Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Изучение регенерации и создание векторной конструкции для генетической трансформации рапса (Brassica napus L.)

Диссертация: Изучение регенерации и создание векторной конструкции для генетической трансформации рапса (Brassica napus L.)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящее время решены фундаментальные вопросы, связанные с передачей генов: разработаны методы трансформации, созданы плазмиды для переноса, подобраны условия эффективного введения чужеродных генов. С помощью генетической трансформации созданы трансгенные растения, представляющие интерес для сельскохозяйственного производства, в том числе, обладающие такими признаками как устойчивость… Читать ещё >

Изучение регенерации и создание векторной конструкции для генетической трансформации рапса (Brassica napus L.) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • РАЗДЕЛ I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
  • ГЛАВА 1. Молекулярно-генетические механизмы агробактериальной трансформации
    • 1. 1. Плазмиды агробактерий и опухолеобразование у высших растений
    • 1. 2. Процесс переноса Т-ДНК из агробактерии в растительную клетку
    • 1. 3. Конструирование бактериальных векторов для введения генов в растения
      • 1. 3. 1. Создание вектора на основе Ti-плазмиды
      • 1. 3. 2. Векторы для трансформации растений на основе Ti-плазмиды
      • 1. 3. 3. Маркёры трансформации
        • 1. 3. 3. 1. Селективные маркеры
        • 1. 3. 3. 2. Репортёрные гены
      • 1. 3. 4. Промоторы
  • ГЛАВА 2. Антимикробные белки и их использование для защиты растений
    • 2. 1. Классификация антимикробных белков
    • 2. 2. Растительные дефензины
    • 2. 3. Антимикробные свойства растительных дефензинов
    • 2. 4. Трансгенные растения с генами антимикробных белков, устойчивые к грибным патогенам
    • 2. 5. Очистка и экспрессия антимикробного белка MiAMPl
  • ГЛАВА 3. Регенерация из соматических тканей растений
    • 3. 1. Регенерации рода Brassica
    • 3. 2. Регенерация рапса
      • 3. 2. 1. Выбор экспланта рапса
      • 3. 2. 2. Роль фитогормонов в среде для регенерации рапса
  • ГЛАВА 4. Генетическая трансформация представителей рода Brassica с помощью Agrobacterium tumefaciens
    • 4. 1. Метод кокультивирования с агробактерией
    • 4. 2. Факторы, влияющие на агробактериальную трансформацию представителей рода Brassica
  • РАЗДЕЛ II. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • ГЛАВА 5. Объекты, условия и методы проведения исследований
    • 5. 1. Клонирование
      • 5. 1. 1. Место исследования
      • 5. 1. 2. Бактериальные штаммы, плазмиды и используемые среды для выращивания бактерий
      • 5. 1. 3. Выделение и очистка плазмцдной ДНК E. col
      • 5. 1. 4. Конструирование растительного вектора
      • 5. 1. 5. Трансформация агробактериального штамма AGL0 плазмидной ДНК pCAMBIA1305.1-MiAMPl
      • 5. 1. 6. Наращивание и приготовление агробактериального газона
      • 5. 1. 7. Проверка наличия рекомбинантных ДНК в агробактерии
      • 5. 1. 8. Проверка наличия v/r-генов в трансформируемом штамме агробактерии
      • 5. 1. 9. Анализ клонированного гена
      • 5. 1. 10. Культивирование и хранение бактериальных штаммов
    • 5. 2. Культивирование in vitro и оптимизация условий регенерации рапса
      • 5. 2. 1. Растительный материал
      • 5. 2. 2. Условия культивирования
      • 5. 2. 3. Подбор и приготовление питательных сред
      • 5. 2. 4. Введение в культуру in vitro
      • 5. 2. 5. Выбор экспланта рапса
      • 5. 2. 6. Укоренение регенератов в среде in vitro
      • 5. 2. 7. Математическая обработка
    • 5. 3. Агробактериальная трансформация рапса
      • 5. 3. 1. Подготовка эксплантов рапса к трансформации
      • 5. 3. 2. Получение ночной культуры агробакгерии
      • 5. 3. 3. Инокуляция экспланта агробактерией
      • 5. 3. 4. Получение трансформантов рапса
    • 5. 4. Методы анализа растений-трансформантов
      • 5. 4. 1. Гистологическая окраска GUS
      • 5. 4. 2. Выделение растительной геномной ДНК для ПЦР
      • 5. 4. 3. ПЦР-анализ наличия трансгена гигромицин-устойчивых растений
  • РАЗДЕЛ III. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • ГЛАВА 6. Клонирование ДНК, кодирующей ген антимикробного белка MiAMPl
    • 6. 1. Создание векторной конструкции с геном MiAMPl
    • 6. 2. Трансформация генетической конструкции в агробактерию
    • 6. 3. Проверка наличия v/r-генов в трансформируемом штамме агробактерии.8g
  • ГЛАВА 7. Оптимизация условий регенерации рапса
    • 7. 1. Оценка растительного материала на интенсивность морфогенеза в культуре in vitro
    • 7. 2. Влияние состава питательной среды на формирование адвентивных почек рапса в условиях in vitro
    • 7. 3. Влияние АБК на побегообразование эксплантов рапса
    • 7. 4. Сравнение питательных сред № 5 и № 9 на адвентивный морфогенез рапса сорта «Quantum» в условиях in vitro
    • 7. 5. Влияние фитогормонов на витрификацию растений-регенерантов рапса
  • ГЛАВА 8. Трансформация растений рапса геном антимикробного белка MiAMPl
    • 8. 1. Влияние антибиотиков на экспланты нетрансформированных растений
    • 8. 2. Определение эффективности трансформации рапса при помощи созданной векторной конструкции с геном MiAMPl
    • 8. 3. Анализ первичных трансформантов рапса
    • 8. 4. Определение экспрессии гена Р-глюкуронидазы (GUS)

В последние годы, в связи с задачами наращивания производства сельскохозяйственной продукции, большое внимание уделяется теоретическим разработкам и практической реализации внедрения новейших достижений биотехнологии. Проблема создания новых форм может быть решена по-разному для различных видов растений. Для одних, более лабильных, для этих целей может быть использована сомаклональная изменчивость, для других — это может быть слияние протопластов или мутагенез. К настоящему времени наиболее совершенным методом, позволяющим получать растения, обладающие новыми заранее заданными свойствами, несвойственными исходным формам, является генетическая инженерия.

