмонофосфат;

ЭГ — экзогаструляцияa.u. — arbitrary units, относительные единицы интенсивности флуоресценции.

ГЛАВА 5.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Раннее развитие является важнейшей частью жизненного цикла, во время которого определяются координации между многими важными физиологическими процессами, происходящими в организме в течение всей его дальнейшей жизни. Серотонинергическая система (и ранние донервные нейромедиаторные системы в целом) является одним из возможных кандидатов на роль подобного интегративного регулятора. В этом контексте, безусловно, важным является детальное изучение донервного 5-НТ в развитии разных животных и дальнейший сравнительный анализ, как путь к пониманию интегративных механизмов в развитии.

В рамках данной работы нами были получены данные о присутствии и распределении 5-НТ в дроблении морского двустворчатого моллюска, пресноводного брюхоногого моллюска, а также костистой рыбы. Было проведено исследование функционирования ферментов синтеза 5-НТ, мембранного и внутриклеточного транспортера на последовательных стадиях донервного развития исследованных животных. Сравнительный анализ показал наличие значительного разнообразия как в распределении самого 5-НТ, так и в функционировании ранних систем синтеза и транспорта 5-НТ у разных животных. Подобные детальные исследования ранее не проводились.

Молекулярно-биологическое исследование экспрессии компонентов серотонинергической системы в зародышах костистой рыбы на ранних стадиях развития позволило сделать вывод о сходстве ранней серотонинергической системы рыб с другими позвоночными и беспозвоночными животными. Кроме этого, были обнаружены черты, характерные только для рыб. Эксперименты по фармакологической модуляции серотонинергической системы у костистых рыб показали отсутствие нарушений, сходных с выявленными у других животных при аналогичных воздействиях.

В процессе проведения фармакологического анализа было описано действие амфифильного вещества (хлорпромазина) как активатора эндоцитоза в бластомерах брюхоногого моллюска и костистой рыбы.

У брюхоногих моллюсков была обнаружена чувствительность ранних зародышей к повышению уровня 5-НТ на строго определённых стадиях развития, установлен сезонный характер выявленной чувствительности. На основе обнаруженного феномена была разработана экспериментальная модель 5-НТР индуцированной экзогаструляции, давшая возможность исследовать существующие функциональные взаимосвязи между различными компонентами серотонинергической системы у брюхоногого моллюска. Анализ проведённых на основе этой модели экспериментов позволил выдвинуть гипотезу о роли баланса уровня 5-НТ внутри и снаружи клеток, как регуляторного механизма на ранних стадиях развития.

В сумме, полученные нами данные о физиологии ранней серотонинергической системы позволяют сделать вывод о её модуляторной (т.е., не критической для морфологического или функционального развития частей зародыша, основных органов и их систем) роли на донервных стадиях эмбрионального развития исследованных животных. Нами была предложена и обоснована физиологическая роль 5-НТ, как регулятора долговременных, отсроченных процессов в развитии.

Полученные результаты могут являться основой для дальнейших исследований с целью понимания особенностей функционирования и эволюции ранней донервной серотонинергической системы, её связи с 5-НТ в центральной нервной системе, роли биогенных аминов как интеграторов не только на уровне нервной системы, но и жизненного цикла животных.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. А. Низкомолекулярные регуляторы зародышевого развития// М.: Наука, 1967.
  2. Г. А., Манухин Б. Н. Серотонин-подобные вещества в эмбриогенезе некоторых брюхоногих моллюсков // Журн. общ биол. -1961.- № 22-С. 223−229.
  3. Е. Е., Ивашкин Е. Г. Пионерные нейроны: основа или ограничивающий фактор разнообразия нервных систем Lophotrochozoa? // Онтогенез. 2010. — Т.41 № 6. — С. 403−413.
  4. Е.Е., Хабарова М. Ю., Незлин Л. П. Ранняя активация серотониновых рецепторов вызывает МАРК-опосредованную экзогаструляцию // Клеточные, молекулярные и эволюционные аспекты морфогенеза. 2007. — М., под ред. Л. В. Белоусова, — С. 25−27.
  5. Е.Г., Воронежская Е. Е. Действие хлорпромазина на эндоцитоз в бластомерах зародышей большого прудовика Lymnaea stagnalis L. и вьюна Misgurnus fossilis L. // Биологические мембраны. 2011. — Т.28 № 4. — С. 290−297.
  6. Е.Г., Черданцев В. Г. Морфогенетические последствия частичного удаления цитоплазмы бластомеров в раннем эмбриогенезе вьюна Misgurnus fossilis L. // Онтогенез. 2012. — Т.43 № 3. — С. 172−180.
  7. , A.A. Вьюн Misgurnus fossilis L. / Под ред. Астаурова Б. Л. // Объекты биологии развития: справ.-метод. пособие М.: Наука. — 1975. -С. 308−323.
  8. Малахов В. В, Медведева Л. А. Эмбриональное и раннее личиночное развитие двустворчатого моллюска Mytilus edulis (Mytilida, Mytilidae) // Зоол. Журн. -1985. № 64 — С. 1808−1815.
  9. .Н., Бузников Г. А. Серотонин в эмбриогенезе морских беспозвоночных // Ж. Общ. Биол. 1963. — № 24. — С. 23−29.
  10. Л. Н., Садыкова К. А., Сахарова Н. Ю. Действие антагонистов биогенных моноаминов на развитие ранних зародышей мыши, культивированных in vitro // Ж. Эвол. Биохим. Физиол. 1990. — Т. 26 № 5. — С. 726−732.
  11. , В.Н. Прудовик Lymnaea stagnalis L. / Под ред. Астаурова Б. Л. // Объекты биологии развития: справ.-метод. пособие М.: Наука. — 1975. — С. 53−94.
  12. Никитина J1. А., Мальченко J1.A., Теплиц Н. А., Бузников Г. А. Действие серотонина и его аналогов на созревание ооцитов земноводных in vitro // Онтогенез. 1988. — Т.19 № 5. — С. 499−507.
  13. Д.А. Биологический субстрат генерации поведенческих актов // Ж. Общ. Биол. 2012. — Т. 73 № 5. — С. 334−348.
  14. Д.А. Множественность нейротрансмиттеров: функциональное значение // Журн. Эвол. Биохим. Физиол. 1990. — № 26. -С. 733−740.
