Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Морфофункциональная характеристика органов и тканей ампуллярии Pomacea bridgesii при промышленном выращивании

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Таким образом, к настоящему времени, наряду с известными фактами гистологической организации органов и тканей ампуллярий остаются неизученными особенности строения некоторых систем, ответственных за адаптационные возможности этих видов. Плохо изучены репродуктивные способности этих видов в плане их промышленного воспроизводства и оптимальные интервалы лимитирующих абиотических факторов среды при… Читать ещё >

Морфофункциональная характеристика органов и тканей ампуллярии Pomacea bridgesii при промышленном выращивании (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Биологическая характеристика объекта исследования
      • 1. 1. 1. Значение моллюсков в современной интерпретации их положе — ния в биогеоценозах
      • 1. 1. 2. Систематическое положение и биологические особенности ампуллярий
      • 1. 1. 3. Анатомия ампуллярий как представителя класса брюхоногих моллюсков
      • 1. 1. 4. Строение внутренних органов Рошасеа Ьпс^еБн
    • 1. 2. Моллюски — как объекты биотестирования
    • 1. 3. Изменение морфо-физиологических показателей у моллюсков при воздействии различных химических веществ
    • 1. 4. Организация внутренней защитной системы (ВЗС) моллюсков
    • 1. 5. Химические стимулы пищи как сигнальный экологический фактор, влияющий на выбор корма брюхоногими моллюсками
    • 1. 6. Устойчивость моллюсков к изменению рН среды
  • Глава 2. Материал и методы исследования
    • 2. 1. Объем и характеристика собранного материала (условия эксперимента)
    • 2. 2. Гидрохимический анализ среды обитания
    • 2. 3. Гистологический анализ органов и тканей
    • 2. 4. Морфометрическая и статистическая обработка первичных данных
  • Глава 3. Результаты собственных исследований. Гистологический анализ состояния органов и тканей ампуллярии в различных условиях промышленного воспроизводства
    • 3. 1. Гистологический анализ строения печени ампуллярии Рошасеа bridgesii при промышленном выращивании
      • 3. 1. 1. Морфофункциональное состояние клеток печени в зависимости от объема заменяемой воды
      • 3. 1. 2. Морфофункциональное состояние клеток печени в зависимости от типов питания
    • 3. 2. Гистологический анализ строения почек ампуллярии Рошасеа bridgesii при промышленном выращивании
      • 3. 2. 1. Морфофункциональное состояние почек в зависимости от объема заменяемой воды
      • 3. 2. 2. Морфофункциональное состояние почек в зависимости от типов питания
    • 3. 3. Гистологический анализ строения жабр ампуллярии Рошасеа bridgesii при промышленном выращивании
      • 3. 3. 1. Морфофункциональное состояние жабр в зависимости от объема заменяемой воды
      • 3. 3. 2. Морфофункциональное состояние жабр в зависимости от типов питания
    • 3. 4. Гистологический анализ мышечной ткани ампулярии Рошасеа bridgesii при промышленном выращивании
      • 3. 4. 1. Морфофункциональное состояние мышечной ткани в зависимости от объема заменяемой воды
      • 3. 4. 2. Морфофункциональное состояние почек в зависимости от типов питания
  • Обсуждение результатов
  • Выводы

Актуальность темы

.

Введение

новых объектов (креветки, тропические раки, мидии, моллюски и т. д.) в аквакультуру многих регионов обуславливается как растущей потребностью в полноценном белке для питания человека (Супрунович, Макаров, 1990), так и концепцией т.н. «нулевого роста», т. е. расширением ассортимента потребляемых товаров без нанесения ущерба последующим поколениям, в соответствии с решениями конференции «Рио-92» и докладами «Римского клуба».

В настоящее время одним из этих объектов, введенных в аквакультуру Астраханской области, является ампуллярия Ротасеа Ьпс^ези. Условия, в которых она выращивается в Астраханской области, значительно отличаются от природных условий места обитания. При этом возникает ряд проблем, связанных с нехваткой знаний об адаптации этих мало изученных животных к новым условиям существования, и отсутствием сколь-нибудь разработанной биотехнологии их выращивания (Нуралиева, Алтуфьев, 2007; 2008; 2009). Это в большой мере касается и конкретного объекта нашего исследования — Ротасеа Ьпс^еБп (Велыи, Шторх, 1976).

В связи с этим нами изучено влияние условий промышленного выращивания ампулярий на морфофункциональное состояние их органов и тканей. Нужно отметить, что морфология и гистология беспозвоночных изучены недостаточно (Вельш, Шторх, 1976). В литературе содержатся только общие сведения об анатомическом строении брюхоногих моллюсков и отрывочные сведения о гистологическом строении некоторых их органов и тканей.

По мнению многих авторов (Макрушин, 1991) биоиндикацию загрязнения пресных вод можно также проводить по результатам гистопатологического обследования органов и тканей моллюсков.

Таким образом, к настоящему времени, наряду с известными фактами гистологической организации органов и тканей ампуллярий остаются неизученными особенности строения некоторых систем, ответственных за адаптационные возможности этих видов. Плохо изучены репродуктивные способности этих видов в плане их промышленного воспроизводства и оптимальные интервалы лимитирующих абиотических факторов среды при промышленном выращивании этих видов в условиях Юга России.

Цель исследования состояла в изучении строения защитно-приспособительных, функционально-продукционных (в плане товарного продукта) органов и тканей моллюсков вида Рошасеа Ьпс^еБп и совершенствование биотехники выращивания данного вида в промышленных условиях в Астраханской области.

Задачи исследования:

1. Изучить нормальное гистологическое строение органов и тканей, связанных в первую очереды под влиянием внешней среды (жабры), защитно-барьерной' функцией (печень), выделительной системой (почки) и (наиболее консервативной, а следовательно, менее подверженной внешним воздействиям — мышечной ткани.

2. Исследовать влияние абиотических факторов среды — рН, содержание кислорода, смена воды, температура на морфофункциональное состояние изучаемых органов и тканей — жабр, печени, почек, мышц.

3. Выявить отклонения в гистологическом строении органов и тканей (печени, почек, жабр, мышечной ткани), обусловленных биотическими и абиотическими факторами (кормление, рН, кислород, температура и т. д.).

4. Определить максимальную продуктивность объекта выращивания с учетом всех условий эксперимента.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Морфофункциональное состояние органов и тканей моллюсков (дыхательная функция — жабры, защитно-барьерная функция — печень, выделительная система — почки, а также мышечная ткань) определено влиянием абиотических факторов среды — рН, содержанием кислорода, сменой воды, температурой.

2. Отклонения в гистологическом строении органов и тканей (печени, почек, жабр, мышечной ткани), обусловлены биотическими и абиотическими факторами среды (кормление, рН, кислород, температура и т. д.).