Генетическая инженерия дает возможность получения растений со свойствами присутствие которых невозможно обеспечить методами традиционной селекции. Методами генетической инженерии можно конструировать функционально активные генетические структуры in vitro из фрагментов генов различных организмов и вводить такие конструкции в клетку, создавая условия для экспрессии введенных, часто совершенно чужеродных генов.

В настоящее время решены фундаментальные вопросы, связанные с передачей генов: разработаны методы трансформации, созданы плазмиды для переноса, подобраны условия эффективного введения чужеродных генов. С помощью генетической трансформации созданы трансгенные растения, представляющие интерес для сельскохозяйственного производства, в том числе, обладающие такими признаками как устойчивость к гербицидам, насекомым, вирусам, фитопатогенам, абиотическим стрессам и др. Трансгенные формы картофеля, томатов, табака, риса, кукурузы, сои, рапса, подсолнечника, льна проходят испытания на экспериментальных полях, а некоторые уже составляют значительную часть в валовом сельскохозяйственном продукте ряда стран, в первую очередь, США.

В сельском хозяйстве остро стоит проблема потерь урожая вследствие заражения культурных растений бактериальными и грибными патогенами. До недавнего времени она была трудно разрешима. Новые возможности в решении этих вопросов были получены благодаря активному изучению механизмов защиты растений против фитопатогенов и выявлению важной роли белков в этом процессе. Интенсивное изучение структуры и функций антимикробных пептидов, исследование их генетической обусловленности может помочь в создании методами генной инженерии трансгенных культурных растений, устойчивых к различным заболеваниям.

В последние годы развитие биотехнологии и генной инженерии позволило методом генетической трансформации, применяя векторные конструкции, создавать растения, устойчивые к грибным болезням. Это достигается главным образом путем введения в них чужеродных генов, кодирующих защитные белки, накопление которых в тканях растений губительно для патогенов. К таким белкам принадлежат короткие цистеин-богатые белки, получившие название антимикробных белков.

Агробактериальная трансформация известна как наиболее оптимальный способ введения чужеродных генов в двудольные растения. В связи с этим, достаточно актуальна проблема создания генетических конструкций, обеспечивающих высокий уровень трансформации и экспрессии целевого гена. От патогенов в большей степени страдают вегетативные органы растений. Поэтому экспрессия в них генов антимикробных белков, особенно-обладающих более высокой физиологической активностью пептидов из других растений, должна способствовать появлению необходимой устойчивости к патогенам у всего растения.

Актуальность нашего исследования определялась тем, что рапс (Brassica napus L.) является одной из ценных кормовых и масличных % $ f л i сельскохозяйственных культур, получивших большое распространение в Канаде, Китае, Европейских странах, Индии, и в других странах мира. В Иране ежегодно увеличивается площадь под посевами рапса. В 2004 году в Иране объем производства рапса на площади 72,000 га был 108,000 т.

Один из главных факторов, ограничивающих возделывание этой культуры — его восприимчивость к склеротинии (Sclerotinia sclerotiorum) -причинный агент белой болезни гнили. Применение фунгицидов не очень эффективно для устранения симптомов вызванных этой болезнью. Дополнительно применение фунгицидов увеличивает стоимость производства и может оказывать неблагоприятное влияние на окружающую среду. Поэтому идентификация генов для создания устойчивого рапса методами генной инженерии обеспечивает привлекательную альтернативу для улучшения устойчивости к этой болезни [Kazan et al., 1999].

Ускорить решение данной проблемы можно при помощи методов генной инженерии. McManus и его коллеги выделили из ядра австралийского ореха (Macadamia integrifolia) антимикробный белок MiAMPl в 1999 году в Австралии в университете Квинсленда. Они полагали, что ген, кодирующий этот белок, может быть использован для генетической манипуляции с целью увеличения устойчивости к болезням в трансгенных растениях.

В связи с вышеизложенным, настоящая работа посвящена анализу полученных при помощи ПЦР амплификации в Центре молекулярной биотехнологии РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева гена MiAMPl, кодирующего антимикробного белка австралийского ореха, созданию векторной конструкции с этим геном для проведения агробактериальной трансформации иранского рапса, который отличается генетической устойчивостью к болезни склеротинии.

Целью данной работы является создание растительного вектора, оптимизация условий регенерации и генетической трансформации рапса с использованием Agrobacterium tumefaciens. Для достижения поставленной цели нужно было решить следующие задачи:

1. Сконструировать растительный вектор;

2. Оптимизировать условия регенерации и агробактериальной трансформации рапса;

3. Отобрать первичные трансформанты рапса.

В связи с вышеизложенными, важнейший этап в создании трансгенных растений посвящен разработке эффективной методики регенерации и генетической трансформации рапса. Целью данной методики является проведение эксперимента по агробактериальной трансформации, в результате которой в геном рапса будет включен фрагмент чужеродной ДЕК, содержащий ген MiAMPl, продукт которого придаст растениям рапса устойчивость к склеротинии.

В работе по трансформации растений рапса применяли специальный агробактериальный штамм AGL0, содержащий растительный вектор pCAMBIAl305.1 с геном MiAMPl в качестве целевого гена.

Метод создания трансгенных растений рапса в культуре тканей включает в себя целый ряд важных этапов: выбор реципиентной системы, подбор оптимальных условий, культивирования, проведения регенерации и генетической трансформации, отбор устойчивых трансформантов рапса к антибиотику гигромицину и получение первичных трансформантов рапса. и.

ВЫВОДЫ.

1. На основе* стандартного бинарного вектора рСАМВ1А1305.1 создана генетическая конструкция pCAMBIA13 05.1-MiAMPl, содержащая ген MiAMPl под контролем конститутивного CaMV 35S промотора и терминатора вируса мозаики цветной капусты, а также маркерный ген GUS и ген гигромицинфосфотрансфераза (hpt), устойчивости к антибиотику гигромицину.

2. Подтверждено наличие гена MIAMP1 в созданной конструкции с помощью рестрикционного анализа, ПНР и секвенирования нуклеотидной последовательности гена.

3. Конструкция: pCAMBIA 1305.1-MiAMPl трансформирована в штамм AGL0 Agrobacterium tumefaciens для агробактериальной трансформации рапса.

