Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Исследование экстракции в статических и динамических условиях макро и микросистем при помощи термооптической спектроскопии

Диссертация: Исследование экстракции в статических и динамических условиях макро и микросистем при помощи термооптической спектроскопии
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Одним из решений в этой области являются микрофлюидные системы (МФС) или химические микрочипы, представляющие собой систему микроканалов, выполненных в пластинах малого размера, в которых проводят различные аналитические операции (смешивание, реакции, экстракционное или хроматографическое разделение, и т. п.). При переходе к МФС первоопределяющую роль играет выбор подходящего метода… Читать ещё >

Исследование экстракции в статических и динамических условиях макро и микросистем при помощи термооптической спектроскопии (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Цель работы
  • Научная новизна работы
  • Практическая значимость работы
  • В работе защищаются следующие положения
  • Апробация работы
  • Основные результаты диссертации изложены в следующих работах
  • Опубликованные статьи
  • Тезисы докладов
  • ОБОЗНАЧЕНИЯ
  • Химические соединения
  • Аббревиатуры
  • Измеряемые параметры.'
  • ГЛАВА 1. МИКРОФЛЮИДНЫЕ СИСТЕМЫ, ИЛИ СИСТЕМЫ МИКРОАНАЛИЗА НА ОСНОВЕ ХИМИЧЕСКИХ МИКРОЧИПОВ
    • 1. 1. Производство химических микрочипов
    • 1. 2. Методы реализации
      • 1. 2. 1. Смешивание и реакция в потоке
      • 1. 2. 2. Массопсренос в системах «жидкость-жидкость»
      • 1. 2. 3. Электрофоретическое разделение компонентов пробы
    • 1. 3. Системы детектирования аналитического сигнала в химических микрочипах
      • 1. 3. 1. Лазерно-индуцируемая флуоресценция
      • 1. 3. 2. Хемилюминесценция
      • 1. 3. 3. Термолинзовая микроскопия
      • 1. 3. 4. Электрохимическое детектирование
      • 1. 3. 5. Масс-спектрометрия
      • 1. 3. 6. Перспективы развития — интегрированная оптика

За последние двадцать лет масштаб анализируемых объектов стремительно снижается от сантиметровых и миллиметровых объемов к микрои нано-пространству. Основной мотивацией такого перехода является неослабевающий интерес к химическим и физическим характеристикам микропространства, а также к поиску новых платформ и приложений для их изучения. Все это диктует необходимость исследования современных возможностей анализа, возникающих при миниатюризации.

Одним из решений в этой области являются микрофлюидные системы (МФС) или химические микрочипы, представляющие собой систему микроканалов, выполненных в пластинах малого размера, в которых проводят различные аналитические операции (смешивание, реакции, экстракционное или хроматографическое разделение, и т. п.). При переходе к МФС первоопределяющую роль играет выбор подходящего метода детектирования, поскольку малый объем объектов исследования и низкие определяемые концентрации предъявляют определенные требования как к чувствительности, так и к аппаратурным возможностям методов. В настоящее время для оптического детектирования в МФС наиболее часто используют лазерно-индуцированную флуоресценцию, однако этот метод может быть применен исключительно к флуоресцирующим молекулам.

Методы лазерной термооптической (фототермической) спектроскопии относятся к молекулярной спектроскопии поглощения, что позволяет в качестве объектов исследования брать широкий круг соединений. Они основаны на регистрации изменений показателя преломления, вызванных нагревом среды вследствие поглощения электромагнитного излучения и давно применяются в аналитической химии. Их высокая чувствительность.

8 -12 позволяет исследовать объекты с оптической плотностью до 10 и концентрациями до 10.

Ю-10 М. Важной характеристикой термооптических эффектов является их локальность: они охватывают не весь объем исследуемого объекта, а только микропространство вокруг луча индуцирующего лазера, что позволяет не только проводить определения в малых объемах, но и сканирование исследуемых объектов.

Современное состояние термооптической спектроскопии в МФС можно охарактеризовать следующими основными направлениями развития: аналитическая химия (иммуноферментные методы, капиллярный электрофорез, проточно-инжекционный анализ, экстракционные процессы, ферментативный катализ) — синтетическая химия, исследования биохимии клетки. В области инструментальных подходов здесь доминируют спектроскопия фототермического отклонения, термолинзовая микроскопия, а основные достижения связаны с детектированием единичных молекул, исследованиями нанопространства. Однако спектроскопия поверхности раздела фаз жидкость-жидкость в микропространстве остается той областью, в которой еще много открытых вопросов. Достоинства шкалы микропространства позволяют с успехом переносить жидкость-жидкостную экстракцию в химические микрочипы. За счет большой специфической поверхности границы раздела фаз, а также высокого соотношения площади границы раздела к объему фаз, обеспечивается уменьшение расстояния при диффузионном переносе и сокращение времени диффузии. Проведение высокоэффективной жидкостной экстракции в МФС становится возможным без использования дополнительных механических операций.

Цель работы.

В связи со сказанным выше, цель работы можно сформулировать как расширение возможностей аналитического применения микрофлюидных систем и термооптических методов (термолинзовой спектрометрии и термолинзовой микроскопии) при исследовании двухфазных жидкость-жидкостных систем с термолинзовым детектированием. Достижение поставленной цели предусматривало решение следующих задач:

1. Оценку аналитических возможностей и аналитических характеристик термолинзовой спектрометрии и термолинзовой микроскопии для изучения двухфазных систем в макро-и в микро-вариантах.

2. Поиск новых аналитических экстракционно-фотометрических и экстракционно-термолинзовых условий и перенесение их в микрофлюидные системы.

3. Аналитическое применение микрофлюидных систем на примере экстракционного определения пестицидов карбаматного ряда в сочетании с разделением в химическом микрочипе и термолинзовым детектированием.

Научная новизна работы:

Расширены аналитические возможности микрофлюидных систем (химических микрочипов) и термолинзовой спектрометрии:

1. Изучена совокупность факторов (инструментальные настройки, характеристики среды, скорости потоков), которые позволяют исследовать динамику процессов массопереноса при помощи термооптических методов на уровне содержаний КУ^-КИм на расстояниях до границы поверхности раздела фаз от Ю 6 до 10~2 м как в статических условиях кюветы, так и в условиях потока в микрофлюидных системах.

— 72. Предложена простая модель, учитывающая массоперенос через границу раздела фаз жидкость-жидкость в статических условиях вследствие одновременного влияния диффузии и термодиффузии. Модель позволяет оценить условия термооптического эксперимента и может быть использована при реализации экстракционного разделения и концентрирования в микрофлюидных системах.

3. Предложены условия экстракционного концентрирования в двухфазном микрофлюидном потоке за счет достижения разницы скоростей потоков водной и органической фаз в условиях устойчивой границы раздела жидкость-жидкость. Абсолютное концентрирование в зависимости от природы растворителя и геометрии канала составляет от 50 (для толуола) до 5 раз (для 1-бутанола) с пределами обнаружения модельных систем Ю-9- 10″ 8 М.

4. Предложен термооптический вариант определения пестицидов карбаматного ряда в микрофлюидных чипах, позволяющий оперативно проводить определение пестицидов на нанограммовом уровне концентраций.

Практическая значимость работы:

1. Для реализации двухфазных микрофлюидных потоков с устойчивой границей раздела фаз жидкость-жидкость предложена топология химического микрочипа (материал — стекло или кварц) с микроканалом сложного профиля и гидрофобным покрытием части канала октадецилсиланом. Для водно-органических систем вода-толуол и вода-1-бутанол определены диапазоны скоростей потоков обеих фаз, в пределах которых возможно протекание экстракционных процессов, а граница раздела фаз остается стабильной (6 и 0.04 мкл/мин для системы вода-толуол и 6 и 0.35 мкл/мин для системы вода-1-бутанол).

2. Предложен новый способ инициирования процессов экстракции в химическом микрочипе (в отличие от существующего способа «остановки потоков») путем резкого сброса скорости органической фазы до малой величины при сохранении скорости водной фазы, позволяющий выполнять экстракцию в потоке при сохранении стабильной границы раздела фаз в течение длительного времени.

3. Предложены условия экстракционного концентрирования и селективного определения в химическом микрочипе пестицида карбаматного ряда карбарила в виде продукта его азосочетания с диазотированным триметиланилином, экстрагируемого толуолом, с о пределом обнаружения 7×10 М при помощи термолинзовои микроскопии.

