Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Использование различных биологически активных веществ для повышения оплодотворяемости телок в условиях крупных механизированных комплексов

Диссертация: Использование различных биологически активных веществ для повышения оплодотворяемости телок в условиях крупных механизированных комплексов
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Пик ЛГ перед овуляцией, воздействуя на гранулезу и внутреннюю теку фолликула, вызывает перестройку стероидогенеза: продукция эстрогенов прекращается, а синтез прогестерона постепенно возрастает (начальный период лютеинизации). Под влиянием прогестерона из клеток стенки фолликула высвобождается протеиназа (коллагена-за), коллагеновый каркас фолликула разрыхляется и стенка фолликула расплавляется… Читать ещё >

Использование различных биологически активных веществ для повышения оплодотворяемости телок в условиях крупных механизированных комплексов (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Нейро-гуморальная регуляция функции воспроизведения у крупного рогатого скота и особенности у телок
  • I. I.I. Роль гипоталамо-гипофизарно-яичниковой системы в регуляции репродуктивной функции
    • 1. 2. Методы гормональной регуляции функции воспроизведения у телок
      • 1. 2. 1. Синхронизация охоты и овуляции при использовании простагландинов
        • 1. 2. 1. 1. Краткая характеристика простагландинов
        • 1. 2. 1. 2. Роль простагландинов в лютеолизе
        • 1. 2. 1. 3. Применение простагландинов для регуляции воспроизводства коров и телок
      • 1. 2. 2. Синхронизация овуляции у крупного рогатого скота гонадотропин-рилизинг гормоном

В «Основных направлениях экономического и социального развития СССР на 1981;1985 года и на период до 1990 года» указано" что животноводство — это ударный фронт развития народного хозяйства, В материалах майского (1982 г") Пленума ЦК КПСС «0 продовольственной программе СССР на период до 1990 года и мерах по ее реализации» ставится задача довести среднегодовое производство мяса (в убойном весе) в одиннадцатой пятилетке до 17−17,5 млн. т, в двенадцатой — до 20−20,5 млн. т, а молока — соответственно до 97−99 и 104−106 млн. т (I).

Осуществление этих задач требует перехода к интенсивным, промышленным методам ведения животноводства. В связи с организацией крупных промышленных животноводческих хозяйств, что приводит к существенному изменению условий существования животных, возникает необходимость разработки специализированных усовершенствованных систем кормления и содержания скота* ЕЫесте с тем, специфика организации производственных процессов на промышленных животноводческих комплексах требует разработки также и новых форм организации воспроизводства, обеспечивающих высокий выход полноценного молодняка.

Происходящие в условиях промышленных комплексов изменения эволюционно выработанных и практически апробированных приемов воспроизводства часто приводят к ослаблению или даже угнетению поло-, вых процессов, в частности — проявлений течки (охоты). Это затрудняет выявление животных для проведения искусственного осеменения, удлиняет период непродуктивного содержания их. Неуправляемая разновременность прихода в охоту коров или телок не позволяет проводать планомерные мероприятия по осеменению, а затем отелу, формированию молочных стад и др. Для четкой организации воспроизведет-ва на комплексах требуется осуществление календарного планирования половых процессов в соответствии с намечаемыми производственными планами, по разработанным циклограммам. Насущной задачей для плановой организации всех звеньев воспроизводительных циклов, для разработки календарных планов осеменения является управление исходным звеном: наступлением охоты и овуляции, определяющих сроки оплодотворения животных.

Однако создание четкого ритма воспроизводства невозможно без направленной регуляции функций размножения. Реальное решение такой задачи на современном этапе развития науки возможно только посредством применения гормональных методов воздействия на половые функции. Опыт отечественной и зарубежной зоотехнии показывает, что гормональные препараты являются общепризнанным фактором интенсификации размножения животных и регулирования его отдельных этапов.

Начатая в нашей стране разработка гормональных методов управления половыми процессами у сельскохозяйственных животных (М.М.За-вадовский, Б. М. Завадовский, А. Л. Падучева, А. И. Лопырин, Ю.Д.Клин-ский, Ю. Н. Шамберев, М. И. Прокофьев, Н. В. Логинова и др.) получила плодотворное развитие во многих странах. Углубленные исследования нейроэндокринных регуляций половых процессов, достижения в изучении химического строения гормонов и разработка их промышленных синтезов позволила в основном решить эту важную задачу управления половыми функциями самок, синхронного вызывания охоты и овуляции применением различных гормонов и их синтетических аналогов, гор-моноподобных соединений — гормоноидов, и различных стимуляторов.

— б эндокринных желез.

Тем не менее, несмотря на то, что разработка способов регулирования половых функций гормональными методами насчитывает более чем полувековую историю, решены еще не все проблемы в этой области. Необходимо добиваться более высокого оплодотворения у животных, подвергающихся гормональным воздействиям в целях синхронизации охоты и овуляции, упрощения схем практического применения гормональных препаратов в условиях крупных механизированных хозяйств.

Болыцую остроту имеет решение задачи организации календарного планирования осеменения также у телок. Опыт работы комплексов по выращиванию нетелей показывает, что у телок могут наблюдаться нарушения половых функций, такие как задержка половой зрелости, наступления регулярной половой цикличности, ослабленная выраженность половых рефлексов, иногда — недостаточное развитие органов воспроизводства. Все это значительно снижает показатели оплодот-воряемости, а тем самым — выполнение плана перечади нетелей в репродукторы, удорожает затраты на содержание животных, наносит значительный материальный ущерб.

Учитывая большую важность интенсификации воспроизводства и огромный экономический ущерб, вызываемый неуправляемым, непланомерным проведением искусственного осеменения, что зависит от вариабельности сроков прихода телок в охоту, мы в своей работе поставили задачу осуществления полноценной синхронизации процессов овуляции и охоты для реального составления циклограмм осеменения, оплодотворения и сдачи нетелей в репродукторы посредством неиспытанных или мало испытанных гормональных препаратов отечественного производства, таких как новые препараты проетагландинов, гонадотропин-рилиэингов и их аналогов.

Для решения этой задачи мы изучали:

1. Целесообразность применения простагландинов для синхронизации половых циклов у телок с ослабленным проявлением охоты, с длительным анэструсом для преодоления этих явлений и синхронного вызывания охоты и овуляции у нормально циклирующих телок.

2. Влияние многократного применения простагландинов на последующую воспроизводительную функцию телок.

3. Целесообразность применения простагландинов во время осеменения для ускорения овуляции и повышения оплодотворяемости.

4. Влияние применяемых препаратов на беременность и развитие плода.

5. Выявляли оптимальные дозы для повышения оплодотворяемости у телок применением нового отечественного препарата суперрилизинг гормона.

6. Устанавливали оптимальные дозы применения пироглутамино-вой кислоты для улучшения оплодотворения телок и апробировали их эффективность.

7. С целью установления механизма действия определяли влияние суперрилизинг гормона на секрецию лютеинизирующего гормона применением радиоиммунологического метода.

В итоге работ, на основании опытов, проводившихся на комплексе по направленному выращиванию нетелей «Кутьино» о/х «Щапово» Подольского района Московской области, представлена схема применения гормональных препаратов для улучшения оплодотворяемости телок и экономическая эффективность их использования.

I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

I.I. Нейро-гуморальная регуляция функции воспроизведения у крупного рогатого скота и особенности у телок.

I.I.I. Роль гипоталамо-гипофизарно-яичниковой системы в регуляции репродуктивной функции.

Функция воспроизведения сельскохозяйственных животных регулируется сложной нейро-гуморальной системой.

Основными звеньями в этой системе являются гипоталамус, гипофиз, яичники и матка.

Проблема активного регулирования процесса воспроизведения у самок сельскохозяйственных животных невозможна без изучения сложного нейро-гормонального механизма, контролирующего воспроизводительную функцию.

Еце в 1932 г. было высказано предположение (153), что половые гормоны могут регулировать гонадотропную функцию гипофиза через посредство гипотетического «нервного полового центра» .

До начала 50-х годов ведущую роль в регуляции функции размножения придавали гипофизу (69). В дальнейшем было установлено (13, 3, 4), что главным центром, регулирующим половые функции у животных, является гипоталамус.

Гипоталамус (подбугровая область, подбугорье) — это область головного мозга, расположенная под зрительным бугром, и образован стенками и дном третьего мозгового желудочка. Вниз от гипоталамуса отходит воротная система кровеносных сосудов, через которую гипоталамус связан с передней долей гипофиза (аденогипофизом). С задней долей (нейрогипофизом) он связан нервными проводниками (120), которые образуют гипоталамо-гипофизарный пучок нервных сплетений*.

Гипоталамус регулирует сложные акты поведения и воспроизводства, управляет ключевыми функциональными физиологическими системами. Широта ареала влияния гипоталамуса реализуется через воздействие на подчиненные центры регуляции последовательно более и более низшего порядка, по типу субординации.

Гипоталамус регулирует физиологические процессы на основе связи с различными отделами нервной системы по нервным проводникам, но выполняет также функции, свойственные гормональным железам.

Вещества, выделенные из тканей гипоталамуса (192, 153), относятся к нейросекреторному типу (90). Нервными проводниками гипоталамус связан с другими отделами центральной нервной системы — с лимбической системой" ретикулярной формацией, с корой головного мозга. Через гипофиз гипоталамус связан со всеми эндокринными железами. В него поступают импульсы и из внешней среды, и от внутренних органов. В нем происходит преобразование нервных импульсов в гормональные.