4. Разработана оптимальная технология регенерации растений из разных соматических органов и тканей трёх сортов рапса:

— установлено, что эффективность реализации морфогенетического потенциала рапса зависит от генотипа, типа первичного экспланта, а также от гормонального состава питательной среды. Наивысшей регенерационной способностью среди изученных генотипов обладает сорт рапса «Quantum» ;

— выявлено, что более высокой регенерационной способностью обладают семядольные экспланты рапса по сравненшо с сегментами гипокотилей и корней на всех используемых питательных средах;

— включение в состав среды Мурасиге и Скуга 8 мг/л БАП, 1 мг/л НУК, 3 мг/л АБК и витаминов по Bs, вызывают наибольшую частоту регенерации побегов, формирующих из семядолей;

— добавление 3 мг/л АБК в питательную среду MS, индуцирующую морфогенез, как правило, вызывает значимое влияние на побегообразование, а также увеличивает частоту регенерации у всех типов эксплантов.

5. Витрификации регенерантов способствует повышенное содержание в питательной среде ауксина НУК или цитокинина БАП, а так же АБК.

6. Семядольные экспланты рапса проявляют высокую чувствительность к антибиотику гигромицину. Жизнеспособность побегов, сформировавшихся из семядольных эксплантов сорта «Quantum», сохраняется при концентрации 2 мг/л гигромицина до 40 дней, а при увеличении его содержания до Ш мг/л, все образующиеся побеги теряют жизнеспособность через 20 дней. Установлена оптимальная концентрация гигромицина для регенерации побегов-трансформантов на селективной среде 5−10 мг/л.

7. Добавление к среде цефотаксима даже в высоких концентрациях не изменяет жизнеспособность эксплантов и не снижает частоту побегообразования. При совместном действии цефотаксима и гигромицина, добавленных в максимальных из использованных нами концентрациях (цефотаксим 500 .мг/л), получен такой же эффект, как и при использовании одного гигромицина.

8. Созданная конструкция pCAMBIAl305.1-MiAMPl трансформирована в семядольные экспланты рапса методом агробактериальной трансформации.

9. Частота регенерации побегов, полученных из трансформированных семядольных эксплантов растений рапса сорта «Quantum» при их кокультивировании с агробактерией снижается. Увеличение продолжительности кокультивации трансформированных семядолей до 2-х суток вызывает снижение частоты регенерации. На рассеянном свету при снижении температуры с 26 °C до 22 °C этот показатель возрастает.

10. Получены первичные трансформированные регенераты рапса сорта «Quantum», устойчивые к гигромицину.

БЛАГОДАРНОСТИ.

Автор выражает глубокую признательность своими научными руководителями, профессору и заведующему кафедрой сельскохозяйственной биотехнологии РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева, академику РАСХН, д.б.н. B.C. Шсвслухе, и заведующему Центра молекулярной биотехнологии РГАУ-МСХА имени КА. Тимирязева, к.б.н. Г. И. Карлову за огромную помощь при проведении исследований, обсуждении результатов изложенных в диссертационной работе и ее подготовке.

Автор сердечно благодарит зав. лабораторией культуры тканей растений РГАУ-МСХА имени КА. Тимирязева, д.б.н. проф. Е. А. Калашникову за неоценимую помощь оказанную ей при проведении исследований, а также выражает искреннюю благодарность за помощь и поддержку всем преподавателям, сотрудникам, аспирантам и студентам кафедры с/х биотехнологии РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева, проф. д.б.н. Л. И. Хрусталевой, проф. д. с/х.п. Н. Б. Прониной, проф. д.б.н. В. М. Ковалеву, ст.н.сотр. Т. Н. Андреевной, доцент Н-ПКарсункиной, ст.н.сотр. И. В. Скоробагатовой, к.б.н. И. А. Фесенко, МЛО. Куклеву, А. Н. Сахаровой, Т. В. Даниловой, и О. Ю. Мироновой.

Глубокую признательность за помощь, ценные советы и участие автор выражает руководителю группы трансгенеза лаборатории физиологических и молекулярных механизмов адаптации ИФР РАН, к.б.н., Г. И. Ралдугиной и научными сотрудниками лаборатории генетической инженерии растений ИОГен РАН, д.б.н. проф. Э. С. Пирузян и д.б.н., И. В. Голденковой:

Автор признателен научным сотрудником кафедры генетики РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева, к.б.н. А. А. Соловьев, а также директору селекционной станции им. Н. Н. Тимофеева, к.б.н., Г. Ф. Монахосза поддержку при проведении исследований.

Автор благодарен заместителю заведующей лаборатории клеточной инженерии растений ВНИИСБ, глав.н.сотр. д.б.н. А. Н. Майсуряну, и ст.н.сотр. М. Д. Калиженковой за полезные советы и поддержку при проведении исследований.

Автор также благодарит научным представителем Министерства наук, исследований и технологий Ирана в России проф. А. Риази, а также всем добрым друзьям и коллегам Резе Салехи Джузаии, Асадоллаху Ахмадихаху, Резе Маали, Мохаммеду за всемерную помощь, поддержку и дружеское отношение.

Автор выражает глубокую признательность сотрудникам деканата по работе с иностранными учащимися за внимание и помощь.

Автор благодарен руководителю группы генетической инженерии растений Центра «Биоинженерия» РАН, О. А. Шульга за ценные советы.

Искреннюю благодарность автор выражает своим родителям Миргасем Гасеми Безди и Монаввар Ахмади за всемерную поддержку, и жене Неджат Ал и шах и за любовь, доброту, понимание и терпение.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Известно, что введение в геном растений гетерологичных генов устойчивости к биотическим и абиотическим стрессам может приводить к значительному положительному результату. Среди генов устойчивости представляют практический интерес гены, кодирующие короткие антимикробные цистеин-богатые белки. Структура антимикробного белка MiAMPl хорошо изучена, показана его антимикробная активность к широкому кругу грибных патогенов растений in vitro, в том числе лептосферии (L. maculans) и склеротинии (S. sclerotiorum). В связи с этим проведена работа по анализу и клонированию данного гена. При этом ген MiAMPl был клонирован в бинарный вектор рСАМВ1А1305.1 под контролем 35S промотора и терминатора CaMV.

При помощи созданной конструкции pCAMBIA1305.1-MiAMPl была проведена агробактериальная трансформация растений рапса, в результате исследований были подобраны условия для наиболее полного проявления регенерационной способности разных соматических тканей трёх иранских сортов рапса.

Проведенные эксперименты показывают, что органогенез в значительной степени зависит от генотипа, типа первичного экспланта, а также от состава питательной среды и концентрации регуляторов роста. Семядольные экспланты всех исследованных генотипов обладают большим морфогенетическим потенциалом, чем гипокотили и корни, что позволяет использовать их для получения растений-регенерантов. Выделено 2 сорта Quantum и Option 500 — отличающиеся высокой способностью к регенерации адвентивных побегов. Частота регенерации у семядольных эксплантов сорта Quantum достигала, в среднем, 68,8%, a Option 500 — 62,5%.

