Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Морфогенез, гормональный баланс и продуктивность растений при адаптации к УФ-А излучению

Диссертация: Морфогенез, гормональный баланс и продуктивность растений при адаптации к УФ-А излучению
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Показано, что УФ-А радиация влияет на морфогенез Лгаб/яЬ/шя tha.lia.na (Ь.) НеупЬ. Ьег и ку4, ингибируя ростовые реакции, удлиняя онтогенез и уменьшая продуктивность растений за счет изменения соотношения ростовых веществ, уровня аскорбиновой кислоты и фотосинтетических пигментов. Повышение интенсивности УФ-А излучения в световом потоке усиливает его ингибирующего влияние на рост и развитие… Читать ещё >

Морфогенез, гормональный баланс и продуктивность растений при адаптации к УФ-А излучению (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ И УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ВЛИЯНИЕ СВЕТА НА МОРФОГЕНЕЗ РАСТЕНИЙ
    • 1. 1. Фотоморфогенез
    • 1. 2. Роль УФ излучения в морфогенезе растений
    • 1. 3. Адаптация растений к действию УФ лучей
    • 1. 4. Эндогенные фитогормоны
    • 1. 5. Роль аскорбиновой кислоты в онтогенезе растений
  • ГЛАВА 2. ОБЪЕКТЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объекты исследования
    • 2. 2. Методы выращивания растений
    • 2. 3. Методы проведения морфометрических измерений
    • 2. 4. Методы проведения биохимических исследований
      • 2. 4. 1. Определение фотосинтетических пигментов
      • 2. 4. 2. Определение аскорбиновой кислоты
      • 2. 4. 3. Выделение и определение эндогенных фитогормонов
    • 2. 5. Статистическая обработка результатов исследований
  • ГЛАВА 3. ИЗМЕНЕНИЕ МОРФОГЕНЕЗА, ГОРМОНАЛЬНОГО БАЛАНСА И СЕМЕННОЙ ПРОДУКТИВНОСТИ ARABIDOPSIS
  • THALIANA her и hy4 ПРИ ОБЛУЧЕНИИ БС И УФ-А СВЕТОМ
    • 3. 1. Рост и развитие растений Arabidopsis на БС
    • 3. 2. Рост и развитие растений Arabidopsis на БС с дополнительной экспозицией УФ-А излучением при соотношении интенсивностей светового потока
    • 3. 3. Рост и развитие растений Arabidopsis на БС с дополнительной экспозицией УФ-А излучением при соотношении интенсивностей светового потока
  • ГЛАВА 4. МОРФОГЕНЕЗ И ПРОДУКТИВНОСТЬ РАСТЕНИЙ В ЗАЩИЩЕННОМ ГРУНТЕ ПРИ УМЕНЬШЕНИИ ИНТЕНСИВНОСТИ УФ-А СВЕТА В СОЛНЕЧНОМ ИЗЛУЧЕНИИ
    • 4. 1. Изменение морфогенеза и продуктивности Brassica oleracea L. при выращивании под модифицированными пленками в защищенном грунте
    • 4. 2. Изменение морфогенеза и продуктивности batuca sativa L. при выращивании под флуоресцентной пленкой в защищенном грунте
    • 4. 3. Изменение морфогенеза и продуктивности Cucumis sativus L. при выращивании под флуоресцентной пленкой в защищенном грунте
  • ВЫВОДЫ

Актуальность исследования. Солнечный свет для растений служит регулятором всех сторон жизнедеятельности и источником энергии для фотосинтеза (Воскресенская, 1965; Карначук и др., 1990; Stapleton, 1992; Jackson, 1995; Franklin, 2004). Падающая на растение солнечная радиация в зависимости от астрономических, географических, климатических, суточных и метеорологических факторов имеет различную интенсивность, направление, продолжительность и спектральный состав (Клешнин, 1955; Шульгин, 1973). Такие различия свойств световых сигналов являются для растений индикаторами состояния окружающей среды, полученную информацию они используют для адаптации и развития (Kasahara et al., 2002; Franklin, 2004; Franklin, Whitelam, 2005; Thomas, 2006; Devlin et al., 2007; Roden, Ingle, 2009).

Наряду с ФАР важнейшим компонентом солнечной радиации, влияющим на жизнедеятельность растений, является УФ-А излучение (Шульгин, 1973), так как его поглощение различными частями растений достигает значительной величины (Дубров, 1963; Тооминг, 1977; Соловченко, 2009). Обладая самой высокой проникающей способностью из всей УФ радиации (Middleton, Teramura, 1993), УФ-А свет может существенно влиять на морфогенез и продуктивность растений, особенно при его совместном действии с ФАР (Дубров, 1963; Whitelam, Devlin, 1998; Christie, Briggs, 2001; Данильченко и др., 2002; Borevitz, 2002; Соловченко, 2009). Изменение интенсивности и соотношения ФАР и УФ-А радиации в солнечном излучении имеет колебательный характер, определяется временем года и суток, географической широтой и состоянием атмосферы. Кроме того, в некоторых регионах, в том числе в Западной Сибири, отмечается уменьшение поступающей ФАР и увеличение доли УФ-А света в солнечном излучении (Житорчук и др., 1994; Байков, 1998; Коваленко, Молодых, 1999). Вследствие этого, актуальным является изучение совместного влияния УФ-А излучения и Б С при их различных соотношениях в световом потоке на морфогенез, продуктивность, изменение уровня ростовых веществ, аскорбиновой кислоты и фотосинтетических пигментов растений.

Цель работы. Определить УФ-А излучения различной интенсивности в регуляции морфогенеза, гормонального баланса и продуктивности растений.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1. Изучить морфогенез, динамику накопления эндогенных фитогормонов, продуктивность, уровень аскорбиновой кислоты и фотосинтетических пигментов на примере модельного объекта АгаЫДорягя ИъаИапа (Ь.) НеупЬ. Ьег и его мутанта ку4 при выращивании на белом свету.

2. Установить особенности жизнедеятельности АгаЫЛорягя МаНапа (Ь.) НеупЬ. Ьег и ку4 при дополнительном облучении УФ-А светом различной интенсивности.

3. Определить эффективность применения в практике защищенного грунта в качестве покрытий культивационных сооружений полиэтиленовых пленок, уменьшающих долю УФ-А света в солнечном излучении, с целью управления продукционным процессом.

Научная новизна. Полученные результаты вносят вклад в развитие представлений о фоторегуляции морфогенеза и продуктивности растений УФ-А излучением при его различных соотношениях с БС.

Показано, что УФ-А радиация влияет на морфогенез Лгаб/яЬ/шя tha.lia.na (Ь.) НеупЬ. Ьег и ку4, ингибируя ростовые реакции, удлиняя онтогенез и уменьшая продуктивность растений за счет изменения соотношения ростовых веществ, уровня аскорбиновой кислоты и фотосинтетических пигментов. Повышение интенсивности УФ-А излучения в световом потоке усиливает его ингибирующего влияние на рост и развитие растений.

Выявлено участие криптохрома в регуляции морфогенеза АгаЫс1орв18 МаИапа (Ь.) НеупЬ. при УФ-А облучении.

Использование покровного материала, уменьшающего долю УФ-А света в солнечном излучении, увеличивает продуктивность растений в защищенном грунте.

Практическая значимость. Показана возможность повышения продуктивности растений в защищенном грунте за счет применения в качестве покрытий культивационных сооружений полиэтиленовых пленок (), уменьшающих долю УФ-А света в солнечном излучении.

Полученные результаты используются в учебном процессе ГОУ ВПО «Томский государственный педагогический университет» (ТГПУ) при чтении курсов «Физиология растений» и «Биологические основы сельского хозяйства».

Защищаемые положения. УФ-А излучение в составе БС удлиняет этапы онтогенеза АгаЫс1ор518 ЖаИапа (Ь.) НеупЪ. Ьег и ку4, изменяя баланс эндогенных фитогормонов, уменьшает семенную продуктивность, повышает уровень аскорбиновой кислоты и фотосинтетических пигментов. Ингибирующее влияние УФ-А радиации на рост и развитие растений увеличивается с повышением его интенсивности в световом потоке.

Применение полиэтиленовых пленок, уменьшающих долю УФ-А света в солнечном излучении, в качестве покрытий для защищенного грунта, способствует повышению продуктивности растений.

Внедрение результатов исследований было осуществлено на агробиологической станции ГОУ ВПО ТГПУ и в фермерском хозяйстве М. П. Борзунова (г. Томск) при выращивании огурцов, баклажанов, сладкого перца, томатов и рассады белокочанной капусты.

Апробация работы. Материалы настоящей работы были доложены на XI Международной научной школе-конференции студентов и молодых ученых «Экология Южной Сибири и сопредельных территорий», г. Абакан, 2007; Всероссийской научно-практической конференции «Экологические проблемы уникальных природных и антропогенных ландшафтов», г. Ярославль, 2007; Международной научно-практической конференции «Природноресурсный потенциал, экология и устойчивое развитие регионов.

России", г. Пенза, 2008; Международной научной конференции «Физико-химические основы структурно-функциональной организации растений» г. Екатеринбург, 2008; XIII Международной экологической студенческой конференции «Экология России и сопредельных территорий», г. Новосибирск, 2008; XII (XIII, XIV) Всероссийской конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Наука и образование», г. Томск, 2008 (2009, 2010) — Международной научно-практической конференции «Проблемы сохранения биологического разнообразия и использования биологических ресурсов», г. Минск, 2009; Международной научной конференции «Физико-химические механизмы адаптации растений к антропогенному загрязнению в условиях Крайнего Севера» г. Апатиты, Мурманская область, 2009.

Публикации. По теме диссертационной работы опубликовано 15 научных работ, в том числе 3 статьи в журналах, рекомендованных списком ВАК.

Объем и структура работы. Диссертация изложена на 151 странице машинописного текста, содержит 50 рисунков, 13 таблицсостоит из введения, обзора литературы, главы материалов и метододов исследования, 2-х глав экспериментальных результатов и их обсуждений, выводов, списка литературы, включающего 414 наименований, в том числе 292 иностранных источников.