Свои команды — нейрогормоны — он посылает в гипофиз или же, минуя его, непосредственно в органы и ткани. Нейросекреты получили название освобождающих факторов factors В гипоталамусе также вырабатываются вещества, угнетающие выделение гормонов аденогипофиза, которые были названы УлА/^и/я^ feu? -tors №), (4).

Через нейро-капилярные синапсы нейросекреты поступают в кровь и достигают клеток передней доли гипофиза, стимулируя их функциив результате этого освобождаются гонадотропные гормоны (239, 56, И, 10, 31, 5).

Превалирование стимулирующих или тормозящих действий регулируется на основе обратных связей (± взаимодействия М.М.Завадовско-го, 27).

Гипофиз, или нижний мозговой придаток, расположен в турецком седле основной кости черепа, он полой ножкой (воронкой) связан с мозгом. Гипофиз с гипоталакцгсом и эпифизом объединяются в единую нейроэндокринную гипоталамо-гипофиэо-эпифизарную систему, где сосредоточен синтез большинства важнейших белковых гормонов.

В гипофизе различает три доли: переднюю, среднюю и заднюювыделяют также бугровую, туберальную часть, связывающую его с гипоталамусом.

Передняя, бугровая и средняя доли образуют основную массу железы — аденогипофиз. Нейрогипофиз развивается из зачатков нервной системы, он формируется задней долей гипофиза, воронкой и срединным возвышением серого бугра.

Гипофиз занимает командное положение по отношению ко многим железа^, в нем синтезируются тропные гормоны — «тропины», регулирующие функции других эндокринных органов.

В аденогипофизе различают три основных типа клеток: ацидофи-лы, базофилы и хромофобы. Ацидофилов (или альфа-клеток) находят около 60%, их секреторные гранулы синтезируют протеиновые гормоны — самототропин (СТГ) и пролактин (ЛГГ). Базофилы составляют 30 $, они синтезируют гонадотропины (ЗзСГ, ЛГ) и тиротропин (ТТГ). Хромофобы (5−10%) — небольшие клетки, не содержащие гранул, в них синтезируется кортикотропин (АКГГ).

В синтезе одного гормона могут участвовать разные клетки, что повышает адаптивные возможности животного. Средняя доля гипофиза синтезирует меланотропин, у млекопитающих он действует на кожный покров, на сальные железы, стимулирует секрецию сомато-тропина.

В нейрогипофизе депонируются нейрогормоны — вазопрессин и окситоцин, которые синтезируются в крупноклеточных ядрах гипоталамуса.

Интенсивность функции гипофиза регулируется сложным взаимодействием стимулирующих (или тормозящих) факторов гипоталамуса и сигналами, поступающими от других эндокринных желез по типу прямых и обратных связей и реализуемых в конкретных условиях существования животного и его генетической природы.

В 1960 г. Лв Са-гт $.Меь. а2. (192) впервые установили, что экстракты гипоталамуса имеют ЛГ-рилизинговую активность, то только в 1971 г. была расшифрована декапептидная структура гонадотро-пин-рилизинг гормона и осуществлен его молекулярный синтез (ИЗ, 194). Вместе с тем, было показано, что при включении гипоталами-ческих влияний секреция гормонов в гипофизе прекращается неполностью, она продолжается, но на низком «базальтом» уровне (базаль-ная секреция)•.

Роль гипотадамических влияний заключается в усилении или ослаблении секреции гормонов в разные фазы полового цикла.

Для ЛГ-гормона гипофиза установлено наличие обоих факторов {ЯГ, Ж), для К ГЯГ И для ЛГГ .

Секреция рилизинг-гормонов регулируется на основе положительных и отрицательных обратных связей, действующих на гипоталамо-гипофизарном уровне. Известны три типа подобных связей (53). Все они носят условные названия — «длинная обратная связь», при помощи которой вьщеление Гн-РГ модулируется гормонами периферических половых железтак называемая короткая обратная связь, когда секреция Гн-РГ зависит от количества гонадотропинов и взаимоотношения меящу гипоталамичесюши факторами и гонадотропными гормонами, П. А. Вундер (12) назвал ультракороткой обратной связью.

Большое значение в регуляциях половых функций придается моноаминам (дофамин, норадреналин, серотонин) и простаглавдинам (87). Одни авторы считают активаторами гипофизарно-гонадной системы дофамин (242), и другие — норадреналин (85, 162). В. Н. Бабичев и Е. И. Ддамская (6) предполагают, что в активизации гонадо-тропной функции гипоталамуса участвуют и норадреналин и дофамин, причем запускающим устройством считают норадреналин преоптической области гипоталамуса. Содержание моноаминов в различных областях гипоталамуса изменяется в ходе астрального цикла, что подчеркивает их влияние на гонадотропную активность гипоталамуса.

Первичное действие гипоталамических рилизинг-гормонов связано с изменением проницаемости клеточных мембран (193). Предполагается, что гормон первоначально связывается с мембраной клетки, изменяет ее полярность, в результате чего повышается проницаемость в клетку ионов кальция, последний достигает секреторных гранул и способствует освобождению их содержимого.

Ряд авторов (163) основное значение придают аденилциклазной системе. Гн-РГ вызывает увеличение в клетках гипофиза 3,5-адено-зин монофосфата (цАМФ). Доказательством участия аденилциклазной системы в роли медиаторов действия регуляторных гипоталамических гормонов в передней доле гипофиза может служить установление изменения активности этого фермента иди концентрации цАМФ в адено-гипофизе под влиянием нейрогормонов. Добавление синтетического лютеинизирующего гормона к ткани аденогипофиза крыс dn tro приводит к параллельному увеличению содержания цАМШ и освобождению как ЛГ, так и $СГ (182),.

Работами ряда авторов показано, что при нормальных физиологических условиях в гипофизе телок содержится $СГ в несколько раз меньше, чем в гипофизе других сельскохозяйственных животных, а содержание ЛГ выше (132, 143, 213, 211).

У животных в состоянии эструса обнаруживается резкое снижение содержания ЗЮГ и ЛГ в гипофизе (217).

В нейро-гуморальной регуляции функции воспроизведения у сельскохозяйственных животных участвуют, кроме гонадотропных гормонов гипоталамо-гипофизарной системы, также гонадальные или овариаль-ные гормоны, выделяемые яичниками.

Яичники у млекопитающих — парный орган. Яичники не выходят из тазовой полости. Они представляют собой сложные органы, остов которых состоит из соединительной ткани, а паренхима морфологически и функционально подразделяется на корково-фолликулярную зону, состоящую из массы фолликулов и желтых тел, и мозгово-сосудистую зону с большим количеством сосудов и нервов, осуществляющих питание и иннервацию яичника.

Яичники выполняют двойную роль: гаметогенную, образуя женские половые клетки, и эндокринную. Они синтезируют эстрогены, прогестерон. Основные эстрогены — эстрадиол, эстрон и эстриол. У коров (цит. по А. Л. Падучевой, 52) 50−65% эстрогенов составляет эстрадиол, 30−40% - эстрон, количество эстриола незначительно.

6 основе химического строения натуральных эстрогенов 18 атомов углерода, они относятся к 18-стероидам. Местом образования эстрогенов в яичнике являются ь&есси Спьета., клетки гранулезного слоя, интерстициальные клетки и звездчатые клетки желтого тела. Кроме того, эстрогены синтезируются также в коре надпочечников и в плаценте (у млекопитающих). Синтез эстрогенов в плаценте с увеличением срока беременности возрастает.

Основное биологическое значение эстрогенов заключается в том, что действуя, главным образом, на матку и влагалище, делает их способными к половому акту и подготавливают почву для оплодотворения (175).

Наступление половой зрелости самок характеризуется установлением половых циклов, сложных нейрогуморальных цепных рефлекторных процессов, в реализации которых участвуют все системы организма (67),.

Половой цикл у самок представляет собой периодическую смену процессов, происходящих как в яичнике, так и в проводящих подовых путях и обеспечивающих условия для размножения особей. Основные внешние проявления половой цикличности выражены в периодических наступлениях полового возбуждения и стремлении к спариванию, а в яичниках — в наступающих овуляциях. Специфические изменения наступают и в органах воспроизведения, в гормональном фоне животного, в его метаболизме и других жизненных процессах.

Период времени от одной течки (охоты) до следующей, или меж-овуляционный интервал, называют половым циклом. По данным А. П. Сысоева и Р. Г. Богачевой (68), ритмические половые циклы у телок устанавливаются в возрасте 10−11,5 месяцев, после четырех-семи нерегулярных циклов.

Половой цикл у крупного рогатого скота обычно составляет 2021 день, но может колебаться от 18 до 24 дней (219), а по сообщению В. К. Милованова (45) — от 12 до 28 дней и даже достигать 44 дней. Продолжительность его специфична для каздого вида животных и зависит от многих внутренних и внешних факторов (47, 71).

У крупного рогатого скота половой цикл подразделяется на две фазы: фолликулярную (эстрогенную) и лютеальную (прогестагеновую).

Функция яичников находится под контролем двух гонадотропных гормонов, выделяемых в кровь аденогипофизом — $СГ и ЛГ.

Взаимоотношения между гипофизом и половыми железами впервые были сформулированы М. М. Завадовским (27) в его теории «плюс-минус взаимодействия» .

Внешним проявлением фолликулярной фазы является течка (эструе), которая включает следующие компоненты: а) сосудистый (явления гиперемии и отека наружных и внутренних половых органов) — б) миомоторный (повышение ригидности матки, усиление сократительной активности мышечного аппарата полового тракта, расслабление сфинктера шейки матки*- в) секреторный (обильная секреция и выделение наружу слизи) — г) целлюлярный (усиление размножения камбиальных клеток репродуктивного тракта).