В результате многоплановых экспериментов определён оптимальный состав питательной среды, обеспечивающий максимальную регенерацию растений рапса из разных эксплантов. Для семядольных эксплантов-минеральная основа по Мурасиге и Скугу, витамины В5, сахароза 10 г/л, БАП 8 мг/л, НУК 1 мг/л и АБК 3 мг/лдля гипокотилей и корней минеральная основа по MS, витамины В5, сахароза 10 г/л, БАП 4 мг/л, НУК 2 мг/л и АБК 3 мг/л.

В работе по генетической трансформации были подобраны условия для трансформации семядольных эксплантов рапса. Это стало возможным благодаря отработке ряда приемов: способ инокуляции семядольных эксплантов агробактерией с минимальным снижением регенерационной способностипреодоление высокой чувствительности тканей рапса к гигромицину с помощью трёхэтапной схемы селекции — включение гигромицина в регенерационную среду в концентрации 2 мг/л и повторная селекция полученных регенерантов на морфогенетической среде с содержанием 5 и 10 мг/л гигромицина. Выявлена селективная концентрация гигромицина (5−10 мг/л), позволяющая с успехом отбирать трансформанты.

Таким образом, в результате проведённых экспериментов оптимизированы эффективные методики регенерации и агробактериальной трансформации сортов рапса. Были получены и изучены первичные трансформанты рапса сорта Quantum, экспрессирующие маркерные гены глзокуронидазы (GUS) и гигромицинфосфотрансферазы (hpt), содержащие ген MiAMPl. Наличие и экспрессия репортерного гена были доказаны методом анализа GUS-активности с помощью гистохимическога окрашивания. Первичные трансформированные регенераты были доказаны методом ПЦР, при использовании праймеров РСАМ1 и РСАМ2.