ВЫВОДЫ.

1. УФ-А излучение с интенсивностью 0,35 и 0,70 Вт/м~ в составе БС с интенсивностью 63 Вт/м2 ингибирует рост и развитие Arabidopsis thaliana, удлиняя сроки вегетации и снижая семенную продуктивность. Показано участие криптохрома в регуляции морфогенеза.

2. Ингибирующее действие УФ-А лучей с интенсивностью 0,35 Вт/м" в составе БС сопряжено с изменением соотношения основных эндогенных гормонов ИУК и АБК в растениях.

3. Увеличение интенсивности УФ-А излучения до 0,7 Вт/м" повышает уровень аскорбиновой кислоты и фотосинтетических пигментов в растениях.

4. Использование в защищенном грунте модифицированной полиэтиленовой пленки, содержащей комплекс нитрата лантана с 1,10-фенантролином и уменьшающей интенсивность УФ-А света в солнечном излучении на 1%, повышает продуктивность Brassica oleracea L. сорта Надежда при выращивании в климатических условиях Томского региона.

5. Применение флуоресцентных полиэтиленовых пленок, содержащих комплекс нитрата европия с 1,10-фенантролином и фосфат-ванадат иттрия, активированный европием, генерирующих свет в красной области спектра с максимумами 615нми619нмза счет поглощения части УФ-А излучения, в защищенном грунте в условиях региона Томска увеличивает продуктивность Cucumis sativus L. гибрида F! Примадонна, Lactuca Sativa L. сорта Московский парниковый и Brassica oleracea L. сорта Надежда.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. А., Хаметова К. М. Роль салициловой кислоты в индукции устойчивости растения огурца к засолению // Физико-химические основы структурно-функциональной организации растений: тезисы докладов Международной научной конференции. 2008. С. 33−34.
  2. Н. Г. Биогенез пигментного аппарата фотосинтеза. Минск: Наука и техника, 1988. 319 с.
  3. Ю. М. Овощеводство : учебник для нач. проф. образования. 2-е изд., ил. М.: Академия, 2003. 256 с.
  4. Аскорбиновая кислота и развитие клеток ксилемы в стволе лиственницы сибирской / Вараксина и др. // Физиология растений. 2005. Т. 52, № 1. С. 97−107.
  5. Особенности роста и развития растений огурца при выращивании под светокорректирующими пленками / А. П. Астафурова и др. // Сельскохозяйственная биология. 2003. № 5. С. 44−48.
  6. И. М. Особенности многолетнего изменения коэффициента прзрачности атмосферы и составляющих солнечной радтации в Сибири и на Дальнем Востоке // Метеорол. и гидрол. 1998. № 1. С. 29 35.
  7. Н. П. Перспективы использования гиббереллинов в сельском хозяйстве //Биол. журн. Армении. 1986. Т. 34, № 10. С. 878−884.
  8. Влияние салициловой кислоты на содержание гормонов в корнях и рост проростков пшеницы при водном дефиците / М. В. Безрукова и др. // Агрохимия. 2001. № 2. С. 51−54.
  9. Ш. Г. Раннее овощеводство : селекция, возделывание, семеноводство. СПб.: ПрофиКС, 2006. 408 с.
  10. Ю.Васильев А. Е. Динамика клеточных компонентов тканей листа АгаЫЛорягя ЖаИапа (ВгаББюасеае) в ходе дифференциации // Ботанический журнал. 2000. Т. 85, № 8. С. 68−83.
  11. И. Д. Фитохром — регуляторный фоторецептор растений.
  12. Минск: Навука и техшка, 1992. 168 с.
  13. ВоскресенскаяН. П. Фоторегуляторные реакции и активность фотосинтетического аппарата // Физиология растений. 1987. Т. 34. С. 669 683.
  14. Н. П. Фотосинтез и спектральный состав света. М.: Наука, 1965. 308 с.
  15. Роль ауксинов и цитокининов в формировании боковых корней у растений пшеницы с частично удаленными первичными корнями / JI. Б. Высоцкая и др. // Физиология растений. 2007. Т. 54, № 3. С. 455−460.
  16. И. Ф. Роль криптохрома 1 и фитохромов в регуляции фотоморфогенетических реакций растений на зеленом свету // Физиология растений. 2005. Т. 52, № 6. С. 822−829.
  17. , И.Ф. Свет и растение / И. Ф. Головацкая, P.A. Карначук. -Томск: изд-во Томского гос. ун-та, 1999. — 100 с.
  18. И. Ф., Карначук Р. А. Динамика роста растений и содержание эндогенных фитогормонов в процессе ското- и фотоморфогенеза фасоли // Физиология растений. 2007. Т. 54, № 3. С. 461−468.
  19. И. Ф., Карначук Р. А., Ефимова М. В. Рост и гормональный баланс арабидопсиса на зеленом свету // Вестник Башкирского университета. 2001. № 2 (1). С.114−116.
  20. Физиолого-биохимические особенности роста и продуктивность растений овощных культур при выращивании под светокорректирующими пленками / И. Ф. Головацкая и др. // Сельскохозяйственная биология. 2002. № 5. С. 47−51.
  21. Т. К. Экология растений: учеб. пособие. М.: Высшая школа, 1979. 368 с.
  22. А., Девис П., Сеттер Р. Жизнь зеленого растения. М.: Мир, 1983. 550 с.
  23. О. А., Гродзинский Д. М., Власов В. Н. Значение ультрафиолетового излучения в жизнедеятельности растений // Физиология и биохимия культурных растений. 2002. Т. 34, № 3. С. 187— 197.
  24. К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985. 304 с. 25. Особенности вертикального распределения озона в Восточной Сибири взимне-весенние периоды 1994−1995 г / В. М. Дорохов и др. // Метеор, и гидрол. 1998. Т. 4. С. 44−57.
  25. А. П. Действие ультрафиолетовой радиации на растения. М.: Изд-во. Академии наук СССР, 1963. 115 с.
  26. О. В., Головко Т. К. Состояние пигментного аппарата растений живучки ползучей в связи с адаптацией к световым условиям произрастания// Физиология растений. 2007. Т. 54, № 1. С. 47−53.
  27. М. К. X. Проявление устойчивости двух сортов хлопчатника к облучению ультрафиолетом-А: фотосинтез и некоторые химические компоненты клеток// Физиология растений. 2005. Т. 52, № 5. С. 726−733.
  28. А. И., Арасимович И. Б. Методы биохимического исследования растений. JI.: Колос, 1972. 456 с.
  29. Е. И., Канаш Е. В. Современные проблемы УФ-В радиации в экофизиологии и растениеводстве // Сельскохозяйственная биология. 2005. № 1.С. 78−83.
  30. Регуляция фотоморфогенеза Arabidopsis thaliana брасиностероидами / М. В. Ефимова и др. // Физико-химические основы структурно-функциональной организации растений: тезисы докладов Международной научной конференции. 2008. С. 172−173.
  31. Ю. В., Стадник И. Н., Шамина В. В. Исследование линейных трендов во временных рядах солнечной радиации // Известия РАН. Физ. атмосф. и океана. 1994. Т. 30, № 3. С. 389−391.
  32. В. Н. Предельно возможные к.п.д. преобразования солнечной энергии в химическую / Фотокаталитическое преобразование солнечной энергии. Ч. 1. Химические и биологические методы — отв. ред. К. И. Замараев. Новосибирск: Наука, 1985. С. 42—57.
  33. А. Б., Анцыгина JI. JL, Ярин А. Ю. Современные аспекты изучения фитогормонов//Цитология. 1999. № 10. С. 835−847.
  34. В. Е. Новые полимерные светотрансформирующие материалы для солнечной энергетики // Вестник Дальневосточного отделения РАН. 2002. № 3. С. 51−60.
  35. В. Е. Полисветаны новые полимерные светотрансформирующие материалы для сельского хозяйства // Вестник Дальневосточного отделения РАН. 1995. № 2. С. 66−73.
  36. В. Н. Биологические функции каротиноидов. М.: Наука, 1988. 240 с.
  37. Р. А., Головацкая И. Ф. Гормональный статус, рост и фотосинтез растений, выращенных на свету разного спектрального состава // Физиология растений. 1998. Т. 45, № 6. С. 925−934.
  38. Действие эпибрассинолида на морфогенез и соотношение гормонов у проростков АгаЫс1ор51 $ на зеленом свету / Р. А. Карначук и др. // Физиология растений. 2002. Т. 49, № 4. С. 591−595.
  39. Р. А., Негрецкий В. А., Головацкая И. Ф. Гормональный баланс листа растений на свету разного спектрального состава // Физиология растений. 1990. Т. 37, вып. 3. С. 527−534.
  40. В. И. Фотоморфогенез, фотосинтез и рост как основа продуктивности растений. Пущино, 1991. 136 с.
  41. Кириллова Э: А., Шульгина Э. С. Старение и стабилизация термопластов. Л.: Химия, 1988. 43 с.
  42. А. Ф. Роль света вжизни растений. М.: Знание, 1955. 32 с.
  43. В. А., Молодых С. И. Долговременные вариации элементов радиационного баланса земной атмосферы и интенсивности космических лучей // Исслед. по геомагнетизму, аэрон, и физике Солнца. 1999. Вып. 106. С. 110−118.
  44. С. В., Волотовский И. Д. Фотобиология. Минск: Изд-во БГУ им. В. И. Ленина, 1979. С.175−192.
  45. P. H. Особенности биопродуктивности и синтеза пигментов растений рода Salix в естественных и антропогенных экосистемах Западной Сибири // Экология Южной Сибири и сопредельных территорий. 2007. Т. 1, № 11. С. 27−29.
  46. С. А. Интенсификация технологии возделывания овощных культур в защищенном грунте. М.: Химия, 1981. 140 с.
  47. А. А. Фоторецепторы растительной клетки и пути светового регулирования / Фоторегуляция метаболизма и морфогенеза растений — под ред. A. JI. Курсанова, Н. П. Воскресенской. М.: Наука, 1975. С. 5−15.
  48. Причины торможения роста корней при УФ-Б облучении побегов проростков ячменя / И. Н. Ктиторова и др. // Физиология растений. 2006. Т. 53, № 1.С. 94−105.
  49. Е. Д. Роль фитохрома в растениях. М.: Агропромиздат, 1986. 288 с.