У половозрелой телки с нормальной половой функцией в яичниках всегда имеются фолликулы на разных стадиях своего развития. Различают несколько стадий развития фолликулов: I) примордиальные фолликулы, когда ооцит окружен одним слоем тонких плоских гранулезных клеток- '?) первичные растущие фолликулы, в которых ооцит более крупного размера и окружен первоначально несколькими слоями гранулезных клеток, а затем из окружающей соединительной ткани образуется тека фолликула- 3) везикулярные фолликулы разных размеров, имеющие полость- 4) преовуляторные фолликулы.

Созревание везикулярных фолликулов и образование в них эстрогенов находится под контролем гонадотропных гормонов. Быстрый преовуляторный рост обусловлен увеличением концентрации $СГ и ЛГ в крови, а сам процесс овуляции обусловлен высоким уровнем в крови ЛГ. Одни авторы считают, что для вызывания овуляции необходимо действие как ЛГ, так и ФСГ (181), а другие, что гормоном, ответственным за овуляцию, является только ЛГ (255).

А также получены данные, что в процессе овуляции большую роль играют простагландины. Уровень ПГР^^ в фолликулярной жидкости резко возрастает перед овуляцией (78, 183),.

Пик ЛГ перед овуляцией, воздействуя на гранулезу и внутреннюю теку фолликула, вызывает перестройку стероидогенеза: продукция эстрогенов прекращается, а синтез прогестерона постепенно возрастает (начальный период лютеинизации). Под влиянием прогестерона из клеток стенки фолликула высвобождается протеиназа (коллагена-за), коллагеновый каркас фолликула разрыхляется и стенка фолликула расплавляется в месте наименьшего сопротивления. Некоторые авторы предполагают (125), что овуляция происходит в результате местной физиологической воспалительной реакции в зрелых фолликулах, где центральная роль отводится простагландинам, как медиаторам воспалительного процесса, приводящим к овуляции.

У созревшего фолликула, кроме овуляции, может быть еще два исхода: I) атрезия- 2) лютеинизация. Атрезия фолликула сопровождается сначала гибелью яйцеклетки, затем фолликулярный эпителий и место фолликула замещаются тканью яичника. Из более чем 70 тысяч фолликулов у коровы за всю жизнь овулируют не более 50 фолликулов. При лютеинизации, без овуляции, происходит кровоизлияние в полость нелопнувшего фолликула, и он замещается лютеиновыми клетками, образуя ложное желтое тело.

После разрыва фолликулов на их месте из клеток гранулезы, а также и теки развивается истинное желтое тело (122, 185).

У коров и телок желтое тело интенсивно развивается до 7-го дня полового цикла, к этому времени в основном завершается формирование желтого тела, а более медленный рост продолжается еще некоторое время (128)• Гормоном желтого тела, который вырабатывается в лютеиновую фазу, является прогестерон. Одни авторы считают (232), что лютеинизация клеток теки и гранулезы начинается еще в фолликулярную фазу и что в этот период происходит образование прогестерона, другие авторы полагают (185), что в клетках гранулезы прогестагены начинают вырабатываться еще до начала их лютеи-низации.

Концентрация прогестерона в крови достигает максимума на 1016-й день после овуляции (19, 82).

Основной функцией прогестерона в организме является обеспечение имплантации бластоцисты и последующего развития зародыша (33, 29).

В нейрогуморальной регуляции процессов размножения участвует также и матка.

Известно, что раздражение матки вызывает укорочение или удлинение цикла, в зависимости от стадии цикла в момент нанесения раздражения.

Так, JicLnse? (145) отмечает, что раздражение матки в ранний критический период эстрального цикла (период формирования лю-теиновой ткани) может ускорить рассасывание желтого тела. Напротив, раздражение матки во второй критический период (13−15 дни цикла) может вызвать персистенцию желтого тела и удлинение полового цикла.

В опытах с помещением инородного предмета в рог матки (137), прилегающий к яичнику с желтым телом, сокращает длину течкового цикла у овец, но этого не происходит, если инородное тело помещают в противоположный рог. Одностороннее удаление рога матки увеличивает время существования желтого тела в смежном яичнике, но не оказывает влияния на противолежащий яичник.

Применяя Iили 2-кратный ручной массаж матки и яичников, у 24 коров в сроки более 60 дней после отела В. В. Жаркин и Ю. А. Горбунов (23) добились сокращения длительности периода от отела до первой охоты на 95 дн. Эти опыты свидетельствуют о наличии в матке лютеолитического фактора, оказывающего свое влияние на функцию желтого тела гуморальным путем.

Маточными лютеолизинами являются простаглавдины, о чем первым предположил За^ксос I З. С* (80). Более подробно о лютеолити-ческои действии простагландинов будет сказано в следующем разделе.

Из литературы следует, что матка участвует в регуляции полового цикла как вследствие вццеления эндометрием специфических лю-теолитических факторов, так и рефлекторно — через центральную нервную систему.

В данном разделе кратко изложены все 4 ступени (гипоталамус, гипофиз, яичники, матка), из которых состоит сложная иерархическая нейро-гуморальная система. Функцию воспроизведения сельскохозяйственных животных можно регулировать, воздействуя системой приемов на отдельные звенья нейро-гуморальной системы.

ВЫВОДЫ.

1. Оптимальными дозами нового отечественного суперрилизинг гормона для синхронизации овуляции у телок случного возраста (впервые осеменяемых) являются 5 и 10 мкг, повышая оплодотворяемость на 24−32% (Р ^ 0,05) — для многократно перегуливающих — дозы в 5, 10 и 25 мкг, которые дают повышение оплодотворяемости на 18−28%.

Р ^ 0,05).

2. Инъекция суперрилизинг гормона в дозе 5, 10 мкг телкам в середине лютеиновой фазы вызывает повышение секреции ЛГ через 20 минут, доза препарата в 25 мкг вызывает постепенное повышение уровня ЛГ в крови, с пиком ко второму часу после введения.

3. Внутримышечная инъекция телкам Гн-РГ «Берлин-Хеми» в дозе 300 мкг в зимне-весенний период повышает оплодотворяемость на 15−20% (Р ^ 0,05), но в летний период указанная дозировка менее эффективна.

4. Инъекция пироглутаминовой кислоты в дозе I мг перед осеменением повышает оплодотворяемость от 1-го осеменения на 13,4%.

5. Внутримышечное введение ПГР^^ и ПГЕ^- телкам перед осеменением повышает оплодотворяемость от 1-го осеменения на 16,7−20%, за два цикла — на 20−27% (Р^ 0,05).

6. Инъекция ПГР<>^ телкам с длительным анэструсом стимулирует приход в охоту у 61−100% животных, в зависимости от функционального состояния яичников. За 16 дней (за две обработки) стельность наступает у 65% телок.

7. Многократные инъекции (8 раз) ГШР^ ^ не оказывают отрицательного действия на дальнейшую воспроизводительную функцию телок.

8. Смесь изомеров простагландина 2/3 обладает таким же лютеолитическим действием, как и высокоочищенный проетагландин.

9. Использование простагландинов, синтетических аналогов Гн-РГ и пироглутаминовой кислоты не оказывает отрицательного влияния на беременность и развитие плода,.

10. Синхронизация охоты простатландинами, за счет сокращения срока пребывания телок на комплексе и более раннего перевода стельных животных в молочное стадо, дает чистой прибыли 38,99 рубля в расчете на I обработанную голову.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Для широкой производственной проверки в специализированных промышленных комплексах и на крупных фермах по выращиванию нетелей, для рационализации воспроизводительных процессов, рекомендуется синхронизировать охоту и овуляцию у телок применением следующих гормональных препаратов:

1. Внутримышечной инъекцией перед осеменением суперрилизинг гормона: впервые осеменяемым телкам — в дозах 5, 10 мкг, многократно перегуливающим — в дозах 5, 10 и 25 мкг.

2. Внутримышечной инъекцией во время осеменения ПП^^ в дозе 20 мг или ПГЕ| - допростон-В в дозе 25 мг. Телкам с длительным анзструсом с целью повышения оплодотворяемости в зимне-стойловый период следует инъецировать ПП^^ двукратно, с интервалом в II дней.