  15. Л.И., Пучков В. Ф., Отеллин В. А. Влияние недостатка серотонина на эмбриональное развитие млекопитающих // Онтогенез. -1995. Т. 26 № 5. — С. 350−355.
  16. Abidi S. M. A., Nizami W. A. Monoamine oxidase in amphistomes and its role in worm motility // J Helminthol. 2000. — № 74. — P. 283−8.
  17. G. P. 5-HT and the immune system. // Curr Opin Pharmacol. -2011, — 11(1).-P. 29−33.
  18. Akkoyunlu G., Ustiinel I., Demir R. The distribution of transglutaminase in the rat oocytes and embryos // Theriogenology. 2007. — 68(6). — P. 834−41.
  19. Albert P.R., Sajedi N., Lemonde S., Ghahremani M.H. Constitutive Gi2 dependentactivation of adenylyl cyclase type II by the 5-HT 1A receptor.1.hibition by anxiolytic partial agonists // J Biol Chem. 1999. — № 274. — P. 35 469−35 474.
  20. Alvarado-Alvarez R., Gould M.C., Stephano J.L. Spawning, in vitro Maturation, and Changes in Oocyte Electrophysiology Induced by Serotonin in Tivela stultorum // Biol Bull. 1996. — № 190. — P. 322−328.
  21. Amireault P., Dube F. Intracellular cAMP and calcium signaling by serotonin in mouse cumulus-oocyte complexes // Mol Pharm. 2005b. — 68(6). -P. 1678−1687.
  22. Amireault P., Dube F. Serotonin and its antidepressant-sensitive transport in mouse cumulus-oocyte complexes and early embryos // Biol Reprod. 2005a. — 73(2). — P. 358−365.
  23. Amireault P., Sibon D., Cote F. Life without peripheral serotonin: insights from tryptophan hydroxylase 1 knockout mice reveal the existence of paracrine/autocrine serotonergic networks. // ACS Chem Neurosci. 2013. -4(1).-P. 64−71.
  24. Bader M. Serotonin // Cardiovascular Hormone Systems / Ed. Bader M. Weinheim. Wiley-VCH Verlag. 2008. — P. 211−231.
  25. Baganz N. L., Blakely R. D. A dialogue between the immune system and brain, spoken in the language of serotonin. // ACS Chem Neurosci. 2013. -4(1).-P. 48−63.
  26. Barnes N.M. and Sharp T. A review of central 5-HT receptors and their function // Neuropharmacology. 1999. — № 38. — P. 1083 — 1152.. ,
  27. Barnes N.M., Sharp T., A review of central 5-HT receptors and their function.// Neuropharmacology.- 1999.- V.38, № 8, — P.1083−152.
  28. Bashammakh S. The Developmental Role of the Serotonin System // Berlin Free University. 2007. — PhD thesis. — 127 P.
  29. Basu B., Desai R., Balaji J., Chaerkady R., Sriram V., Maiti S., Panicker M. M. Serotonin in pre-implantation mouse embryos is localized to the mitochondria and can modulate mitochondrial potential // Reproduction. 2008. -135(5).-P. 657−69.
  30. Battelle B. A., Edwards S. C., Kass L" Maresch H.M., Pierce S.K., Wishart A. Identification and functions of octopamine and tyramine conjugates in the Limulus visual system // J Neurochem. 1988. — № 51. — P. 1240−51.
  31. Berger M., Gray J.A., Roth B.L. The expanded biology of serotonin // Annu Rev Med. 2009. — № 60. — P. 355−66.
  32. Bianchi P., Pimentel D.R., Murphy M. P., Colucci W. S., Parini A. A new hypertrophic mechanism of serotonin in cardiac myocytes: receptor-independent ROS generation // FASEB J. 2005. -19(6). -P. 641−3.
  33. Bohlen und Halbach O. and Dermietzel R. Neurotransmitters and Neuromodulators: Handbook of Receptors and Biological Effects // Weinheim. Wiley-VCH Verlag. 2006.
  34. Burden H. W., Lawrence I. E. Jr. Presence of biogenic amines in early rat development//Am J Anat. 1973, — 136(2). — P. 251−257.
  35. Burger, K., Gimpl, G., and Fahrenholz, F., Regulation of receptor functions by cholesterol. // Cell. Mol. Life Sci.- 2000.- № 57, — P. 1577−1592.
  36. Buznikov G. A., Chudakova I. V., Zvezdina N. D. The role of neurohumours in early embryogenesis. I. Serotonin content of developing embryos of sea urchin and loach // J Embr Exp Morph. 1964. — 12(4). — P. 563 573.
  37. Buznikov G. A., Nikitina L. A., Galanov A. Yu., Malchenko L. A., Trubnikova O. B. The control of oocyte maturation in the starfish and amphibians by serotonin and its antagonists // Int J Dev Biol. 1993. — 37(2). — P. 363−364.
  38. Buznikov G. A., Peterson R. E., Nikitina L. A., Bezuglov V. V., Lauder J. M. The pre-nervous serotonergic system of developing sea urchin embryos and larvae: pharmacologic and immunocytochemical evidence // Neurochem Res. -2005.-№ 30.-P. 825−837.
  39. Cadogan A. K., Kendall D. A., Marsden C. A. Serotonin 5-HT1A receptor activation increases cyclicAMP formation in the rat hippocampus in vivo //J Neurochem. 1994. — № 62. — P. 1816−1821.
  40. Cameron R. A., Smith L. C., Britten R. J., Davidson E. H. Ligand-dependent stimulation of introduced mammalian brain receptors alters spicule symmetry and other morphogenetic events in sea urchin embryos // Mech Dev. -1994.-45(1).-P. 31−47.
  41. Candiani S., Augello A., Oliveri D., Passalacqua M., Pennati R., De Bernardi F., Pestarino M. Immunocytochemical localiza-tion of serotonin in embryos, larvae and adults of the lancelet, Branchiostoma floridae // Histochem J.- 2001.-№ 33.- P. 413−420
  42. Cardot J. La monoamine oxidaze chez le Mollusque Helix pomatia: activite sur quatre substrates // Comp Rend Soc Biol Paris. 1966. — № 160. — P. 1264−1268.
  43. Carneiro A. M., Cook E. H., Murphy D. L., Blakely R. D. Interactions between integrin alphallbbeta3 and the serotonin transporter regulate serotonin transport and platelet aggregation in mice and humans // J Clin Invest. 2008. -№ 118, — P. 1544−1552.