  50. О. Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка. М.: Наука, 1982. 84 с.
  51. О. Н. Как регулируется жизнь растений // Соросовский Образовательный Журнал. 1995. Т. 7, № 1. С. 20−27.
  52. О. Н. Как свет регулирует жизнь растений // Соросовский Образовательный Журнал. 2001. Т. 7, № 4. С. 6−12.
  53. О. Н. Цитокинины и их физиологическое действие // Успехи совр. биологии. 1967. Т. 63, вып. 1. С. 28−53.
  54. Ф. М. Закономерности индивидуального развития растений в зависимости от условий внешней среды. М., Изд-во моек, ун-та, 1963. 104 с.
  55. С. В., Маслова С. П., Табаленкова Г. Н. Влияние регуляторов роста и ценотического фактора на пигментный комплекс многолетних злаков // Физиология и биохимия культурных растений. 2007. Т. 39, № 5. С. 391−399.
  56. В. Г., Ширшикова Г. Н. Современные представления офункциональной роли каротиноидов в хлоропластах эукариот // Журн. общей биологии. 2006. Т. 67. С. 163−189.
  57. Л. А., Проворов Н. А., Тиходеев О. Н. Генетика развития растений. СПб.: Наука, 2000. 539 с.
  58. О. П. Влияние гиббереллинов А3 и А7 на рост растений кабачков // Физиология и биохимия культурных растений. 2006. Т. 38, № 5. С. 452—455.
  59. Л. Добавки для пластических масс. М.: Химия, 1978. 167 с.
  60. Г. К., Горбанли М., Калантари X. М. Влияние салициловой кислоты на формирование окислительного стресса, индуцированного УФ светом в листьях перца // Физиология растений. 2008. Т. 55, № 4. С. 620— 623.
  61. А. С. Физико-химические свойства систем полиэтилен-люминофор на основе аддуктов редкоземельных элементов : дисс.. канд. хим. наук. Томск, 1995. 211 с.
  62. Роль красного люминесцентного излучения низкой интенсивности в регуляции морфогенеза и гормонального баланса Arabidopsis thaliana / А. С. Минич и др. // Физиология растений. 2006. Т. 53, № 6. С. 863−868.
  63. Особенности роста растений и продуктивность у гибрида огурца при выращивании под фотолюминесцентной и гидрофильной пленками / А. С. Минич и др. // Сельскохозяйственная биология. 2010. № 1. С. 81— 85.
  64. И. Б. Влияние красного низкоэнергетического люминесцентного излучения, на морфогенез и баланс эндогенных гормонов растений : дисс.. канд. биол. наук. Томск, 2005. 105 с.
  65. А. Т. Онтогенетический аспект фотосинтеза. М.: Наука, 1981. 196 с.79- Основы химической регуляции роста и продуктивности растений / Г. С. Муромцев и др. М.: Агропромиздат, 1987. 383 с.
  66. В. Д. Приусадебное хозяйство. Овощеводство. М.: Изд-во ЭСКМО-Пресс, Изд-во Лик пресс, 2000. 368 с.
  67. А. Л. Влияние света и гормонов на морфогенез юкки слоновой в культуре, in vitro : дисс.. канд. биол. наук. Томск, 2003. 133 с.
  68. А. А. Световое и углеводное питание растений — фотосинтез. М.: Изд-во Академии наук СССР, 1955. 288 с.
  69. В. В. Физиология целостности растительного организма // Физиология растений. 2001. Т. 48. С. 631−643.
  70. В. В. Фитогормоны. Л.: Изд-во ЛГУ, 1982. 248 с.
  71. В. В., Саламатова Т. С. Физиология роста и развития растений. Л.: Изд-во ЛГУ, 1991. 239 с.
  72. Исследование особенностей преобразования излучения солнца УФ и видимого диапазонов светокорректирующими пленками с люминофорами на основе соединений европия / В. С. Райда и др. // Оптика атмосферы и океана. 2003. Вып. 16, № 12. С. 1126−1132.
  73. Технология производства светокорректирующих полиэтиленовых пленок для сельского хозяйства / В. С. Райда и др. // Химическая промышленность. 1999. № 10 (661). С. 56−58.
  74. Т. Я., Власов П. В., Ракитин В. Ю. Гормональные аспекты различной устойчивости мутантов АгаЫс1ор818 ЖаИапа к ультрафиолетовой радиации // Физиология растений. 2001. Т. 48, № 3. С. 414−420.
  75. П. Б., Попова Н. С. Рост и развитие растений. Воронеж: Изд-во Воронежского университета, 1978. 245 с.
  76. Г. А. Гормон-связывающие белки растений и проблема рецепции фитогормонов// Физиология-растений. 1989. Т. 36. С. 166−177.
  77. Г. А. Рецепторы фитогормонов // Физиология растений. 2002. Т. 49, № 4. С. 615−625.
  78. Е. С. Гормональная регуляция донорно-акцепторных связей у растений // Физико-химические основы структурно-функциональной организации растений: тезисы докладов Международной научной конференции. 2008. С. 15−16.
  79. . А. Проблемы физиологии в современном растениеводстве. М.: Колос, 1979. 302 с.
  80. К. А. Клеточные и молекулярные механизмы биологическихэффектов УФ излучения. — Киев: Наук. Думка, 1982. 246 с.
  81. Е. И., Авертянова В. П., Ицкова Т. Г. Полиэтиленовая пленка для теплиц // Пласт, массы. 1989. № 9. С. 18−22.
  82. Совместное влияние гиббереловой и аскорбиновой кислот на перекисное окисление липидов и активность антиокислительных ферментов в проростках сои при обработке никелем / С. Санди-Сар и др. // Физиология растений. 2007. Т. 54, № 1. С. 85−91.
  83. В. А. Система фитохромов: Фотобиофизика и фотобиохимия in vivo II Биол. мембраны. 1998. Т. 15, № 5. С. 549−572.
  84. Т. К., Белан Б. Д. Радиационный режим в районе г. Томска в 1995 2005 гг // Оптика атмосферы и океана. 2007. Т. 20, № 1. С. 62−67.
  85. А. Е. Экранирование видимого УФ излучения, как фотозащитный механизм растений : автореф. дисс.. канд. биол. наук. М., 2009. 47 с.
  86. К., Костецкая-Гугала А., Латовски Д. Каротиноиды растений и стрессовое воздействие окружающей среды: роль модуляции физических свойств мембран каротиноидами // Физиология растений. 2003. Т. 50. С. 188−193.
  87. ЮЗ.Стржижовский А. Д. Влияние ультрафиолетовой радиации повышенной интенсивности на растения: последствия разрушения стратосферного озона //Радиац. биология. Радиоэкология. 1999. Т. 39, № 6. С. 683−692.
  88. JI. И., Позднякова Ф. О. Спектральный анализ полимеров. Л.: Химия, 1986. 198 с.
  89. И. А. Сигнальные системы клеток растений. М: Наука, 2002. 294 с.
  90. А. А., Шарупич В. П., Лисовский Г. М. Светокультура растений. Новосибирск: Изд-во СО РАН, 2000. 213 с.
  91. Специфика реакций растений разных видов на спектральный состав ФАР при искусственном освещении / А. А. Тихомиров и др. // Физиология растений. 1987. Т. 34, вып. 4. С. 774−785.
  92. Г. А. Полисветан фоторедуцирующие полимерные материалы для покрытия вегетационных сооружений // Светокорректирующие пленки для сельского хозяйства: сб. статей. 1998. С. 3−4.
  93. X. Г. Солнечная радиация и формирование урожая. Л.: Гидрометеоиздат, 1977. 199 с.
  94. ПО. ФойгтИ. Стабилизация синтетических полимеров против действия света и тепла. Л.: Химия, 1972. 170 с.
  95. Хит О: Фотосинтез: физиол. аспекты. М.: Мир, 1972. 315 с.
  96. Содержание озона над Россией и прилегающими территориями в 1998 году / В. А. Черников и др. // Метеор, и гидрол., 1999. Т. 2. С. 118−125.
  97. ПЗ.Чижова С. И., Павлова В. В., Прусакова Л. Д. Содержание абсцизовой кислоты и' рост растений ярового ячменя под действием триазолов // Физиология растений: 2005. Т. 52, № 1. С. 108−114.
  98. ЧупахинаГ. Н. Влияние света различного спектрального состава на биосинтез в листьях растений: дисс.. канд. биол. наук. Томск, 1967. 197с.
  99. ЧупахинаГ. Н. Система аскорбиновой кислоты растений: монография. Калининград. 1997. 120 с.
  100. И. И. Морфогенез семязачатка и семени у Arabidopsis thaliana (Brassicaceae)// Ботанический журнал. 2007. Т. 92, № 7. С. 945−963.
  101. А. А. Фотоэнергетика растений и урожай. М.: Наука, 1993. 411 с.
  102. Сельскохозяйственная биотехнология / В. С. Шевелуха и др. М.: Изд-во МСХА, 1995. 310 с.
  103. А. А. Определение хлорофиллов и каротиноидов в экстрактах зеленых листьев // Биохимические методы в физиологии растений. М.: Наука, 1971. С. 154−171.
  104. И. А. Растение и солнце. Л.: Гидрометеоиздат, 1973. 252 с.
  105. Р. Н. Полисветаны и полисветановый эффект // Известия АН СССР. 1986. № 10. С. 50−55.
  106. Электронный каталог электронный ресурс. URL: http://Arabidopsis.info (дата обоащения: 05.02.2008)
  107. DELLAs contribute to plant photomorphogenesis / P. Achard et al. // Plant physiol. 2007. V. 143. P. 1163−1172.
  108. Ahmad M., Cashmore A. R. Seeing blue: the discovery of cryptochrome // Plant mol. biol. 1996. V. 30. P. 851−861.
  109. Ahmad M., Cashmore A. R. HY4 gene of A. thaliana encodes a protein with characteristics of a blue-light photoreceptor // Nature. 1993. V. 366. P. 162 166.
  110. Ahmad M., Jarillo J. A., Cashmore A. R. Chimeric proteins between cryl and cry2 Arabidopsis blue light photoreceptors indicate overlapping functions and varying protein stability // Plant cell. 1998. V. 10. P. 197−208.
  111. Action Spectrum for Cryptochrome-Dependent Hypocotyl Growth Inhibition in Arabidopsis / M. Ahmad’et al. // Plant physiol. 2002. V. 129. P. 774−785.
  112. Ahmad M., Lin C., Cashmore A. R. Mutations throughout an Arabidopsis blue-light photoreceptor impair blue-light-responsive anthocyanin accumulation and inhibition of hypocotyl elongation I I Plant. 1995. V. 8. P. 653−658.