3. Инъекцией пироглутаминовой кислоты в дозе I мг перед осеменением.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Продовольственная программа СССР на период до 1990 года и мерыпо ее реализации. Материалы майского Пленума ЦК КПСС Х982 года. М., Политиздат, 1982, с. 34−35.
  2. АЛЕКСЕЕНКО А. Н. Применение простагландинов для регуляции воспроизводительной функции у овец. Дисс. канд. биол. наук, ВИЖ, Дубровицы, 1982.
  3. АЛЕШИН Б.В. О значении гипоталамуса в регуляции передней долигипофиза. Успехи современной биологии, 1960, т. 49, Л" I, с. 115−130.
  4. АЛЕШИН Б. В. Гистофизиология гипоталамо-гипофизарной системы.
  5. М., «Медицина», 1971, 440 с.
  6. АЛЕШИН Б. В. Изменение гипоталамо-гипофизарных отношений в эволюции и онтогенезе. Киев, «Наукова Думка», 1972, с. 342.
  7. БАБИЧЕВ В.Н., АДАМСКАЯ Е. И. Изменение содержания моноаминов вразличных областях гипоталамуса в зависимости от стадии эстрального цикла. Проблемы эндокринологии, 1976, № 4, т. 22, с. 44−49.
  8. БЕРНАЦКИЙ В. Г. Феномен «обратного толчка» гонадотропных гормонов. Научные труды НИИ пушного звероводства и кролиководства. 1980, 21, с. 98−101.
  9. ВАРНАВСКИЙ А. Н. Влияние синтетических простагландинов в замороженном семени баранов на оплодотворяемость овцематок.
  10. Животноводство, 1981, № 9, с. 51−53.
  11. ВОЙТКЕВИЧ A.A. Зависимость гонадотропной функции гипофиза отнейросекреции ядер подбугорья. Проблемы эндокринологии, 1963, I, с. II8-I23.
  12. ВУНДЕР П.А. О значении уровня саморегуляции гипофиза и периферических эндокринных желез в физиологии и патологии эндокринной системы. Успехи современной биологии, 1965, т. 59, 3, с. 433.
  13. ВУНДЕР П. А. Эндокринология пола и размножения. М., «Медицина», 1973, 216 с.
  14. ГЕНЕС С.Г. О центрально-нервном механизме действия гормонов.- Успехи современной биологии, 1953, 2, с. 35.
  15. ГОРОХОВ Л.Н., ЕФРЕМОВА М.Н., СМИРНОВА Л. Д. Влияние окситоцинана интервал между течками у коров. Сб. «Технология искусственного осеменения и биология воспроизведения с.-х. животных», М., «Колос», 1972, с. II0-II8.
  16. ГОРОХОВ Л.Н., КОВАЛЬ В. М. Действие окситоцина на лютеинизирующий гормон в крови и его рилизинг фактор в гипоталамусе. -Сб. «Направления и новые результаты исследований по биологии воспроизведения». Дубровицы, 1974, с. 84−86.
  17. ГУБАРЕВИЧ Я.Г., КОНГЕ Г. А. Опыт выдавливания желтых тел яичников у яловых коров. В кн.: «Сб. научных работ Ленинградского ин-та усовершенствования вет. врачей». М.-Л., 1948, с. 44−47.
  18. ДАРОВСКИХ В.Е., РАВИЛОВ М. Н. Применение ацетата мегестрола и
  19. СЖК для нормализации и стимуляции половой функции у коров с гипофункцией яичников. Бюлл. ВНЙИЖ, М., 1972, 30, с. 14−16.
  20. ДЖЕХАД АЛЬ-ДЩ1ЩАКЛИ. Повышение эффективности искусственногоосеменения коров. Автореф. на соиск. уч. степ. канд. вет. наук. М., 1981.
  21. ДРТРИЕВ В.Б., ПОНОМАРЕВА Т. Е. Концентрация прогестерона вкрови коров в цикле и при беременности. Бюлл. научно-техн. информ. (ВНИИ разведения и генетики с.-х. животных), 1974, 3, с. 35−39.
  22. ДМИТРИЕВ В.Б., ЛЕБЕДЕВ А.Г., СТЕПАНОВ Г. С. Синхронизация астрального цикла у телок простаглавдином Е^и его влияние на гормональные взаимоотношения в системе гипофиз-яичники. Билл. ВНИИ разведения и генетики с.-х. животных. 1979, 37, с. 19−24.
  23. ДЬЯКОНОВ Е.В., ГОРЯЧЕВ В.В., ЩЕГЛОВА H.H. и др. Влияние простагландинов на воспроизводительную функцию крупного рогатого скота. В кн.: «Эндокринология и трансплантация зигот сельскохозяйственных животных" — М., „Колос“, 1982, с. 164 167.
  24. МОЛОВ Б.Н., ПОНОМАРЕВА Т.Е., СТЕПАНОВ Г. С. и др. Влияниесмеси эпимеров простагландина Р^на синхронизацию астральных процессов у млекопитающих. Доклады АН СССР. 1983, 272, I, с. 240−243.
  25. ЖАРКИН В.В., ГОРБУНОВ Ю. А. Негормональная стимуляция воспроизводительной функции у коров на молочных комплексах с беспривязным содержанием. „Научные основы развития животноводства в БССР“. Минск, 1979, 9, с. 14−15.
  26. ЗАВАДОВСКИЙ Б.М., ФАЕШАРК С.Е., ШГАМЛЕР С. М. Проблемы животноводства. 1932, 11−12, с. 102−104.
  27. ЗАВАДОВСКИЙ Б. М. Зоотехническая эндокринология в СССР. Проблемы зоотехнической и экспериментальной эвдокринологии. 1934, т. I, с. 9−14.
  28. ЗАВАДОВСКИЙ М.М., ПАДУЧЕВА А.Л., ВУНДЕР П.А. функция „циклических“ и „экспериментальных“ желтых тел у овец. Бюлл. экспериментальной биологии и медицины. 1937, т. 4, 3, с. 208−210.
  29. ЗАВАДОВСКИЙ М.М. 0 взаимопротиворечивом взаимодействии органов в теле животного. В кн.: „Труды по динамике развития“. М., 1939, т. 2, с. 313−321.
  30. ЗВЕРЕВА Г. В., ХСМИН С. П. Гормональная активность желтого телаи плаценты у стельных коров. Львовский зооветеринарный институт. Научные труды (достижения ветеринарии), 1969, т. I, с. 25−28.
  31. ЗВЕРЕВА Г. В., ХОМИН С. П. Роль прогестерона в регуляции половых циклов у коров. В кн.: „Проблемы эндокринологии с.-х. животных и применение гормональных препаратов в животноводстве“. Тезисы докл. Всес. конф. Ленинград-Пушкин, 1975, с. 13−14.
  32. Инструкция по применению набора реактивов для радиоиммунологического определения прогестерона в сыворотке крови человека меченого йодом-125. Мин. здрав. СССР. Академия Наук БССР, 1983, II с.
  33. КИРШЕНБЛАТ Я. Д. Сравнительная эндокринология яичников. М., 1. Наука», 1973, 176 с.
  34. КЛИШКИЙ Ю. Д. Надо ли заниматься синхроматом. Овцеводство, 1967, № 8, с. 11−12.
  35. КЛИШКИЙ Ю.Д., ПАНФИЛОВА Л. Ф. Морфологические изменения маткии яичников у овец после воздействия некоторых прогестаге-нов и СЖК в неслучной сезон. В кн.: «Применение гормонов в животноводстве». 1970, с. 21−25.
  36. КЛИШКИЙ Ю. Д. Биологические свойства гонадотропина сывороткикрови жеребых кобыл и его применение в каракулеводстве.
  37. Дисс. докт. биол. наук. ВИЖ, 1971.
  38. КЛИНСКИЙ Ю.Д., ДАРОВСКИХ В. Е. Синхронизация половой функцииу с.-х. животных. Сельское хозяйство за рубежом. 1972, 3, с. 22−27.
  39. КЛИНСКИЙ Ю.Д., ДАРОВСКИХ В. Е. Применение гормональных препаратов для повышения воспроизводительной функции в скотоводстве. Тр. ВНИИЖа, 1973, т. 35, с. 228−234.
  40. КЛИНСКИЙ Ю.Д., СМИРНОВ Л. А. Синхронизация охоты у телок с помощью ацетата мегестрола в сочетании с гонадотропинами и эстрогенами. Животноводство, 1974, № 5, с. 72−73.
  41. КЛИНЖИЙ Ю.Д., ЖИРКОВ Г. Ш., ГРИГОРЬЕВ М.Ю. и др. Способ повышения воспроизводительной функции сельскохозяйственных животных. Авторское свидетельство № 641 945 от 21 сентября 1978 г.
  42. КОСТИН А.П., МЕЩЕРЯКОВ Ф.А., СШОЕВ A.A. Физиология сельскохозяйственных животных. М., «Колос», 1983, с. 299−300.
  43. ЛЕБЕДЕВ А.Г. Гипофизарно-гонадные взаимоотношения в цикле воспроизводства у крупного рогатого скота. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Л., 1982.
  44. ЛОБОДИН A.C. Обмен стероидов у коров при функциональных растройствах яичников и гормональной стимуляции половой функции. -«Проблемы патологии обмена веществ в современном животноводстве». Воронеж, 1981, с. 80−82.
  45. ЛОПЫРИН А. И. Очередные проблемы искусственного осемененияовец. Животноводство, 1969, № 10, с. 75−77.
  46. МИЛ0ВАН0 В В. К. Биология воспроизведения и искусственное осеменение сельскохозяйственных животных. М., Сельхозгиз, 1962, 695 с.
  47. МИТИН М. Влияние возраста телок на их воспроизводительную способность. Молочное и мясное скотоводство, 1980, 2, с. 2122.
  48. МИХАЙЛОВ H.H. Физиология воспроизводства. В кн.: «Физиологиясельскохозяйственных животных». Л., «Наука», 1978, с. 423 432.
  49. МОСКАЛЕНКО Н. И. Этиология и лечение персистентных желтых телу молочных коров. «Интенсификация животноводства и кормопроизводства в связи с переводом их на промышленную основу? Новосибирск, 1980, с. 71−74.
  50. НИКОЯН П. Е. Совершенствование методов суперовуляции и нехирургического вымывания эмбрионов у крупного рогатого скота для целей трансплантации. Автореф. дисс. канд. биол. наук. Дубровицы, 1983.