— 84. Предложены условия экстракционного концентрирования и селективного определения в химическом микрочипе пестицидов карбаматного ряда (карбарила, карбофурана, бендиокарба и пропоксура) по реакции азосочетания с нитробензолдиазонием, экстрагируемого 1-бутанолом с пределами обнаружения (2 8) х КГ8 М при помощи термолинзовой микроскопии.

5. Выполнено электрофоретическое разделение пестицидов из потока органической фазы после проведения их экстракционного концентрирования в микрофлюидной системе. Продемонстрированы возможности микрофлюидных систем для аналитического электрокинетического разделения с гидродинамическим вводом пробы и определены границы варьирования напряжения и скоростей потока.

6. Предложены условия послеэкстракционного разделения продуктов азосочетания пестицидов карбаматного ряда (карбарила, карбофурана, бендиокарба и пропоксура) с п нитробензолдиазонием с пределами обнаружения 10 М в химическом микрочипе при помощи мицеллярной электрокинетической хроматографии с детектированием при помощи термолинзовой микроскопии.

В работе защищаются следующие положения:

1. Факторы, влияющие на сигнал термооптических методов — термолинзовой спектрометрии и термолинзовой микроскопии — в потоке и в статических условиях, и способы их учета в микрофлюидных системах.

2. Результаты исследования и особенности экстракционного массопереноса трис-(2-нитрозо-1-нафтолата) кобальта (Ш) и бис-диэтилдитиокарбамината меди (П) в системах вода-толуол и вода-хлороформ через границу раздела фаз в статических условиях макро-пространства кюветы с детектированием при помощи термолинзовой спектрометрии.

3. Результаты исследования и особенности экстракционного массопереноса трис-(2-нитрозо-1-нафтолата) кобальта (Ш) в системе вода-толуол через границу раздела фаз в двухфазном микрофлюидном потоке химического микрочипа с детектированием при помощи термолинзовой микроскопии.

4. Условия экстракционно-термолинзового определения пестицида карбаматного ряда карбарила в микрофлюидном варианте при последовательном проведении нескольких аналитических стадий (гидролиза, азосочетания, экстракции и детектирования окрашенного продукта в органической фазе), реализованных в химическом микрочипе.

— 95. Условия разделения и определения в химическом микрочипе пестицидов карбаматного ряда (карбарила, карбофурана, бендиокарба и пропоксура) при помощи мицеллярной электрокинетической хроматографии в микрофлюидном варианте с термолинзовым детектированием.

Апробация работы.

Основные результаты работы представлены на следующих конференциях: 33ш Коллоквиум «Colloquium Spectroscopuium Internationale» (CSI 2003) (7 — 12 сентября 2003, Гранада, Испания) — 28— Международный симпозиум «International Symposium & Exhibit on High Performance Liquid Phase Separations & Related Techniques» (HPLC 2004) (12 — 18 июня 2004, Филадельфия, США) — 19— Международный симпозиум «International Symposium on Microscale Bioseparations» (MSB2005) (31 июля — 4 августа 2005, Кобе, Япония) — 20 м Международный симпозиум «International Symposium on Micro-Scale Bioseparations» (MSB2006) (22 — 26 января 2006, Амстердам, Голландия) — 29ш Международный симпозиум «International Symposium on Capillary Chromatography» (ISCC2006) (29 мая — 6 июня 2006, Рива дель Гарда, Италия) — Международный конгресс «International Congress on Analytical Sciences» (ICAS2006) (25 — 30 июня 2006, Москва, Россия) — 21ш Международный симпозиум «International Symposium on Micro-Scale Bioseparations» (MSB2007) (14 — 18 января 2007, Ванкувер, Канада).

Основные результаты диссертации изложены в следующих работах:

По теме диссертации опубликовано 15 печатных работ в виде 8 статей и 7 тезисов докладов.

Опубликованные статьи:

1. Proskurnin М.А. Determination of Stability Constants by Thermal Lens Spectrometry / M.A. Proskurnin, V.V. Chernysh, S.V. Pakhomova, M.Yu. Kononets, A.P. Smirnova, D.A. Nedosekin // Anal. Sci. — 2001. — V. 17, Supplement. Proceedings of IUPAC International Congress on Analytical Sciences (ICAS 2001). — P. ill69-ill72. http://wwwsoc.nii.ac.jp/jsac/analsci/ICAS2001/pdfs/1100/1169p2045.pdf.

2. Проскурнин M.A. Термолинзовое определение кобальта нитрозо-нафтолами / М. А. Проскурнин, А. П. Смирнова, В. А. Филичкина, В. Б. Ивлева // Аналитика и контроль. -2003.-Т. 7,№ 1. — С. 54−63.

— 103. Проскурнин М. А. Определение неокрашенных органических соединений в водных растворах при помощи термолинзовой спектрометрии / М. А. Проскурнин, А. П. Смирнова, Н. Ю. Рагозина // Вестн. МГУ. Сер. 2. Химия. — 2003. — Т. 44. № 6. — С. 404−408.

4. Смирнова А. П. Исследования диэтилдитиокарбаминатов кобальта, никеля и меди при помощи термолинзовой спектрометрии / А. П. Смирнова, В. В. Черныш, М. А. Проскурнин // Журн. аналит. химии. — 2004. — Т. 59, № 5. — С. 480−489.

5. Смирнова А. П. Исследование процессов в двухфазных системах при помощи термолинзовой спектрометрии на примере трис-{2-нитрозо-1-нафтолата) кобальта (Ш) / А. П. Смирнова, Р. Ю. Шимко, М. А. Проскурнин // Вестн. МГУ. Сер. 2. Химия. — 2006. — Т. 47, № 3,-С. 168−173.

6. Смирнова А. П. Исследование процессов в двухфазных системах при помощи термолинзовой спектрометрии: экстракционное определение меди в виде диэтилдитиокарбамината /А.П. Смирнова, М. А. Проскурнин // Вестн. МГУ. Сер. 2. Химия. — 2007. — Т. 48, № 1. — С. 49−55.

7. Smirnova A. Micro-multiphase laminar flows and detection of carbaryl derivative / A. Smirnova, K. Mawatari, A. Hibara, M.A. Proskurnin, T. Kitamori // Anal. Chim. Acta. — 2006. — V. 558. — P. 69−74.

8. Smirnova A. Application of a Micro Multiphase Laminar Flow on a Microchip for Extraction and Determination of Derivatized Carbamate Pesticides / A. Smirnova, K. Shimura, A. Hibara, M.A. Proskurnin, T. Kitamori //Anal. Sci. — 2007. — V. 23. — P. 103−108.

Тезисы докладов:

9. Smirnova A. Investigation of the Two-Phase Equilibria at the Nanogram Level of Reactants Using Thermal Lensing / A. Smirnova and M. Proskurnin // 33th Colloquium Spectroscopuium Internationale (CSI 2003), September 7 — 12, 2003, Granada, Spain, Abstract Book — P. 72.

10. Smirnova A. Determination of Carbamate Pesticides using Micro Multiphase Laminar Flows and Thermal Lens Microscope / A. Smirnova, K. Mawatari, A. Hibara, M. A. Proskurnin and T. Kitamori // 28th International Symposium & Exhibit on High Performance Liquid Phase Separations & Related Techniques (HPLC 2004), June 12 — 18, 2004, Philadelphia, USA, Abstract Book — P. 54.

11. Smirnova A. Solvent Extraction Enrichment of Derivatives of Carbamate Pesticides in Micro Multiphase Laminar Flows / A. Smirnova, K. Mawatari, A. Hibara, T. Kitamori // 19th.

International Symposium on Microscale Bioseparations (MSB2005), July 31 — August 4, 2005, Kobe, Japan, Abstract Book — P. 38.

12. Smirnova A. Application of micro multiphase laminar flow for extraction and detection of carbamate pesticides derivatives in microchip / A. Smirnova, A. Hibara, and T. Kitamori // 20th International Symposium on Micro-Scale Bioseparations (MSB2006), January 22 — 26, 2006, Amsterdam, Netherlands, Abstract Book — P. 88.

13. Smirnova A. Hydrodynamic Injection Method for Interfacing Pressure-Driven Solvent Extraction and Electrophoresis on Microchip / A. Smirnova, K. Shimura, A. Hibara and T. Kitamori // 29th International Symposium on Capillary Chromatography (ISCC2006), May 29 — June 2, 2006, Riva del Garda, Italy, Abstract Book — P. 93.