3. Выращивание моллюсков в индустриальных условиях на разных кормах определяют особенности динамики прибавления веса тела животных.

Научная новизна:

1. Осуществлено исследование структуры и клеточного состава печени, почек и жабр Рошасеа Ьпс^ези и впервые изучено соотношение клеточного состава печени и общее состояние организма в условиях влияния смены воды и кормов.

2. В эксперименте впервые получены морфофункциональные доказательства влияния различных кормов на исследуемые органы моллюсков.

3. Впервые установлены наиболее значительные гистопатологические изменения в печени и почках ампуллярии Рошасеа Ьпс^еБИ под влиянием недостаточной смены воды и различных кормов.

Практическая значимость обусловлена: 1. Выявлением зависимости роста массы улиток от вида корма. Спустя 2 месяца масса улиток максимальна в варианте кормления комбикормом для рыб, за этим следует растительный корм и на последнем месте — мясо креветки.

2. При этом комбикорм более всего загрязняет воду в аквариуме, что приводит к повышенным показателям аммонийного азота и нитритов. Из чего следует необходимость более частой смены воды.

3. Повышенные концентрации аммонийного азота и нитритов угнетают воспроизводительную способность ампуллярий (уменьшение кладок), что обуславливает необходимость совершенствования биотехники выращивания моллюсков в промышленных условиях Астраханской области.

Апробация работы.

Результаты исследования доложены и опубликованы и обсуждены на конференциях в материалах итоговых научных конференций АГУ 2006 — 2007 (Астрахань 2008), Международного научно-практического семинара молодых ученых и студентов «Природные ресурсы Каспийского моря и устойчивое социально-экономическое развитие прибрежных территорий» (Астрахань, 2007), Второй международной конференции молодых ученых и специалистов «Комплексные исследования биологических ресурсов Южных морей и рек» (Астрахань, 2007), Международной конференции «Структурные преобразования органов и тканей на этапах онтогенеза в норме и при воздействии антропогенных факторов «Экология и здоровье человека» (Астрахань, 2007), IX Международной конференции «Биологическое разнообразие Кавказа» (Махачкала, 2007), II Всероссийской научно-практической конференции студентов, аспирантов, преподавателей и научных сотрудников, посвященной 10-летию кафедры экологии и безопасности жизнедеятельности АГУ «Экологические проблемы природных и урбанизированных территорий» (Астрахань, 2008), докладах итоговых научных конференций АГУ 2008, III Всероссийской научно-практической конференции (с международным участием) «Экологические проблемы природных и урбанизированных территорий» (Астрахань, 2009).

Публикации.

По теме диссертации опубликовано 14 работ, 3 — в научных изданиях, входящих в перечень изданий, рекомендованных ВАК РФ.

Структура и объем диссертации

.

Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, изложения и обсуждения результатов собственных исследований, выводов. Работа изложена на 140 стр., содержит 20 таблиц, 53 рисунка, список литературы включает 234 источника, из которых 125 иностранных.

ВЫВОДЫ.

1. В результате работы изучено гистологическое строение печени, почек, жабр и мышечной ткани ампуллярии. Показано оптимальное соотношение клеточных компонентов печени, строение почек, жабр и мышечной ткани в норме.

2. Установлено, что печень ампулярий представлена тремя видами клеток, соотношение которых определяет устойчивость организма к повреждающим факторам среды и продукционную способность выращиваемого объекта.

3. Установлено, что морфофункциональное состояния почек, жабр и мышц определяет продукционные результаты выращивания ампуллярии в индустриальных условиях под влиянием вариантов кормления и смены воды. При накоплении аммонийного азота и нитритов (в вариантах недостаточного обмена воды) наблюдаются нарушения морфофункционального состояния, прежде всего печени и снижение роста ампуллярий (по массе).

4. В зависимости от вида кормов вес улиток спустя 2 месяца максимален в варианте кормления комбикормом для рыб (от 2,8 до 17,7г), за ним следует растительный корм (от 2,8 до 12,9г) и на последнем месте — кормление мясом креветок (от 2,8 до 10,3г).

Рекомендации.

Таким образом, на основе морфологических исследований выращивания моллюсков Рошасеа Ьпс^ези в условиях аквакультуры можно рекомендовать:

1) частую смену воды (три раза в неделю), желательно в полном объеме;

2) кормление комбикормом для рыб для получения максимальной товарной продукции;