  44. Cerda J., Petrino T. R., Greenberg M. J., Wallace R. A. Pharmacology of the serotonergic inhibition of steroid-induced reinitiation of oocyte meiosis in the teleost Fundulus heteroclitus // Mol Reprod Dev. 1997. — № 48. — P. 282−291.
  45. Cerda J., Petrino T. R., Lin Y.-W. P., Wallace R. A. Inhibition of Fundulus heteroclitus oocyte maturation in vitro by serotonin (5-hydroxytryptamine) // J. Exp. Zool. 1995. — № 273. — P. 224−233.
  46. Cerda J., Reich G., Wallace R. A., Selman K. Serotonin inhibition of steroid-induced meiotic maturation in the teleost Fundulus heteroclitus: role of cyclic AMP and protein kinases // Mol Reprod Dev. 1998a. — 49(3). — P. 33 341.
  47. Cerda J., Subhedar N., Reich G., Wallace R. A., Selman K. Oocyte sensitivity to serotonergic regulation during the follicular cycle of the teleost Fundulus heteroclitus // Biol Reprod. 1998b. — 59(1). — P. 53−61.
  48. Chabbi-Achengli Y., Coudert A. E" Callebert J., Geoffroy V., Cote.F., Collet C., de Vernejoul M.C. Decreased osteoclastogenesis in serotonin-deficient mice. // Proc Natl Acad Sci USA.- 2012. 109(7) — P. 2567−72.
  49. Chen J.Y., Brunauer L.S., Chu F.C., Helsel C.M., Gedde M.M., Huestis W.H. Selective amphipathic nature of chlorpromazine binding to plasma membrane bilayers //Biochim. Biophys. Acta. 2003. — 1616(1). — P. 95−105.
  50. Cikos S., Fabian D., Makarevich A. V., Chrenek P., Koppel J. Biogenic monoamines in preimplantation development // Hum Reprod. 2011. — 26(9). -P. 2296−305.
  51. Cohen G., Farooqui R., Kesler N. Parkinson disease: a new link between monoamine oxidase and mitochondrial electron flow // Proc Natl Acad Sci USA.- 1997.-94(10).-P. 4890−4.
  52. Colas J. F., Launay J. M., Kellermann O., Rosay P., Maroteaux L. Drosophila 5-HT2 serotonin receptor: coexpression with fushi-tarazu during segmentation // Proc Natl Acad Sci USA. 1995. — № 92. — P. 5441−5445.
  53. Colas J. F., Launay J. M., Maroteaux L. Maternal and zygotic control of serotonin biosynthesis are both necessary for Drosophila germband extension // Mech Dev. 1999a. — № 87. — P. 67−76.
  54. Colas J. F., Launay J. M., Vonesch J.-L., Hickel P., Maroteaux L. Serotonin synchronizes convergent extension of ectoderm with morphogenetic gastrulation movements in Drosophila // Mech Dev. 1999b. — № 87. — P. 77−91.
  55. Cote F., Fligny C, Bayard E" Launay J. M., Gershon M. D., Mallet J., Vodjdani G. Maternal serotonin is crucial for murine embryonic development // Proc Natl Acad Sci USA. 2007. — 104(1). — P. 329−334.
  56. Czaker R. Serotonin immunoreactivity in a highly enigmatic metazoan phylum, the pre-nervous Dicyemid // Cell Tiss Res. 2006. — 326(3). — P. 843 850.
  57. Dachary-Prigent J., Dufourcq J., Lussan C., Boisseau M. Propranolol, chlorpromazine and platelet membrane: a fluorescence study of the drug-membrane interaction // Thromb. Res. 1979. — 14(1). — P. 15−22.
  58. Deeb S. S. Inhibition of cleavage and hatching of sea urchin embryos by serotonin // J Exp Zool. 1972. — № 181. — P. 79−86.
  59. Dempsie Y. and MacLean M. R. Role of the Serotonin Transporter in Pulmonary Arterial Hypertension // Exp Rev Clin Pharm. 2008. — 1(6). — P. 749−757.
  60. Diaz P. M., Ngai S. N., Costa E. Factors modulating brain serotonin turnover // Advances in Pharmacology. 1968. — 6(B) — P. 75−92.
  61. Dubbles R., Elofsson R. N-Acetylation of arylalkylamines (serotonin and tryptamine) in the crayfish brain // Comp Biochem Physiol C. 1989. — № 93. -P. 307−312.
  62. Dube F., Amireault P. Local serotonergic signaling in mammalian follicles, oocytes and early embryos // Life Sciences. 2007. — № 81. — P. 16 271 637.
  63. Duerschmied D. and Bode C. The role of serotonin in haemostasis // Hamostaseologie. 2009. — 29(4). — P. 356−359.
  64. Dufau M. L., Tinajero J. C., Fabbri A. Corticotropin-releasing factor: an antireproductive hormone of the testis // FASEB J. 1993. — 7(2). — P. 299−307.
  65. Dyachuk V., Odintsova N. Development of the larval muscle system in the mussel Mytilus trossulus (Mollusca, Bivalvia) // Dev Growth. Differ. 2009. -51(2).-P. 69−79.
  66. Elferink J.G.R. Fluorescence studies of membrane interactions of chlorpromazine and chlorimipramine // Biochem. Pharmacol. 1977. — № 26. — P. 511−515.
  67. Emanuelsson H. Autoradiographic localization in polychaete embryos of tritiated mesulergine, a selective antagonist of serotonin receptors that inhibits early polychaete development // Int J Dev Biol. 1992. — 36(2). — P. 293−302.
  68. Emanuelsson H. Localization of serotonin in cleavage embryos of Ophryotrocha labronica // Wilhelm Roux' Archiv. 1974. — № 175. — P. 253−271.
  69. Emanuelsson H., Carlberg M., Lowkvist B. Presence of serotonin in early chick embryos // Cell Differ. 1988. — № 24. — P. 191−199.
  70. Epand, R. M., Maekawa, S., Yip, C. M., and Epand, R. F., Protein-induced formation of cholesterol-rich domains. // Biochemistry.- 2001.- № 40.-P.10 514−10 521.
  71. Erspamer V. and Asero B. Identification of enteramine, specific hormone of enterochromaffin cells, as 5-hydroxytryptamine // Nature. 1952. -№ 169.-P. 800−801.