14. Smirnova A. Analysis of carbamate pesticides in microchip with TLM detection / A. Smirnova, A. Hibara, M.A. Proskurnin and T. Kitamori // International Congress on Analytical Sciences (ICAS2006), June 25 — 30, 2006, Moscow, Russia, Abstract Book — P. 138.

15. Smirnova A. Hydrodynamic injection method for interfacing extraction and electrophoresis on microchip for pesticides determination / A. Smirnova, K. Shimura, A. Hibara and T. Kitamori // 21th International Symposium on Micro-Scale Bioseparations (MSB2007), January 14 — 18, 2007, Vancouver, Canada, Abstract Book — P. 113.

ОБОЗНАЧЕНИЯ.

Химические соединения.

Phen -1,10-фенантролинпп -2-нитрозо-1-нафтолddcанион диэтилдитиокарбаминовой кислоты;

ОДСоктадецилтрихлоросилан;

ТМА-2,4,6-триметиланилин;

НБД -3-нитробензолдиазоний;

ДДСН — додецилсульфат натрия;

Аббревиатуры.

МФС-микрофлюидные системыTJ1Cтермолинзовая спектрометрияTJ1Mтермолинзовая микроскопияЭФэлектрофорезКЭкапиллярный электрофорез;

МЭКХмицеллярная электрокинетическая хроматографияИзмеряемые параметры 9 -аппаратный термолинзовый сигнал;

0 -аналитический термолинзовый сигнал (термолинзовый сигнал) — © -фотометрический сигнал (оптическая плотность или аналитический сигнал термолинзы);

1Ринтенсивность излучения зондирующего лазера (отн. ед.) — Кдлина волны индуцирующего лазера (нм);

Еофактор чувствительности термолинзовых измерений, нормированный на мощность индуцирующего излучения (Вт-1) — Ремощность излучения, индуцирующего термолинзу (Вт) — Аоптическая плотность образца (среды) —? -кажущийся молярный коэффициент поглощения (л/(моль-см)) — / -длина оптического пути (см) — dn/dT-температурный градиент показателя преломления (К-1) — ккоэффициент теплопроводности (мВт-см^'-К-1) — к' -коэффициент усиления синхронного усилителяТабсолютная температура (К) — srотносительное стандартное отклонениерплотность среды (кг/м3) — Срудельная теплоемкость (Дж/кгК) — Dкоэффициент диффузии (м2/с) — dвнутренний диаметр капилляра (мкм).

Выводы из работы.

1. Продемонстрированы возможности термооптической спектроскопии при исследовании экстракционных процессов, проходящих на границе раздела фаз жидкость-жидкость.

Показано, что термооптическая спектроскопия позволяет исследовать динамику процессов массопереноса на уровне содержаний 10~7 — 10″ 4 М на расстояниях до границы.

6 -2 поверхности раздела фаз 10 -10 м.

2. На основании расчетов чисел Грассхофа и Рейнольдса показано, что для объемов порядка 0.1−1 мл конвекция вносит значительный вклад в погрешность термолинзовых измерений, а в микропространстве (0.1−1 мкл) конвекционными колебаниями можно пренебречь. За счет оптимального выбора параметров термолинзовых измерений возможно обеспечить условия, в которых конвекционные колебания сигнала незначимы, что увеличивает точность измерений и исключает фактор, мешающий исследовать массоперенос через границу раздела фаз в двухфазовых системах жидкость-жидкость.

3. На основании расчетов размера индуцируемой термолинзы в системах на уровне концентрации компонентов 10″ 8- Ю^М показано, что при выбранных параметрах термолинзового микроскопа (532 нм, мощность индуцирующего лазера 75 мВт, частота прерывания луча индуцирующего лазера 1 кГц) размер термолинзы составляет 55 ± 3 мкм, что позволяет использовать термолинзовую микроскопию для исследования процессов, проходящих вблизи поверхности раздела фаз жидкость-жидкость.

4. Предложено использовать термолинзовый микроскоп и химический микрочип со сложным профилем канала для реализации двухфазового микропотока и исследования процессов комплексообразования и диффузии, проходящих через границу раздела фаз жидкость-жидкость в условиях потока. На примере /и/?нс-(2-нитрозо-1-нафтолата) кобальта (Ш) предложены условия осуществления экстракции в микропотоке в диапазоне концентрации с пределом обнаружения кобальта 3×10 8 М.

5. Предложены условия экстракционного определения пестицида карбаматного ряда карбарила в химическом микрочипе с термолинзовым детектированием в диапазоне концентраций Ю^-Ю^М. Перенесение всех стадий анализа (гидролиз, азосочетание, экстракция) в химический микрочип позволило снизить предел обнаружения по о сравнению со спектрофотометрическими измерениями до 5×10 Ми сократить время анализа до 8 мин.

— 1706. Предложены условия суммарного экстракционного определения пестицидов карбаматного ряда в химическом микрочипе со следующими пределами обнаружения: карбарила (2 х Ю-8 М), карбофурана (1 х Ю-8 М), пропоксура (4×10″ 8 М) и бендиокарба (1×10″ 7М).

7. В химическом микрочипе предложены условия гидродинамического ввода пробы и электрокинетического разделения продуктов азосочетания пестицидов карбаматного ряда в 1-бутаноле при помощи мицеллярной электрокинетической хроматографии и термолинзового детектирования со следующими пределами обнаружения: карбарил (9 х Ю" 7 М), карбофуран (5 х Ю-7 М), пропоксур (5×10″ 7 М) и бендиокарб (2 х Ю-6 М). Проведение МЭКХ в химическом микрочипе с использованием термолинзовой микроскопии позволяет проводить определение пестицидов на уровне концентраций на 2 порядка меньшем, чем в капиллярной МЭКХ.

Благодарности.

В заключение автор выражает свою искреннюю и глубокую благодарность:

Е.К. Ивановой — преподавателю, вдохновившему на выбор аналитической химии, как призвания.

Руководителям курсовых и дипломных работ В. В. Кузнецовой и В. В. Чернышу.

Студентам Е. В. Леуткиной, М. Ю. Поповой, Д. В. Прозорову, Р. Ю. Шимко за помощь в работе.

Проф. Такехико Китамори за предоставление возможности выполнения научной работы в Японии.

Проф. Акихиде Хибара, Казуме Маватари и Кёхито Симура за помощь при постановке экспериментов в химических микрочипах и детектировании при помощи термолинзового микроскопа.

Проф. Сигеру Терабе за помощь при проведении мицеллярно-электрокинетической хроматографии в капилляре.

М.Ю. Кононцу, Н. В. Орловой, С. В. Пахомовой, С. Н. Бендрышевой, Д. А. Недосекину, А. В. Брусничкину за постоянную поддержку.

О.Л. Бутковой и Е. В. Хорошевой за опыт и наставления в практической аналитической химии.

Моим родителям.

Заключение

.

В целом, задачи и цели, поставленные в работе, выполнены. Расширены возможности аналитического применения микрофлюидных систем и термооптических методов за счет комбинированного подхода при исследовании двухфазных жидкость-жидкостных систем с термолинзовым детектированием. Оценены аналитические возможности и аналитические характеристики термолинзовой спектрометрии и термолинзовой микроскопии для изучения двухфазных систем в макрои в микро-вариантах. Показано, что термолинзовая микроскопия, как и термолинзовая спектрометрия обладают достаточно широкими возможностями. Несмотря на то, что оба метода относятся к молекулярной термооптической спектроскопии, у каждого из них есть свои особенности, которые определяют область их применения и круг решаемых задач. Так, инструментальные особенности (мощность излучения индуцирующего лазера, частота прерывания луча, размер термолинзы) в термолинзовой спектрометрии и термолинзовой микроскопии определяют масштаб исследуемых образцов (в первом случае — это объемы порядка 0.15 мл, во втором — снижение до 100−500 нл) и минимальное расстояние до границы раздела фаз жидкость-жидкость, на котором возможно исследовать процессы, проходящие на поверхности раздела (TJIC— 100 мкм, ТЛМ — 25 мкм). Поскольку сигнал обоих методов основан на термооптическом эффекте оценено влияние температурных изменений в среде (конвекционных флуктуаций) на термолинзовый сигнал и теоретически доказано, что в микропространстве конвекционными колебаниями можно пренебречь, а при измерениях в кювете конвекция вносит значительный вклад в погрешность термолинзового сигнала термолинзового спектрометра. Мы решили эту проблему за счет подбора специальных настроек спектрометра, которые снижают конвекционные флуктуации до нуля без изменений в чувствительности измерений, что значительно усилило возможности метода, в особенности при работе в органических средах и при исследованиях двухфазных систем. Поскольку поток является динамическим термооптическим фактором при работе в химических микрочипах, изучено влияние скорости потока и природы растворителя на воспроизводимость и чувствительность термолинзовых измерений в микропотоке и показано, что для микро-детектирования поток обеспечивает большую чувствительность термолинзового определения за счет оптимальных режимов теплообмена с окружающей средой. Показано, что термолинзовая спектрометрия обладает рядом преимуществ, позволяющих работать с многофазными системами в статических условиях кюветы, а термолинзовая микроскопия идеально подходит для изучения экстракционных процессов в микропотоках. Это дало возможность исследовать перенос вещества через границу раздела фаз жидкость-жидкость в статических условиях (TJ1C) на уровне концентраций Ю-6 — 10″ 4 М и условиях микропотока (TJ1M) на уровне концентраций 10 7 — 10~5М. Полученные результаты сумели описать, используя модель полуколичественной оценки массопереноса, в которой учли влияние диффузии и термодиффузии, вызванной периодическим образованием термолинзы.