  113. Gibberellins repress photomorphogenesis in darkness / D. Alabadi et al. // Plant physiol. 2004. V. 134. P. 1050−1057.
  114. Al-Shehbaz, O’Kane S. L. Taxonomy and phylogeny of Arabidopsis (Brassicaceae): The Arabidopsis book. 2004. P. 1−22.
  115. Altamann T. Molecular physiology of brassinisteroids revealed by the analysis of mutants //Planta. 1999. № 1. P. 1−17.
  116. Alvarez A. L. Salicylic acid in machinery of hypersensitive cell death and disease resistance // Plant mol. biol. 2000. V. 44. P. 429−442.
  117. Arrigoni O., De Tullio M. C. Ascorbic acid: much more than just an antioxidant//Biochem. biophys. acta. 2002. V. 1569. P. 1−9.
  118. Arrigoni O. Ascorbate system in plant development // Bioenerg biomembr. 1994. V. 26. P. 407−419.
  119. Bagnall D. J., King R. W., Hangarter R. P. Encouragement of dark blue light of blossoming is absent in hy4 mutants Arabidopsis II Planta. 1996. V. 200 (2). P. 278−280.
  120. Bai F., DeMaso D. A. Hormone interactions and regulation of PsPK2: GUS compared with DR5: GUS and PID: GUS in Arabidopsis thaliana II American j. of botany. 2008. V. 95. P. 133−145.
  121. Bailare C. L. Stress under the sun: spotlight on ultraviolet-B responses // Plant physiology. 2003. V. 132. P. 1725−1727.
  122. Diurnal Regulation of the Brassinosteroid-Biosynthetic CPD Gene in Arabidopsis / S. Bancos et al. // Plant physiol. 2006. V. 141. P. 299−309.
  123. Banerjee R., Batschauer A. Plant blue-light receptors // Planta. 2005. V. 220. P. 498−502.
  124. Barth C., De Tullio M., Conklin P. L. The role of ascorbic acid in the control of flowering time and the onset of senescence // J. of experimental botany. 2006. V. 57. P. 1657−1665.
  125. Inter-relationships between light and respiration in the control of ascorbic acid synthesis and accumulation in Arabidopsis thaliana leaves / C. G. Bartoli et al. II J. of experimental botany. 2006. V. 57 (8). P. 1621−1631.
  126. Bartoli G. G., Pastori G. M., Foyer C. H. Ascorbate biosynthesis in mitochondria is linked to the electron transport chain between complexes III and IV // Plant physiol. 2000. V. 123. P. 335−344.
  127. The relationship between L-galactono-l, 4-lactone dehydrogenase (GalLDH) and ascorbate content in leaves under optimal and stress conditions / C. G. Bartoli et al. // Plant, cell and environment. 2005. V. 28. P. 1073−1081.
  128. Bharti S., Garg O. P. Changes in the ascorbic acid content of the lateral buds of soybean in relation to flower induction // Plant cell physiol. 1970. V. 11. P. 723−727.
  129. The tomato DWARF gene catalyses C6-oxidation in brassinosteroid biosynthesis / G. J. Bishop et al. // Proc. natl. acad. sci. USA. 1999. V. 96. P. 1761−1766.
  130. Bleecker A. B., Schaller G. E. Mechanism of ethylene perception // Plant Physiol. 1996. V. 111. P. 653−660.
  131. Phytochrome B enhances photosynthesis at the expense of water-use efficiency in Arabidopsis / H. E. Boccalandro et al. // Plant physiol. 2009. V. 150. P. 1083−1092.
  132. Ultraviolet B radiation enhances a phytochrome-B-mediated photomorphogenic response in Arabidopsis / H. E. Boccalandro et al. // Plant physiol. 2001. V. 126. P. 780−788.
  133. Quantitative trait loci controlling light and hormone response in two accessions of Arabidopsis thaliana / J. O. Borevitz et al. // Genetics. 2002. V. 160. P. 683−696.
  134. The high energy light action controlling plant responses and development / H. A. Bortwick et al. // Proc. acad. sci. USA. 1969. V. 64, № 2. P. 479−486.
  135. Phytochrome A mediates the promotion of seed germination by very low fluences of light and canopy shade light in Arabidopsis / J. F. Botto et al. // Plant physiol. 1996. V. 110. P. 439144.
  136. Cryptochrome blue light photoreceptors are activated through interconversion of flavin redox states / J. P. Bouly et al. // J. biol. chem. 2007. V. 282. P. 9383−9391.
  137. Brederode F. Th., Linthorst J. M., Bol J. F. Differential induction of acquired' resistance and PR gene expression in tobacco by virus infection, ethephon treatment, UV light and wounding // Plant, mol. biol. 1991. V. 17. P. 1117−1125.
  138. Briggs W. R., Christie J. M. Phototropins 1 and 2: versatile plant blue-light receptors // Trends plant sci. 2002. V. 7. P. 204−210.
  139. Briggs W. R., Olney M. A. Photoreceptors in plant photomorphogenesis to date. Five phytochromes, two cryptochromes, one phototropine, and one superchrome // Plant physiol. 2001. V. 125. P. 85−88.
  140. Briggs W. R., Huala E. Blue-light receptors in higher plants // Annu. rev. cell. dev. biol. 1999. V. 15. P. 33−62.
  141. Brosche N., Strid A. Molecular events following perception of ultraviolet-B radiation by plants // Plant physiol. 2003. V. 117. P. 1−10.
  142. Brown B. A., Jenkins G. I. UV-B signaling pathways with different fluence-rate response profiles are distinguished in mature Arabidopsis leaf tissue by requirement for UVR8, HY5, and HYH // Plant physiol. 2008. V. 146. P. 576 588.
  143. Brown R. P. Polymers in agriculture and horticulture // Rapra review repots. 2004. V. 15, № 2. P. 92.
  144. Burg S. P., Burg E. A. Inhibition of polar auxin transport by // Plant physiol. 1967. V. 42. P. 1224−1228.
  145. BRL1 and BRL3 are novel brassinosteroid receptors that function in vascular differentiation in Arabidopsis / A. Cano-Delgado et al. // Development. 2004. V. 131. P. 5341−5351.
  146. Loss of function of four DELLA genes leads to light- and gibberellin-independent seed germination in Arabidopsis / D. Cao et al. // Planta. 2005. V. 223. P. 105−113.
  147. The mechanism of action of DNA photolyases / T. Carell et al. // Curr. opin. chem. biol. 2001. V. 5. P. 491−498.
  148. CasalJ., Luccioni L., Oliverio K. Light, phytochrome signalling and photomorphogenesis in Arabidopsis I I Photochem photobiol. sci. 2003. V. 2. P. 625−636.
  149. Casal J. J. Phytochromes, cryptochromes, phototropin — photoreceptor interactions in plants // Photochem. and photobiol. 2000. V. 71, № 1. P. 1—11.
  150. Cashmore A. R. Cryptochromes: enabling plants and animals to determine circadian time // Cell. 2003. V. 114. P. 537−543.
  151. Cryptochrome: blue light receptors for plants and animals / A. R. Cashmore et al. // Science. 1999. V. 284. P. 760−765.
  152. Chen M., Chory J., Fankhauser C. Light signal transduction in higher plants // Annu. rev. genet. 2004. V. 38. P. 83−117.
  153. Chen Z., Gallie D. R. The ascorbic acid redox state controls guard cell signaling and stomatal movement // The plant cell. 2004. V. 16. P. 1143−1162.
  154. Differential accumulation of salicylic acid and salicylic acid-sensitive catalase in different rice tissues / Z. Chen et al. // Plant physiol. 1997. V. 114. P. 193 201.
  155. Increasing vitamin C content of plants through enhanced ascorbate recycling / Z. Chen et al. //Proc. natl. acad. sci. USA. 2003. V. 100. P. 3525−3530.
  156. Chinoy J. J., Nanda K. K., Garg O. P. Effect of ascorbic acid on growth and flowering of Trigonella foenum-graecum and Brassica chinensis II Physiol, plant. 1957. V. 10. P. 869−876.
  157. An alternative brassinolide biosynthetic pathway via late C-6 oxidation / Y. H. Choi et al. // Phytochemistry. 1997. V. 44. P. 609−613.
  158. Chory J., Nagpal P., Peto C. A. Phenotypic and genetic analysis of det2, a new mutant that affects light-regulated seedling development in Arabidopsis II Plant cell. 1991. V. 3.P. 445−459.
  159. Chow B., McCourt P. Plant hormone receptors: perception is everything // Genes Dev. 2006. V. 20. P. 1998−2008.
  160. Cleland R. E. Auxin and cell elongation // Kluwer academic publishers. 2004. P. 204−220.
  161. Effect of brassinolide on gene expression in elongating soybean epicotyls / S. Clouse et al. //Plantphysiol. 1992. V. 100. P. 1377−1383.
  162. Conklin P. L., Barth C. Ascorbic acid, a familiar small molecule intertwined in the response of plants to ozone, pathogens, and the onset of senescence // Plant, cell and environment. 2004. V. 27. P. 959−970.
  163. L-Ascorbic acid metabolism in the ascorbate-deficient arabidopsis mutant vtcl / P. L. Conklin et al. // Plant physiol. 1997. V. 115. P. 1277−1285.
  164. Identification of ascorbic acid-deficient Arabidopsis thaliana mutants / P. L. Conklin et al. // Genetics. 2000: V. 154. P. 847−856.
  165. Conklin P. L. Recent advances in the role and biosynthesis of ascorbic acid in plants // Plant cell environ. 2001. V. 24. P. 383−394.
  166. Conn P. F., Schalch W., Truscott T. G. The singlet oxygen and carotenoid interaction // J. photochem. photobiol. 1991. V. 11. P. 41−47.
  167. Cordoba F., Gonzalez-Reyes J. A. Ascorbate and plant cell growth // J. bioenerg. biomembr. 1994. V. 26. P. 399105.