  72. Fadool D. A., Cobb S. J., Kass-Simon G. Liquid chromatographic procedures for the analysis of compounds in the serotonergic and octopamine pathways of lobster haemolymph // J Chromatogr. 1988. — № 452. — P. 491−501.
  73. Fargin A., Raymond J. R., Regan J. W., Cotecchia S., Lefkowitz R. J., Caron M. G. Effector coupling mechanisms of the cloned 5-HT1A receptor // J Biol Chem. 1989. — № 264. — P. 14 848−14 852.
  74. Feng B., Schwarz H., Jesuthasan S. Furrow-specific endocytosis during cytokinesis of zebrafish blastomeres // Exp. Cell. Res. 2002. — 279(1). — P. 1420.
  75. Fiorica-Howells E" Hen R., Gingrich J., Li Z., Gershon M. D. 5-HT (2A) receptors: location and functional analysis in intestines of wild-type and 5
  76. HT (2A) knockout mice // Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2002. -282(5).-P. 877−893.
  77. Fong P. P., Deguchi R., Kyozuka K. Serotonergic Ligands Induce Spawning but not Oocyte Maturation in the Bivalve Mactra chinensis from Central Japan // Biol Bull. 1996. — 191(1). — P. 27−32.
  78. Fong P. P., Kyozuka K., Abdelghani H., Hardege J. D., Ram J. L. In vivo and in vitro induction of germinal vesicle breakdown in a freshwater bivalve, the zebra mussel Dreissena polymorpha (Pallas) // J Exp Zool. 1994. -269(5). -P. 467- 474.
  79. Fujiwara T., Nakada K., Shirakawa H., and Miyazaki S. Development of inositol trisphosphate-induced calcium release mechanism during maturation of hamster oocytes // Dev Biol. 1993. — № 156. — P. 69−79.
  80. Fukumoto T., Blakely R. D., Levin M. Serotonin transporter function is a novel element of left-right patterning // J Dev Neurosci. 2005a. — № 27. — P. 349−363.
  81. Fukumoto T., Kema I. P., Levin M. Serotonin signaling is a very early step in patterning of the left-right axis in chick and frog embryos // Curr Biol. -2005b. № 15. — P. 794−803.
  82. Gerhardt C. C" Leysen J. E., Planta R. J., Vreugdenhil E., Van Heerikhuizen H. Functional characterisation of a 5-HT2 receptor cDNA cloned from Lymnaea stagnalis. // Eur J Pharmacol. 1996. — 311(2−3). — P. 249−58.
  83. H. M., Stefani E. 5-Hydroxytryptamine receptors and synaptic transmission in molluscan neurons // Nature. 1965. — № 205. — P. 1216−1218.
  84. Gobet I., Durocher Y., Leclerc C., Moreau M. and Guerrier P. Reception and transduction of the serotonin signal responsible for meiosis reinitiation in oocytes of the Japanese clam Ruditapes philippinarum // Dev. Biol. 1994. -№ 164. — P. 540−549.
  85. Goldman J. E., Schwartz J. H. Metabolism of (3H)serotonin in the marine mollusc, Aplysia californica // Brain Res. 1977. — № 136. — P. 77−88.
  86. Grailhe R., Grabtree G. W., Hen R. Human 5-HT (5) receptors: the 5-HT (5A) receptor is functional but the 5-HT (5B) receptor was lost during mammalian evolution // Eur J Pharmacol. 2001. — 418(3). — P. 157−67.
  87. Guerrier P., Durocher Y., Gobet I., Leclerc C., Moreau M. Reception and transduction of the serotonin signal responsible for oocyte meiosis reinitiation in bivalves // Invert Reprod Dev. 1996. — 30(1−3). — P. 3915.
  88. Guerrier P., Ledlerc-David C., Moreau M. Evidence for the involvement of internal calcium stores during serotonin-induced meiosis reinitiation in oocytes of the bivalve mollusc Ruditapes philippinarum // Dev Biol. 1993. — № 159. — P. 474−484.
  89. Guilluy C., Rolli-Derkinderen M" Tharaux P. L., Melino G., Pacaud P., Loirand G. Transglutaminase-dependent RhoA activation and depletion by serotonin in vascular smooth muscle cells // J Biol Chem. 2007. -282(5). — P. 2918−2928.
  90. Guthrie P. B., Neuhoff V., Osborne N. N. Monoamine oxidase activity in Helix pomatia // Experimentia. 1975. — № 31. — P. 775−776.
  91. Hamalainen M., Kohonen J. Studies on the effect of monoamine antagonists on the morphogenesis of the newt // International J Dev Biol. -1989. -№ 33.-P. 157−164.
  92. Hamdan F. F., Ungrin M. D., Abramovitz M., Ribeiro P. Characterization of a novel serotonin receptor from Caenorhabditis elegans: cloning and expression of two splice variants // J Neurochem. 1999. — № 72. -P.1372−1383.
  93. Hayashi S., Murdock L. L., Florey E. Octopamine metabolism in invertebrates (Locusta, Astacus, Helix): evidence for N-acetylation in arthropod tissues // Comp Biochem Physiol C. 1977. — № 58. -P. 183−91.
  94. C. R., Peroutka S. J. 5-Hydroxytryptamine uptake blockers attenuate the 5-hydroxytryptamine-releasing effect of 3,4-methylenedioxymethamphetamine and related agents // Eur J Pharmacol. 1990. — 177(1−2).-P. 95−98.
  95. Hinckley M., Vaccari S., Horner K., Chen R., Conti M. The G-protein-coupled receptors GPR3 and GPR12 are involved in cAMP signaling and maintenance of meiotic arrest in rodent oocytes // Devel Biol. 2005. — 287 (2). -P. 249−261.
  96. Hirai S., Kishimoto T., Kadam A. L., Kanatani H., Koide S.S. Induction of spawning and oocyte maturation by 5-hydroxytryptamine in the surf clam // J Exp Zool. 1988. — № 245. — P. 318−321.
  97. Hiripi L., Salanki J. The role of monoamine oxidase in the inactivation of serotonin in the nervous system and other tissues of Anodonta cygnea L // Biol Tihany. 1971. — № 38. — P. 31−38.