  51. ПАВЛОВ П. С. Функциональное состояние гипоталамо-гипофизарнояичниковой системы у самок северных оленей. Автореф. дисс. канд. биол. наук. ВЙЖ, Дубровицы, 1982.
  52. ПАДУЧЕВА А.Л., ВУНДЕР П.А., ЗАВАДОВСКИЙ М. М. Использованиепролана в случной компании, Кролиководство, 1933, т. 9, с. 12−13.
  53. ПАДУЧЕВА А. Л. Гормональные препараты в животноводстве. М., 1979, с. 69, с. 121−122.
  54. ПАДУЧЕВА А. Л. Механизмы гормональной регуляции и роль обратных связей в явлениях развития и гомеостаза. М., 1981, с. 224−243.
  55. ПИТКЯНЕН И. Г. Овуляция, оплодотворение и первые стадии эмбрионального развития у свиней. Сб. „Закономерности индивидуального развития с.-х. животных“. М., „Наука“, 1964, с.283−288.
  56. ПОЛЕНОВ А.Л. О диэнцефало-гипофизарной нейросекреторной системе. Уч. записки 1-го ЛМИ. 1959, 3, с. 176.
  57. ПРОКОФЬЕВ М. И. Регуляция размножения сельскохозяйственных животных. Л., „Наука“, 1983, с. 120−122.
  58. Радиоиммунодиагностика 1п у/^го (перев. с немецкого). Марбург, ФРГ, 1982, с. 119−148.
  59. РУМЯНЦЕВ Н. В. Отдавливание желтых тел яичников у коров как метод борьбы с яловостью. Проблемы животноводства. 1938, 10, с. НО.
  60. РЯЖЕНОВ В.В., БАБКИНА Т.А., РОМАНОВА Н. И. Влияние биосинтетического простагландина Р^на систему кровообращения. -Простагландины. Рига, 1974, с. 74−80.
  61. САВЧЕНКО О. Н. Гормоны яичника и гонадотропные гормоны. Л.,
  62. Медицина», 1967, с. 186−193.
  63. САВЧЕНКО О.Н., СТЕПАНОВ Г. С. Гормональная регуляция функцииполовых желез. В кн.: «Гормоны в животноводстве». М., «Колос», 1977, с. 34−50.
  64. САДИКОВ Р.Э., ЯЦЕНКО В.Д., ВАРНАВСКИЙ А.Н. и др. Использование современных методов стимуляции половой охоты овцематок и их осеменение глубокоохлажденной спермой с простагланди-нами. Изв. АН Кирг. ССР, 1981, № 6, с. 27−30.
  65. САЙКО А.А., ПЕТРОВ В.А. О возможности нейрогенной индукцииовуляции у коров. Сельскохозяйственная биология. 1978, т. 13, № 3, с. 415−418.
  66. СЕГЛИНЫЯ А., БРУТГАНС Я. Влияние плазмы спермы хряка, окситоцина и карбохолина на оплодотворение. Свиноводство, 1980, № 8, с. 21−22.
  67. СОКОЛОВСКАЯ И. И. Простатландины: свойства, значение, перспективы изучения и использования. Вестник сельскохозяйственной науки. 1976, 4, с. 71−80.
  68. СТУДЕНЦОВ А.П., ШИПИЛОВ B.C., СУББОТИНА Л.Г. и др. Ветеринарное акушерство и гинекология. Изд. 5-е, М., «Колос», 1980, 446 с.
  69. СЫСОЕВ А.А., БОГАЧЕВА Р.Г. О половых гормонах у телок. Ветеринария, 1975, № 5, с. 86−88.
  70. ЦОНДЕК Б. Гормоны яичника и передней доли гипофиза (русс.пер.).1. Сельхозгиз, 1938.
  71. ЧАРД Т. Радиоиммунологические методы (перев. с английскогок.б.н. Морозовой М.С.). М., «Мир», 1981, 224 с.
  72. ВДПИЛОВ B.C. Половой цикл коров в зимний период. Ветеринария, 1967, № II, с. 87−88.
  73. ШИПИЛОВ B.C., СЕМИВОЛОС A.M. Патоморфологические изменения вяичниках телок при их гипофункции. Доклады ВАСХНИЛ, 1983, 7, с. 27−28.
  74. ЩЕГЛОВА Н.Н., ДЬЯКОНОВ Е. Ф. Влияние простагландина Р2*сна воспроизводительную функцию коров с персистентным желтым телом полового цикла. Бюлл. ВНИИРШ, 1982, 55, с. 8−9.
  75. ЮДАЕВ Н.А., УТЕШЕВА З. Ф. Гормоны гипоталамуса. В кн.: «Биохимия гормонов и гормональная регуляция». М., 1976, с. II14.
  76. ЯНОВСКИЙ И. И. Действие гормональных препаратов на вызов охотыу коров. Сб. научных трудов Дон. СХИ, 1973, т. 8, I, с. 62−65.
  77. Arbeiter К., Holler W. Gn-RH-Behandlung und Stimulation der
  78. Ovar-Punkte zur Fruchtbarkeitssteigerung beim Rind. Tler-arztl.Umsch. 1983, 38, I, s.36−40.
  79. Armstrong D.Т., Hansel W. Alteration of the bovine estrous cycle with oxytocin. J. Dairy Sci., 1959, 42, 3, p.533−542.
  80. Armstrong D.T. Role of prostaglandins in follicular responsesto luteinising hormone. Ann, Biol.anim.Bioch.Biophys., 1975,15, I, p.181−190.
  81. Arriola Javier, Mer'dn Dur’an Enrigue. Tratamiento del dnestroen el ganado bovino lecbero у fertilidad subsecnente a la administration de prostaglandina • * Vet.Med., 1979,10, No. I, p. I-12.
  82. Bachlaus N. Plasma levels of gonadal hormones in cycling buffalo heifers. Indian J.exper.Biol., 1979, 17, 8, p.823−825.
  83. Bachlau Narinder K., Arord Rakesh C."Prasad Anirudha e.a. Effect of prostaglandin PgAlfa-thamsalt and estrumate (JCJ 80 996) on plasma progesterone levels in Indian water buffaloes. Theriogenology, 1980, 13, 4, p.297−303.
  84. Barnabe V.H., Mucciolo R, G., Barndbe R. Utilizacao da prostag-landina (PGrP2alfa^ na sittcroBiza-cao do ciclo estralem bovinos. Rev.Pac.med.vet.e Zootec.Univ.San Paulo., 1976, 13, No.2, p.367−376.
  85. Barraclough C.A., Gorski R.A. Evidence that the hypotalamusis persponsible for androgen-induced sterility in the female rat. Endocrinology, 1961, 68, p.68−99.
  86. Benoit J., Assenmacher J. Repportantre la stimulation sexuelle ptre hypophysaire et la neurosecretion chez Joisean. Arch.Anat.micr.et morph.exp. 1953, vol.42, p.384−387.
  87. Bergstrom S. The icolation of prostaglandin. Acta Chem.1. Scand., 1957, II, p. I086.
  88. Britt J.H. Ovulation and endocrine response after LH-RH indomestic animals. Ann.Biol.Anim.Biochim., 1975, vol.15, No.2, p.221−231.
  89. Bruckner C., Kampfer J. Wirkung einer zervikalen Prostaglandin Fgalfa-Gel-P-Applikation auf die Spermienmigrationim Genitaltrakt des Schafes post inseminationem mit 131
  90. J J-markiertem Sperma. Monatsh.Vet.Med., 1983, Jg.38, No.6, s.211−216.
  91. Briissow V.K.P., Bergfeld J* Erste Untersuchungen zur O-vulationsauslosung bei prapuberalen und bei brunstsynchronisierten weiblichen lungschweinen mit Gn-RH vet."Berlin-Chemie. Monatsch.Veterinarmed., 1979, 34, No.16, s.611−613.
  92. Burfening P.J., Anderson D.C., Kinkie H.A. e.a. Synchronizationof estrus with PGFgalfa in beef cattle. J.Anim.Sci., 1978, vol.47, Ho.5, p.999−1003.
  93. Burgue R., Gullemin R., Calantine M.K. Effect of follicle-stimulating hormone on ovarian nucleic acid content. Endocrinology, 1965, vol.76,p.332−334.
  94. Burgus R., Butcher M., Amoss M.e.a. Primary strycture of the ovine hypothalamic luteinizing hormone releasing factor (LRF) Proc.Nat.Acad, Sei. USA, 1972, 69, p.278−282.
  95. Busch W, litzke F. Die Erunstsynchronisation bei Kuhen mittels
  96. Chlormadinonazetat. Monatssch.Veterinarmed., 1974,29, 12, s, 441−448.
  97. Busch W, Entwicklung, Stand und Einsatzmoglichkeiten biotechnischer Verfahren unter Berucksichtigung der Brunst-und Ovulations Synchronisation beim Rind. Tierzucht, 1978,32, 7, s.301−304.
  98. Busch W., Metz J., Lindemann K.u.a. Untersuchungen zur Steuerung der Ovulation nach Brunstsynchronioation beim Rindt.-Monatsh.Yeterinarmed., 1979,34,8.441.
  99. Busch W.W., Lusky K., Nemus B.u.a. Vorlaufige Untersuchungserggebnisse zum Einsatz von PGFgalfa zur Behandlung funktioneller Fortpflanzungsstorungen beim Rind. Monatsh. Veterinar-med., 1983, 38, No.11, s.421−423.
  100. Carli S., Rudelli G. Le Prostaglandine in medicina veterinaria.
  101. Rivista di Zootechnia e veterinaria, 1978, 2, p.77−106.-106, Carrick M.J., Shelton J.N. The synchronization of oestrus in % cattle with progestagen-impregnatet intravaginal sponges, J.Reprod.Pert., 1967, 14, p.21−32.
  102. Carter M.L., Dierschke G.J., Rutledge J.J. e.a. Effect of gonadotropin-releasing hormone and calf removal on pituitary -ovarian function and reproductive performance in postpartum beef cows. J.Anim.Sci., 1980, 51, No.4, p.903−910.
  103. Chaffaux S. Les metrites chronigues de la vache Essdis de traitoments. Rec.Med.vet., 1981, 157, I, p.105−115.
  104. Chauhan P. Responses of induction, fertility and progesteronelevels in subestrous buffaloes. Theriogenology, 1982, 17, 3, p.246−253.