  168. Changes in intracellular and apoplastic peroxidase activity, ascorbate redox status, and root elongation induced by enhanced ascorbate content in Allium cepa L. / M. C. Cordoba-Pedregosa et al. I I Experimental botany. 2005. V. 56 (412). P. 685−694.
  169. Role of apoplastic and cell-wall peroxidases on the stimulation of root elongation by ascorbate / M. C. Cordoba-Pedregosa et al. // Plant physiol. 1996. V. 112. P. 1119−1125.
  170. Cowling R. J., Harberd N. P. Gibberellins control Arabidopsis hypocotyl growth via regulation of cellular elongation // Experimental botany. 1999. V. 50. P. 1351−1357.
  171. Gibberellin-regulated XET is differentially induced by auxin in rice leaf sheath bases during gravitropic bending / D. Y. Cui et al. // Experimental botany. 2005. V. 56. P. 1327−1334.
  172. D’Agostino I. B., Kieber J. J. Phosphorepay signal transduction: the emerging family of plant response regulators // Trends, biochem. sci. 1999. V. 100. P. 452−456.
  173. Parallel- changes in H202 and catalase during thermotolerance induced bysalicylic acid or heat acclimation in mustard seedlings / J. F. Dat et al. // Plant physiol. 1998. V. 116. P. 1351 1357.
  174. Plant L-ascorbic acid: chemistry, function, metabolism, bioavailability and effects of processing / M. W. Davey et al. // J. sci. food agric. 2000. V. 80. P. 825−860.
  175. DeBlasio S. L., Mullen J. L. Phytochrome modulation of blue light-induced chloroplast movements in Arabidopsis II Plant physiol. 2003. V. 133. P. 1471— 1479.
  176. Debolt S., Melino V., Ford C. M. Ascorbate as a biosynthetic precursor in plants // Annals of botany. 2007. V. 99 (1). P. 3−8.
  177. Deisenhofer J. DNA photolyases and cryptochromes // Mutat. res. 2000. V. 460. P. 143−149.
  178. Cytokinins determine Arabidopsis root-meristem size by controlling cell differentiation / R. D. Dello Ioio et al. // Curr. biol. 2007. V. 17. P. 678−682.
  179. Changes in onion root development induced by the inhibition of peptidyl-prolyl hydroxylase and influence of ascorbate system on cell division and elongation / M. C. De Tullio et al. // Planta. 1999. V. 109. P. 424−434.
  180. Devlin P. F., Christie J. M., Terry M.J. Many hands make light work // Experimental botany. 2007. V. 58 (12). P. 3071−3077.
  181. DeYoungB. J., Clark S. E. Signaling through the CLAVATA1 Receptor Complex // Plant, mol. biol. 2001. V. 46. P. 505−513.
  182. Dhindsa R. S., Plumb-Dhindsa P., Thorpe T. A. Leaf senescence correlated with increased levels of membrane permeability and lipid peroxidation, and decreased levels of superoxide dismutase and catalase // J. exp. bot. 1981. V. 32. P. 93−101.
  183. Dowdle J., Ishikawa T., Gatzek S. Two genes in Arabidopsis thaliana encoding GDP-L-galactose phosphorylase are required for ascorbate biosynthesis and seedling viability // Plant J. 2007. V. 52. P. 673−689.
  184. Ecker J. R. The ethylene signal transduction pathway in plants // Science. 1995. V. 268. P. 667−675.
  185. Economou A. S., Read P. E. Light treatments to improve efficiency of in vitro propagation systems // HortScience. 1987. V. 22. P. 751−754.
  186. Edge R., McGarvey D. J., Truscott T. G. The carotenoids as antioxidants — a review // Photochem. photobiol. ser. biol. 1997. V. 41. P. 189−200.
  187. Edge R., Truscott T. G. Carotenoids radicals and the interaction of carotenoids with activ oxygen species // Photochemistry of Carotenoids. Kluwer acad. publ. 1999. P. 223−234.
  188. Endres S., Tenhaken R. Myoinositol oxygenase controls the level of myoinositol in Arabidopsis, but does not increase ascorbic acid // Plant physiology. 2009. V. 149. P. 1042−1049. % •
  189. GA4 is the active gibberellin in the regulation of LEAFY transcription and Arabidopsis floral initiation / S. Eriksson et al. // Plant cell. 2006. V. 18. P. 2172−2181.
  190. Light regulation of the Arabidopsis respiratory chain. Multiple discrete photoreceptor responses contribute to induction of type IF NAD (P)H dehydrogenase genes / M. A. Escobar et al. // Plant physiol. 2004. V. 136. P. 2710−2721.
  191. Plastic films for agricultural applications / E. Espi et al. // Journal of plastic film and sheeting. 2006. V. 22. P. 85−102.
  192. Fankhauser C., Chory J. Light control of plant development // Annu. rev. cell dev. biol. 1997. V. 13. P. 203−229.
  193. Fankhauser C. The phytochrome, a family of red/far-red absorbing photoreceptors //J. biol. chem. 2001. V. 276 (15). P. 11 453−11 456.
  194. The effect of enhanced ultraviolet-B radiation on growth. Photosynthesis and stable carbon isotope composition of two soybean cultivars (Glycine max) under field conditions / H. Feng et al. // Environ, exp. bot. 2003. V. 49. P. 1−8.
  195. Genomic and physiological studies of early cryptochrome 1 action demonstrate roles for auxin and gibberellin in the control of hypocotyl growth by blue light / K. M. Folta et al. // Plant J. 2003. V. 36. P. 203−214.
  196. PhyA and cryl act redundantly to regulate gibberellin levels during de-etiolation in blue light / E. J. Foo et al. // Physiol. plant. 2006. V. 127. P. 149 156.
  197. Foyer C. H., HarbinsonJ. Oxygen metabolism and the regulation of photosynthetic electron-transport// CRC Press. 1994. P. 1−42.
  198. The role of ascorbate in plants, interactions with photosynthesis, and regulatory significance / C. H. Foyer et al. // American society of plant physiologists. 1991. P. 131−144.
  199. Foyer C. H., Noctor G. Oxidant and antioxidant signalling in plants: a reevaluation of the concept of oxidative stress in a physiological context // Plant, cell and environment. 2005. V. 28. P. 1056−1071.
  200. Franceschi V. R. Tarlyn N. M. L-Ascorbic acid is accumulated in source leaf phloem and transported to sink tissues in plants // Plant physiol. 2002. V. 130. P. 649−656.
  201. Frank H. A. Incorporation of carotenoids into reaction center and light-harvesting pigment-protein comlexes // Photochemistry of carotinoids. 1999. P. 235−244.
  202. Frank H. A., Cogdell R. J. Photochemistry end function of carotenoids in photosynthesis // Carotenoids in photosynthesis- eds A. Young, G. Britton. London: Chapman and Hall, 1993. 315 p.
  203. Franklin K. A., Whitelam G. C. Light signals, phytochromes and cross-talk with other environmental cues // Experimental botany. 2004. V. 55, № 395. P. 271−276.
  204. Franklin K. A., Whitelam G. Phytochromes and shade-avoidance responses in plants // Ann. bot. 2005. V. 96. P. 169−175.
  205. Frederick J. E., Snell H. E., Haywood E. K. Solar ultraviolet radiation at the earth’s surface // Photochem., photobiol. 1989. V. 50, № 8. P. 443.
  206. Friedrichsen D., Chory J. Steroid signaling in plants: from the cell surface to the nucleus //Bioessays. 2001. V. 23. P. 1028−1036.
  207. Transcriptional regulation of gibberellin metabolism genes by auxin signaling in Arabidopsis / M. Frigerio et al. // Plant physiol. 2006. V. 142. P. 553−563.
  208. Frohnmeyer H., Staiger D. Ultraviolet-B radiation-mediated responses in plants. Balancing damage and protection // Plant Physiol. 2003. V. 133. P. 1420−1428.
  209. Fu X. D., Harberd N. P. Auxin promotes Arabidopsis root growth by modulating gibberellin response //Nature. 2003. V. 421. P. 740−743.
  210. Garcia-Martinez J. L., Gil J. Light regulation of gibberellin biosynthesis and mode of action // J. Plant, growth, regul. 2001. V. 20. P. 354−368.
  211. Strawberry and cucumber cultivation under fluorescent photoselective plastic films cover / A. Gonzalez et al. // Acta Horticulturae (ISHS). 2003. V. 614. P. 407−413.
  212. Auxin regulates SCFTIR1-dependent degradation of AUX/IAA proteins / W. M. Gray et al. //Nature. 2001. V. 414. P. 271−276.
  213. Green M. A., Fry S. Vitamin C degradation in plant cells via enzymatic hydrolysis of4-O-oxalyl-L-threonate //Nature. 2005. V. 433. P. 83−87.
  214. Green R., FluhrR. UV-B induced PR-1 accumulation is mediated active oxygen species // Plant cell. 1995. V. 7. P. 203−212.
  215. Griffiths H. R, Lunec J. Ascorbic acid in the 21st century: more than a simple antioxidant // Environ toxicol pharmacol. 2001. V. 10. P. 173−182.
  216. Brassinolide, a plant growth-promoting steroid isolated from Brassica napus rape pollen / M. D. Grove et al. // Nature. 1979. V. 281. P. 216−217.
  217. Gugumus F. Mechanisms and kinetics of photostabilization of polyolefins with hals // Angew. makromol. chem. 1990. № 176. P. 241−289.
  218. MicroRNA directs mRNA cleavage of the transcription factor NAC1 to downregulate auxin signals for Arabidopsis lateral root development / H.S. Guo et al. // Plant cell. 2005. V. 17. P. 1376−1386.
  219. Regulations of flowering time by Arabidopsis photoreceptors / H.W. Guo et al. // Science. 1998. V. 279. P. 1360−1363.