Для выполнения аналитического определения в микропотоках использовали химические микрочипы, созданные по индивидуальному дизайну, что позволило реализовать не только проточную экстракцию в микрофлюидных системах, но и электрофорез с гидродинамическим вводом пробы. Предложили новый способ проведения экстракции в микрофлюидном потоке. Исследования экстракции в микропотоке, выполненные на модельной системе трис-(2-нитрозо-1-нафтолата) кобальта (Ш) в среде вода-толуол, привели к созданию аналитических методик определения пестицидов карбаматного ряда на химических микрочипах с термолинзовым детектированием. Перенесение всех аналитических стадий определения (гидролиз, азосочетание, экстракция) на один химический микрочип значительно упростило определение и сократило расход реагентов и время анализа, а использование ТЛМ детектирования привело к снижению пределов обнаружения на 2−3 порядка по сравнению со спектрофотометрическим определением. Успешное выполнение микрочипового электрокинетического определения предварительно синтезированных продуктов азосочетания пестицидов карбаматного ряда с хорошими метрологическими характеристиками, позволило разработать химический микрочип, объединяющий стадии гидролиза, азосочетания, экстракции и электрокинетического разделения вместе в общем микрофлюидном потоке.

Таким образом, в этой работе мы ответили на поставленные вопросы: определили достоинства и преимущества, которые дает реализация аналитических экстракционно-фотометрических и экстракционно-термолинзовых методик в микрофлюидных системах (химических микрочипах), показали насколько термолинзовое детектирование отвечает требованиям детектирования в микропространстве, выявили особенности исследования двухфазных систем «жидкость-жидкость» и, благодаря комбинированию экстракционных микрочиповых технологий с термолинзовой микроскопией, предложили новые методики аналитического определения.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Yi C.Q. Microfluidics technology for manipulation and analysis of biological cells / C.Q. Yi, C.W. Li, S.L.Ji, M.S. Yang// AnalyticaChimica Acta. 2006. — V. 560(1−2). — P. 1−23.
  2. Min J.H. The micro-total analytical system for the detection of bacteria/viruses / J.H. Min, A. Baeumner//Journal of Industrial and Engineering Chemistry. 2003. — V. 9(1). — P. 1−8.
  3. Bruin G.J.M. Recent developments in electrokinetically driven analysis on microfabricated devices / G.J.M. Bruin//Electrophoresis. 2000. — V. 21(18). — P. 3931−3951.
  4. Maims C. Grating coupled leaky waveguide micro channel sensor chips for optical analysis / C. Maims, J. Hulme, P.R. Fielden, N. J, Goddard // Sensors and Actuators B-Chemical. -2001. V. 77(3). — P. 671−678.
  5. Kutter J.P. Current developments in electrophoretic and chromatographic separation methods on microfabricated devices / J.P. Kutter // Trac-Trends in Analytical Chemistry. 2000. — V. 19(6). — P. 352−363.
  6. Karlinsey J.M. Pressure injection on a valved microdevice for electrophoretic analysis of submicroliter samples / J.M. Karlinsey, J. Monahan, D.J. Marchiarullo, J.P. Ferrance, J.P. Landers//Analytical Chemistry. 2005. — V. 77(11). — P. 3637−3643.
  7. Mogensen K.B. Recent developments in detection for microfluidic systems / K.B. Mogensen, H. Klank, J.P. Kutter//Electrophoresis. 2004. — V. 25(21−22). — P. 3498−3512.
  8. Sanders G.H.W. Chip-based microsystems for genomic and proteomic analysis / G.H.W. Sanders, A. Manz // Trac-Trends in Analytical Chemistry. 2000. — V. 19(6). — P. 364 378.
  9. Lee H.J. Marangoni flow in micro-channels / H.J. Lee, D.J. Fermin, R.M. Corn, H.H. Girault //Electrochemistry Communications. 1999. — V. 1(5). — P. 190−193.
  10. S.D. Minteer. Microfluidic techniques: reviews and protocols / edited by Shelley D. Minteer, Totowa, N.J.: Humana Press, 2006.
  11. P.C.H. Li. Microfluidic lab-on-a-chip for chemical and biological analysis and discovery, Boca Raton, Fla.: CRC Press, Taylor & Francis Group, 2006.
  12. .Г. Микрофлюидные аналитические системы (Часть 1) / Б. Г. Беленький, Н. И. Комяк, В. Е. Курочкин, А. А. Евстрапов, B.JI. Суханов // Научное приборостроение.- 2000. V. 10(2). — Р. 3−13.
  13. .Г. Микрофлюидные аналитические системы (Часть 2) / Б. Г. Беленький, Н. И. Комяк, В. Е. Курочкин, А. А. Евстрапов, B.JI. Суханов // Научное приборостроение.- 2000. V. 10(3). — Р. 3−16.
  14. .Г. Мультиплексная диагностика на основе биоузнавания: четыре поколения биосовместимых микрофлюидных систем / Б. Г. Беленький // Научное приборостроение. 2004. — V. 14(1). — Р. 3−9.
  15. P. Rai-Choudhury. Handbook of microlithography, micromachining and microfabrication, ed 1st. Bellingham, WA, SPIE Press, 1997.
  16. M.J. Madou. Fundamentals of microfabrication: The science of miniaturisation, ed 2nd, CRC Press, Boca Raton, 2002.
  17. Qin D. Microfabrication, microstructures and microsystems / D. Qin, Y.N. Xia, J.A. Rogers, R.J. Jackman, X.M. Zhao, G.M. Whitesides // Microsystem Technology in Chemistry and Life Science. 1998. — V. 194. — P. 1−20.
  18. Fintschenko Y. Silicon microtechnology and microstructures in separation science / Y. Fintschenko, A. van den Berg // Journal of Chromatography A. 1998. — V. 819(1−2). — P. 3−12.
  19. Tjerkstra R.W. Etching technology for chromatography microchannels / R.W. Tjerkstra, M. deBeer, E. Berenschot, J.G.E. Gardeniers, A. vandenBerg, M.C. Elwenspoek// Electrochimica Acta. 1997. — V. 42(20−22). — P. 3399−3406.
  20. A.A. Микрофлюидные чипы из полиметилметакрилата: метод лазерной абляции и термического связывания / А. А. Евстрапов, Т. А. Лукашенко, С. Г. Горный, К.В. Юдин//Научное приборостроение. 2005. — V. 15(2). — Р. 72−81.
  21. Sato К. Microchip-based chemical and biochemical analysis systems / K. Sato, A. Hibara, M. Tokeshi, H. Hisamoto, T. Kitamori//Advanced Drug Delivery Reviews. 2003. — V. 55(3).- P. 379−391.
  22. Sato K. Integration of chemical and biochemical analysis systems into a glass microchip / K. Sato, A. Hibara, M. Tokeshi, H. Hisamoto, T. Kitamori//Analytical Sciences. 2003. — V. 19(1). — P. 15−22.
  23. Sato K. Integration of flow injection analysis and zeptomole-level detection of the Fe (lI)-o-phenanthroline complex / K. Sato, M. Tokeshi, T. Kitamori, T. Sawada // Analytical Sciences. 1999. — V. 15(7). — P. 641−645.
  24. Sorouraddin H.M. Use of a thermal lens microscope in integrated catecholamine determination on a microchip / H.M. Sorouraddin, A. Hibara, T. Kitamori // Fresenius Journal of Analytical Chemistry. 2001. — V. 371(2). — P. 91−96.
  25. Yang M.S. Generation of concentration gradient by controlled flow distribution and diffusive mixing in a microfluidic chip / M.S. Yang, J. Yang, C.W. Li, J.L. Zhao // Lab on a Chip. -2002. V. 2(3). — P. 158−163.