  98. Il’kova G., Rehak P., Vesela J., Cikos S" Fabian D., Czikkova S., Koppel J. Serotonin localization and its functional significance during mouse preimplantation embryo development // Zygote. 2004. — 12(3). — P. 205−213.
  99. Isaac R. E., Muimo R., MacGregor A. N. N-Acetylation of serotonin, octopamine and dopamine by adult Brugia pahangi // Mol Biochem Parasitol. -1990.-№ 43.-P. 193−8.
  100. Ivanenkov V.V., Meshcheryakov V.N., Martynova L.E. Surface polarization in loach eggs and two-cell embryos: correlations between surface relief, endocytosis and cortex contractility // Int. J. Dev. Biol. 1990. — 34(3). -P. 337−349.
  101. Ivashkin E., Khabarova M., Voronezhskaya E. Serotonin transport and synthesis systems in invertebrate early development: functional analysis on Bivalve model // Acta Biologica Hungarica. 2012. — № 63 (Suppl. 2). — P. 341 344.
  102. Iwamatsu T., Toya Y., Sakai N., Terada Y., Nagata R., and Nagahama Y. Effect of 5-hydroxytryptamine on steroidogenesis and oocyte maturation in pre-ovulatory follicles in the medaka Oryzias latipes // Dev Growth Diff. 1993. — № 36. — P. 625−630.
  103. Jeitner T. M., Matson W. R., Folk J. E., Blass J. P., Cooper A. J. L. Increased levels of gamma-glutamylamines in Huntington disease CSF // Journal of Neurochem. 2008. — 106(1). — P. 37−44.
  104. Johansson C., Smedh C., Partonen T., Pekkarinen P., Paunio T., Ekholm J., Peltonen L., Lichtermann D., Palmgren J., Adolfsson R., Schalling M.. Seasonal affective disorder and serotonin-related polymorphisms. // Neurobiol Dis. 2001. — 8(2)-P. 351−7.
  105. Juorio A. V., Killick S. W. Monoamines and their metabolism in some mollusks // Comp Gen Pharmacol. 1972. — № 3. — P. 283−295.
  106. Kaufman W. R., Sloley B. D. Metabolism of dopamine by the ixodid tick, Amblyomma hebraeum: a monoamine oxidase (MAO)-mediated inactivation // Insect Biochem Mol Biol. 1996. — № 26. — P. 101−109.
  107. Kennedy M. B. Products of biogenic amine metabolism in the lobster: sulfate conjugates // J Neurochem. 1978. — № 30. — P. 315−320.
  108. Khan I. A, Thomas P. Seasonal and daily variations in the plasma gonadotropin II response to a LHRH analog and serotonin in Atlantic croaker (Micropogonias undulatus): evidence for mediation by 5-HT2 receptors. // J Exp Zool -1994.-269(6)-P. 531−7.
  109. Kim S. W" Lee Z. W" Lee C" Im K. S" Ha K. S. The role of tissue transglutaminase in the germinal vesicle breakdown of mouse oocytes // Biochem Biophys Res Commun. 2001. — 286(2). — 229−34.
  110. Koshtoyants K. S., Buznikov G. A., Manukhin B. N. The possible role of 5-hydroxytryptamine in the motor activity of embryos of some marine gastropods // Comp. Biochem. Physiol. 1961. — № 3. — P. 20−6.
  111. Krantic S., Dube F., Quirion R., Guerrier P. Pharmacology of the serotonin-induced meiosis reinitiation in Spisula solidissima oocytes // Dev. Biol. — 1991. — № 146.-P. 491198.
  112. Krantic S., Guerrier P., Dube F. Meiosis reinitiation in surf clam oocytes is mediated via a 5-hydroxytryptamine serotonin membrane receptor and a vitellin envelope-associated high affinity binding site // J. Biol. Chem. 1993. — № 268. — P. 7983−7989.
  113. Kyozuka K., Deguchi R., Yoshida N. and Yamashita M. Change in intracellular Ca2+ is not involved in serotonin-induced meiosis reinitiation from the first prophase in oocytes of the marine bivalve Crassostrea gigas // Dev. Biol. 1997. -№ 182.-P. 33−41.
  114. Lanfumey L. and Hamon M. 5-HT1 receptors // Curr Drug Targets CNS Neurol Disord. 2004. — 3(1). — P. 1−10.
  115. Launay J. M., Birraux G., Bondoux D., Callebert J., Choi D.-S., Loric S., Maroteaux L. Ras involvement in signal transduction by the serotonin 5-HT2B receptor //J.Biol. Chem.- 1996. № 271. — P. 3141−3147.
  116. Lawrence A. J. and Soame J. M. The endocrine control of reproduction in Nereidae: a new multi-hormonal model with implications for their functional role in a changing environment // Phil. Trans. R. Soc. B. 2009. — 364(1534). — P. 3363−3376.
  117. Lenglet S., Louiset E., Delarue C., Vaudry H., Contesse V. Involvement of T-type calcium channels in the mechanism of action of 5-HT in rat glomerulosa cells: a novel signaling pathway for the 5-HT7 receptor // Endocr Res. 2002. — № 28. — P. 651−655.
  118. Levin M., Buznikov G. A., Lauder J. M. Of minds and embryos: left-right asymmetry and the serotonergic controls of pre-neural morphogenesis // Dev Neurosci. 2006. — 28(3). — P. 171−185.
  119. Liu Y. L., Suzuki Y. J., Day R. M., Fanburg B. L. Rho kinase-induced nuclear translocation of ERK1/ERK2 in smooth muscle cell mitogenesis caused by serotonin // Circ. Res. 2004. — 95(6). — P. 579−586.
  120. Loric S., Maroteaux L., Kellermann O., Launay J. M. Functionnal serotonin-2B receptors are expressed by a teratocarcinoma-derived cell line during serotoninergic differentiation // Mol. Pharmacol. 1995. — № 47. — P. 458−466.
  121. Lovenberg W., Jequier E., Sjoerdsma A. Tryptophan hydroxylation: measurement in pineal gland, brainstem and carcinoid tumor // Science. 1967. -№ 155.-P. 217−219.
  122. Mair K. M., MacLean M. R., Morecroft I., Dempsie Y., Palmer T. M. Novel interactions between the 5-HT transporter, 5-HT1B receptors and Rho kinase in vivo and in pulmonary fibroblasts // Br J Pharmacol. 2008. -155(4). — P. 606−16.