  105. Chomd J., Elecko J., Kacmarik J.e.a. Vyeledky synchromizdeieruge a hormonalne hladiny po Oestrophane in^(SPOPA). -Bio-logizace a chemozace zivocisne vyroby vet., 1981, 17, No. I, s.61−65.
  106. Christian R.E., Casida L.E. The effects of progesterone in altoring the estous cycle of the cow. J.Anim.Sci., 1948,7, P.540.
  107. Christie E.H.L., Medcalf J.D. Observations on the use of cloprostenol in a large dairy herd in Chesire.- Vet.Rec., 1976, 99, p.272−273.
  108. Coiger R., Konig W., Wisemann Я. e.a. Synthesis and characterisation of a decapeptide having LH-RH/PSH-RH activity. -Biochem.Biophys.Res.Conm., 1971, 45, 3, p.767.
  109. Cole H.H., Hart G-.H. The potency of blood serum of mares in progressive stages of pregnancy in effecting the sexual maturity of the immature rat. Amer.J.Physiol., 1930, 93, p. 1−5.- 135
  110. Critser J.K., Miller K.F.Gunsett P.C. e.a. Seasonal LH pro-.file in ovariectomized cattle. Theriogenology, I983, I9, 2, p. I8I-I89.
  111. Cseh Sandor. Emrioatiiltessel vemhesitett uszol allesenekszinkronizalaga Enzaprost Finj-val. Magyar.Allatorv. Lapja, 1981, 36, No.11, p.743−744.
  112. Czlonkewska M., Gajdek J., Wasik M. Ocena przyddtnosci syntetyczing prostaglandying (JGJ 80 996) w synchronizacji nii u jatowek. Med.vet., 1978,34, No.8, p.492−494.
  113. Darlinfg M.R.N., Jogel M., Elder M.G. Prostaglandin I^alfa levels in the human ovarian follicle. Prostaglandins, 1982, 23, No.4, p.551−556.
  114. Deriveau J., Ectors F. Aperzu sur progestagens et la sinchronisation de 1*oestrus. Ann. de Medicine Veterinarie., 1966, p.231−261.
  115. Diepen R. Der Hypothalamus. Handbuch der microsk.Anat.des Menschen, 4, Berlin-Gottingen-Heidelberg, 1962.
  116. Docke F. Introvarielle Regulationsprozesse im Zyklus. Mh.
  117. Veter.Med., 1980, 35, 21, p.829−833.
  118. Donaldson L., Hansel W. Prolongation of life-span of the bovine corpus luteum by single injections of bovine luteinizing hormone. J. Dairy Sei., 1965, 48, 7, p.903−904.
  119. Edquist I"., Einarsson S., Gustaffsson B. Effect of prostaglandin F2alfa on sperm transpont in the reproductive tract of the ewe. Acta vet.Scand., 1975, 16, p. I49-I5I.
  120. Elliasson R. Studies on prostaglandin: Occurence, formationand biological actions. Acta Physiol.Scagd., 1959, 46, suppl. 158, p.1−73.- 136 125″ Espey L.L. Ovulation as an inflammatony reaction. A. hypothe-sie. Biol.Reprod., 1980, 22, p.73−106.
  121. Faure R., Alanso J., Fernandez 0. Induccion del estro mediante propionate de testosterona en novillas anestricas. -Rev.salud anim., 1982, 4, No.2,p.201−209.
  122. Fernandes L.C., Thatcher W.W., Wilcox C.J. e.a. LH release inresponse to GnRH during the postpartum period of dairy cows. J.Anim.Sei., 1978, 46, No.2,p.443−448.
  123. Fernandez-Limid 0., Murphy B.D. Synchronization of preveovulatory LH surges after PgFgalfa in beef cattle: the effect of D-ALA-GNRH and testorene benzoate. Theriogenology, i 1977, 7, No.2, p.73−81.
  124. Fernandez-Limid 0., Gonzales Mencio F., Faure R. Efecto de laadministration de prostaglandins Fgalfa sobre la fertilidad en vacas Holstein. Rev. cubana cienc.vet., 1982, 13, 3, p.85−86.
  125. Fevold H.L. Extraction and standartization of pituitary follicle stimulating and luteinizing hormones. Endocrin. 1959, 24, p.435.
  126. Ford S.P. Bovine ovarian and pituitary responses to PMS and
  127. GnRH administered during mietestrus. J.Anim.Sei., 1978, vol.46, No.6, p.1701−1706.
  128. Ford S.P., Chendult J.R. Ford flow to the corpus luteurabed-ring ovary and ipsilateral uterine horn of cows during the oestrous cycle and early pregnancy. J.Reprod.and Fert., 1981, 62, No.2, p.555−562.
  129. Foster J.P., Crighton J. Luteiniying hormone release after injection of synthesis luteiinijing hormone releasing hormone at vamious stages of the oestrous cycle in the sheep. J. Endocrinology, 1976, vol.68, No.3, p.41.
  130. Ginther O.J. Utero-ovarian relationships in cattle. Physiologie aspects: Applied veterinery aspects. J. Amer, vet.med.Assn., 1968, 12, p. I656-I67I.
  131. Ginther O.J., First U. Maintenance of the corpus luteum inhysterectomized mares. Amer.J.Vet.Res., 1971, 32,1687″
  132. Goldblatt M.W. Adepressor substance in seminal fluid.
  133. J.Soc.Chem.Industries., 1935, vol.52, p. I056-Io57.
  134. Gonzalez Mencio F., Gil A., Fernandes O., Vaure R. Respuestaa la admini? traction de hormonas liberadovab de gonadotropin^ (GnRH) en vacas lecheras con duestro post-parto prolongado. Rev. salud anim., 1980, 2, 3, p.151−153.
  135. Grunert E., Tholen J., Goldbeck U. Untersuchungen uber die
  136. Beinflussung des Besamungsergebnisses beim Rind durch ein synthesisches Gonadotropin-Releasing-Hormon. Blauen Hefte Tierzucht, 1976, H.56, s.241−246.
  137. Giinzeler 0., Schalenberger E. The treatment of ovariancysts cattle with prostaglandins-possibilities and limitations. Acta vet.Scand., 1981, 22, suppl.77,p.327−341.
  138. Gwazdauskas F. Hormonal patterns during heat stress following PgF2alfa tham salt inauced luteal regression in heifers. Therionology, 1981, 16, 3, s.271−285.
  139. Hammond J.J. Hormones in relation to fertility ind farinanimals. Brit.Med.Bull., 1955, 11, p.165.
  140. Hansel W., Malven P.V. Estrous cycle regulation in beef cattle by orally active progestational agents. J.Anim. Sci., 1960, 19, p.1324.
  141. Hansel W. Reproduction management. Why cows to come heat.
  142. Mille Board J., 1967, 18, 2, p.23−29.
  143. Hansel W., Hixon J., Shemesh M.e.a. Concentrations and activities of prostaglandins of the P series in bovine tis sue, blood and milk. J. Dairy Sci., 1976, 59, 7, p.1354−1365.
  144. Haour P., Lang B, Role des recepteurs honaonaux dans la regulation du corps jane. Sem.hop.Paris., 1978, No.54, p.33−36.
  145. Hausler C.L., Malven P.V. Interaction of progesterone, GnRHand estradiol in the control of 1H release in castrate heifers. J.Anim.Sci., 1976, 46, No.5,p.1239−1243}
  146. Hays R., Van Demark N. Effect of stimulation of the reproductive organs of the cow on the release of an oxytocin-lihe substance. Endocrinology, 1953, vol.52,p.634−638.
  147. Heller S., Schlumberger H.D., Weber H. Characterization of human G-RF by comparison with a decapeptide, L-and D-pyro-glutamie acid. Abstr. of papers VII World Congress of Obstetricks and Gynecology, Moscow, .Excerpta Medica, 1973, p.279, 273−276.
  148. Hemelryck Van J., Peryn M. De doeltreffendheid onder praktykomstandigheden van prostaglandins P2alfa bei de behan-deling van suboestrus bij runderen. Vldams diergene-esk.tijdschr., 1978, 47, No.6, p.471−476.- 139
  149. Humblot P., Thibier M. Effect of gonadotropin releasing hormone (Gn-RH) treatment during the midluteal phase in repeat breeder cows-Apreliminary report. Theriogenology, 1981, vol.16, No.4, p.375−378.
  150. Jackson P. S. Subsequent fertility following cloprostenol induced luteolysis in the bovine. J.Veter.Res., 1983,112, 7, p.153−154.
  151. Jackson P. S., Furr B.J.A. Ovulation control in heifers wit, hprostaglandin and luteinising hormone releasing hormone analogue under different conditions of management. Res. Vet.Sei., 1983, 34, No.2, p.182−187.
  152. Jgarashi M., McCann S.M. The follicle stimulating hormone releasing properties of hypothalamic extracts. Endocrin. 1964, 74, p.446−452.
  153. Jrvin H.J., Pflantz V.M., Morrow R.E.e.a. GnRH induced 1H release in suckled beef cows. II. The effects of exogenous corticoids and estradiol benzoate on luteiinizing hormone release by GnRH. Theriogenology, 1981, 16, No.5, p.513−522.
  154. Jaster E.H., Brodie B.O.Lodge J.R. Influence of season on timed inseminations of dairy heifers synchronized by prostaglandin P2alfa-- J. Dairy Sei., 1982,65,9,p.1776−1780.- 140
  155. Johnson C.T. Induction of parturition in cattle. Actavet.seand., 1981, 22, suppl.No.77, p.311−319.