  26. Lichtenberg J. Sample pretreatment on microfabricated devices / J. Lichtenberg, N.F. de Rooij, E. Verpoorte // Talanta. 2002. — V. 56(2). — P. 233−266.
  27. Fletcher P.D.I. Electrokinetic control of a chemical reaction in a lab-on-a-chip micro-reactor: measurement and quantitative modelling / P.D.I. Fletcher, S.J. Haswell, X.L. Zhang // Lab on a Chip. 2002. — V. 2(2). — P. 102−112.
  28. Dodge A. Spatiotemporal resonances in a microfluidic system / A. Dodge, A. Hountondji, M.C. Jullien, P. labeling//Physical Review E. 2005. — V. 72(5). — P.-.
  29. Wu Z.Y. A flexible sample introduction method for polymer microfluidic chips using a push/pull pressure pump / Z.Y. Wu, H. Jensen, J. Gamby, X.X. Bai, H.H. Girault // Lab on a Chip. 2004. — V. 4(5). — P. 512−515.
  30. Hatch A. A ferrofluidic magnetic micropump / A. Hatch, A.E. Kamholz, G. Holman, P. Yager, K.F. Bohringer//Journal of Microelectromechanical Systems. 2001. — V. 10(2). — P. 215−221.
  31. Kikutani Y. Micro wet analysis system using multi-phase laminar flows in three-dimensional microchannel network / Y. Kikutani, H. Hisamoto, M. Tokeshi, T. Kitamori // Lab on a Chip.- 2004. V. 4(4). — P. 328−332.
  32. Ueno K. Channel shape effects on the solution-flow characteristics and the liquid/liquid extraction efficiency in polymer microchannel chips / K, Ueno, H.B. Kim, N. Kitamura // Analytical Sciences. 2003. — V. 19(3). — P. 391−394.
  33. Hisamoto H. On-chip integration of neutral ionophore-based ion pair extraction reaction / H. Hisamoto, T. Horiuchi, M. Tokeshi, A. Hibara, T. Kitamori // Analytical Chemistry. 2001.- V. 73(6). P. 1382−1386.
  34. Tokeshi M. Integration of a microextraction system Solvent extraction of a Co-2-nitroso-5-dimethylaminophenol complex on a microchip / M. Tokeshi, T. Minagawa, T. Kitamori // Journal of Chromatography A. — 2000. — V. 894(1−2). — P. 19−23.
  35. Hibara A. Integrated multilayer flow system on a microchip / A. Hibara, M. Tokeshi, K. Uchiyama, H. Hisamoto, T. Kitamori//Analytical Sciences. 2001. V. 17(1). — P. 89−93.
  36. Hibara A. Spectroscopic analysis of liquid/liquid interfaces in multiphase microflows / A. Hibara, M. Nonaka, M. Tokeshi, T. Kitamori // Journal of the American Chemical Society. -2003. V. 125(49). — P. 14 954−14 955.
  37. Surmeian M. Three-layer flow membrane system on a microchip for investigation of molecular transport / M. Surmeian, M.N. Slyadnev, H. Hisamoto, A. Hibara, K. Uchiyama, T. Kitamori//Analytical Chemistry. 2002. — V. 74(9). — P. 2014−2020.
  38. Hibara A. Surface modification method of microchannels for gas-liquid two-phase flow in microchips / A. Hibara, S. Iwayama, S. Matsuoka, M. Ueno, Y. Kikutani, M. Tokeshi, T. Kitamori//Analytical Chemistry. 2005. — V. 77(3). — P. 943−947.
  39. Kumemura M. Quantitative extraction using flowing nano-liter droplet in microfluidic system / M. Kumemura, T. Korenaga // Analytica Chimica Acta. 2006. — V. 558(1−2). — P. 7579.
  40. Chen H. Microfluidic chip-based liquid-liquid extraction and preconcentration using a subnanoliter-droplet trapping technique / H. Chen, Q. Fang, X.F. Yin, Z.L. Fang // Lab on a Chip. 2005. — V. 5(7). — P. 719−725.
  41. Ueno M. Phase-transfer alkylation reactions using microreactors / M. Ueno, H. Hisamoto, T. Kitamori, S. Kobayashi // Chemical Communications. 2003. — V. (8). — P. 936−937.
  42. Hisamoto H. Fast and high conversion phase-transfer synthesis exploiting the liquid-liquid interface formed in a microchannel chip / H. Hisamoto, T. Saito, M. Tokeshi, A. Hibara, T. Kitamori//Chemical Communications. 2001. — V. (24). — P. 2662−2663.
  43. Manz A. Planar Chips Technology for Miniaturization and Integration of Separation Techniques into Monitoring Systems Capillary Electrophoresis on a Chip / A. Manz, D.J.
  44. Harrison, E.M.J. Verpoorte, J.C. Fettinger, A. Paulus, H. Ludi, H.M. Widmer // Journal of Chromatography. 1992. — V. 593(1−2). — P. 253−258.
  45. Moore A.W. Microchip Separations of Neutral Species Via Micellar Electrokinetic Capillary Chromatography / A.W. Moore, S.C. Jacobson, J.M. Ramsey // Analytical Chemistry. 1995.- V. 67(22). P. 4184−4189.
  46. .Г. Высокоэффективный капиллярный электрофорез и микрофлюидные чип-анализаторы (часть 1) / Б. Г. Беленький // Научное приборостроение. 2003. — V. 12(4). — Р. 42−56.
  47. Capillary Electrophoresis and Sample Injection Systems Integrated on a Planar Glass Chip / D.J. Harrison, A. Manz, Z.H. Fan, H. Ludi, H.M. Widmer // Analytical Chemistry. 1992.- V. 64(17). P. 1926−1932.
  48. Jacobson S.C. High-Speed Separations on a Microchip / S.C. Jacobson, R. Hergenroder, L.B. Koutny, J.M. Ramsey//Analytical Chemistry. 1994. — V. 66(7). — P. 1114−1118.
  49. Jacobson S.C. Microchip structures for submillisecond electrophoresis / S.C. Jacobson, C.T. Culbertson, J.E. Dalcr, J.M. Ramsey // Analytical Chemistry. 1998. — V. 70(16). — P. 3476−3480.
  50. Effenhauser C.S. Glass Chips for High-Speed Capillary Electrophoresis Separations with Submicrometer Plate Heights / C.S. Effenhauser, A. Manz, H.M. Widmer // Analytical Chemistry. 1993. — V. 65(19). — P. 2637−2642.
  51. Multichannel PCR-CE microdevice for genetic analysis / C.N. Liu, N.M. Toriello, R.A. Mathies//Analytical Chemistry. 2006. — V. 78(15). — P. 5474−5479.
  52. Ermakov S.V. Computer simulations of electrokinetic injection techniques in microfluidic devices / S.V. Ermakov, S.C. Jacobson, J.M. Ramsey // Analytical Chemistry. 2000. — V. 72(15). — P. 3512−3517.
  53. Paegel B.M. Microfluidic devices for DNA sequencing: sample preparation and electrophoretic analysis / B.M. Paegel, R.G. Blazej, R.A. Mathies // Current Opinion in Biotechnology. 2003. — V. 14(1). — P. 42−50.
  54. Grass B. Determination of selenoamino acids by coupling of isotachophoresis/capillary zone electrophoresis on a PMMA microchip / B. Grass, R. Hergenroder, A. Neyer, D. Siepe // Journal of Separation Science. 2002. — V. 25(3). — P. 135−140.
  55. Otsuka K. Micellar electrokinetic chromatography / K. Otsuka, S. Terabe // Bulletin of the Chemical Society of Japan. 1998. — V. 71(11). — P. 2465−2481.
  56. Roman G. T. Micellar electrokinetic chromatography of fluorescently labeled proteins on poly (dimethylsilokane)-based microchips / G.T. Roman, S. Carroll, K. McDaniel, C.T. Culbertson//Electrophoresis. 2006. — V. 27(14). — P. 2933−2939.
  57. Wakida S. On-chip micellar electrokinetic chromatographic separation of phenolic chemicals in waters / S. Wakida, K. Fujimoto, H. Nagai, T. Miyado, Y. Shibutani, S. Takeda // Journal of Chromatography A. 2006. — V. 1109(2). — P. 179−182.
  58. Chen L. Miniaturised isotachophoresis analysis / L. Chen, J.E. Prest, P.R. Fielden, N.J. Goddard, A. Manz, P.J.R. Day // Lab on a Chip. 2006. — V. 6(4). — P. 474−487.