  123. Malikina K. D., Shishov V. A., Chuvelev D. I., Kudrin V. S., Oleskin A. V. Regulatory role of monoamine neurotransmitters in Saccharomyces cerevisiae cells. // Applied Biochemistry and Microbiology. 2010. — 46(6). — P. 620−625.
  124. Manivet P., Mouillet-Richard S., Callebert J., Nebigil C. G., Maroteaux L" Hosoda S., Kellermann O., Launay J. M. PDZ-dependent activation of nitric-oxide synthases by the serotonin 2B receptor // J Biol Chem. 2000. — № 275. — P. 93 249 331.
  125. Manukhin B. N., Buznikov G. A. A new biological method of quantitative determination of serotonin // Sechenov J Physiol. 1960. — № 46. — P. 1357−1361.
  126. Maricq, A.V., Peterson, A.S., Brake, A.J., et al., Primary structure and functional expression of the 5-HT3 receptor, a serotonin-gated ion channel. // Science. 1991, — № 254.- P. 432−437.
  127. Marin P., Chanrion B., Bockaert J. Quand deux molecules impliquees dans la regulation de l’humeur se rencontrent. Modulation reciproque du transporteur de la serotonine et de la NO-synthase neuronale // Medecine/Sciences. 2007. — № 23. — P. 554−555.
  128. Mayorova T. D., Kach J., Kosevich I. A. Pattern of serotonin-like immunoreactive cells in scyphozoan and hydrozoan planulae and their relation to settlement // Acta Zoologica. Epub: 2013 Feb 14. DOI: 10.1111/azo. 12 023
  129. Mayorova T. D., Kosevich I. A. Serotonin-immunoreactive neural system and contractile system in the hydroid Cladonema (Cnidaria, Hydrozoa) // Invert Neurosci. -Epub: 2013 Mar 21. DOI: 10.1007/s 10 158−013−0152−2
  130. Mayorova T.D., Kosevich I.A., Melekhova O.P. On some features of embryonic development and metamorphosis of Aurelia aurita (Cnidaria, Scyphozoa) // Russ. J. Dev. Biol. 2012. — 43(5). — P. 271−85.
  131. McCaman M. W., Stetzler J., Clark B. Synthesis of y-glutamyldopamine and other peptidoamines in the nervous system of Aplysia californica // J Neurochem. — 1985.-№ 45.-P. 1828−35.
  132. McCaman R. E., Dewhurst S. A. Metabolism of putative transmitters in individual neurons of Aplysia californica. Acetylcholinesterase and catechol-O-methyl transferase // J Neurochem. 1971. — № 18. — P. 1329−1335.
  133. McGowan K., Guerina V., Wicks J., Donowitz M. Secretory hormones of Entamoeba histolytica // Ciba Found Symp. 1985. — № 112. — P. 139−54.
  134. Miyazaki S., Katayama Y., Swann K. Synergistic activation by serotonin and GTP analogue and inhibition by phorbol ester of cyclic Ca2+ rises in hamster eggs // J Physiol. 1990. — 426(1). — P. 209−227.
  135. Morecroft I., Dempsie Y., Bader M., Walther D. J., Kotnik K., Loughlin L., Nilsen M., MacLean M. R. Effect of tryptophan hydroxylase 1 deficiency on the development of hypoxia-induced pulmonary hypertension // Hypertension. 2007. -49(1).-P. 232−236.
  136. Murphy D. L., Lerner A., Rudnick G., Lesch K. P. Serotonin transporter: gene, genetic disorders, and pharmacogenetics // Mol. Interv. 2004. — 4(2). — P. 109−123.
  137. Nagy T., Elekes K. Ultrastructure of neuromuscular contacts in the embryonic pond snail Lymnaea stagnalis L // Acta. Biol. Hung. 2002. — 53(1−2). — P. 125−139.
  138. Nebigil C.G., Launay J.-M., Hickel P., Tournois C., Maroteaux L. 5-Hydroxytryptamine 2B receptor regulates cell-cycle progression: cross talk with tyrosine kinase pathways // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 2000. — 97 (6). — P. 25 912 596.
  139. Neilson L., Andalibi A., Kang D., Coutifaris C., Strauss 3rd J. F., Stanton J. A., Green D. P. Molecular phenotype of the human oocyte by PCR-SAGE // Genomics. 2000. — 63(1). — P. 13−24.
  140. D. L. 5-HT5 receptors //Curr Drug Targets CNS Neurol Disord. -2004. 3(1). — P. 53−68.
  141. Nichols E. D. Hallucinogens // Pharmacology & Therapeutics. 2004. -№ 101.-P. 131- 181.
  142. Nicotra A. A radiochemical evaluation of mitochondrial monoamine oxidase activity towards serotonin in sea urchin eggs and embryos // Int J Invert Reprod. 1982. — № 5. — P. 101−105.
  143. Nicotra A., Pierucci F., Parvez H., Senatori O. Monoamine oxidase expression during development and aging // Neurotoxicology. 2004. — 25(1−2). — P. 155−65.
  144. Nicotra A., Senatori O. Occurrence of type A and type B monoamine oxidase activities in toad egg mitochondria // Comp Biochem Physiol C. 1984. — 78(2). — P. 353−6.
  145. Nicotra A., Senatori O. Some characteristics of mitochondrial monoamine oxidase activity in eggs of carp (Cyprinus carpio) and rainbow trout (Salmo gairdneri) // Comp Biochem Physiol C. 1989. — 92(2). — P. 401−4.
  146. Nicotra A., Serafino A. L., Senatori O. Monoamine oxidase activity in tissues of the starfish Marthasterias glacialis // Comp Biochem Physiol C. 1986. — № 84. — P. 195−197.
  147. Nicotra A., Serafino A., Arizzi M. Deprenyl, an inhibitor of monoamine oxidase B, delays the first two mitotic cycles of sea urchin eggs // Dev Growth Differ. -1989.-№ 31.-P. 17−21.
  148. Nikishin D. A., Kremnyov S. V., Konduktorova V. V., Shmukler Y. B. Expression of serotonergic system components during early Xenopus embryogenesis // Int J Dev Biol. 2012b. — 56(5). — P. 385−91.