  156. Kalrd S.P., McCann S.M. Effects of hypothalamic and preoptic electrochemical stimulation on gonadotropin and prolaction release in proestrus rats. Endocrinology, 1971, vol.88, p. II50-II58.
  157. Kaneko B.T., Saito S., 0ka H.e.a. Effect of synthetic LH-RHand its analogs on rat anterior pituitary cyclic AMP and LH and TSH release. Metabolism, 1973, 22, No. I, p.77−80.
  158. Kazmer G.W., Barnes M.A., Halman R.D. Endogenous hormone response and fertility in dairy heifers after treatment with lutaluse and GnRH, Theriogenology, 1981, 16, No.5, p. 575−585.
  159. Kesler D.J., Garverick H.A., Youngquist E.S. Ovarian andendocrine responses and reproductive performance following GnRH treatment in early postpartum dairy cows. -theriogenology, 1978, vol.9, No.4,p.363−369.
  160. Kesler D.J., Garverick H.A., Elmore R.G. Reproductive hormones associated with the ovarian cyst response to GnRH. Theriogenology, 1979, 12, No.2, p. I09-II4.
  161. Kindahl H., Lindell J.O., Edgvist L.E. Release of prostaglandin P2alfa during the oestrous cycle. Acta vet.Scand. 1981, 22, suppl.No.77, p.143−158.
  162. Kobaydshi Y., Santulli R., Wright K.H., e.a. Induction of ovulation in vitro by prostaglandin P2alfa. ~ Biol.Reprod. 1980, 22, suppl. I, p.22−32,
  163. Konig J. Experimentelle Untersuchungen mit synthetischem Gonadotropin-Releasing-Hormon zur Ovulationsinduktion bei Farsen. Arch.Exper.Veter.Med., 1982, 36, No. I, s.51−54.
  164. Brunstsynchronisation der Farsen im Bezirk Halle. Tierzucht, 1975, 39, 10, s.437−439.
  165. Kruif A., Brand A, Clinical consequences of luteolysis.
  166. Trends Vet.Pharmakol.and Toxicol.Proc.ist Eur.Congr. Zeist." Amsterdam e.d., 1980, p.232−241.
  167. Kudlac E. Einige neue Erkenntnisse uber Vorkommen Ursachenund Therapie der Punktionsstorungen der Geschlechtstatigkeit beim Rind. Wien tierarztl.Monatssehr., 1967,54,6,s.390−399.
  168. Kudlac E., Nedbalkova J., Studencik B. Synchronizace rije u jalovic synthetickym analogem PgF2alfa Oestrophan inj. (SPOFA). Biologizace a chemizace zivocosne vyroby vet. 1981, 17, No. I, s.43−50.
  169. Kudlac E., Vlcek 1., Vrtel M., Vycitai J. Stimulation of conception in cows by chorionic gonadotropin and synthetic gonadotropin-releasing hormone administration. Acta vet. Brno, 1982, 51, 1−4, p.91−97.
  170. Kurzrok R., Lieb C.C. Biochemical studies on human semen.
  171. Proc.Soc.Exp.Biol.Med., 1930, 26, p.268.
  172. Ii’Hermite M., Niswender G.D., Reihert L.E., Midgley A.R. Serumfollicle stimulating hormone in sheep as measured by radioimmunoassay. Biol.Reprod. 1972, 6, p.325−332.
  173. Labrie E., Polletier G., Lemay A.e.a. 6th Karolinska Symposium on research methods in reproductive Endocrinology (Egon Dicefalucy, ed.)Bogtrykkeriet Eorum, Copenhagen, 1973, p.301−340.
  174. Le Maire W.J., Leidner R., Marsh J.M. Pre-and postovulatorychanges in the concentration of prostaglandins in rabbit Gradfian follicles. Prostaglandins, 1973, 3, p.367−376.
  175. Lieshout J.A.H.e.a. Practical experiences with prostaglandins in heifers and dairy cows. Tijdschr. voor diergene-eskunde., 1977, 102, Ho.20, p, I204-I209.
  176. Lobel B.L., Levy E. Enzymic correlation of development, secretory function and regression of follicles and corpora lutea in the bovine ovary. Acta Endocrin. Copenhagen, 1968, 59, s.132.
  177. Lopez-Barbella S., Ealon C., Martinez N. Synchronization of oestrus with prostaglandin Italia in Holstein cows. -Trop.Anim.Prod., 1980, 5, No. I, p.43−45.
  178. Luis T.M., Hafs H.D., Stellflug J.N. Control of ovulation, fertility and endocrine reponse after prostaglandin Pgal-fa in cattle. Annales de Biol.anim.Bioch.Biophys., 1975, vol.15, No.2, p.407−417.
  179. Made-. A., Barcikowski B., Stupnicki E.e.a. Luteinizing hormone respondse to injection of synthetic gonadotrophin released hormone or infusion of oestradiol-I7-beta in heifers. Anim.Reprod.Sci., 1980, 3, No. I, p.17−21.
  180. Manns J.G., Wenkoff M.S., Adams W .M. e.a. The effects of time of insemination on fertility in beef heifers synchronized with prostaglandin P2alfa. Canad. J, Anim.Sci., 1977, vol.57, No. I, p.47−51.
  181. Manns J. Release of LH following intrauterine administration gonadotropin-releasing hormone. Canad.J.Anim.Sci., 1980, 60, 4, p.1023−1026.
  182. Matsuo H., Baba Y., Nair R.M.G.e.a. Structure of the proteine1.-and PSH releasing hormone. I. The proposed amino acid sequence. Biochem. and Biophys.Res.Comm., 1971, vol.43, p.1334−1339.
  183. McCann S.M., Taleisnik S. Hypothalamic regulation of LH secretion. Science, I960, 132, p.1496.193″ McCann S. M, Porter J.C. Hypothalamic pituitary stimulating and inhibiting hormones. Physiol.Rev., 1969,49,No.2, p.240−284.
  184. McCann S. M, Pitutative neurotranomittera involved in discharging gonadotropin-releasing neurohormones and the action of LH-releasing hormones on the CHS. -Life Science, 1975, 16, p.833−841.
  185. Mulvenill P., Speendu J. Field-scale evaluation of short-termprogestagen synchronization treatments in beef cow herds.-Irisch.J.Agric.Res., 1978, 17, 3, p.241−248.
  186. Nakao T., Harita S., Tanaka K.e.a. Improvement of first-servive pregnancy rate in cows with gonadotropin-releasing hormone analog. Theriogenology, 1983, 20, I, p.111−119.
  187. Otel V. Verwendung von Gonadotropin-releasing-hormon (GnRH)in der Therapie der Portpflanzungsstorungen bei Rindern.-Arch.Exper.Veter. Med. 1982, 36, I, p.45−49.
  188. Petac D., Schilling E., Smidt D. Zyklussynchronization fon Farsen mit Prostaglandinanalogen. Berlin. und Miinchenl.Tier-arztl.Wochensehr., 1978, 91, No.24, p.473−475.
  189. Petac D., Schilling E., Smidt D. Primena sintetiskin prostaglandinskih analoga kod junica u sorhu izazivdnja i sinh-ronizaeije estrusa. Vet.Glasn., 1979,33, No.7,p.563−570.
  190. Porcaro Puga Julio Mario, Mattos Sergio de Mies Filho Antonio.1.teolise Induzida na Sinchrinizaca do ciclo estral de vacas de corte nao lactantes. Arg.Ess.vet.Univ.fed.Minas Gerais., 1981, 33, No. I, p.265−267.
  191. Pouser H.L. The physiology of Prostaglandine. Clin.Endoer.
  192. Metabolism, 1973, 2, 3, p.393−412.
  193. Prasad A., Bachlaus N.K. Synchronization of oestrus in buffalo heifers with estrumate fertility with frozen semen.-Indian J.Exper.Biol., 1978, 16, No.7,p.801−802.
  194. Raasch M.L., Konig J., Bielecka A. Weitere Untersuchungen zur
  195. Ovulationssynchronisation beiAltsauen durch Behandlung mit PMSG und einer Kombination aus 300 mg. Gn-RH vet. Berlin-Chemie und 300 BCg unter productions Bedingungen. Ar-eniv Exper.Veterinarmed., 1982, 36, No. I, p.103−107.
  196. Rahe C. Pulsatile secretion of the luteinizing hormone duringthe estrus cycle of the cow. -Progress Rep. Texas agric. experim. Station, 1982, 39, 16, p.26−27.
  197. Rakha A.M., Robertson H.A. Changes in levels of folliclestimulating hormone and luteinizing hormone in the bovine pi-tuitaring gland at ovulation. J.Endocrin., 1965,3,31,245.
  198. Reichel Fr, Caslavska J., Mojzis J. et al. Overeni pripravkuoestrophan inj (SPOFA) vterenni praxi pri synchronizaci ri-?e skotu. Biol. a chemiz.zivoc.vyroby vet., 1981,17,1,s.39−42.
  199. Reichert I". E, Studies on bovine pituitary follicle stimulating hormone. Endocrinology, 1965, 77, 124.
  200. Riedel B."Rommel P., Umlauft K. Ergebnisse klinischer Befunderhebung bei der Superovulation und Eizellgewinnung beim prapuberalen Rind. Monatsch.Veterinarmed., 1980, vol.35, No.4, s.134−138.
  201. Riley Gillian M. «Peters A.R., Lamming G.E. Induction of pulsatile LH release FSH release and ovulation in postpartum cyclic beef cows by repeated small doses on Gn-RH. J.Reprod.Fertil., 1981, 63, No.2, p.559−565.
  202. Roberts S.J. Veterinary Obstetrics and genital diseases.1.haca, New York., 1956.