Полученные в ходе исследований трансформанты рапса могут быть использованы для дальнейшего изучения наследования и экспрессии гена MiAMFT.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Я.И., Кадо К. И. Стратегия создания трансгенных растении с устойчивостью к фигопатогенам и вредителям.// Биоорганическая химия. 1999. т. 25. № 12. с, 903−910,
  2. X. Преодоление нитрификации и улучшение акклиматизации растений при ююнальном микроразмножении. В кн.: Биология культивируемых клеток и биотехнология растений.//М.: Наука. 1991. с. 197−200.
  3. С.А. Оптимизация агробактериального метода трансформации кукурузы, дис. канд. биологических наук.// М.:РАН, Институт Физиология Растений им. К. А. Тимирязева, 2001. 120 с.
  4. К. Гормоны растений. Системный подходУ/ JVL: Мирт 1985. с. 42−46.
  5. Дж., Скотт Р., Армитидж Ф., Уолден Р. (Регд.) Генная инженерия растений.//Москва: Мир. 1991. 408 с.
  6. С.Д., Романов Г. А. Репортерные гены для генетической инженерии растений: характеристика и методы тестирования.// Фитология растений. 2000. т. 4−7. с. 479−488.
  7. Н. В., Александрова И. Г., Драгавцева Е. В. Значение гормонов в формировании витрифицированных побегов яблони при микроразмножении. В кн.: Биология культивируемых клеток и биотехнология растений.// М.: Наука. 1991. е. 1:89—1:92.
  8. . Генная инженерия растений.// 2000. М.: Школьник.
  9. JI.А. Генетическая инженерия растений: свершения и надежды.// Соросовский Образовательный Журнал. 2000. т. 6. № 10. с. 10−17.
  10. И) Майсурян А. Н., Капиженкова М. Д., Мазин В. В., Ляпкова Н. С., Дридзе И. Л., Харченко П. Н. Получение ярового рапса, устойчивого к гербициду «БАСТА» (глюфосинт). Методические рекомендации.// Москва. 2005. ФГОУ ВПО РГАУ-МСХА имени К. А. Тимирязева.
  11. С. И., Тюлькина Л. Г., Зверева С. Д. и Ралдугина Г.Н. Получение трансгенных растений Brassica campestris, экспрессирующих ген gfp. H физиология растений. 2003. т. 50. № 2. с. 309−315.
  12. Т., Фрич Э., Сэмбрук Д. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование.//Москва: Мир. 1985. 480с.
  13. Э.С., Адрианов В. М. Плазмиды агробактерий и генетическая инженерия растений.//М.:Наука. 1985. с. 62−73.
  14. П.В. Применение агробактериальной трансформации в селекции белокочанной капусты на устойчивость к болезням: дис. канд. биологических наук.// М.: МСХА, 2002. 162 с.
  15. Ралдугина Г. Н, Горелова С. В., Кожемякин А. В. Стабильность и наследование трансгенов в растениях рапса.// физиология растений. 2000. т. 47. № 3. с. 437 445.
  16. Г. Н., Соболкова Г. И. Генотипические различшг приг действии абсцизовой кислоты на каллусные культуры Brassica napus L.// Физиология растений. 1994. т. 41. № 5. с. 702−706.
  17. Г. Н., Соболкова Г. И. Факторы, влияющие на органогенез у семядольных эксплантов рапса.// физиология растений. 1995. т. 42. с. 916−922.
  18. В.Н. Основы генетической инженерии.// СПБ.: СПБГТУ. 1999. с. 372 380.
  19. С.А., Катаева П., Миляена Э. Л. Морфогенетические особенноспг побегов каперса и системе клонального микроразмножения.// Физиология растений. 1990. т. 37. № 1. с. 169−176.
  20. Л.А., Создание векторных конструкций, содержащих гены фунгицидно бактериальных пептидов, и анализ полученных с их помощью трансгенных растений,// дис. канд. биологических наук. М.:ВНИИ Сельскохозяйственной Биотехнологии. 2002. 98 с.
  21. B.C., Калашникова Е. А., Воронин Е. С. и др. Сельскохозяйственная Биотехнология. 2-е изд., перераб. и доп.//М.: Высш. шк 2003.469 с.
  22. Arroyo R., Revilla M.A. In vitro Plant Regeneration from Cotyledon and Hypocotyl Segments in Two Bell Pepper Cultivars.// Plant Cell Rep. 1991. V. 10. N. 8. P. 414 416.
  23. Benoit L., Manjusha V., Tzvi Т., Vitaly C. The VirE3 protein of Agrobacterium mimics a host cell function required for plant genetic transformation.// The EMBO Journal. 2005. 24:428−437.
  24. Binns A.N., Thomashow M.F. Cell biology of Agrobacterium infection and transformation of plants.// Ann. Rev. Microbiol.- 1988, — V.42.- P.575−606.
  25. Bisht N.C., Burma P.K., Pental D. Development of 2,4-D-resistant transgenics in Indian oilseed mustard {Brassica juncea).// Current Science. 2004. V. 87, No. 3. P. 367−370.
  26. Blackshow R.E., Kanashiro D., Moloney M.M., Crosby W.L. Growth, Yield and Quality of Canola Expressing Resistance to Acetolactate Synthase Inhibiting Herbicides.// Can. J. Plant. Sci. 1994. V. 74. P. 745−751.
  27. Bol J.F., Linthorst H.J.M., Cornellissen B.J.C. Plant pathogenesis-related proteins induced by virus infection.// Annu. Rev. Phytopathol.- 1990, — V.28.- P. 113−138.
  28. Boman H.G. Peptide antibiotics and their role in innate immunity.// Annu. Rev. Immunol. 1995.- V.13.-P.61−92.
  29. Boulter M.E., Cray E., Simpson P., Shields R., Croy R.R.D. and Shirsat A.H. Transformation of Brassica napus L. (oilseed rape) using Agrobacterium tumefaciens and Agrobacterium rhtzogenes- a comparison.// Plant Science. -1990. -V. 70-P. 91−99.
  30. Broekaert W.F. et al. Biocidal Chitin-Binding Proteins.// WO. 1994. 94/11 511.
  31. Broekaert W.F. et al. Biocidal Proteins.// WO. 1992a. 92/21 699.
  32. Broekaert W.F. et al. Biocidal Proteins.// WO. 1993. 93/5 153.
  33. Broekaert W.F., Cammue B.P.A., De Bolle M.F.C., Thevissen K., De Samblanx G.W., and Osborn RW. Antimicrobial peptides from plants.// Critical Rev. Plant Sci. 1997. 16:297−323.
  34. Broekaert W.F., Marien W., Terras F.R.G. et al. Antimicrobial Peptides from Amaranthus caudatus Seeds with Sequence Homology to the Cysteine/Glycine-Rich Domain of Chitin-Binding Proteins.// Biochemistry.- 1992b.- V.31.- P.4308−4314.
  35. Broekaert W.F., Terras F.R.G., Cammue B.P.A., Osborn R. W. Plant Defensins: Novel Antimicrobial Peptides as Components of the Host Defense System.// Plant Physiol. 1995. V. 108. P. 1354−1358.
  36. Broglie K., Chet I., Holliday M., Cressman R., Bidille P., Broglie R. Transgenic Plants with Enhanced Resistance to the Fungal Pathogen Rhizoctonia solani. ll Science. 1991. V. 254. P. 1194−1197.
  37. Bushnell W.R., Somers D.A., Giroux R.W., Szabo L.J. and Zeyen R.J. Genetic engineering of disease resistance in cereals.// Can. J. Plant. Pathol. 1998. 20:137 149.
  38. CAMBTA vectors p., Version 3.10. Nov. 2001.
  39. Cardoza V, Stewart C.N. Agrobacterium-mQdmtQd transformation of canola.// Transgenic Crops of the World Essential Protocols. 2004. Netherlands. P. 379−387.