3) постоянный контроль за гидрохимическими показателями и их поддержание в пределах оптимума, установленного в процессе экспериментального выращивания ампуллярии.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В. А., Антипин Б. Н. Токсикологическая характеристика и симптомокомплекс интоксикации некоторых пресноводных ракообразных и моллюсков // Гидробиол. журнал, 1976. т 12,№ 2. С. 37 — 44.
  2. В.А., Успенская Н. У. Токсикологическая характеристика фенольного отравления некоторых пресноводных червей // Гидробиол. журнал, 1974. Т. 10, № 4. С. 48−55.
  3. В. А. Токсикологическая характеристика и симптомокомплекс острой фенольной интоксикации водных насекомых и паукообразных // Влияние фенола на гидробионтов. М., 1973. С. 72 — 89.
  4. А.Ф. Функциональная экология пресноводных двустворчатых моллюсков. М., Наука, 1981. С. 34 — 45.
  5. Ю.В., Гераскин П. П. Мониторинг морфофункционального состояния мышечной ткани осетровых и костистых рыб Каспия //ж. Проблемы региональной экологии, 2003 год. № 6. С. 111 125.
  6. Ю.В., Романов A.A., Шевелева H.H. Гистопатология поперечнополосатой мышечной ткани и печени каспийских осетровых// Вопросы ихтиологии, 1992.- 32.-Вып.2.-С. 157−171.
  7. Ю.В., Нуралиева P.C. Морф ©-функциональная характеристика мышечной ткани ампулярии Pomacea Bridgesii в условиях промышленного выращивания// ж. Астраханский мир науки, 2009. № 1 (4).-С. 15−18.
  8. И. В., Круглов Н. Д., Фелченкова JI. В., Юрчинский В. Я. Экологическая специфичность брюхоногих моллюсков и биоиндикация водной среды / Чтения памяти проф. В. В. Станчинского. 1995. № 2. С. 83 87.
  9. П. В., Колупаев Б. И. Использование моллюсков в биологическом мониторинге состояния водоемов //Экология. 1998. № 5. С. 410−411.
  10. H. Статистические методы в биологии. М.: Изд-во иностр. лит., 1962−260 с.
  11. Биология, морфология и систематика водных беспозвоночных — Л.: Наука, 1980−288с.
  12. Г. И., Александров В. А. Зоология: Доп. М-вом с/х РФ в качестве учебника для вузов / Блохин Г. И., Александров В. А., — М.: Колосс, 2005.-С. 142−150.
  13. , В.Ф. Хемосенсорная адантация к кормам катушки роговой Planorbarius corneiis (L.) / В. Ф. Бондаренко // Теор. и нрикл. аснекты биол.: межвуз. сб. науч. тр. / Калинингр. гос. ун-т.- Калининград, 1999. С. 92 -96.
  14. С. Миопатии / С. Божинов, Г. Гылабов. — София: Медицина и физкультура, 1977. — 435 с.
  15. А. Э. Жизнь животных. Т 3. Пресмыкающиеся, земноводные, рыбы, насекомые, низшие животные. — С-Пб.: Просвещение, 1902.- 1066с.
  16. Бур дин К. Основы биологического мониторинга. М, Изд-во МГУ, 1985. С. 45−65.
  17. А.Н., Добрачева В. В. Химический состав раковин. Унионид как показатель техногенного загрязнения водоемов (на примере сред, течения р. Псел) // Вопросы регион. Геогр. Суме. Приднестровья: Вып. З /Сум. Гос.пед. ин-т. — Сумы, 1995. — С.22 — 23.
  18. У., Шторх Ф. Введение в цитологию и гистологию животных. М.: «Мир», 1976. — С. 183 — 185.
  19. Е.А. Подбор методов и показательных организмов при экспериментальных исследованиях. М., Наука, 1984. С. 36 — 39.
  20. Г. Г, Зависимость энергообмена от массы тела у водных пойкилотермных животных // Журн. общ. биол. 1976. Т. 37. № 1. С. 57 70.
  21. Г. А, Адаптация водных животных с различными типами осморегуляции к понижению рН внешней среды // Ин-т. биол. внутренних вод. Труды. Вып. 38 (41). АН СССР. Л.: Наука. 1979. С. 17 25.
  22. Г. А., Гдовский П. А., Матей В. Е. Закисление водоемов и его влияние на метаболизм у пресноводных животных // Ин-т биол. внутренних вод. Труды. Вып. 38 (41). Л.: Наука, 1979. С. 3 16.
  23. Г. В., Комов В. Т. Особенности ионной регуляции окуня Perca fluviatilis (Percidae) в связи с проблемой закисления водоема // Вопросы ихтиологии. 1985. Т. 25. Вып. 1. С. 137 — 144.
  24. Г. В., Комов В. Т. Обмен катионов у карася в средах с различным ионным составом // Физиологический журнал СССР им. И. М. Сеченова. 1987. Т. LXXIII. № 7. С. 986 989.
  25. Г. А., Клерман А. К., Комов В. Т. Особенности ионного обмена пресноводных моллюсков в условиях высокой концентрации ионов водорода и низкой минерализации внешней среды // Экология. 1987. № 3. С. 81−84.
  26. Г. А., Комов В. Т., Клерман А. К. Влияние закисления внешней среды на ионный обмен у пресноводных моллюсков // 5 Всес. конф. по вод. токсикол.: 1988. Тез, докл. М, 1988. С. 104.
  27. Г. А., Комов В. Т. Ионный обмен у золотого карася и карпа при акклимации к воде низкой минерализации // Вопросы токсикологии. 1988. Т. 28. Вып. 1. С. 124 137.
  28. О. В., Елецкий Ю. К. Основы гистологии с гистологической техникой. М.: «Медицина», 1982. С. 142 -256.
  29. , Н.С. Роль высших водных растений в питании животных пресных водоемов / П. С. Гаевская. — М.: Паука, 1966. 227 с.
  30. Г. Ф. Экология и эволюционная теория. JL: Наука, 1984. С.
  31. А. Физиология клетки // М.: Изд-во иностр. литер. 1959. С. 455.
  32. С.Г., Юрин В. М. Водоросль сигнализирует об опасности. Минск, 1983 С. 56 — 68.
  33. O.A., Соколова Е. Г. Фильтрационная активность пресноводных двустворчатых моллюсков и влияние на нее токсических факторов//Реакция гидробионтов на абиотические воздействия. Ярославль, 1984. С. 101 106.
  34. Е. В., Кондрашева М. Н. Проявление стресса на уровне митохондрий, их стимуляция гормонами и регуляция гидроаэроионами // Журн. общ. биол., 1985. Т. 46. № 4. С. 516 527.
  35. , JI. Г. Устойчивость и изменчивость биологических систем // К методол. научи, познания. Фрунзе, 1985. С. 110—114.
  36. В. А. Сравнительная анатомия беспозвоночных. Учебник для гос. ун-тов и пед. ин-тов. JL, Учпедгиз., 1938 ч 1. 1938. 600с.
  37. В. А. Зоология беспозвоночных. Учебник для ун-тов. Изд. 6-е, перераб. и доп. под ред. проф. Полянского Ю. И. «Высшая школа», М., 1975. 560с. с илл. и табл.