  59. Quirino J.P. Sweeping: concentration mechanism and applications to high-sensitivity analysis in capillary electrophoresis / J.P. Quirino, J.B. Kim, S. Terabe // Journal of Chromatography A. 2002. — V. 965(1−2). — P. 357−373.
  60. Vandaveer W.R. Recent developments in electrochemical detection for microchip capillary electrophoresis / W.R. Vandaveer, S.A. Pasas-Farmer, D.J. Fischer, C.N. Frankenfeld, S.M. Lunte//Electrophoresis. 2004. — V. 25(21−22). — P. 3528−3549.
  61. Vandaveer W.R. Recent developments in amperometric detection for microchip capillary electrophoresis / W.R. Vandaveer, S.A. Pasas, R.S. Martin, S.M. Lunte // Electrophoresis. -2002. V. 23(21). — P. 3667−3677.
  62. Uchiyama К. Detection method for microchip separations / K. Uchiyama, H. Nakajima, T. Hobo//Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2004. — V. 379(3). — P. 375−382.
  63. Viskari P.J. Unconventional detection methods for microfluidic devices / P.J. Viskari, J.P. Landers//Electrophoresis. 2006. — V. 27(9). — P. 1797−1810.
  64. Johnson M.E. Fundamentals and practice for ultrasensitive laser-induced fluorescence detection in microanalytical systems / M.E. Johnson, J.P. Landers // Electrophoresis. 2004.- V. 25(21−22). P. 3513−3527.
  65. Du X.G. Static adsorptive coating of poly (methyl methacrylate) microfluidic chips' for extended usage in DNA separations / X.G. Du, Z.L. Fang // Electrophoresis. 2005. — V. 26(24). — P. 4625−4631.
  66. Hellmich W. Single cell manipulation, analytics, and label-free protein detection in microfluidic devices for systems nanobiology / W. Hellmich, C. Pelargus, K. Leffhalm, A. Ros, D. Anselmetti// Electrophoresis. 2005. — V. 26(19). — P. 3689−3696.
  67. Е.И. Микрофлюидная система для сорбционного концентрирования и разделения / Е. И. Моросанова, В. Н. Зимин, В. В. Амеличев, И. В. Годовицын, К. А. Логинова, А. Г. Борзенко, Ю. А. Золотов // Научное приборостроение. 2005. — V. 15(2). — Р. 21−26.
  68. М.Н. Микрочиповая мультиреакторная система для биохимического анализа / М. Н. Сляднев, В. А. Казаков, М. В. Лаврова, А. А. Танеев, Л. Н. Москвин // Научное приборостроение. 2005. — V. 15(2). — Р. 41−50.
  69. Ros A. Towards single molecule analysis in PDMS microdevices: from the detection of ultra low dye concentrations to single DNA molecule studies / A. Ros, W. Hellmich, T. Duong, D. Anselmetti//Journal of Biotechnology. 2004. — V. 112(1−2). — P. 65−72.
  70. Sanders J.C. Acousto-optical deflection-based whole channel scanning for microchip isoelectric focusing with laser-induced fluorescence detection / J.C. Sanders, Z.L. Huang, J.P. Landers // Lab on a Chip. 2001. — V. 1(2). — P. 167−172.
  71. Ferrance J. Exploiting sensitive laser-induced fluorescence detection on electrophoretic microchips for executing rapid clinical diagnostics / J. Ferrance, J.P. Landers // Luminescence, — 2001. V. 16(2). — P. 79−88.
  72. Chen T. Immunosorbent assay microchip system for analysis of human immunoglobulin G on MagnaBind™ carboxyl derivatized beads / T. Chen, J.D. Lei, A.J. Tong // Luminescence.- 2005. V. 20(4−5). — P. 256−260.
  73. Liu Y.J. Electrophoretic separation of proteins on a microchip with noncovalent, postcolumn labeling / Y.J. Liu, R.S. Foote, S.C. Jacobson, R.S. Ramsey, J.M. Ramsey // Analytical Chemistry. 2000. — V. 72(19). — P. 4608−4613.
  74. Foquet M. Focal volume confinement by submicrometer-sized fluidic channels / M. Foquet, J. Korlach, W.R. Zipfel, W.W. Webb, H.G. Craighead // Analytical Chemistry. 2004. — V. 76(6). — P. 1618−1626.
  75. Hashimoto F. Lateral diffusion dynamics for single molecules of fluorescent cyanine dye at the free and surfactant-modifted dodecane-water interface / F. Hashimoto, S. Tsukahara, H. Watarai//Langmuir. 2003. — V. 19(10). — P. 4197−4204.
  76. Garcia-Campana A. M. LIF detection of peptides and proteins in CE / A.M. Garcia-Campana, M. Taverna, H. Fabre//Electrophoresis. 2007. — V. 28(1−2). — P. 208−232.
  77. J.L. Fu, Q. Fang, T. Zhang, X.H. Jin, Z.L. Fang. Laser-induced fluorescence detection system for microfluidic chips based on an orthogonal optical arrangement. Analytical Chemistry 2006 Jun l-3827−3834.
  78. Yakovleva J. Microfluidic enzyme immunosensors with immobilised protein A and G using chemiluminescence detection / J. Yakovleva, R. Davidsson, M. Bengtsson, T. Laurell, J. Emneus//Biosensors & Bioelectronics. 2003. — V. 19(1). — P. 21−34.
  79. Yan J.L. Electrogenerated chemiluminescence on microfluidic chips / J.L. Yan, X.R. Yang, E.K. Wang // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2005. — V. 381(1). — P. 48−50.
  80. L’Hostis E. Microreactor and electrochemical detectors fabricated using Si and EPON SU-8 / E. L’Hostis, P.E. Michel, G.C. Fiaccabrino, D.J. Strike, N.F. de Rooij, M. Koudelka-Hep // Sensors and Actuators B-Chemical. 2000. — V. 64(1−3). — P. 156−162.
  81. Dovichi N.J. Laser-Induced Thermal Lens Effect for Calorimetric Trace Analysis / N.J. Dovichi, J.M.Harris //Analytical Chemistry. 1979. — V. 51(6). — P. 728−731.
  82. Tanyanyiwa J. Conductimetric and potentiometric detection in conventional and microchip capillary electrophoresis / J. Tanyanyiwa, S. Leuthardt, P.C. Hauser // Electrophoresis. -2002. V. 23(21). — P. 3659−3666.
  83. Wightman R.M. Voltammetry with Microscopic Electrodes in New Domains / R.M. Wightman//Science. 1988. — V. 240(4851). — P. 415−420.
  84. Lim Т.К. Microfabricated on-chip-type electrochemical flow immunoassay system for the detection of histamine released in whole blood samples / Т.К. Lim, H. Ohta, T. Matsunaga // Analytical Chemistry. 2003. — V. 75(14). — P. 3316−3321.
  85. Garcia C.D. Direct determination of carbohydrates, amino acids, and antibiotics by microchip electrophoresis with pulsed amperometric detection / C.D. Garcia, C.S. Henry // Analytical Chemistry. 2003. — V. 75(18). — P. 4778−4783.
  86. Wang J. Capillary electrophoresis microchip with a carbon nanotube-modified electrochemical detector / J. Wang, G. Chen, M.P. Chatrathi, M. Musameh // Analytical Chemistry. 2004. — V. 76(2). — P. 298−302.
  87. Vrouwe E.X. Direct measurement of lithium in whole blood using microchip capillary electrophoresis with integrated conductivity detection / E.X. Vrouwe, R. Luttge, A. van den Berg//Electrophoresis. 2004. — V. 25(10−11). — P. 1660−1667.
  88. Tanyanyiwa J. Capillary and microchip electrophoresis of basic drugs with contactless conductivity detection/J. Tanyanyiwa, P.C. Hauser//Electrophoresis. 2004. — V. 25(17).- P. 3010−3016.
  89. Tantra R. Integrated potentiometric detector for use in chip-based flow cells / R. Tantra, A. Manz//Analytical Chemistry. 2000. — V. 72(13). — P. 2875−2878.