  149. Nikishin D.A., Semenova M.N., Shmukler Yu. B. Expression of transmitter receptor genes in early development of sea urchin Paracentrotus lividus // Rus. J. Dev. Biol.-2012a. -43(3). -P. 181−184
  150. Numanoi N. Studies on the fertilization substance. V. Distribution of acetycholine esterase in egg particles of the sea urchin, Hemicentrotus pulcherrhimus // Scient. Papers Coll. Gen. Educ. Univ. Tokyo. 1955. — № 5. — P. 37−41.
  151. Osada M., Nakata A., Matsumoto T., Mori K. Pharmacological characterization of serotonin receptor in the oocyte membrane of bivalve molluscs and its formation during oogenesis // J Exp Zool. 1998. — № 281. -P. 124−131.
  152. Osanai K. and Kuraishi R. Response of oocytes to meiosis-inducing agents in pelecypods // Bull Mar Biol Stn Asamushi, Tohoku Univ. 1988. -№ 18. — P. 45−56.
  153. Osanai K. In vitro induction of germinal vesicle breakdown in oyster oocytes // Bull Mar Biol Stn Asamushi, Tohoku Univ. 1985. — № 18. — P. 1−9.
  154. Osborne N. N., Cottrell G. A. Occurrence of noradrenaline and metabolites of primary catecholamines in the brain and heart of Helix // Comp Gen Pharmacol. -1970.-№ 1.-P. 1−10.
  155. Pani A. K., Anctil M. Quantitative survey of biogenic amines, their precursors and metabolites in the coelenterate Renilla koellikeri // Biogenic Amines. 1994. -№ 10.-P. 161−180.
  156. Pani A. K., Croll R. P. Pharmacological analysis of monoamine synthesis and catabolism in the scallop, Placopecten magellanicus // Gen Pharmacol. 1998. — № 31. — P. 67−73.
  157. Pennati R., Groppelli S., Sotgia C., Candiani S., Pestarino M., De Bernardi F. Serotonin localization in Phallusia mammillata larvae and effects of 5-HT antagonists during larval development // Dev Growth Differ. 2001. — 43(6). — P. 647−56.
  158. Pfannenstiel H.-D., Schlawny A., Hamann T" Muller M" Rhode B" Spiehl D. Dopamine and male/female differentiation in a hermaphroditic polychaete (Ophryotrocha puerlisis) // Prog Clin Biol Res. 1990. — № 342. — P. 219−25.
  159. Piesiewicz A., Kedzierska U., Podobas E., Adamska I., Zuzewicz K., Majewski P. M. Season-dependent postembryonic maturation of the diurnal rhythm of melatonin biosynthesis in the chicken pineal gland. // Chronobiol Int. 2012. — 29(9). -P. 1227−38.
  160. Pintar J. E., Maxwell G. D., Breakefield X. O. Characterization of monoamine oxidase activity during early stages of quail embryogenesis // Int. J. Dev. Neurosc. -1983, — 1(1). -P. 49−57.
  161. Praschak-Rieder N., Willeit M. Imaging of seasonal affective disorder and seasonality effects on serotonin and dopamine function in the human brain. // Curr Top Behav Neurosci. 2012. — №l 1 — P. 149−67.
  162. Ramamoorthy S., Samuvel D. I., Buck E. R., Rudnick G., Jayanthi L. D. Phosphorylation of threonine residue 276 is required for acute regulation of serotonin transporter by cyclic GMP // J Biol Chem. 2007. — № 282. — P. 11 639−11 647.
  163. Rodgers W., Glaser M. Characterization of lipid domains in erythrocyte membranes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1991. — 88(4). — P. 1364−1368.
  164. Rothman R. B., Baumann M. H. Therapeutic and adverse actions of serotonin transporter substrates // Pharmacol Ther. 2002. — 95(1). — P. 73−88.
  165. S.-Rozsa K., Graul C. Is serotonin responsiblefor the stimulative effect of the extracardiac nerve in Helix pomatia? // Ann. Biol. Tihany. 1964. — № 31. -P. 85−96.
  166. Sakharov D. A. Integrative function of serotonin common to distantly related invertebrate animals / Early Brain. // Ed. by Gustafsson M, Reuter M. Abo, Abo Akademi Press, 1990. — P. 73−88.
  167. Sakharov D. A. The long path of the snail // Neurosc. Behav. Physiol. 1994. -24(1).-P. 1−4.
  168. Sakharov D. A. Use of transmitter precursors in gastropod neuroethology / Ed. by Kits KS, Boer HH, Joose J. // Molluscan neurobiology. Proc 3rd Symp Mollusc Neurobiol. Amsterdam, North-Holland. 1991. — P. 236−242.
  169. Saudou F, Hen R. 5-Hydroxytryptamine receptor subtypes in vertebrates and invertebrates.// Neurochem Int.- 1994, — V.25, № 6.- P.503−32.
  170. Schaeffer H. J., Sirotkin A. V. Melatonin and serotonin regulate the release of insulin-like growth factor-I, oxytocin and progesterone by cultured human granulosa cells // Exp Clin Endocrinol Diabetes. 1997. — 105(2). -P. 109−12.
  171. Schaerlinger B., Launay J. M., Vonesch J. L., Maroteaux L. Gain of affinity point mutation in the serotonin receptor gene 5-HT2Dro accelerates germband extension movements during Drosophila gastrulation // Dev Dyn. 2007. — 236(4). — P. 991−999.
  172. Schnaitman C., Erwin V. G., Greenawalt J. W. The submitochondrial localization of monoamine oxidase. An enzymatic marker for the outer membrane of rat liver mitochondria // J Cell Biol. 1967. — 32(3). — P. 719−35.
  173. Senatori O., Nicotra A. Mitochondrial monoamine oxidase activity during preneural developmental stages of Bufo bufo // Comp Biochem Physiol C. 1985. — 81(2).-P. 319−21.
  174. Senatori O., Nicotra A., Scopelliti R. Monoamine oxidase activity in embryos of pike (Esox lucius) // Comp Biochem Physiol C. 1990. — 96(1). — P. 87−90.
  175. Shenker A., Maayani S., Weinstein H., Green J. P. Pharmacological characterization of two 5-hydroxytryptamine receptors coupled to adenylate cyclase in guinea pig hippocampal membranes // Mol Pharmacol. 1987. — № 31. — P. 357−367.
  176. Shilling F., Mandel G., Jaffe L. A. Activation by serotonin of starfish eggs expressing the rat serotonin lc receptor // Cell Regul. 1990. — 1(6). -P. 465−469.