  40. Cardoza V., Stewart C.N. Increased Agrobacterium-mediatGd transformation and rooting efficiencies in canola {Brassica napiis L.) from hypocotyl segment explants.// 2003. Plant Cell Rep. 21:599−604.
  41. Chen L.F.O., Huang C.Y., Charng Y.Y., Sun C.W. and Yang S.F. Efficiency on Agrobacterium mediated transformation of antiscense genes in broccoli {Brassica oleracea var. itaUcd) JIIn Vitro Cell Dev. Biol. Plant. 1999, 35. 63A.
  42. Chen L.F.O., Huang J.Y., Chen H.H. and Shaw J.F. Transformation of ethylerie-response-sensor (ERS) mutant gene in broccoli {Brassica oleracea var. italica) by Agrobacterium tumefaciens.///" Vitro Cell Dev. Biol. Plant. 2001. 37. 37A.
  43. Chen L.F.O., Yang S.F., Huang J.Y. High Efficiency Plant Transformation of Brassica oleracea. 2003. US Patent. #6,667,428 Bl.
  44. Chen Y., Rao Y. and Meng J. Reating new variety with Sclerotinia sclerotiorum resistance by transforming two broad-spectrum antifungal genes into Brassica napusL., Molecular Plant Breeding. 2003. 1: 457−463.
  45. Cheng Z.D., Wei Z.M. and Xu Z.H. Transformation of Brassica napus Using Agrobacterium tumefaciens and Regeneration of Transgenic Plants.// Journal of Integrative Plant Biology. 2005.
  46. Chi G.L., Batfield D.C., Sim G.E., Pua E.C. Effect of AgN03 and Aminoethoxy-vinylglycine on in vitro Organogenesis from Seedling Explants of Recalcitrant Brassica Genotypes.//Plant Cell Rep. 1990. V. 9. N. 4. P. 195−198.
  47. Chi G.L., Pua E.C. Ethylene Inhibitors Enhanced Shoot Regeneration from Cotyledons of Brassica campestris ssp. chinensis (chinese cabbage) in vitro. II Plant Sci. 1989. V. 64. N. 2. P. 243−250.
  48. Chiang M.M., Hadwiger L. A. The Fusarium solan induced exspressionof a pea gene family encoding high cysteine content proteins.// Mol. Plant Microbe Interact. -1991.-V.4.-P. 324−331.
  49. Christey M. C, Sinclair B.K., Braun R.H., Wyke L. Regeneration of transgenic vegetable brassicas {Brassica oleracea and B. campestris) via Ri-mediated transformation.//Plant Cell Reports. -1997. V. 16 — P. 587−593.
  50. Clark M.S. Plant Molecular Biology A Laboratory Manual.// Springer Lab Manual. Scientific Publishing Services (P). 1997. Madras, Germany. 529 c.
  51. Curtis O.F., Shetty К. Growth medium effects on vitrification, total phenolics, chlorophyll, and water content of in vitro propagated oregano clones.// Acta Horticulture. 1996. 426: 498−503.
  52. De Wet J.R., Wood K.V., Deluca M., Helinski D.R. Firely luciferase gene: structure and expression in mammalian cells.// Mol. Cell. Biol. 1987. V. 7. P. 725−737.
  53. Dong N., Williams N.T., Mcmahan C.M., Rath D., Pearson C., Cornish K. Factors Affect Agrobacterium-Mcdiatcd Sunflower Transformation.// In Vitro Biology Meeting. 2005. 41. P. 30-A.
  54. Douglas C.J., Staneloni R.J., Rubin R.A. and Nester E.W. Identification and genetic analysis an Agrobacterium tumefaciens chromosomal virulence region.// J. Bacterid. 1985.-V. 161.-P. 850−860.
  55. Eduardo R., Alexandre S., Karina P., Suzana N., Maira G., Josias C.F., Elibio L.R. and Francisco J.L.A. Transgene elimination in GM dry bean and soybean lines.// Genetics and Molecular Research. 2005. 4 (2): 177−184.
  56. Edwards KJ. Plant Biotechnology. Comparative. Biochemistry and Physiology.// Part A. 134. 2003. S1-S237.
  57. Farsi M., Zolala J. Introduction to Plant Biotechnology.// Ferdowsi University of Mashhad: 2004. 495 c.
  58. Fromm M.E., Taylor L.P., Walbot V. Expression of genes transferred into monocot and dicot plant cells by electroporation.// Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1985. V.82. P. 5824−5825.
  59. Fry J., Barnason A., Horsch R.B. Transformation of Brassica napus with Agrobacterium tumefaciens based vectors.// PlantCell Reports. 1987. 6: 321−325.
  60. Funakoshi Т., Takehiko H., Eiichi I. and Hiroyuki A. Gene expression of lactoferrin-derived antimicrobial peptides in rice.// 4th International Crop Science Congress. 2004. Brisbane, Australia.
  61. Gamborg O.L., Miller R.A., Ojima K. Nutrition requirements of suspension cultures of soybean root cells.// Expt. Cell. Res. 1968. 50:151−158.
  62. Gao A.G., Hakimi S.M., Mittanck C.A. et al. Fungal pathogen protection in potato by expression of a plant defensin peptide.// Nature Biotechnology. -2000.-V. 18.-P. 1307−1310
  63. Golovkin M.V., Abraham M., Morocz S., Bottka S., Feher a., Dudits D. Production of transgenic maize plants by direct DNA uptake into embryogenic protoplasts.// Planta Science 1993 — v. 90 — is. l — p. 41−52.
  64. Gong H., Pua E.C. Identification and expression of genes associated with shoot regeneration from leaf disc explants of mustard (Brassica juncea) in vitro.// Plant Science. 2004. 167: 1191−1201.
  65. Grison R., Grezes-Besset В., Schneider M., Lucante N., Olsen L., Leguay J-J., Toppan A. Field tolerance to fungal pathogens of Brassica napus constitutively expressing a chimeric chitinase gene.//Nature Biotechnology. 1996. 14:643−649.
  66. Gruber Margaret Y., Auser P., and Rakow G. Plant transformation in yellow-seeded Brassica napus breeding germplasm.// 10th International Rapeseed Congress. 1999. Canberra, Australia.
  67. Hachey J.E., Sharma K.K., Moloney M.M. Efficient Shoot Regeneration of Brassica campestris Using Cotyledon Explants Cultured in vitro,// Plant Cell Rep. 1991. V. 9. P. 549−554.
  68. Hain R., Reif H.J., Krause E. et al. Disease resistance results from foreign phytoalexin expression in novel plant.//Nature. 1993. v. 361 — p. 153 -156.
  69. HalinaH., MarzenaP., Grzegorz G. Morphological and Histological Aspects of 2,4-D Effects on Rape Explants (Brassica napus L. cv. Kana) Cultured In vitro.// Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica. 2005. 47/1: 219−226.
  70. Hauptmann R.M., Ozias Akins P., Vasil V., Tabaeizadeh Z., Rogers S.G., Horsch R.B., Yasil Г. КГ., Fralev R.T. Transient expression of electroporated DNA in monocotyledonous and dicotyledonous species.// Plant Cell Rep. — 1987 — v. 6 — p. 265 — 270.
  71. Jefferson R.A., Kavanagh T.A., Bevan M.W. GUS fusion: B-glucuronidase as a sensitive and versatile gene fusion marker in plants.// EMBO J. 1987 — v. 6 — p. 3901−3907.
  72. Jonoubi P., Mousavi A., Majd A., Daneshian J. Improved Brassica napus L. regeneration from hypocotyls using thidiazuron and benzyladenine as cytokinin sources.// Рак. J. Bot. 2004. 36 (2): 321−329.