  38. В. А. Зоология беспозвоночных. Учебник для ун-тов. / Под ред. проф. Полянского Ю. И. — 7-е изд., перераб. и доп. М.: «Высшая школа», 1981. — С. 442 — 472.
  39. A.A. Основы сравнительной гистологии. JL: Изд-во Ленинградского университета, 1985. — 400с.
  40. , О.В. Структурная организация хеморецепторных органов брюхоногого моллюска / О. В. Зайцева // Архив анат., гистол. и эмбриол. 1982. Т. 83, № 11. С. 55 — 69.
  41. , O.B. Принципы структурной организации хемосенсорных систем пресноводных брюхоногих моллюсков / О. В. Зайцева // Морфология. 1998. Т. 114, № 5.- С. 7 — 18. Библиогр. в конце ст.
  42. О.В. Иннервация кожного покрова легочных моллюсков // Архив анатомии, гистологии и эмбриологии. 1980. Т. 78, № 5. С. 32 39.
  43. Л. А. и другие (Гиляров М. С., Банников А. Г., Гладков Н. А., Кузякин А. П., Михеев А. В., Наумов С. П., Правдин Ф. Н.). Беспозвоночные 2 том, Москва, 1968. Издательство Просвещение. С. 7 78.
  44. М.В. Нитроксидпозитивные структуры легких человека // Морфология. 1998. Т. 114, № 2. С. 59 62.
  45. А. В. и другие. Большой практикум по зоологии беспозвоночных (В 3-х томах. /Иванов/ 3-е изд. (Типы: Сипункулиды, моллюски, щупальцевые, иглокожие) М.: Высшая школа, 1985. — С. 10 -185.
  46. Л. Химия мозга // Мозг. М.: Мир, 1984. С. 141 167.
  47. П. Н. Адаптации животных и их значение в эволюционном процессе. Киев: Киев, ун-т, 1988. С. 30.
  48. Исследование хеморецепторного восприятия у моллюсков / H.H. Камардин н др. //Рос. физиол. журн. 1999. Т. 85, № 12. С. 1533 1543.
  49. А. Ш. Оценка влияния загрязнения на моллюсков реки Урал: Дисс. к-та биол. наук. — Махачкала, 2004. — 117с.
  50. O.A. Влияние абиотических факторов на фильтрационную способность моллюсков в условиях естественного водоемы / Материалы по сравнительной физиологии и адаптации, животных к абиотическим факторам внешней среды. Ярославль, 1983. С. 37 42.
  51. . И. Дыхание гидробионтов в токсической среде. — Казань. 1992. С. 111 113.
  52. М. Н., Григоренко Е. В. Проявление стресса на уровне митохондрий их стимуляция гормонами и регуляция гидроаэроионами // Журн. общ. биол. М.: Наука, 1985. Т. XLVI. № 4. С. 516 -527.
  53. Д. А. Индикационная зоология /Природа, 1985., № 7. С. 86−91.
  54. Н. Д., Юрчинский В. Я. Механизм разрушения раковин пресноводных гастропод под воздействием низких значений pH // Чтения памяти профессора В. В. Станчинского. Смоленск, 2000. С. 328 — 333.
  55. Н. Д., Юрчинский В. Я. Особенности нарушения жизненно важных функций у пресноводных брюхоногих моллюсков в экстремальных условиях среды / / Чтения памяти профессора В. В, Станчинского. Смоленск, 2000. С. 333 — 337.
  56. , Э. Клеточные основы поведения / Э. Кэндел. М.: Мир, 1980. 598с.
  57. Э. Малые системы нейронов // Мозг. М.: Мир, 1984. С.59−82.
  58. Г. Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1973. — 343с.
  59. . И. О соотношении г- и к-форм отбора в эволюции плоских червей // Микро- и макроэволюция. Тарту, 1980. С. 88 — 93.
  60. В. Ф., Старобогатов Я. И. Сукцессионные изменения и эволюция экосистем (Некоторые системы эволюционной экологии) // Журн. общ. биол. М.: Наука, 1990. Т. 51. № 5. С. 619 631.
  61. В. Н. Термодинамические аспекты теории адаптации // Тр. зоол. ин-та АН СССР. М.: 1987. Т 160. С. 31−41.
  62. Е. И. Зоология: учебник для зоовузов и фак-тов 2-е изд., перераб. и до пол., М.: Высшая школа, 1981. С. 231 — 243.
  63. Макрушин А.В.//Состояние печени моллюсков как индикатор антропогенного воздействия на водоем / Взаимодействие человека и природы на границе Европы и Азии: Тез. докл. конф. Самара, 18−20 дек 1996. Самара, 1996. С. 84−86.
  64. А.В. Гистопатологические обследования беспозвоночных Рыбинского водохранилища. Вторая Всесоюзная конф. по рыбохозяйственной токсикологии, посвященная 100-летию проблемы качества воды в России. Санкт-Петербург, 1991. — Т 2. — С. 56 — 58.
  65. А.В. Опыт биондикации загрязнения пресных вод по результатам гистопатологического обследования печени моллюсков// Биология. 1998. № 3. С. 90 94.
  66. Ю. С. Нервные болезни / Ю. С. Мартынов. М.: Медицина, 1988.-495 с.
  67. В. А. Концепция энергетического баланса в современной экологии // Экология. 1987. № 5. С. 15 — 22.
  68. А.П. Чувствительность мышечной ткани некоторых пресноводных моллюсков к повышенной концентрации сульфата кадмия // Цитология. 1996. — 38. № 3. — С. 359 — 362.
  69. В.Ф. Зоология беспозвоночных. Учебник для студентов биол. фак. пед. ин-тов. Под. ред. проф. О. Н. Сазоновой. Изд. 3-е, перераб. и доп. М."Просвещение", 1975. 487с. с ил.
  70. P.C., Алтуфьев Ю. В. Морфофункциональная характеристика печени ампуллярии Pomacea Bridgesii в различных условиях выращивания. Ж. Естественные науки. № 3. Издательский дом «Астраханский университет. Астрахань. 2007. С. 32 — 37.
  71. Р. С., Алтуфьев Ю. В. Морфофункциональная характеристика почек ампуллярии Pomacea bridgesii условиях промышленного выращивания. Ж. Естественные науки. № 2 (23). Издательский дом «Астраханский университет». Астрахань. 2008. С. 76 81.
  72. Р. С., Алтуфьев Ю. В. Морфофункциональная характеристика жабр ампуллярии Pomacea Bridgesii в условиях промышленного выращивания. Ж. Естественные науки. № 1. Издательский дом «Астраханский университет. Астрахань. 2009. С. 55−61.
  73. Н. Д. Принцип энергетического минимума в онтогенезе и устойчивость процессов развития // Журн. общ. биол. 1988. Т. 49. № 4. С. 552−561.
  74. H.A. Алгоритмы биометрии// М. МГУ, 1980.-150с.
  75. И. В. Зоология с основами экологии животных: учеб. Пособ. Для вузов М.: Академия, 2001. С. 42 — 45.
  76. Практикум по зоологии беспозвоночных. Учебное пособие для вузов/ авт. Шапкин В. А., Тюмасева 3. И. Машкова И. В. и др. М.: Академия, 2003. — 208с.
  77. С .Я., Конопляников А. Г., Иванников А. И., Скворцов В. Г. Биология окиси азота // Успехи совр. биол. 1999. Т. 119. № 4. С. 380−395.