  220. Histone modifications and expression of light-regulated genes in Arabidopsis are cooperatively influenced by changing light conditions / L. Guo et al. // Plant physiol. 2008. V. 147. P. 2070−2083.
  221. Guzman P., Ecker J. R. Exploiting the triple response of Arabidopsis to identify ethylene-related mutants // Plant cell. 1990. V. 2. P. 513−523.
  222. GyulaP., Schafer E., NagyF. Light perception and signaling in higher plants // Curr. opin. plant, biol. 2003. V. 6. P. 44652.
  223. Halliday K. J., FankhauserC. Phytochrome-hormonal signalling networks // New phytoL 2003. V. 157. P. 449−463.
  224. Synthesis of L-ascorbic acid in the phloem / R. D. Hancock et al. // BMC Plant biology. 2003. V. 3. P. 7.
  225. Hardtke C. S. Transcriptional auxin-brassinosteroid crosstalk: Who’s talking? // Bioessays. 2007. V. 11. P. 1115−1123.
  226. Hartmann K. M. A general hypothesis to interpret «high energy phenomena» of photomorphogenesis on the basis of phytochrome // Photochem photobiol. 1966. V. 5. P. 349−366.
  227. Hedden P., Phillips A. L. Gibberellin metabolism: new insights revealed by the genes // Trends plant sei. 2000. V. 5. P. 523−530.
  228. Hoang N., Bouly J. P., Ahmad M. Evidence of a light-sensing role for folate in Arabidopsis cryptochrome blue-light receptors // Molecular plant. 2008. V. 1 (1). P. 68−74.
  229. Horemans N., Foyer C. H., AsardH. Transport and action of ascorbate at the plant plasma membrane // Trends plant sei. 2000. V. 5. P. 263−267.
  230. In vitro salicylic acid inhibition of catalase activity in maize: differences between the isoenzymes and a possible role in the induction of chilling tolerance / E. Horvath et al. II Plant sci. 2002. V. 163. P. 1129−1135.
  231. Histochemical localization of exogenous ascorbic acid in the pericycle nuclei of Vicia faba / A. M. Innocenti et al. // Caryologia. 1993. V. 46. P. 1−4.
  232. Identification of CRE1 as a cytokinin receptor from Arabidopsis / T. Inoue et al. //Nature. 2001. V. 409. P. 1060−1063.
  233. Jackson J. A., Jenkins G. I. Extension-growth responses and expression of flavonoid biosynthesis genes in the Arabidopsis hy4 mutant // Planta. 1995. V. 197. P. 233−239.
  234. Plant stress and human health: Do human consumers benefit from UV-B acclimated crops? / M. A. K. Jansen et al. // Plant science. 2008. V. 175. P. 449−458.
  235. Phototropin-related NPL1 controls chloroplast relocation induced by blue light/J. A. Jarillo et al. //Nature. 2001. V. 410. P. 952−954.
  236. Jenkins G. I., Long J. C., Wade H. K. UV and blue light signaling: pathways regulating chalcone synthase gene expression in Arabidopsis II New phytol. 2001. V. 151. P. 121−131.
  237. Auxin- dependent cell expansion mediated by overexpressed auxin-binding protein 1 / A. M. Jones et al. // Science. 1998. V. 282. P. 1114−1117.
  238. Arabidopsis NPL1: a phototropin homolog controlling the chloroplast highlight avoidance response / T. Kagawa et al. // Science. 2001. V. 291. P. 21 382 141.
  239. Kamiya Y., Garcia-Martinez J. L. Regulation of gibberellin biosynthesis by light// Curr. opin. plant, biol. 1999. V. 2. P. 39803.
  240. Cryptochromes, phytochromes, and COP1 regulate light-controlled stomatal development in Arabidopsis/ C. Y. Kang et al. // Plant cell advance online publication. 2009. V. 10. P. 1105.
  241. Kasahara M., Swartz T. E., Olney M. A. Photochemical properties of the flavin mononucleotide-binding domains of the phototropins from Arabidopsis, rice, and Chlamydomonas reinhardtii II Plant physiology. 2002. V. 129. P. 762— 773:
  242. Kaur C., Kapoor H. C. Antioxidants in fruits and vegetables: the millennium’s health//Int. J. food. sei. technol. 2001. V. 36. P. 703−725.
  243. Khripach V. A., Zhabiuskii V. N. Brassinosteroids: a new class of plant hormones. San Diego: Acad, press, 1999. 456 p.
  244. Brassinosteroid signals control expression of the AXR3/IAA17 gene in the cross-talk point with auxin in root development / H. Kim et al. // Biosci. biotechnol. biochem. 2006. V. 70. P. 768−773.
  245. Photl and phot2 mediate blue light regulation of stomatal opening / T. Kinoshita et al. //Nature. 2001. V. 414. P. 656−660.
  246. Effect of two UV-absorbing greenhouse-covering films on growth and yield of an eggplant soilless crop / C. Kittas et al. // Scientia horticulturae. 2006. V. 110. P. 30−37.
  247. Kleine T., Lockhart P., Batschauer A. An Arabidopsis protein closely related to Synechocystis cryptochrome is targeted to organelles // Plant J. 2003. V. 35. P. 93−103.
  248. Koh I. Acclimative response to temperature stress in higher plants: approaches of gene engineering for temperature tolerance // Annu. rev. plant biol. 2002. V. 53. P. 225−245.
  249. Genetic control of flowering time in Arabidopsis / M. Koornneef et al. // Annu. rev. plant physiol. plant vol. biol. 1998. V. 49. P. 345−370.
  250. Koornneef M., RolffE., Spruit C. J. P. Genetic control of light-inhibited hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana (L.) Heynh // Plantphysiol. 1980. V. 100. P. 147−160.
  251. Alterations in the endogenous ascorbic acid content affect flowering time in Arabidopsis / S. O. Kotchoni et al. // Plant physiology. 2009. V. 149. P. SOS-SIS.
  252. Koyama Y. Structures and functions of carotenoids in photosynthetic systems //J. Photochem. photobiol. ser. biol. 1991. V. 9. P. 265−280.276- Krinsky N. I. Antioxidant functions of carotenoids // Free radical biol. 1989. V. 7. P. 617−635.
  253. Kyozuka J. Control of shoot and root meristem function by cytokinin // Curr. opin. plant biol. 2007. V. 10. P. 442−446.
  254. Heat stress phenotypes of Arabidopsis mutants implicate multiple signaling pathways in the acquisition of thermotolerance / J. Larkindale et al. // Plant physiol. 2005. V. 138. P. 882−897.
  255. A role for brassinosteroids in light-dependent development in Arabidopsis / J. Li et al. // Science. 1996. V. 272. P. 398−401.
  256. Li Q. H., Yang H. Q. Cryptochrome signaling in plants // Photochem. photobiol. 2007. V. 83. P. 94−101.
  257. Cytokinin-mediated cell cycling arrest of pericycle founder cells in lateral root initiation of Arabidopsis / X. Li et al. // Plant cell physiol. 2006. V. 47. P.1112−1123.
  258. Lichtenthaler H. K. The stress concept in plants: an introduction. In: Stress of life: from molecules to man—Csermely P // Annals of the New York Academy of Sciences. 1998. P. 187−198.
  259. Lieberman M. Biosinthesis and action of ethylene // Ann. rev. plant physiol. 1979. V. 30. P. 533−591.
  260. CRY2, a second member of the Arabidopsis cryptochrome gene family / C. Lin et al. // Plant Physiol. 1996. V. 110. P. 1047.
  261. Lin C., Shalitin D. Cryptochrome structure and signal transduction // Ann. rev. plant biol. 2003. V. 54. P. 469−496.
  262. Lin C. Blue light receptors and signal transduction // Plant cell. 2002. V. 14, № 5. P: 207−225.
  263. Lin C. Photoreceptors and regulation of flowering1 time // Plant physiol. 2000. V. 123. P. 39−50.
  264. Lin C., Robertson D. E., Ahmad M. Association of flavin adenine dinucleotide with the Arabidopsis blue light receptor CRY1 // Science. 995. V. 269. P. 968 970.
  265. Lin C., Todo T. The cryptochromes // Genome biol. 2005. V. 6. P. 220.
  266. Enhancement of blue-light sensitivity of Arabidopsis seedlings by a blue light receptor cryptochrome 2 / C. Lin et al. // Plant biology. 1998. V. 95. P. 26 862 690.
  267. Photic signaling by cryptochrome in the Drosophila circadian system/ F. J. Lin et al. // Mol. cell. biol. 2001. V. 21. P. 7287−7294.
  268. Ectopic expression of abscisic ACID 2/ Glucose insensitive 1 in Arabidopsis promotes seed dormancy and stress tolerance / P. C. Lin et al. // Plant physiology. 2007. V. 143. P. 745−758.
  269. Liscum E., Hodgson D. W., Campbell T. J. Blue light signaling through the cryptochromes and phototropins. So that’s what the blues is all about // Plantphysiology. 2003. V. 33. P. 1429−1436.
  270. Loewus F. A., Loewus M. W. Biosynthesis and metabolism of ascorbic acid in plants // CRC Crit. rev. plant sci. 1987. V. 5. P. 101−119.
  271. Loewus F. A. Biosynthesis and metabolism of ascorbic acid in plants and of analogs of ascorbic acid in fungi // Phytochemistry. 1999. V. 52. P. 193−210.
  272. Long J. C., Jenkins G. I. Involvement of plasma membrane redox activity and calcium homeostasis in the UV-B and UV-A/blue light induction of gene expression in Arabidopsis II The Plant cell. 1998. V. 10. P. 2077−2086.
  273. Myo-inositol oxygenase offers a possible entry point into plant ascorbate biosynthesis / A. Lorence et al. // Plant physiol. 2004. V. 134. P. 1200−1205.
  274. Light control of Arabidopsis development entails coordinated regulation of genome expression and cellular pathways / L. Ma et al. // Plant, cell. 2001. V. 13. P. 2589−2607.