  73. Jonoubi P., Mousavi A., Majd A., Jalali Javaran M., Daneshian J., Salmanian A.H. Shoot regeneration induced by thididzuron and Agrobacterium-mQdmiQd transformation of Brassica napus J I J. Sci. of Tarbiat Moallem University. 2005. 3: 167−180.
  74. Jonoubi P., Mousavi A., Majd A., Jalali Javaran M., Salmanian A.H., Daneshian J. Efficient Regeneration of Brassica napus L. Hypocotyls and Genetic Transformation by Agrobacterium tumefaciens. il Biol. Plantarum. 2005. 49 (2): 175−180.
  75. Jonoubi P., Mousavi A., Majd A., Jalali M. and Salmanian A. Agrobacterium-mediated transformation of Brassica napus. II 2nd National congress of Biotechnology, Karaj, Iran. 2001. P. 57−61.
  76. Kazan K., Curtis M.D., Goulter K.C. and Manners J.M. Agrobacterium tumefaciens-mediated Transformation of Double Haploid Canola {Brassica napus) Lines.//Australian Journal of Plant Physiology. 2005. 24(1) 97−102.
  77. Kazan K., Marcus J.P., Goulter K.C. and Manners J.M. Application of genes encoding antimicrobial peptides for the control of fungal pathogens of canola.// Proceeding of the 10th International Rapeseed congress, 1999. Canbera, Australia.
  78. Khehra G. S. and Mathias R. J. The interaction of genotype, explant and media on the regeneration of shoots from complex explants of Brassica napus ~L.II J. Exp. Bot. 1992. 43: 1413−1418.
  79. Kranthi S., Kranthi K.R., Bharose A. A., Syed S.N. Regeneration of plants from root explant of two Indian cultivars of Brassica campestris L. through somatic embryogenesis.// Current Science. 2005. Vol. 89. No. 8. P. 1323−1326.
  80. Kumar A., Rakow G., Downey R.K. Genetic Characterization of Glufosinate-Ammonium Tolerant Summer Rape Lines.// Crop. Sci. 1998. V. 38. P. 1489−1494.
  81. Kuvshinov V.V. Development of transgenic crops protected from insect damage andtransgene escape. 2001. 70p.
  82. Kuvshinov V.V. et al. Agrobacterium tumefaciens-medmted transformation of greenhouse grown Brassica rapa ssp. Oleifera. ll Plant Cell Reports. 1999. 18:773 777.
  83. Lazo G.R., Stein P.A., Lidwig R.A. A DNA Transformation-Competent Arabidopsis Genomic Library in Agrobacterium. il Biotechnology (NY). 1991. V. 10. P. 963−967.
  84. Leshem В., Shaley D.P. and Izhar S. Cytokinin as an inducer of vitrification in Melon.// Annals of Botany. 1988. V. 61. P. 255−260.
  85. Lin W., Anuratha C.S., Datta K. et al. Genetic engineering of rice for resistance to sheath blight.// Ibid. 1995. V. 13. is. 7. P. 686−691.
  86. Lingling L., Jianjun L., Song-Ming L., Liyun L., Bihao C. Study on transformation of cowpea trypsin inhibitor gene into cauliflower (Brassica oleracea L. var. botrytis).ll African Journal of Biotechnology. 2005. Vol. 4 (1), P. 45−49.
  87. Lutful H. and Talukder S.K. Molecular gene transfer for the generation of salt tolerant rapeseed (Brassica campestris, Brassica napus) varieties in Bangladesh.// 4th International Crop Science Congress. 2004. Brisbane, Australia.
  88. Malik V.S., Saroha M.K. Marker gene controversy in transgenic plants.// J. Plant Biochem. Biotechnol.- 1999.-V.8.-P. 1−13.
  89. Manners J.M., Marcus J.P., Goulter K.C., Green J.L., Harrison S.J.//United States Patent Application. 2002. Application Number PN7802.
  90. Marcus J.P., Goulter K.C., Green J.L., Harrison S.J. and Manners J.M. Purification, characterization and cDNA cloning of an antimicrobial peptide from Macadamia integrifolia. il Eur. J. Biochem. 1997. 244:743−749.
  91. McCartney H.A., Ни В., Li Y. and Grezes-Besset B. Exploitation of Biotechnology in Developing Strategies for Integrated Control of Sclerotinia Stem Rot in Rapeseed. // 10th International Rapeseed Congress. 1999. Canberra, Australia.
  92. Metz T.D., Roush R.T., Tang J.D., Shelton A.M., Earle E.D. Transgenic Broccoli Expressing a Bacillus thuringiensis lnsecticidal Crystal Protein: Implications for Pest Resistance Management Strategies.//Mol. Breeding. 1995. V. 1. P. 309−317.
  93. Miller J.H. Experiments in molecular genetics.// Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, 1972. N.Y.
  94. Moloney M.M., Walker J.M., Sharma K.K. High Efficiency Transformation of Brassica napus using Agi’obacterium Vectors.// Plant Cell Rep. 1989. V. 8. N5. P. 238−242.
  95. Ning S.u., James A.S., Xing W.D. Modulation of F1 hybrid stature without altering parent plants through trans-activated expression of a mutated rice GAI homologue.// Plant Biotechnology Journal. 2005. V. 3. P. 157−164.
  96. Osborn R.W., De Samblanx G.W., Thevissen K. et al. Isolation and characterisation of plant defensins of Asteracea, Fabacea, Hippocastanacea and Saxifragacea.// FEBS Lett. 1995. -V. 368. — P. 257−262.
  97. Ovesna J., Ptacek L. and Opatrny Z. Factors influencing the regeneration capacity of oilseed rape and cauliflower in transformation experiments. // Biologi. Plant. 1993. 35,107−112.
  98. Penninckx I.A.M., Eggermont K., Terras F.R.G. et al. Pathogen-induced systemic activation of a plant defensin gene in Arabidopsis follows a salicylic acid-independent pathway.//Plant Cell. -1996. -V.8. -P. 2309−2323.
  99. Petersen C., Smith R. Effect of Abscisic Acid and Callus Size on Regeneration of American and International Rice Varieties.//Plant Cell Rep. 1991. V.10, N. l, P. 3538.
  100. Puddephat I. J., Riggs T.J. and Fenning T.M. Transformation of Brassica oleracea L.: A critical review.//Molecular Breeding. 1996. 2: 3: 185−210.
  101. Radchuk V.V., Klocke E" Radchuk R.I., Neumann M., Blume Y.B. Production of transgenic rape plants {Brassica napus L.) using Agrobacterium tumefaciens. I I Genetika. 2000. 36(7):932−41.
  102. Raikhel N.V., Lee H.I., Broekaert W.F. Structure and function of chitin-binding proteins.// Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. -1993. -V.44. P. 591−615.
  103. Rakoczy-Trojanowska M. Alternative methods of plant transformation a short review.// Cell Mol. Biol. Lett. 2002. V. 7(3). P. 849−858.
  104. RedaE. A. Moghaieb M.A., El-Awady R.G. El-Mergawy S.S.Y. and El-Sharkawy A.M. A reproducible protocol for regeneration and transformation in canola СBrassica napus L.).// African Journal of Biotechnology. 2006. V. 5 (2), P. 143−148.
  105. Saghai-Maroof M.A., Soliman K.M., Jorgensen R.A. and Allard R.W. Ribosomal DNA spacer-length polymorphism in barley: Mendelian inheritance, chromosomal location and population dynamics.// Proc Natl Acad Sci USA. 1984. 81: 8014−8018.