  78. Л. Сравнительная физиология животных. М.: Мир, 1977. Т. 1. С. 563.
  79. C.B. Адаптации как системные дополнения в иерархии биосистем. Классификация адаптации и ее критерии // Журн. общ, биол. 1991. 52. № 3. С. 381−390.
  80. О.П., Рябухина Е. В. Влияние токсических веществ на фильтрационную активность двустворчатых моллюсков.//Биол. исслед. в Ярославском Гос. ун-те: Юбил. сб. тез. конф. 29 ноября 1996. Ярославль, 1997. С. 75−76.
  81. Н. А. Зоология с основами экологии животных. Пособие для студ. пед. ин-тов по спец. — М.: Просвещение, 1981 — 254 е., ил.
  82. Г. Е., Арефьева Г. В. Динамика суточной двигательной активности створок ракушек в разных условиях // Вопросы сравнительной физиологии и водной токсикологии. Ярославль, 1982. — С. 14 — 23.
  83. Г. Е. Поведенческие реакции гидробионтов в биотестировании качества вод //Физиология и токсикология гидробионтов. Ярославль, 1980. С.36−42.
  84. Сборник нормативно-технологические документации по товарному рыбоводству. Том 2, М., Агропромиздат, 1986. — С. 56 — 63.
  85. Н.Ф. Влияние некоторых факторов на пресноводных двустворчатых моллюсков // Влияние фенола на гидробионтов. М., 1973. С. 90−97.
  86. Ч. Нейрон //Мозг. М.: Мир, 1984. С. 31 58.
  87. Н.С. Водная токсикология и санитарная гидробиология // Гидробиология, журн. 1971. Т.5, № 5. С. 5 13.
  88. А. В., Макаров Ю. Н. Культивируемые беспозвоночные. Пищевые беспозвоночные: мидии, устрицы, гребешки, раки, креветки Киев: Наук, думка, 1990. С. 6 — 7.
  89. А.Н. Использование двустворчатых моллюсков для биотестирования //Простые нервные системы. Казань. 1985. ч.2. С. 94 — 98.
  90. В.А. Эколого-физиологические аспекты токсикологии пресноводных животных. М., 1989. С. 67 — 89.
  91. Е. Н. Практикум по зоологии беспозвоночных: Учеб. пособие для студентов биол. фак. пед. ин-тов. Фролова Е. Н., Щербина Т. В., Михина Т. Н., 2-е изд., перераб. — М.: Просвещение, 1985 — 231 е., ил.
  92. Э., Венер Р. Общая зоология: перевод с нем. М.: Мир, 1989. С. 404−410.
  93. , Р. Поведение животных. Синтез этологии и сравнительной психологии / Р. Хайнд. М.: Мир, 1975. 855 с.
  94. А. Д. Роль пластического обмена в адаптации гидробионтов к абиотическим факторам среды // Тр. Зоол. ин-та СССР. М.: 1987. Т. 160. С. 59−84.
  95. В. В., Бергер В. Я. Некоторые аспекты изучения фенотипических адаптации // Журн. общ. биол. 1975. Т. 36. № 1, С. 11 25.
  96. В.В., Сидоренко O.A., 1977. Возникновение опухолей у двустворчатых моллюсков Unio pictorum под влиянием N-нитрозосоединений. Бюллетень Экспериментальной Биологии и Медицины, № 5, с. 577 579.
  97. Цихон-Луканина, Е. А. Трофология водных моллюсков / Е.А. Цихон-Луканина. М.: Наука, 1987. 176 с.
  98. Я.В. Биомониторинг природной среды // Журнал общественной биологии, 1985. т.46, № 6. С.743 752.
  99. И.Х. Зоология беспозвоночных: Учеб. для студ. высш. учеб. завед. М.: Гуманит. изд. центр ВлаДос, 1999., ил. С. 276 — 304.
  100. И. А. Об общих принципах экологических адаптации // Научные доклады высшей школы. Биол. н., 1977. № 10. С. 55 — 62.
  101. . С. Математическая модель отбора, включающая энергообмен организмов как инструмент исследования эволюционного процесса // Журн. общ. биол. 1989. Т. 50. № 2. С. 199 206.
  102. Abdul-Salam, J. М., Mlchclson, Е. Н. Biomphalaria glabrata amoebocytes: assay of factors influencing in vitro phagocytosis. 1980a. J Invenbr Pathol, 36, 52 59.
  103. Albert A. Life cycle of Lithobiidae with a discussion of the r- and k-selection theory // Oecologia. 1983. 56. № 2−3. P. 272−279.
  104. Allison V., Punhham D., Harvey H. Low pH alters response to food in the crayfish Combarus bortoni II Can. J. Zool. 1992. Vol. 70. № 12. P. 2416−2420.
  105. Alvarez M. R., Friedl F. E., Johnson J. S., Hinsch G. W. Factor affecting in vitro phagocytosis by oyster bemocytes. 1989. J Inveriebr Pathol, 54, 233−241.
  106. Ankley G., Schubauer-Beringan M., Monson P. Influence of pH and hardness on toxicity of ammonia to the amphipod Hyalella azteca II Can. J. Fish, and Aqat. Sci. 1995. 52. № 10. P. 2078−2083.
  107. Adema С. M., Harris, R. A., van Deutekom-Mulder, E. С. A comparative sludy of hemocytes from six diflerent ssnails: morphology and functional aspects. 1992. J Invertebr Pathol 59, 24 32.
  108. Anderson R. S. Effecls of anihropogenic agents on bivalve cellular and humoral defense mechanisms. 1988. Arner Fish Soc Spec Publ, 18, 238 — 242.
  109. Anderson R. S., Brubacher L. L., Ragone Calvo, Unger M. A. Effects of in vitro exposure to lributiltin on generation of oxygen metabolites by oyster hemocytes. 1997. Environ Res, 74, 84−90.
  110. Audesirk, T.E. Chemoreception in Aplysia californica. I. Behavioral localization of distance chemoreceptors used in food-finding / T.E. Audesirk // Behav. Biol. 1975.- Vol. 15. — P. 45−55. — Bibliogr. at the end of article.
  111. Bailey, D.F. Anatomical and electrophysiological studies on the gastropod osphradium / D.F. Bailey, P.R. Benjamin // Symp. Zool. Soc. Lond.-1968.-№ 23.- P. 263−268. Bibliogr. at the end of article.
  112. Bayne B. L., Thompson R. J., Widdows J. Feeding and digestion // Marine mussels: their ecology and physiology. L.: Cambridge Univ, Press. 1976. P. 122 207.
  113. Battegazzore Maurizio // Valutazione della qualita delle acque lung oil Fiume Lambro sulla base della comunita dei macroinvertebrata bentonici / Attil. Soc. ital. nature, e. Mus. Civ. Stor. Natur. Milano. 1994. — 135, № 2. — C. 388 -400.
  114. Balouet G., Poder M., Cahour A., Aullret M. Proliferative hemocytie condition in European flat oyster (Ostrea edulis) from Breton Coasts: a 6-year survey. 1986. J Invenbr Pathol, 48, 208 215.
  115. Boeming Dean W. An evaluation of bivalves as biomonitors of heavy melals pollution in marine waters // Environ Monit. and Assess. — 1999. 55, № 3. -C. 459−470.