  275. Macdonald H. Auxin perception, and signal transduction // Physiol, plant. 1997. V. 100. P. 423−430.
  276. MaierJ., NinnemannH. Biosynthesis of pteridines in Neurospora crassa, phycomyces blakesleeanus and Euglena gracilis: detection and characterization of biosynthetic enzymes // Photochem. photobiol. 1995. V. 61. P. 43−53.
  277. Martin-Tryon E. L., Kreps J. A., Harmer S. L. GIGANTEA acts in blue light signaling and has biochemically separable roles in circadian clock and • flowering time regulation // Plant physiol. 2007. V. 143. P. 473−486.
  278. McGarvey D. J., Christoffersen R. E. Characterization and kinetic parameters of ethylene-forming enzyme from avocado fruit // J. Biol. chem. 1992. V. 267. P. 5964−5967.
  279. Sinthesis and fluorescence of some trivalent lanthanide complexes / L. R. Melbi et al. // Journal of the American chemical society. 1964. V. 3, № 86. P. 5117−5125.
  280. Meyerowitz E. M. Prehistory and history of Arabidopsis research // Plant physiology. 2001. V. 125. P. 15−19.
  281. Middleton E. M., TeramuraA. H. The role of flavonol glycosides and carotenoids in protecting soybean from ultraviolet-B damage // Plant physiology. 1993. V. 103. P. 741−752.
  282. Milborrow B. The chemistry and physiology of abscisic acid // Ann. rev. plant physiol. 1974. V. 25. P. 195−224.
  283. Control of ascorbate synthesis by respiration and its implications for stress responses / A. H. Millar et al. // Plant physiol. 2003. V. 133. P. 443147.
  284. Distinct roles of GIGANTEA in promoting flowering and regulating circadian rhythms in Arabidopsis / T. Mizoguchi et al. // Plant cell. 2005. V. 17. P. 2255−2270.
  285. Mockler T., YuH. X., ParikhD. Regulation of photoperiodic flowering by Arabidopsis photoreceptors // Proc. nat. acad. sci. 2003. V. 100, № 4. P. 21 402 145.
  286. Moons A., PrinsenE., Van Montagu M. Antagonistic effect of abscisic asid and jasmonates on salt-indusible transcripts in rice roots // Plant cell. 1997. V. 9. P. 2243−2259.
  287. Does water deficit stress promote ethylene synthesis by intact plants? / P. W. Morgan et al. // Plant phisiol. 1990. V. 94, №. 4. P. 1616.
  288. Morgan P. W., Gausman H. W. Effects of ethylene on auxin transport // Plant physiol. 1966. V. 41. P. 45−52.
  289. Muller-MouleP., HavauxM., Niyogi Zeaxanthin K. K. Deficiency enhances the high light sensitivity of an ascorbate-deficient mutant of Arabidopsis II Plant physiol. 2003. V. 133. P. 748−760.
  290. Miissig C., Shin G. H., Altmann T. Brassinosteroids promote root growth in Arabidopsis II Plant physiol. 2003. V. 133. P. 1261−1271.
  291. Muller P., LiX. P., Niyogi K. K. Non-photochemical quenching. A response to excess light energy // Plant physiol. 2001. V. 125. P. 1558−1566.
  292. Napier R. M. Towards an understanding of ABP1 // J. Exp. bot. 1995. V. 46. P. 1787−1795.
  293. Regulation of flower development in Arabidopsis by SCF complexes / S. Navabpour et al. // Plant physiol. 2004. V. 134. P. 1574−1585.
  294. Neff M. M., Fankhauser C., Chory J. Light: an indicator of time and place // Genes, dev. 2000. V. 14. P. 257−271.
  295. Nemhauser J., Chory J. Photomorphogenesis // The Arabidopsis book. American society of plant biologists — eds C. R. Somerville, E. M. Meyerowitz. Rockville, MD. 2002. V. 10. 1199 p.
  296. Nemhauser J. L., MocklerT. C., Chory J. Interdependency of brassinosteroid and auxin signaling in Arabidopsis I IPLOS Biology. 2004. V. 2. P. 1460−1471.
  297. Nilson S., Assmann S. M. The control of transpiration: insights from Arabidopsis //Plant physiol. 2007. V. 143. P. 19−27.
  298. Noctor G., Foyer C. H. Ascorbate and glutathione: keeping active oxygen under control // Ann. rev. plant physiol. mol. biol. 1998. V. 49. P. 249−279.
  299. Noctor G. Metabolic signalling in defence and stress: the central roles of soluble redox couples // Plant, cell and environment. 2006. V. 29. P. 409125.
  300. Ultraviolet-B radiation effects on water relation, leaf development, and photosynthesis in draughted pea plants / S. Nogues et al. // Plant physiol. 1998. V. 117. P. 173−181.
  301. NordborgM., Bergelson J. The effect of seed and rosette cold treatment on germination and flowering time in some Arabidopsis thaliana (Brassicaceae) ecotypes // American J. of botany. 1999. V. 86. P. 470175.
  302. Modulation of plant morphology, root architecture, and cell structure by low vitamin C in Arabidopsis thaliana / E. Olmos et al. // J. Exp. bot. 2006. V. 57. P.1645−1655.
  303. O’Neill D. P., Ross J. J. Auxin regulation of the gibberellin pathway in pea // Plant physiol. 2002. V. 130. P. 1974−1982.
  304. Pallanca J. E., Smirnoff N. The control of ascorbic acid synthesis and turnover in pea seedlings // J. Exp. bot. 2000. V. 51. P. 669−674.
  305. Novel roles for GIGANTEA revealed under environmental conditions that modify its expression in Arabidopsis and Medicago truncatula / J. Paltiel et al. //Planta. 2006. V. 224. P. 1255−1268.
  306. Comprehensive transcriptome analysis of auxin responses in Arabidopsis / I. A. Paponov et al. // Molecular plant. 2008. V. 1 (2). P. 321−337.
  307. Parks B. M. The red side of photomorphogenesis // Plant physiology. 2003. V. 133. P.1437−1444.
  308. Leaf vitamin C contents modulate plant defense transcripts and regulate genes that control development through hormone signaling / G. M. Pastori et al. // Plant cell. 2003. V. 15. P. 939−951.
  309. Paul N. D., Gwynn-Jones D. Ecological roles of solar UV radiation: towards an integrated approach // Trends in ecology and evolution. 2003. V. 18. P. 4855.
  310. Tomato contains homologues of Arabidopsis cryptochrome 1 and 2 / G. Perrotta et al. // Plant mol. biol. 2000. V. 42. P. 765−773.
  311. Tomato and barley contain duplicated copies of cryptochrome 1 / G. Perrotta et al. // Plant cell environ. 2001. V. 24. P. 991−997.
  312. The function of ascorbate oxidase in tobacco / C. Pignocchi et al. // Plant physiol. 2003. V. 132. P. 1631−1641.
  313. Pignocchi C., Foyer C. H. Apoplastic ascorbate metabolism and its role in the regulation of cell signaling // Current opinion in plant biology. 2003. V. 6. P. 379−389.
  314. The cryptochrome gene family in pea includes two differentially expressed CRY2 genes / J. D. Platten et al. // Plant mol. biol. 2005. V. 59. P. 683−696.
  315. Simulating ozone detoxification in the leaf apoplast through the direct reaction with ascorbate /M. Plochl et al. II Planta. 2000. V. 210. P. 454−467.
  316. Portwich A. A., Garcia-Pichel F. A. Novel prokaryotic UVB photoreceptor in the cyanobacterium chlorogloeopsis PCC 6912 // Photochem. photobiol. 2000. V. 71. P. 493−498.
  317. Legume nodule senescence: roles for redox and hormone signalling in the orchestration of the natural aging process / A. Puppo et al. // New phytol. 2005. V. 165. P. 683−701.
  318. Phytochromes: photosensory perception-and signal transduction / P. H-. Quail et al. // Science. 1995. V. 268. P. 675−680.
  319. Determination of the contribution from light-transforming polymer films to red portion of transmitted solar radiation due to UV-excited luminescence / V. S. Raida et al. // Atmos. oceanic opt. 2004. V. 17, № 2−3. P. 215−220.
  320. Reed J. W., Nagpal P. Mutations in the gene for the red/far-red light receptor phytochrome B alter cell elongation and physiological responses throughout Arabidopsis development // The Plant cell. 1993. V. 5. P. 147−157.
  321. Roden L. C., Ingle R. A. Lights, rhythms, infection: the role of light and the circadian clock in determining the outcome of plant-pathogen interactions // Plant cell advance online publication. 2009. V. 10. P. 1105.
  322. Evidence that auxin promotes gibberellin A (1) biosynthesis in pea / J. J. Ross et al. // Plant J. 2000. V. 21. P. 547−552.
  323. Safrany J., Haasz V., Mate Z. Identification of a novel cis-regulatory element for UV-B-induced transcription in Arabidopsis II The Plant Journal. 2008. V. 54. P. 402414.
  324. Photochemical and mutational analysis of the FMN-binding domains of the plant blue light receptor, phototropin / M. Salomon et al. // Biochemistry. 2000. V. 39. P. 9401−9410.
  325. Sancar A. Structure and function of DNA photolyase and cryptochrome blue-light photoreceptors // Chem. rev. 2003. V. 103. P. 2203−2237.
  326. Schmiilling T. CREam of cytokinin signalling: receptor identified // Trends plant, sci. 2001. V. 6. P. 281−284.
  327. Scholl R. K., May S. Т., Ware D. H. Seed and molecular resources for Arabidopsis II Plant physiology. 2000. V. 124. P. 1477-Г480.
  328. Schumacher K., Choiy J. Brassinosteroid signal transduction: still casting the actors // Car.-opin. plant biol. 2000. V. 3. P. 79−84.