  106. Schloupf R.M., Barringer S.A. and Splittstoesser W.E. A review of hyperhydricity (vitrification) in tissue culture.// Plant Growth Regulator Society of America Quaterly. 1995. 23: 149−158.
  107. Sen S., Newton R.J., Fong F., Neuman P. Stimulation Abscisic Acid: a Role in Shoot Enhancement from Loblolly Pine (Pinus taeda) Cotyledon Explants.// Plant Cell Rep. 1989. V. 8. N. 3. P. 191−194.
  108. Sethi U., Basu A., Guha-Mukherjee S. Role of Inhibitors in the Induction of Differentiation in Callus Cultures of Brassica, Datura and Nicotiana. il Plant Cell Rep. 1990. V. 8. N. 9. P. 598 600.
  109. Sharma K.K. and Thorpe T.A. In vitro Regeneration of shoot Buts and Plantlets from seedling root segments of Brassica napus L.// Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 1989. V. 18(1), 129−134.
  110. Sharma K.K., Bhojwani S.S., Thorpe T.A. The role of cotyledon tissue in the differentiation of shoots and roots from cotyledon explants of Brassica juncea L. Czern.// Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1991. 24:55−59.
  111. Sheng J. and Citovsky V. Agrobacterium-plant cell DNA transport: have virulence proteins, will travel.// The Plant Cell. 1996. V. 8. P. 1699−1710.
  112. Sonntag K., Dijscher В., Sellner M. Genotype effects on Agrobacterium-mediatQd genetic transformation of Brassica napus.// IV International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding. 2001. Belgium.
  113. Sparrow P.A., Townsend T.M., Arthur A.E., Dale P.J., Irwin J.A. Genetic analysis of Agrobacterium tumefaciens susceptibility in Brassica oleracea.// Theor Appl Genet. 2004. Feb-108(4):644−650.
  114. Sparrow P.A.C., Townsend Т., Arthur A.E., Morgan C.L., Dale P.J. and Irwin J.A. Genetic analysis of in vitro shoot regeneration from cotyledonary petioles of Brassica oleracea.// Theor. Appl. Genet. 2004. 108: 1249−1255.
  115. Stephens C., Kazan K., Goulter K.C., Maclean D.J., Manners J.M. The mode of action of the plant antimicrobial peptide MiAMPl differs from that of its structural homologue, the yeast killer toxin WmKT.// FEMS Microbiol Lett. 2005. 243(1):205−210.
  116. Stewart C.N.J., Adang M.J., All J.A., Raymer P.L., Ramachandran S., Parrott W.A. Insect control and dosage effects in transgenic canola containing a synthetic Bacillus thuringiensis crylAC gene.// Plant Physiol. 1996. 112:115−120.
  117. Stewart Jr.C.N., Millwood R.J., Halfhill M.D. et al. Laser-Induced Fluorescence Imaging and Spectroscopy of GFP Transgenic Plants.// Journal of Fluorescence. 2005. V. 15, No. 5.
  118. Stringham G.R., Bansal V.K., Thiagarajah M.R., Degenhardt D.F., Tewari J.P. Development of an agronomically superior blackleg resistant canola cultivar in Brassica napus L. using doubled haploidy.// Can. J. Plant Sci. 1995. 75:437−439.
  119. Tang G.X., Zhou W.J., Li H.Z., Mao B.Z., He Z.H. and Yoneyama K. Medium, explant and genotype factors influencing shoot regeneration in oilseed Brassica spp.// J. of Agronomy and Crop Science. 2003. 189 (5): 351−358.
  120. Tempe J., Goldman A. Occurence and biosynthesis opines.// Mol. Biol. Plant Tumours. -1982 New York: Acad. Press — P. 575−584.
  121. Thomzik J.E. Agrobacterium-mediated transformation of stem disks from oilseed rape (Brassica napus L.) Methods in Molecular Biology Vol 44: Agrobacterium protocols Edited by K.M.A. Gartland and M.R. Davey Humana Press Inc. 1995. Totwa, NJ.
  122. Van Loon L.C., Gerrittsen Y.A.M., Ritter C.E. Identification, purification and characterization of pathogenesis-related proteins from virus-infected Samsun NN tobacco leaves.//Plant Mol. Biol. 1987. V. 9. P. 593−609.
  123. Van Loon L.C., Pierpoint W.S., Boiler Т., Conejero V. Recommendations for naming plant pathogenesis-related proteins.// Plant Mol. Biol. Reporter.- 1994.-V.I2.- P.245−264.
  124. Van Loon L.C., Van Strien. The families of pathogenesis-related proteins, their activities, and comparative analysis of PR-1 type proteins.// Physiological and Molecular Plant Pathology. 1999. V. 55. P. 85−97.
  125. Wang J.X., Zhao F.Y. and Xu P. Use of aroA-Ml as a Selectable Marker for Brassica napus Transformation.// Crop Sci. 2006. 46:706−711.
  126. Wang Y., Nowak G., Culley D. et al. Constitutive expression of pea defense gene DRR206 confers resistance to blackleg {Leptosphaeria maculans) disease in transgenic canola {Brassica napus).// Mol. Plant-Microbe Interact.- 1999.-V. 12,-P.410−418.
  127. Wei Z.M., Huang, J.Q., Xu S.P., Xue H.W. High efficiency regeneration and Agrobacterium-mQdiatQd transformation of hypocotyl in Brassica oleracea var. capitata with B.t. gene.//Acta Agricultural Shanghai. 1998. 14:11−18.
  128. Xiang Y., Wong W.K.R., Ma M.C., Wong R.S.C. Agrobacterium-MQdmted Transformation of Brassica campestris ssp. Parachinensis with Synthetic Bacillus thuringiensis crylAb and crylAc Genes.// Plant Cell. Rep. 2000. V. 19. P. 251−256.
  129. Zaccomer В., Cellier F., Boyer J.C., Haenni A.L., Tepfer M. Transgenic Plants that Express Genes Including the 3' Untranslated Region of the Turnip Yellow Mosaic Virus (TYMV) Genome Are against TYMV Infection.// Gene. 1993. V. 136. P. 8794.
  130. Zambryski P., Joos H., Genetello C. et al. Ti plasmid vector for the introduction of DNA into plant cells without alteration of their normal regeneration capacity.// EMBO J.-1983.-P.2143−2150.
  131. Zarhloul M.K., Wilfried W.L., Alexandra S.E., Hausmann L., Friedt W. and Reinhard T. Molecular approaches to the biosynthesis of medium-chain triacylglycerols in Brassica napus. ll 10th International Rapeseed Congress. 1999. Canberra, Australia.
  132. Zhang Y. and Prem L.B. Shoot regeneration potential from seedling explants of Australian cultivars of oil seed rape (Brassica napus L.).// 10th International Rapeseed Congress. 1999. Canberra, Australia.
  133. Zhang Y., Mohan B.S., Ines S. and Prem L.B. Agrobacterium-mGdiated transformation and generation of male sterile lines of Australian canola.// Australian Journal of Agricultural Research. 2005. 56(4) 353−361.
  134. Zhao J., Meng J. Genetic analysis of loci associated with partial resistance to Sclerotinia sclerotiorum in rapeseed (Brassica napus L.).// Theor. Appl. Genet. 2003. 106: 759−764.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!