  90. Ferrigno R. Potentiometric titrations in a poly (dimethylsiloxane)-based microfluidic device / R. Ferrigno, J.N. Lee, X.Y. Jiang, G.M. Whitesides // Analytical Chemistry. 2004. — V. 76(8). — P. 2273−2280.
  91. Monton M.R.N. Recent developments in capillary electrophoresis-mass spectrometry of proteins and peptides / M.R.N. Monton, S. Terabe//Analytical Sciences. 2005. — V. 21(1).- P. 5−13.
  92. Duan J.C. Rapid protein identification using monolithic enzymatic microreactor and LC-ESI-MS/MS / J.C. Duan, Z. Liang, C. Yang, J. Zhang, L.H. Zhang, W.B. Zhang, Y.K. Zhang // Proteomics. 2006. — V. 6(2). — P. 412−419.
  93. Lazar I.M. Subattomole-sensitivity microchip nanoelectrospray source with time-of-flight mass spectrometry detection / I.M. Lazar, R.S. Ramsey, S. Sundberg, J.M. Ramsey // Analytical Chemistry. 1999. — V. 71(17). — P. 3627−3631.
  94. Wen J. Microfabricated isoelectric focusing device for direct electrospray ionization-mass spectrometry / J. Wen, Y.H. Lin, F. Xiang, D.W. Matson, H.R. Udseth, R.D. Smith // Electrophoresis. 2000. — V. 21(1). — P. 191−197.
  95. Zhang B.L. A microdevice with integrated liquid junction for facile peptide and protein analysis by capillary electrophoresis/electrospray mass spectrometry / B.L. Zhang, F. Foret, B.L. Karger//Analytical Chemistry. 2000. — V. 72(5). — P. 1015−1022.
  96. Tachibana Y. Robust and simple interface for microchip electrophoresis-mass spectrometry / Y. Tachibana, K. Otsuka, S. Terabe, A. Arai, K. Suzuki, S. Nakamura // Journal of Chromatography A. 2003. — V. 1011(1−2). — P. 181−192.
  97. Camou S. PDMS 2D optical lens integrated with microfluidic channels: principle and characterization / S. Camou, H. Fujita, T. Fujii// Lab on a Chip. 2003. — V. 3(1). — P. 4045.
  98. Edel J.B. Thin-film polymer light emitting diodes as integrated excitation sources for microscale capillary electrophoresis / J.B. Edel, N.P. Beard, O. Hofmann, J.C. DeMello, D.D.C. Bradley, A.J. deMello//Lab on a Chip. 2004. — V. 4(2). — P. 136−140.
  99. Chabinyc M.L. An integrated fluorescence detection system in poly (dimethylsiloxane) for microfluidic applications / M.L. Chabinyc, D.T. Chiu, J.C. McDonald, A.D. Stroock, J.F.
  100. Christian, A.M. Karger, G.M. Whitesides //Analytical Chemistry. 2001. — V. 73(18). — P. 4491−4498.
  101. Chediak J.A. Heterogeneous integration of CdS filters with GaN LEDs for fluorescence detection microsystems / J.A. Chediak, Z.S. Luo, J.G. Seo, N. Cheung, L.P. Lee, T.D. Sands // Sensors and Actuators a-Physical. 2004. — V. 111(1). — P. 1−7.
  102. Uchiyama K. Polyester microchannel chip for electrophoresis incorporation of a blue LED as light source / K. Uchiyama, W. Xu, J.M. Qiu, T. Hobo // Fresenius Journal of Analytical Chemistry. — 2001. — V. 371(2). — P. 209−211.
  103. Lapos J.A. Dual fluorescence and electrochemical detection on an electrophoresis microchip /J.A. Lapos, D.P. Manica, A.G. Ewing// Analytical Chemistry. 2002. — V. 74(14). — P. 3348−3353.
  104. Thrush E. Integrated bio-fluorescence sensor / E. Thrush, O. Levi, W. Ha, K. Wang, S.J. Smith, J.S.Harris//Journal of Chromatography A. 2003. — V. 1013(1−2). — P. 103−110.
  105. Que L. Microfluidic electrodischarge devices with integrated dispersion optics for spectral analysis of water impurities / L. Que, C.G. Wilson, Y.B. Gianchandani // Journal of Microelectromechanical Systems. 2005. — V. 14(2). — P. 185−191.
  106. Minas G. Biological microsystem for measuring uric acid in biological fluids / G. Minas, J.S. Martins, J.C. Ribeiro, R.F. Wolffenbuttel, J.H. Correia // Sensors and Actuators a-Physical. -2004. V. 110(1−3). — P. 33−38.
  107. Zheng J.J. Miniaturized ultrathin slab gel electrophoresis with thermal lens microscope detection and its application to fast genetic diagnosis / J.J. Zheng, T. Odake, T. Kitamori, T. Sawada//Analytical Chemistry. 1999. — V. 71(21). — P. 5003−5008.
  108. Uchiyama K. An interface chip connection between capillary electrophoresis and thermal lens microscope / K. Uchiyama, A. Hibara, K. Sato, H. Hisamoto, M. Tokeshi, T. Kitamori // Electrophoresis. 2003. — V. 24(1−2). — P. 179−184.
  109. Sato K. Monitoring of intercellular messengers released from neuron networks cultured in a microchip / K. Sato, A. Egami, T. Odake, M. Tokeshi, M. Aihara, T. Kitamori // Journal of Chromatography A. 2006. — V. 1111(2). — P. 228−232.
  110. Goto M. Development of a microchip-based bioassay system using cultured cells / M. Goto, K. Sato, A. Murakami, M. Tokeshi, T. Kitamori // Analytical Chemistry. 2005. — V. 77(7). — P.2125−2131.
  111. Sato K. Determination of carcinoembryonic antigen in human sera by integrated bead bed immunoasay in a microchip for cancer diagnosis / K. Sato, M. Tokeshi, H. Kimura, T. Kitamori//Analytical Chemistry. 2001. — V. 73(6). — P. 1213−1218.
  112. Sato K. Molecular transport between two phases in a microchannel / K. Sato, M. Tokeshi, T. Sawada, T. Kitamori//Analytical Sciences. 2000. — V. 16(5). — P. 455−456.
  113. S.E. Bialkowski. Photothermal spectroscopy methods for chemical analysis. New York, A Wiley-Interscience publication, 1996.
  114. Dovichi N.J. Time-Resolved Thermal Lens Calorimetry / N.J. Dovichi, J.M. Harris // Analytical Chemistry. 1981. — V. 53(1). — P. 106−109.
  115. Leach R.A. Real-Time Thermal Lens Absorption-Measurements with Application to Flow-Injection Systems / R.A. Leach, J.M. Harris // Analytica Chimica Acta. 1984. — V. 164(OCT). — P. 91−101.
  116. Proskurnin M.A. A dual-beam thermal lens spectrometer for flow analysis / M.A. Proskurnin, A.G. Abroskin, D. Yu, D.Y. Radushkevich//Journal of Analytical Chemistry. 1999. — V. 54(1). — P. 91−97.
  117. Proskurnin M.A. Modern analytical thermooptical spectroscopy / M.A. Proskurnin, M.Y. Kononets // Uspekhi Khimii. 2004. — V. 73(12). — P. 1235−1268.
  118. Snook R.D. Thermal Lens Spectrometry a Review / R.D. Snook, R.D. Lowe // Analyst. -1995. — V. 120(8). — P. 2051−2068.
  119. Sovremennaya analyticheskaya i thermoopticheskaya spectroscopia / M.A. Proskurnin, M.Y. Kononets//Uspehi Chimii. 2004. — V. 73(12). — P. 1235−1268.
  120. Shen J. A Radial Finite-Model of Thermal Lens Spectrometry and the Influence of Sample Radius Upon the Validity of the Radial Infinite-Model / J. Shen, R.D. Snook // Journal of Applied Physics. 1993. — V. 73(10). — P. 5286−5288.
  121. Mandelis A. Photothermal Measurements of Internal Quantum and Energy Efficiencies of Semiconductor Photoelectrodes a Review / A. Mandelis//Analytical Sciences. — 1990. -V. 6(4). — P. 491−503.
  122. Martin-Biosca Y. Modeling of the low-frequency noise in thermal lens spectrometry / Y. Martin-Biosca, C. Roze, G. Ramis-Ramos // Israel Journal of Chemistry. 1998. — V. 38(3).- P. 169−174.