  329. Seed and DNA catalog // Arabidopsis biological resource center. 1997. V. 12. 266 p. URL: http://aims.cps.msu.edu/aims (дата обращения: 05.02.2008).
  330. SharrockR. A., Quail P. H. Novel phytochrome sequences in Arabidopsis thaliana: structure, evolution, and differential expression of a plant regulatory photoreceptor family // Genes dev. 1989. P. 1745−1757.
  331. Action spectra for phytochrome A- and phytochrome B-specific photoinduction of seed germination in Arabidopsis thaliana / T. Shinomura et al. // Proc. natl. acad. sci. 1996. V. 93. P. 8129−8133.
  332. Siefermann-Harms D. Carotenoids in photosinthesis I. Location in photosynthetic membranes and light-harvesting function // Biochim. biophys. acta. 1985. V. 811. P. 325−355.
  333. Skoog F., Miller С. O. Chemical regulation of growth and organ formation in plant tissue cultured in vitro II Symp: soc. exp. biol. 1957. V. 54. P. 118−131.
  334. Smirnoff N., ConklinP. L., LoewusF. A. Biosynthesis of ascorbic acid in plants: a renaissance // Ann. rev. plant physiol. 2001. V. 52. P. 437−467.
  335. Smirnoff N., Wheeler G. L. Ascorbic acid in plants: biosynthesis and function // Crit. rev. biochem. mol. biol. 2000. V. 35. P. 291−314.
  336. Smirnoff N. Ascorbic acid: metabolism and functions of a multifacetted molecule // Curr. opin. plant biol. 2000. V. 3. P. 229−235.
  337. Smirnoff N. The function and metabolism of ascorbic acid in plants // Ann. bot. 1996. V. 78. P. 661−669.
  338. Spartz A. K., Gray W. M. Plant hormone receptors: new perceptions // Genes & Dev. 2008. V. 22 (16). P. 2139−2148.
  339. Stapleton A. E. Ultraviolet radiation and plants: burning questions // The Plant cell. 1996. V. 4. P. 1353−1358.
  340. Stenoien H. K., Fenster C. B. Quantifying latitudinal clines to light responses of Arabidopsis thaliana (Brassicaceae) // American Journal of botany. 2002. V. 89. P. 1604−1608.
  341. Multilevel interactions between ethylene and auxin in Arabidopsis roots / A. N. Stepanova et al. // Plant cell. 2007. V. 19. P. 2169−2185.
  342. Sullivan J. A., Deng X. W. From seed to seed: the role of photoreceptors in Arabidopsis development // Dev. biol. 2003. V. 260. P. 289−297.
  343. Ethylene upregulates auxin biosynthesis in Arabidopsis seedlings to enhance inhibition of root cell elongation / R. Swarup et al. // Plant cell. 2007. V. 19. P. 2186−2196.
  344. Grapes on steroids. Brassinosteroids are involved in grape berry ripening / G. M. Symons et al. // Plant physiol. 2006. V. 140. P. 150−158.
  345. Brassinosteroids rescue the deficiency of CYP90, a cytochrome P450, controlling cell elongation and de-etiolation in Arabidopsis / M. Szekeres et al. // Cell. 1996. V. 85. P. 171−182.
  346. Generation and properties of ascorbic acid-deficient transgenic tobacco cells expressing antisense RNA for L-galactono-l, 4-lactone dehydrogenase / K. Tabata et al. // Plant J. 2001. V. 27. 139−148.
  347. Tabata K., TakaokaT., EsakaM. Gene expression of ascorbic acid-related enzymes in tobacco // Phytochemistry. 2002. V. 61. P. 631−635.
  348. Takahama U., Oniki T. Regulation of peroxidase-oxidation of phenolics in the apoplast of spinach leaves by ascorbate // Plant and cell physiology. 1992. V. 33. P. 379−387.
  349. Blue light and phytochrome-mediated stomatal opening in the npql and photl phot2 mutants of Arabidopsis / L. D. Talbott et al. // Plant physiol. 2003. V. 133. P.1522−1529.
  350. Phytochrome and blue light-mediated stomatal opening in the orchid, Paphiopedilum / L. D. Talbott et al. // Plant cell physiol. 2002. V. 43. P. 639 646.
  351. Light-controlled expression of a gene encoding L-galactono-lactone dehydrogenase which affects ascorbate pool size in Arabidopsis thaliana / M. Tamaoki et al. // Plant sci. 2003. V. 16. P. 1111−1117.
  352. Auxin as a model for the integration of hormonal signal processing and transduction / W. D. Teale et al. // Molecular plant. 2008. V. 1 (2). P. 229 237.
  353. Long-distance transport of L-ascorbic acid in potato / L. Tedone et al. // BMC Plant biology. 2004. V. 4. P. 16.
  354. Multiple transcription-factor genes are early targets of phytochrome A signaling / J. M. Tepperman et al. // Proc. natl. acad. sci. USA. 2001. V. 98. P. 9437−9442.
  355. Teramura A. H. Effects of ultraviolet-B on radiation on the growth and yield of crop plants //Physiol. plant. 1983. V. 58. P. 415127.
  356. Terao J. Antioxidant activity of P- carotene-related carotenoids // Lipids. 1989. V. 24. P. 659−661.
  357. Textor S., GershenzonJ. Herbivore induction of the glucosinolates-myrosinase defense system: major trends, biochemical basis and ecological significance//Phytochemistry reviews. 2009. V. 8. P. 149−170.
  358. Theologis A., Ray P.M. Early auxin-regulated polyadenylylated messenger-RNA sequences in pea stem tissue // Proc. natl. acad. sci. USA: Biological sciences. 1982. V. 79. P. 418−421.
  359. Thomas B. Light signals and flowering // J. Exp. bot. 2006. V. 57. P. 33 873 393.
  360. Todo T. Functional diversity of the DNA photolyase/blue light receptor family // Mutat. res. 1999. V. 434. P. 89−97.
  361. L-Ascorbic acid metabolism in spinach (Spinacia oleracea L.) during postharvest storage in light and dark / M. E. A. Toledo et al. // Postharvest biology and technology. 2003. V. 28. P. 47−57.
  362. SPINDLY and GIGANTEA interact and-act in Arabidopsis thaliana pathways involved in light responses, flowering, and rhythms in cotyledon movements / T. S. Tseng et al. // Plant cell. 2004. V. 16. P. 1550−1563.
  363. CYP72B1 inactivates brassinosteroid hormones: an intersection between photomorphogenesis and plant steroid signal transduction / E. M. Turk et al. // Plant physiol. 2003. V. 133. P. 1643−1653.
  364. Genome-wide analysis of gene expression reveals function of the bZIP transcription factor HY5 in the UV-B response of Arabidopsis / R. Ulm et al. //Proc. natl. acad. sci. 2004. V. 101. P. 1397−1402.
  365. Ulm R., NagyF. Signaling and gene regulation in response to ultraviolet light // Curr. opin. plant biol. 2005. V. 8. P. 477−482.
  366. Van DamN.M., Tytgat T. O. G., Kirkegaard J. A. Root and shoot glucosinolates: a comparison of their diversity, function and interactions innatural and managed ecosystems // Phytochemistry reviews. 2009. V. 8. P. 171— 186.
  367. Vandenbussche F., Verbelen J. P., Van Der Straeten D. Of light and length: regulation of hypocotyl growth in Arabidopsis II Bioessays. 2005. V. 27. P. 275−284.
  368. Low ascorbic acid in the vtc-1 mutant of Arabidopsis is associated with decreased growth and intracellular redistribution of the antioxidant system / S. D. Veljovic-Jovanovic et al. // Plant physiol. 2001. V. 127. P. 426135.
  369. Accumulation of L-ascorbic acid in tuberising stolon tips of potato (Solarium tuberosum L.) / R. Viola et al. // J. Plant physiol. 1998. V. 152. P. 58−63.
  370. Wang H., DengX. W. Phytochrome signaling mechanism: The Arabidopsis book — eds C. R. Somervile, E. M. Meyerwitz. 2004. URL: http: // www.bioone.org/pdfserv/i 1543−8210−018−01 -0001 .pdf (дата обращения: 20.09.2008).
  371. К. L. С., Li H., EckerJ. R. Ethylene biosynthesis and signaling networks // Plant cell. 2002. V. 14. P. 131−151.
  372. Weiss D., Ori N. Mechanisms of cross talk between gibberellin and other hormones // Plant physiol. 2007. V. 144. P. 1240−1246.
  373. Whitelam G. C., Devlin P. F. Light signaling in Arabidopsis II Plant physiol. biochem. 1998. V. 36, № 1−2. P. 125−133.
  374. Wolbang С. M., Ross J. J. Auxin promotes gibberellin biosynthesis in decapitated tobacco plants // Planta. 2001. V. 214. P. 153−157.
  375. Woodward A. W., Bartel B. Auxin: regulation, action, and interaction // Ann. bot. 2005. V. 95. P. 707−735.
  376. Regulation of gene expression by photosynthetic signals triggered through modified C02 availability / D. Wormuth et al. // BMC Plant biol. 2006. V. 6. P. 15.
  377. Wheat cryptochromes: subcellular localization and involvement in photomorphogenesis and osmotic stress responses / P. Xu et al. // Plant physiol. 2009. V. 149. P. 760−774.
  378. The C termini of Arabidopsis cryptochromes mediate a constitutive light response / H. Q. Yang et al. // Cell. 2000. V. 103. P. 815−827.
  379. Hydrogen peroxide is involved in abscisic acid-induced stomatal closure in / X. Zhang et al. // Vicia faba. Plant physiol. 2001. V. 126. P. 1438−1448.
  380. Research gibberellin homeostasis and the cryptochrome-established prohibition of dark blue light of lengthening hypocotyl / X. Zhao et al. // Plant physiology. 2007. V. 145. P. 10−118.
  381. ZurekD. M., Clouse S. D. Molecular-cloning and characterization of a brassinosteroid-regulated gene from elongating soybean (Glycine-max L.) epicotyls//Plant physiol. 1994. V. 104. P. 161−170.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!