  116. Bovbjerg, R.V. Responses to food in Lymnaeid snails / R.V. Bovbjerg // Physiol. Zool.- 1968. Vol. 41. — P. 412−424. — Bibliogr. at the end of article.
  117. Bell, W.J. Chemo-orientation / W.J. Bell, T.R. Tobin // Biol. Rev.-1982. Vol. 57.- P. 219−260. — Bibliogr. at the end of article.
  118. Bennett K., Walker R. Effects of acid exposure on acid-base electrolyte status and gill Na /К ATPase activity in crayfish {Procambarus clarkii) II Amer. Zool. 1992. Vol. 32. № 5. p. 47.
  119. Brookfield J. The evolution of r- and k- strategies // Biol. J. Linn. Soc. 1986. Vol. 27. № 2. P. 165−178.
  120. Cajaraville M. P., Olabarrieta I., Marigomez J. In vitro activities in mussel hemocytes as biomarkers of environinemal quality: a case study in the Abra estuary (Biscay Bay). 1996. Ecutoxicol Environ Saf, 35, 253 260.
  121. P. Реакции на стресс целых организмов // J, Mar. Biol. Assoc. UK. 1990. № 3. P. 660.
  122. Carballal M.J., Villalba A., Lopez C. Seasonal variation and effecls age, food availabilily, size, gonadal development, and parasitism on hemogram of Mytillus galloprovincialis. 1998. J Invertbr Pathol, 72, 304 312.
  123. Carell Brigitta, Duncan Elena, Gardenfors Ulf, Kulakowski E., Lindth Uio. //Biomonitoring of pollutants in a historic peispective Emphasis of mussel and snail shell methodology/ Ann. Chim. (Ital).-1995.-85, № 7−8.-C.353−370.
  124. J., Cruber D. // Comparison of methods and instrumentation of bijlogical early warning system // Water res. Bull., 1980. Vol. 16, № 2. P. 261 -266.
  125. Chase, R. Tentacular function in snail olfactory orientation / R. Chase, P. Croll // J. Сотр. Physiol. 1981. — Vol. 143. — P. 357−362. — Bibliogr. at the end of article.
  126. Chase, R. The olfactory sensitivity of snails, Achatina fulica I R. Chase // J. Сотр. Physiol. 1982. — Vol. 148. — P. 225−235. — Bibliogr. at the end of article.
  127. Chamat C, Potts W. Interacellular osmotic regulation in Crangon vulgaris II Сотр. Biochem and Physyol. 1985. Vol. 82. № 3. P. 719−724.
  128. Conte A., Ottaviani E. Nitric oxide suntrase activity in molluscan hemocytes. FEBS Lett. 1995. 365, 120- 124.
  129. Conte F., Geddes M. Acid brine shrimp: Metabolic strategies in osmotic and iomc adaptation//Hydrobiologia.l988.Vol. 158. P. 191−200.
  130. Cooper K. R., Brown R. S., Chang P. W. The coursc and mortality of a hematopoielic neoplasm in the soft shell clam Mya arenaria. 1982. J Invertebr Pathol, 39, 149- 157.
  131. Cosson-Mannevy M. A, Wong C. S., Cretney W. J. Putative neoplastic disorders in mussels (Mytilus edulis) from Southera Vancouver Island waters, British Columba. 1984. J Invertebr Palhol, 44, 151 160.
  132. Cravliro J. Effectio da reducao de ions sodio, calcio, epotassio nas contracoes espontaneas do esofago de Pomacea lineata, Spix, 1827. (Molusco. Gastropode. Prosobranquio) // Arg. Lioi. Etecnol. 1997. Vol. 40. № 2. P. 369−375.
  133. Croll, R. P A long-term memory for food odors in the land snail Achatina fulica I R.P. Croll, R. Chase // Behav. Biol. 1977. — Vol. 19. — P. 261 268. — Bibliogr. At the end of article.
  134. Croll, R.P. Gastropod chemoreception / R.P. Croll // Biol. Rev. -1983. Vol. 58.P. 293−319. — Bibliogr. at the end of article.
  135. Croll, R.P. Plasticity of olfactory orientation to foods in the snail Achatina fulica I R.P. Croll, R. Chase // J. Сотр. Physiol. 1980. — Vol. 136. — P. 261−211. — Bibliogr. at the end of article.
  136. Din Z. B., Ahamad A. Chandes in the scope for growth of blood cockles (Anadara granosa) exposed to industrial discharge: Pap. Int. Conf .Mar. Pollut .and Ecotoxicol., Hong Kong, Jan., 1995 // Mar. Pollut.Bull.-1995.-31, № 412.- C.496−410.
  137. Diet Thomas H., Lynn John W., Silverman Horold. Method for controlling bivalves such as zebra mussels: Louisiana State University Aqricaltural and Mechanical College / Mar. Pollut. Bull. 1997. -35, № 4. — C. 456 — 460.
  138. Diet Thomas H., Lynn John W., Silverman Horold. Method for controlling bivalves such as zebra mussels: Louisiana State University- Aqricaltural and Mechanical College. 1997. 67, № 4. — C. 231 — 240.
  139. Devlin C. The ionic basis of the mollusc Mercenaria mercenaria. The ionic basis of atmorythmicity // J. Exp. Biol. 1993. 179. P. 47−61.
  140. Duncan E., Mutvei H., Seire A // Deformations and structural• • 20modifications of pollution in Tallin Bay Estonia: (Pap) Tzu Nov., 1993:
  141. Biomineralization' 93/ Bull .Inst .oceanogr .Monaco ,-1996- Num .spec. 14, Pt 4-C.91−96.
  142. Emery, D.G. Fine structure of olfactory epithelia of Gastropod Molluscs / D.G. Emery // Microscopy res. and tech. 1992. — Vol. 22. — P. 307−324. — Bibliogr, at the end of article.
  143. Elliot, C.J.H. Comparative neuroethology of feeding control in molluscs / C.J.H. Elliot, A.J. Susswein // J. Exp. Biol. 2002. — Vol. 205. — P. 877 896. — Bibliogr. at the end of article.
  144. Fries G., Trepp M. R. Effect of phenol on clans // Mar. Fish. Rev. 1976. Vol. 38, № 10. P. 10−11.
  145. Fisher W. S. Environmental influence on bivaive hemocyte function. 1988. Amer Fish Soc Spec Publ 18, 225 237.
  146. Fisher W. S., Newell R. J. E. Salinite effects on the activity of granular hemocytes of American oysters, Crassostrea virginica. 1986. Biol Bull, 170, 122−134.
  147. Franchini A., Ottaviani E. Repair of molluscan rissue injury: role of PDGF and TGF-J3. 2000. Tissue Cell, 32, 312 321.
  148. Feng S. Y. Cellular defence mechanisms of oysters and mussels. 1988. Amer Fish Soc Spec Pub, 18, 153 168.
  149. Gunther Andrew J., Davis Jay A., Hardin Dane D., Gold Jordan. Bell Stephenson Mark // Long-term bioaccumulation monitoring with transplanted bivalves in the San Francisco estuary / Mar. Pollut. Bull. -1999.- 38, № 3. C.170−181.