  123. Shen J. Model for Cw Laser-Induced Mode-Mismatched Dual-Beam Thermal Lens Spectrometry Based on Probe Beam Profile Image Detection / J. Shen, A.J. Soroka, R.D. Snook //Journal of Applied Physics. 1995. — V. 78(2). — P. 700−708.
  124. Faubel W. Photothermal trace detection in capillary electrophoresis for biomedical diagnostics and toxic materials (invited) / W. Faubel, S. Heissler, U. Pyell, N. Ragozina // Review of Scientific Instruments. 2003. — V. 74(1). — P. 491−494.
  125. Rosenzweig Z. Laser-Based Double-Beam Thermal Lens Detector for Microcolumn Liquid-Chromatography / Z. Rosenzweig, E.S. Yeung//Applied Spectroscopy. 1993. — V. 47(8).- P. 1175−1179.
  126. Logar J.K. The effects of eluent’s optothermal parameters on TLS detection in gradient HPLC / J.K. Logar, M. Franko // Review of Scientific Instruments. 2003. — V. 74(1). — P. 300−302.
  127. Uchiyama K. Thermal lens microscope / K. Uchiyama, A. Hibara, H. Kimura, T. Sawada, T. Kitamori // Japanese Journal of Applied Physics Part 1-Regular Papers Short Notes & Review Papers. 2000. — V. 39(9A). — P. 5316−5322.
  128. Proskurnin M.A. Optimisation of thermal lens microscopic measurements in a microchip / M.A. Proskurnin, M.N. Slyadnev, M. Tokeshi, T. Kitamori // Analytica Chimica Acta. -2003. V. 480(1). — P. 79−95.
  129. Hiki S. UV excitation thermal lens microscope for sensitive and nonlabeled detection of nonfluorescent molecules / S. Hiki, K. Mawatari, A. Hibara, M. Tokeshi, T. Kitamori // Analytical Chemistry. 2006. — V. 78(8). — P. 2859−2863.
  130. Uchiyama K. Optimization of an interface chip for coupling capillary electrophoresis with thermal lens microscopic detection / K. Uchiyama, M. Tokeshi, Y. Kikutani, A. Hattori, T. Kitamori//Analytical Sciences. 2005. — V. 21(1). — P. 49−52.
  131. Backofen U. A chip-based electrophoresis system with electrochemical detection and hydrodynamic injection / U. Backofen, F.M. Matysik, C.E. Lunte // Analytical Chemistry. -2002. V. 74(16). — P. 4054−4059.
  132. British Pharmacopeia. London, HM Stationary Office, 1998.
  133. Hachiya H. Micro environmental gas analysis system by using gas-liquid two phase flow. H. Hachiya, T. Matsumoto, M. Tokeshi, Y. Yoshida, T. Kitamori. MicroTAS. Malmo, Sweden, 26−30 Sept., 2004.
  134. Smirnova A. Micro-multiphase laminar flows for the extraction and detection of carbaryl derivative / A. Smirnova, K. Mawatari, A. Hibara, M.A. Proskurnin, T. Kitamori // Analytica ChimicaActa. 2006. — V. 558(1−2). — P. 69−74.
  135. Tamaki E. Microchannel-assisted thermal-lens spectrometry for microchip analysis / E. Tamaki, A. Hibara, M. Tokeshi, T. Kitamori//Journal of Chromatography A. 2003. — V. 987(1−2). — P. 197−204.
  136. Hiki S. Development of a desktop-sized thermal lens microscope / S. Hiki, M. Tokeshi, A. Hibara, T. Kitamori//Bunseki Kagaku. 2003. — V. 52(8). — P. 569−574.
  137. Proskurnin M.A. Optimisation of the optical scheme of a dual-beam thermal lens spectrometer using expert estimation / M.A. Proskurnin, V.V. Kuznetsova // Analytica ChimicaActa. 2000. — V. 418(1). — P. 101−111.
  138. Proskurnin M.A. Optimization of optical system parameters in dual-beam thermal lens spectrometry / M.A. Proskurnin, A.G. Abroskin // Journal of Analytical Chemistry. 1999. — V. 54(5). — P. 401−408.
  139. Abroskin A.G. Thermal Lens Spectrometry in Trace-Metal Analysis / A.G. Abroskin, T.V. Belyaeva, V.A. Filichkina, E.K. Ivanova, M.A. Proscurnin, V.M. Savostina, Y.A. Barbalat // Analyst. 1992. — V. 117(12). — P. 1957−1962.
  140. Proskurnin M.A. Optimization of the optical-scheme design for photothermal-lens microscopy in microchips / M.A. Proskurnin, M. Tokeshi, M.N. Slyadnev, T. Kitamori // Analytical Sciences. 2001. — V. 17. — P. S454-S457.
  141. B.M. Бырько. Дитиокарбаминаты. M., Наука, 1984.
  142. Alfonso E.F.S. Reduction of Convective Low-Frequency Noise in Thermal Lens Spectrometry / E.F.S. Alfonso, M.A.R. Revert, M.C.G. Alvarezcoque, G.R. Ramos // Applied Spectroscopy. 1990. — V. 44(9). — P. 1501−1507.
  143. К. Дерффель. Статистика в аналитической химии. М., Мир, 1994.
  144. В.М. Пешкова, В. М. Савостина, Е. К. Иванова. Оксимы. М., Наука, 1977.
  145. И.В. Пятницкий. Аналитическая химия кобальта. М., Наука, 1965.
  146. Р.К. Gessner. Disulfiram and its Metabolite, Diethyldithiocarbamate. Dordrecht, Kluwer Academic Publishers, 1992.
  147. C.D. Tom, R.A. Ludwig. The Dithiocarbamates and Related Compaunds. Amsterdam, Elsevier, 1962.
  148. Г. Ласлоне. Пестициды. M, Наука, 1976.
  149. A.M. Медовар. Пестициды и окружающая среда. М, Наука, 1982.
  150. Alvarez-Rodriguez L. Flow-injection spectrophotometric determination of phenolic drugs and carbamate pesticides by coupling with diazotized 2,4,6-trimethylaniline / L. Alvarez
  151. Rodriguez, J. Esteve-Romero, I. Escrig-Tena, M.C.G. Alvarez-Coque // Journal of Aoac International. 1999. — V. 82(4). — P. 937−947.
  152. В.И. Гришко, В. П. Гришко, И. Г. Юделевич. Лазерная аналитическая термолинзовая спектроскопия. Но в о с и б и р с к, Ин-т неорганической химии СО РАН, 1992.
  153. Е.Б. Сендел. Колориметрические методы определения металлов. М., Мир, 1964.
  154. В.А. Определение ультрамалых количеств кобальта с помощью термолинзовой спектрометрии / В. А. Фили ч к и н, а, А. Г. Аброскин, Ю. А. Барбалат, Т. В. Беляева, М. А. Проскурнин // Журн. аналит. химии. 1992. — V. 47(3). — Р. 503 506.
  155. А.П. Исследования диэтилдитиокарбаминатов кобальта, никеля и меди при помощи термолинзовой спектрометрии / А. П. Смир нова, В. В. Черныш, М. А. Проскурнин // Журн. аналит. химии. 2004. — V. 59(5). — Р. 480−489.
  156. Scharfe R. R. Stability of metal dithiocarbamate complexes / R.R. Scharfe, V.S. Sastri, C.L. Chakrabarti // Analyt. Chem. 1973. — V. 45(2). — P. 413−415.
  157. Lin C.C. Microchip electrophoresis with hydrodynamic injection and waste-removing function for quantitative analysis / C.C. Lin // Journal of Chromatography A. 2004. — V. 1051. — P. 69−74.
  158. Solignac D. Pressure pulse injection: a powerful alternative to electrokinetic sample loading in electrophoresis microchips / D. Solignac, M.A.M. Gijs//Analytical Chemistry. 2003. -V. 75(7). — P. 1652−1657.
  159. Lee N. Y. Pressure-driven sample injection with quantitative liquid dispensing for on-chip electrophoresis / N.Y. Lee, M. Yamada, M. Seki // Analytical Sciences. 2004. — V. 20(3). — P. 483−487.
  160. Buttgenbach S. A capillary electrophoresis chip with hydrodynamic sample injection for measurements from a continuous sample flow / S. Buttgenbach, R. Wilke // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2005. — V. 383(5). — P. 733−737.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!