  177. Shishov V. A., Kirovskaya T. A., Kudrin V. S., Oleskin A. V. Amine neuromediators, their precursors, and oxidation products in the culture of Escherichia coli K-12. // Applied Biochemistry and Microbiology. 2009. — 45(5). — P. 494−497.
  178. Sirotkin A. V., Schaeffer H. J. Direct regulation of mammalian reproductive organs by serotonin and melatonin // J Endocrinol. 1997. -154(1). — P. 1−5.
  179. Sloley B. D. Metabolism of Monoamines in Invertebrates: The Relative Importance of Monoamine Oxidase in Different Phyla // NeuroToxicology. 2004. -25(1−2).-P. 175−183.
  180. Sloley B. D. y-Glutamyl conjugation of 5-hydroxytryptamine (serotonin) in the earthworm (Lumbricus terrestris) // Neurochem Res. 1994. — № 19. — P. 217−222.
  181. Sloley B. D., Goldberg J. I. Determination of y-glutamyl conjugates of monoamines by means of high-performance liquid chromatography with electrochemical detection and application to gastropod tissues // J Chromatogr. — 1991.- № 567. P. 49−56.
  182. Sloley B. D., Juorio A. V., Durden D. A. High performance liquid chromatographic analysis of monoamines and their y-glutamyl conjugates in the brain and other tissues of Helix aspersa (Gastropoda) // Cell Mol Neurobiol. 1990. — № 10.- P. 175−92.
  183. Squire L. R., Kandel E. R. Memory: From Mind to Molecules. Roberts & Co. Greenwood Village, 2008. P. 256.
  184. S. A., Smythe T. L. 5-HT causes an increase in cAMP that stimulates, rather than inhibits, oocyte maturation in marine nemertean worms // Development. -2001. № 128. — P. 1415−1427.
  185. Strieker S. A., Smythe T. L. Multiple Triggers of Oocyte Maturation in Nemertean Worms: The Roles of Calcium and Serotonin // J Exp Zool. — 2000. -№ 287.-P. 243−261.
  186. Szasz R., Dale G. L. Thrombospondin and fibrinogen bind serotonin-derivatized proteins on COAT-platelets // Blood. 2002. — 100(8). — P. 2827−2831.
  187. Thomas D. R. and Hagen J. J. 5-HT7 receptors // Curr Drug Targets CNS Neurol Disord. 2004. — 3(1) — P. 81−90.
  188. Tilakaratne N., Friedman E. Genomic responses to 5-HT1A or 5-HT2A/2C receptor activation is differentially regulated in four regions of rat brain // Eur J Pharmacol. 1996. — № 307. — P. 211 -217.
  189. Toneby M. Functional Aspects of 5-Hydroxytryptamine in Early Embryogenesis of the Sea Urchin Paracentrotus lividus // Wilhelm Roux’s Archives. -1977. № 181. — P. 247−259.
  190. Torres G. E., Gainetdinov R. R., Caron M. G. Plasma membrane monoamine transporters: structure, regulation and function // Nat. Rev. Neurosci. — 2003. — 4(1). -P.13−25.
  191. Tournois C., Mutel V., Manivet P., Launay J. M., Kellermann O. Cross-talk between 5-hydroxytryptamine receptors in aserotonergic cell line. Involvement of arachidonic acid metabolism // J Biol Chem. 1998. — 273(28). — P. 17 498−17 503.
  192. Twarog B. M., Page I. C. H. Serotonin content of some mammalian tissues and urine and a method for its determination // Am J Physiol. 1953. —175(1). — P. 157−61.
  193. Vekhova E., Ivashkin E., Yurchenko O., Chaban A., Dyachuk V., Khabarova M., Voronezhskaya E. Modulation of Mytilus trossulus (Bivalvia: Mollusca) larval survival and growth in culture // Acta Biologica Hungarica. — 2012. № 63(Suppl. 2). — P. 354−358.
  194. Vesela J., Rehak P., Mihalik J., Czikkova S., Pokorny J., Koppel J. Expression of serotonin receptors in mouse oocytes and preimplantation embryos // Physiol. Res. -2003. 52(2). — P. 223−228.
  195. Voronezhskaya E. E., Khabarova M. Y., Nezlin L. P. Serotonin overproduction induces exogastrulation in both invertebrate and vertebrate embryos // 30th Gottingen Neurobiology Conference. 2005. — 279B.
  196. Voronezhskaya E., Khabarova M., Ivashkin E. Delayed action of serotonin in molluscan development // Acta Biologica Hungarica. 2012. -№ 63(Suppl. 2). — P. 336−340.
  197. Walentek P., Beyer T., Thumberger T" Schweickert A., Blum M. ATP4a is required for Wnt-dependent Foxjl expression and leftward flow in Xenopus left-right development // Cell Rep. 2012. — 1(5). — P. 516−27.
  198. Wallace J. A. Monoamines in the early chick embryo: demonstration of serotonin synthesis and the regional distribution of serotonin-concentrating cells during morphogenesis // Am J Anat. 1982. — 165(3). — P. 261−76.
  199. Wang C. C" Billett E., Borchert A., Kuhn H., Ufer C. Monoamine oxidases in development. // Cell Mol Life Sci. 2013. — 70(4). — P. 599−630.
  200. Wang L. H., Rothberg K. G., Anderson R. G. Mis-assembly of clathrin lattices on endosomes reveals a regulatory switch for coated pit formation // J. Cell. Biol. 1993. — 123(5). — P. 1107−1117.
  201. Watts S. W., Priestley J. R., Thompson J. M. Serotonylation of vascular proteins important to contraction // PLoS One. 2009. — 4(5):e5682.
  202. Westerfield M. The zebrafish book. A guide for the laboratory use of zebrafish. Eugene. University of Oregon Press. 2007.
  203. Westermann B., Schipp R. Cytological and enzyme-histochemical investigations on the digestive organs of Nautilus pompilius (Cephalopoda, tetrabranchiata) // Cell Tiss Res. 1998. — № 293. — P. 327−336.
  204. M. L., Marsden C. A., Fone K. C. 5-HT6 receptors // Curr Drug Targets CNS Neurol Disord. 2004. — 3(1). — P. 59−79.
  205. Young R. T. Stimulation of spawning in the mussel (Mytilus californianus) // Ecology. 1945. — 26(1). — P. 58−69.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!