  150. Gregory M. A., Marshal D. J., George R. C., Anandraj A., Mcclug T. P. Correlation between metal uptake in the soft tissue of Perna perna and gill filament patologi after exposure to mercuri // Mar. Pollut. Bull. 2002. — 45, № 1 -12.-P. 114- 125.
  151. Ghesquiere Stijn, 2004 http://www.applesnail.net/
  152. Graham A. The molluscan stomach // Trans. Roy. Soc. Edinburgh., 1949. V. 61. P. 737−778.
  153. Gourdon I., Gucrin M. C., Torreilles J., Roch P. Nitric oxide generation by hemocytes of the mussel Mytilus galloprovincialis // Nitric oxide-biology and chemistry. 2001. V. S. Iss. 1. P. 1 6.
  154. Goldschmeding, J.T. Feeding responses to sucrose in the pond snail Lymnaea stagnalis after nerve section and tentacle amputation / J.T. Goldschmeding, J.C. Jager // Netherl. J. Zool. 1973. — Vol. 23(1). — P. 118−124. -Bibliogr. at the end of article.
  155. Gelperin, A. Rapid food aversion learning by a terrestrial mollusk / A. Gelperin // Science. 1975. — Vol. 189. — P. 567−570. — Bibliogr. at the end of article.
  156. Grimm-Jorgensen Y., Ducor M, Piscotelli J. Surface mucus production in gastropods in dependent on environmental salinity and hymidity // Сотр. Biochem. and Physiol. 1986. № 3. P. 415−419.
  157. Hareldson Faith // Effect of freshwater mussels on nutrient dynamics in a small stream: Abstr. 67 th Annual. Meeting of the Minnesota Academy of Scibce st Paul Minn. Apr .23−24 1999 //J. Minn. Acad .Sci .-1999.-63., № 3 .-C.13.
  158. Harper D. M., Flessas D. A., Reiniseh C. L. Specific reactivity of leukemia cells to polyclonal anti-PCB antibodies. 1994. J Invertebr Pathol, 64, 234 -237.
  159. Heming Т., Vanoye C, Brown S., Bidani A. Citoplasmic pH recovery in acid-loaded haemocytes of squid Sepioteuthis lessoniana II J. Exp. Biol. 1990. № 148. P. 385−394.
  160. Heming Т., Vinogradov G., Klerman A., Komov V. Acid-base regulation in the freshwater pearl mussel Margaritifera margaritifera: effects of emersion and low water pH//J. Exp. Biol. 1988. Vol. 137. P. 501−511.
  161. Henry R., Mangam C. Salt and water balance in the oligohaline clam Rangia cuneata. 3. Reduction of the free amino acid pool during low salinity adaptation // J. Exp. Zool. 1980. Vol. 211. № 1. P. 25−32.
  162. Hurst W. J., Moroz L. L., Gillette M. U., Gillette R. Nitric oxide synthase immunolaheling in the molluscan CNS and peripheral tissues // Biochem. Biophys. Res. Commun. 1999. V. 262. P. 545 548.
  163. Hubendick, B. The eating function in Lymnaea stagnalis (L.) / B. Hubendick // Arc. Zool. 1957. — Vol. 10. — P. 511−521. — Bibliogr. at the end of article.
  164. Jacklel J. W. Nitric oxide signaling in invertebrates // Invert. Neurosei. 1997. V. 3.P. 1−14.
  165. Jahan-Parwar, B. Activition of neurosecretory cells in Aplysia by osphradial stimulation / B. Jahan-Parwar, M. Smith, R. von Baumgarten // Amer. J. Physiol.-1969. Vol. 216. — P. 1246−1257. — Bibliogr. at the end of article.
  166. F. В., Malt H. Acid-base and electrolyte regulation and haemolymph gas transport in crayfish, Astacus astacus, exposit to soft, acid water and without aluminium // J. Сотр. Physiol. B. № 5.1990. P. 483 490.
  167. Jorgensen С. B. Biology of suspension feeding. N. Y.: Acad. Press. 1966.357 р.
  168. Loke A. Zooplancton responses to acidification: a review of laboratory bionalyses // Water, air and soil pollut. 1991. Vol. 60. № 1−2. P. 135 148.
  169. Lowe D. M, Soverchia C, Moor M. N. Lysosomal membrane responses in the blood and digestive cells of mussels experimentally exposed to fluoranthene //AquatToxicol.-1995.-33, № 2.-C. 105−112.
  170. Luckinbill L. R- and k-selection in experimental populations of Escherichia со//. //Science. 1978. № 43. P. 202.
  171. Luckinbill L. R. Selection and the r/k continuum in experimental populations of Protozoa//Amer.Natur. 1979. Vol. 113. № 3. P.427−437.
  172. Makela Т., Oikari O. The effect of water pH on the ionic balance in fresh water mussQl Anodonta anatina II Arm. Zool. fenn. 1992. Vol. 29. № 3. P. 169- 175.
  173. Mauro N., Moore G. Effects of environmental pH and oxygen uptake in fresh water crustaceans // Сотр. Biochem. and Physiol. 1987. № 3. p. 1−3.
  174. Matricon-Gondran M., Letocart M. Internal defenses of the snail Biomphuluria glaburata. Ill Observations on tubular helical filaments induced in the hemolymph by foreign material. 1999b. J Invertebr Pathol, 74, 248 251.
  175. Moroz L. L. Giant identified NO-releasing neurons and comparative analysis of putalive nitrergic systems in gastropod molluska // Microscopy Res. And Technique. 2000. V. 49. P. 557 569.
  176. Moroz L. L., Gillette R. NADFH-diaphorasc localization in the CNS and peripheral tissues of the predatory sea-shig Pleurobranchaea californica // J. Comp. Neurol. 1996. V. 367. P. 607 622.
  177. Mount A. S., Wheeler A. P., Paradkar R. P., Snider D. J Jemocyte-mediated shell mineralization in the eastern oyster. 2004. Science, 304, 297 — 300.
  178. Michelson E. H., Dubois L. Agglutinins and lysins in the molluscan Iamily Planorbidae: a survey of hemolymph, egg-masses, and albumen-gland extracts. 1977. Biol Bull, 153, 219 227.
  179. Mullainadhan P., Renwrantz L. Comparative analysis of agglutinins from hemolymph and albumin gland of Helix pomatia. 1989. J Comp Physiol B, 159, 443−452.
  180. Ottaviani E. Surface markers on the haemocytes of the freshwater snail Plunorbarius corneus (L.) (Gastropoda, Pulmonata). 1988. Acta Zool (Stokcholm) 69, 121 124.
  181. Ottaviani E., Franchini A. Immune and neuroendoctine responses in molluses: the role of cytokines. 1995. Acla Biol Hung, 46, 341 349.
  182. Owen G. Digestion // Physiology of Mollusca. N.Y.: L, Acad. Press. 1966. V. 2. P. 53−96.
  183. Parry G. The meanings of r- and k-selecfion // Oecologia, 1981. Vol. 48. № 2. P. 260−264.