  203. Robertson H.A."Hitchinson J.S.M. The levels of FSH and CHin the pituitary of the ewe in relation to follicular growth and ovulation. Endocrinol., 1962, 2, 24, p.143.
  204. Robinson T.J. The control of the ovarian cycle in the sheep. Sydney University Press, 1967, 258 p.
  205. Robinson T.J. Reproduction in cattle. -In:Reproduction in domestic animals/Eds.London, 1977, p.433−454.
  206. Robinson T.J. Synchronization of oestrus in sheep by intravaginal and subcutaneous application of progestin impreg-nanted spongers. Proc.Axistral.Soc.Anim.Prod., 1964, 5, p.47−52.
  207. Rob 0."Klimes V."Reichel F. Coucasne moznosti pouziti syntetickych analogu prostaglandinu F2alfa a Gn-RH v chovech se snize: /nou plodnosti. Biol. a ehem.zivoc.vyr.vet., 1982, 18, No. I, p.69−75.
  208. Rob 0., Klimes V."Reichel F. Soucasne moznosti pouziti Prostaglandine v chovech skotu se snizenci plodnosti.- Sb. VSZ Praze, 1982, B., No.36, p.129−140.
  209. Rob O.e.a, Terapenticke pouziti syntetickeho Gn-RH dirigestranu priporuchach reprodukcniho cyklu krav v cho-vech s nizkou plodnosti. Vet.Med., 1983, vol.28,N.2, s. 65−72.
  210. Rustichelli S., Chiappa A., Mariatti M. Risposta delle tube di Pulloppio dela stimulazione in vivo con Prostaglandine. Minerva ginecol., 1982, vol.34,No.5,p.323−326.
  211. Seguin B.E., Gustafson B.K., Hurtgen J.P. Use of the prostaglandin F2alfa analog cloprostenol (JCJ 80 996) in dairy cattle with unobserved estrus. Theriogenology, 1978, vol.10, No. I, p.55−64.
  212. Seguin B.E. Role of prostaglandins in bovine reproduction.- J. AjDer.vet.Med.Assoc., 1980, vol.176, No. IO, p. II78-II8I.
  213. Seguin B.E. Use of prostaglandin in cows with unobservedoestrus, Acta vet. Scand, 1981, 22, suppl.No.77|P.343−352.
  214. Sevcik B., Kral J., Strakova J. Terapenticke vynziti priprovku Oestrophan inj (cloprostenol) pri anestru a en-dometritive krav. Biol. a Chem.zivoc.vyr.vet., 1982, vol.18, No.4, s.349−355.
  215. Scanion P.F., Burgess T. T>. Subcutaneous and oral applibations of progestagens for control of oestrus in heifers, Can. J, Anim. Sei,, 1971, vol. 51, No.2,p, 540−541.
  216. Scaramuzzi R.J., Turnbull E.E., Nancarrow C.B. Growth ofgraafian follicles in cows following luteolysis induced by the prostaglandin Fgalfa analogue cloprostenol.- Austr, J.Biol.Sei., 1980, vol.33,No.I, p.63−69.
  217. Shmizu H.e.a. Synchronization of oestrus and subsequentfertility of beef cattle following the intravaginal administration of gestagen,-J.Repr.Fert., vol.13, No.3, P.555−558.- 148 232″ Short R.V. Reproduction. Inn.Rev.Physiol., 1967, vol.29, p.373−400.
  218. Schally A. V, Arimura A., Bowers C.V., e.a. Hypothalamus neurohormones regulating anterior pituitary function.- Rec. Progr. Hormone Res., 1968, vol.24, p.497−581.
  219. Schally A.V., Arimura A., Kastin A.J. Gonadotropin-releasinghormone: One polyptide regulates secretion of luteinizing and follicle-stimulating hormone.- Science, I97I, vol. I73, p.1036−1038,
  220. Schally A.V., Arimura A., Carter W. R,, e.a. Bioch.Biophys.Res.
  221. Communs., 1972, 48, p.366.
  222. Schams D., Hofer P., Hoffmann B.e.a. Effects of synthetic LH-RH treatment on bovine ovarian function during oestrus cycle and post-partum period. Acta Endocr., I973, suppl. 177, p.296.
  223. Schams D., Karg H. Hormonal responses following treatment withdifferent prostaglandon analogues for estrous cycle regulation in cattle. Theriogenology, 1982, vol.17, No.5, p.499−513.
  224. Scharrer E., Scharrer B. Neurosecretion Nollendorffs Handbuchmicroskopischen Anatomie des Menschen. Springer Berlin, 1954, I, 5.
  225. Schels H.P., Mostafawi D. The effect of Gn-RH on the pregnancy rate of artificially insemination cows, Vet.Rec., 1978, vol.103, No.2, p.31−32.
  226. Schilling E., Smidt D. Zyklussynchronisation von Parsen raitdem Prostaglandin-analog"Prostianol». Berlin und Munch. Tierarztl.Wschr., 1980, vol.93, No.2, s.30−34.- 149
  227. Schneider H.P.C., McCann S.M. Possible role of DA as transmitter to promote-discharde of LH-RP. Endocrinology, 1969, 85, p. I2I-I32.
  228. Schulte B., Grunert E., Andresen P. Beitrag zur Zyklussyncronisation bei Rindern mit dem Prostaglandin-analogMRepro-din". Zuchthygiene, 1980,15,5,s.204−210.
  229. Steffan V. Applications therapeutigues et Zootechnigues dela Prostaglandine ciiez les bovins.- Rec.Med.vet., 1981, 157, I, p.61−69.
  230. Sokolowski James H. Prostaglandin P2alfa-THAM for medicaltreatment of endometritis, metritis and pyometritis in the bitch. J.Amer.Hosp.Assoc., 1980, 16, No. I, p. II9-I22.
  231. Stevenson J., Call E. Von can improve conception rates andshorten calving intervals. Hoard*s Dairyman, 1983,128, 12, p.830−831.
  232. Swensson Th., Astrom G., Andersson U. Draktighetsresultat hoskvigor efter insemination vid forutbesamd tiapunkt. -Svensk vetarinartiah., 1978, 30, No.17,p.623−626.
  233. Tam W.H., Beveridge W.K., Tso E.C.P. Effects of gonadotropins, hypophysr-ectomy and prostaglandin P2alfa on corporalutea and interstituum of non-pregnant guined pigs. J.Reprod. Pertil., 1982, 64, No. I, p.9−17.
  234. Thibier M. Quelgues aspects recents de la maitrise des cyclessexuels de la femelle chez les bovins. Ree.Med.Vet., 1976, 152(7−8), p.433−442.
  235. Thomas W. Estradiol control of serum luteinizing hormone concentrate in the bovine. J.Anim.Sci., 1977, vol.45,No.5, P. I096-II0I.
  236. Thorbura G.D. Selective reduction in blood flow to the ovinecorpus luteum after infusion of prostaglandin P2&lfa into an uterine vein. Proc.Austral.Physiol.Pharmacol.Soc., 1972, I, p.145.- 150
  237. Tocker H. Seasonality in cattle. Theriogenology, 1982,17, No. I, p.53−59.
  238. Varadin M., Mutevelic A., Turalic P.e.a. Application ofsynthetic analogie of prostaglandin FgalfaCestrumate) in cattle reproduction. Veterinaria,(SFRJ), 1978, vol.27, No. I, p.59−67.
  239. Varga B., Zsolnai Bela. Gynecol. and Obstet.Invest., 1982, vol.13, No. I, p.30−36.
  240. Ven S.S.C. Regulation of the hypothalamic pituitary ovarian axis in women. J.Reprod.Fert., 1977, 51, p.181−190.
  241. Verdugo P., Rumery R.E., Tam P.Y. Hormonal control of oviductal ciliary activity. Effect of prostaglandins. -Fertil.and Steril., 1980, vol.33, No. I, p. I93-I96.
  242. Voung J.M. Treatment of the clinical syndrome of no visible oestrus: alternative schemes using prostaglandin P2alfa. Veter.Ree., 1979, vol.104, No.10, p.216.
  243. Wahner M., Schulze W.-, Schlegel W. e.a. Untersuchungen zum
  244. Ovulationsverlauf bei der Ovulationssynchronisation der Jungsauen von HCG durch Gn-RH vet."Berlin-Chemie". -Monatsheftef.Veterinarmed., 1982, vol.37, No.8,s.298−299.
  245. Walker Maule P.M. Lactation and Fertility in goats afterthe induction of parturition with an analogue of prostaglandin P2alfa, cloprostenol. Res.vet.Sci., 1983, vol.34, No.3, p.280−286.
  246. Wattemann R. Endocrine response of postpartum anestrousbeef cows to Gn-RH or PMSG. Theriogenology, 1982, vol.18, No.5, p.589- 613.- 151
  247. Westhnysen J.M. The effect of a Gn-RH injection at artificial insemination on conception a dairy cettle. -S.Afr.J.Anim.Sci., 1980, vol.10, No. I, p.103−104.
  248. Westhnysen J.M. The use of a gonadotropin releasing hormone in cattle: changes in plasma progesterone and reproductive efficiency following treatment during early postpartum. S.Afr.J.Anim.Sei., 1980, I0, p. II5-II8.
  249. Yalow R.S., Berson S.A. Immunoassay of endogenous plasmainsulin in man. J.Clin.Invest., I960, 39, p. II57-II75.
  250. Ziari M., Chassagne Michele, Brochart M. Possibilite d’unecarence conditionce on Prostaglandines chez les vaches parteuses de kystes ovariens. Ann.Rech.Vet., 1981, vol.12, No, I, p.19−25.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!