  184. Patterson N., de Fur P. Venfilatory and circulatory responses of the crayfish, Procambarus clarki, to low environmental pH // Physiol. Zool. 1988. № 5. P. 369−406.
  185. Pianca E. R. On r- and k-selection // Readings Sociobiol. Reading San-Francisco. 1978. P. 45−51.
  186. Pauley G. B., Healon L. H. Experimental wound repair in the freshwater mussel Anodonta oregonensis. 1969. J Invertbr Pathol, 13, 241 — 249.
  187. Purchon R. D. The biology of the Mollusca. Oxford ctc. 1978. 594 p.
  188. Rainbow Philip. // Biomonitoring of the heavy metal availability in the marine environment: Pap. hit. Conf. Mar. Pollut. and Ecotoxicol., Hong Kong, Jan., 1995 / Mar. Pollut. Bull .-1995.-31,3 4−12.-C. 183−192.
  189. Rapid, nonaversive conditioning in a freshwater Gastropod. I. Effects of age and motivation / T.E. Audesirk et al. // Behav. Neur. Biol. 1982. — Vol. 36. — P. 379−390. — Bibliogr. at the end of article.
  190. Robertson A., Lauenstein G. G. Great Lanes Mussel Watch A Comparison of metal levels using zebramussels //37 th Conf Int. Assoc, Great Lakes Res. And Estuarine Res. Fed., Windsor, June 5−9 1994: Program and Abstr. -(Windsor), 1994.-C.89−90.
  191. Rocha. P., Avelar T. Motos M. The r- and k-selection model and life history strategies // Ecol. and syst. 1985.Vol. 5. № 4. P. 269−297.
  192. Rex M. R- and k-selection in a deep-sea gastropoda // Sarsia. 1979. Vol. 64. № 1−2. P. 29−32.
  193. Ruddel C. L. The fine structure of oyster agranular amebocytes from regenerating mantle wounds in the Pacific oyster, Crassostrea gigas. 1971a. J Invertebr. Pathol, 18, 260 268.
  194. Ruddel C. L. The fine structure of the granular amebocytes of the Pacitic oyster, Crassostrea gigas. 1971b. J Invertebr. Pathol, 18, 269 — 275.
  195. Swedmark M., Braaten B., Emanirelsso E., Granmo A. Biological effect of surface activ agents of marine animals //Mar. Biol., 1971., Vol 9, № 3, .P 183−201.
  196. Schubauer-Berigan M., Monson P., West C, Ankley G. Influence of pH on the toxicity of ammonia to Chironomus tentans and Lumbriculus yariegatus//Environ. Toxicol, andChem. 1995. Vol. 14. № 4. P. 713−717.
  197. Soares-da-Silva J. M., Ribeiro J., Valongo C., Pinto R., Vilanova M., Machado J., 2002. Cytometric, morphologic and enzymatic characterization of haemocytes of Anodonta cygnca. Comp Biochem Physiol, pt A, 132, 541 — 553.
  198. Seiler G. R., Morse M. R. Kidney and hemocytes of Mya arcnaria (Bivalvia): normal and pollution-related ultrastructural morphologies. 1988. J Invertebr Pathol, 52, 201 -214.
  199. Selective and differential avoidance learning in the feeding and Withdrawal behavior of Pleurobranchaea californica I W.J. Davis et al. // J. CoTp.Physiol.- 1980. Vol. 138. — P. 157−165. — Bibliogr. at the end of article.
  200. Sminia T. Sttucture and function of blood and connective tissue cells of the freshwater pulmonate snail Lymnaea stagnalis studied by electron microscopy and enzyme histochemisiry. 1972. Z Zellforsch 130, 497 526.
  201. Sminia T. Haematopoiesis in the freshwater snail Lymnaea stagnalis studied by electron microscopy and autoradiography. 1974. Cell Tissue Res, 150, 443 454.
  202. Stanislavski E., Renwrantz L., Becker W. Soluble blood group reactive substances in the hemolymph of Biomphalaria glabrata. 1976. J Invertebr Pathol, 28, 301 -308.
  203. Stumpf I. L., Gilbertson D. E. Hemocytes of Biomphalaria glabrata: factors affecting variability. 1978. J Invertebr Pathol, 32, 177 181.
  204. Tanveer A. Effect of temperature and pH on the metabolic rate of some gastropod snails // Pakistan J. Zool. 1991.Vol. 23. № 4. P. 345.
  205. Taylor C. Condra C. R- and k-selection in Drosofila pseudoobscura II Evolution (USA). 1980. Vol. 34. № 6. P. 1183−1193.
  206. Trueman E. R., Akberali H. B. Responses of an estuerine bivalve, Scrobicularia plana (Telinacea) // Malacologia. 1981. Vol. 21. № 1−2. P. 15−21.
  207. Townsend, C.R. The food-finding orientation mechanism of Biomphalaria glabrata (Say) / C.R. Townsend // Anim. Behav. 1973a. — Vol. 21.- P. 544−548.-Bibliogr. at the end of article.
  208. Townsend, C.R. The role of the osphradium in chemoreception by the snail Biomphalaria glabrata (Say)/ C.R. Townsend // Anim. Behav. 1973b. — Vol. 21.- P. 549−556. — Bibliogr. at the end of article.
  209. Teyke, T. Food attraction condicioning in the snail Helixpomatia I T. Теуке //Сотр. Physiol. 1995. — Vol. 117, № 4. p. 409−414. — Bibliogr.: p. 414. -Bibliogr. at the end of Article.
  210. Uman В., Rajendiran A., Premkishore G., Chandran M. Effect of ammonia at different pH levels on Macrobrachium lamarrei lamarrei II Bamidgeh- Israeli J. Aquaculture. 1994. Vol. 46. № 2. P. 95−101.
  211. Villalba A. Carballal M. J., Lopez C. Disseminated neoplasia and large foci indicating heavy haemocytic intiltration in cockles Cerastoderma edule from Galicia (NW Spain). 2001. Dis Aquat Organ, 46, 213 216.
  212. Yssel E., Wolmarans C. T. Factors influencing the leukocyte concentration of the freshwater snail Bulinus africanus. 1989. J Invertebr Pathol, 53,269−271.
  213. With N. de. The effects of starvation and feeding on the ionic composition of the haemolymph in the freshwater snail Lymnaea stagnalis // Proc. Kon. nederl. akad. wetensch. 1978. Vol. 81. N 2. P. 241−248.
  214. With N. de, Witteveen J., van der Wond H. Integumental Na+/H+ and CT/HC03» exchanges in the freshwater snail Lymnaea stagnalis II Proc. Kon. ned. okad. wetensch. 1980. Vol. 83. № 2. P. 209−215.
  215. Williamson Kristin C, Shofer Scott L., Tjeerdema Ronalds. Toxicolinetics and biotransformation of p-nitrophenol in the black turban snail (Tegula funebralis) //Aquat. Tocicol.-1995.-33, № 2.-C. 113−123.
Заполнить форму текущей работой