Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Разработка иммуноферментных тест-систем для выявления антител к рота-и коронавирусам крупного рогатого скота

Диссертация: Разработка иммуноферментных тест-систем для выявления антител к рота-и коронавирусам крупного рогатого скота
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Исследования 2495 проб сыворотки крови КРС, поступивших из 32 регионов РФ, на наличие антител к ротавирусам показали, что 43,1% были серопозитивными к возбудителю ротавирусной инфекции, а исследования 1344 проб сыворотки крови КРС, поступивших из 27 регионов РФ, на наличие антител к коронавирусам показали, что 67,7% были серопозитивными к возбудителю коронавирусной инфекции. Полученные результаты… Читать ещё >

Разработка иммуноферментных тест-систем для выявления антител к рота-и коронавирусам крупного рогатого скота (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Характеристика семейства Ыеоутс1ае
      • 1. 1. 1. Основные свойства ротавирусов
        • 1. 1. 1. 1. Структура вириона и физико-химические свойства
        • 1. 1. 1. 2. Структура генома и протеины
        • 1. 1. 1. 3. Репликация вирусного генома
      • 1. 1. 2. Патогенез и эпизоотология
      • 1. 1. 3. Выделение в культуре клеток
      • 1. 1. 4. Особенности иммунитета при ротавирусной инфекции
      • 1. 1. 5. Диагностика ротавирусной инфекции крупного рогатого скота
    • 1. 2. Характеристика семейства Согопаушс1ае
      • 1. 2. 1. Структура вириона и физико-химические свойства
      • 1. 2. 2. Патогенез и эпизоотология
      • 1. 2. 3. Особенности иммунитета при коронавирусной инфекции
      • 1. 2. 4. Диагностика коронавирусной инфекции крупного рогатого скота

Актуальность темы

На протяжении многих лет животноводство всех стран мира, в том числе и России, несёт значительные экономические потери от желудочно-кишечных болезней новорожденных телят. В основе сложившейся неблагоприятной ситуации лежит целый ряд неспецифических факторов, среди которых наиболее важными являются содержание большого поголовья скота на ограниченном пространстве, ограничение двигательной активности у животных, возникновение стрессов, усложнение микробного и вирусного пейзажа в хозяйствах и комплексах, снижение иммунитета. В этих условиях, особенно при нарушении санитарно-гигиенических норм, несвоевременной выпойки молозива телятам, а также при отсутствии на станциях искусственного осеменения должного контроля на возможную контаминацию спермы вирусами, нередко возникают и быстро распространяются инфекционные болезни, проявляющиеся в виде энтеритов животных.

Известны этиологические агенты, вызывающие кишечные болезни у КРС, как вирусной: рота-, коронавирусытак и не вирусной природы: E. coli, Salmonella species, Clostridium perferingens, Cryptosporidium, Coccidia и др. [30,34, 46, 80, 99, 138, 155].

Рота-, коронавирусы — занимают одно из ведущих мест в патологии желудочно-кишечного тракта новорожденных телят. Так, зачастую, в 60 — 100% случаев при заболевании телят диареей, выделяют ротавирус, коронавирус или их ассоциацию [3, 7, 40, 70, 72]. Данные вирусы широко распространены во всём мире, в том числе и в нашей стране [48, 120, 177].

Величина экономического ущерба при этих заболеваниях значительна и складывается из падежа телят, снижения мясной и молочной продуктивности, уменьшения привесов, выбраковки животных, убытка от абортов и бесплодия. Проведение своевременной и точной лабораторной диагностики является важным фактором в борьбе с данными заболеваниями.

Лабораторное исследование рота-, коронавирусных инфекций включает традиционные методы ранней и ретроспективной диагностики, к которым относятся реакции диффузной преципитации (РДП), гемагглютинации (РГА), торможения агглютинации (РТГА). Однако при всех своих преимуществах (простота постановки, непродолжительность по времени), они отличаются субъективностью оценки, часто дают ложноположительные результаты. Поэтому в настоящее время широкое распространение получил метод имму, но ферментного анализа (ИФА). Быстрота получения результатов, воспроизводимость и автоматизированный учет результатов реакции, возможность стандартизации условий постановки анализа делают этот метод наиболее эффективным, удобным, экономичным и выгодным для массовых серологических исследований. Многими зарубежными коммерческими фирмами (INGENAZA, IDEXX, Cypress, Bio X и др.) предложены тест-системы на основе непрямого варианта ИФА для определения антител к ротаи коронавирусам в сыворотках крови при исследовании сывороток в одном разведении. Поскольку данные наборы не всегда доступны, актуальным является создание отечественных тест-систем для выявления антител к рота-, коронавирусам иммуноферментным методом.

Цель н задачи исследований. Целыо настоящего исследования являлась разработка диагностических тест-систем на основе подготовленных штаммов рота-, коронавирусов крупного рогатого скота для выявления антител к ним при проведении серологических исследований.

Для достижения поставленной цели необходимо было решить следующие задачи:

1) выделить и адаптировать полевые изоляты ротавируса КРС, циркулирующие на территории РФ, в культуре клеток;

2) изучить иммунобиологические свойства выделенных изолятов ротавируса.

ICPC для возможного использования в качестве производственных штаммов;

3) отработать методы получения высокоочищенных концентрированных препаратов антигенов рота-, коронавирусов;

4) разработать тест-системы на основе непрямого варианта ИФА для определения антител к рота-, коронавирусам в сыворотках крови КРС методом одного разведения;

5) с помощью разработанных тест-систем провести исследования иммунного статуса поголовья крупного рогатого скота.

Научная новизна. Выделен и адаптирован к культуре клеток новый штамм ротавируса КРС «ТЕ87-ДЕП», на который получен патент на изобретение № 2 258 738.

Разработаны отечественные иммуноферментные тест-системы с применением в качестве антигенов штаммов ротаи коронавирусов, выделенных из хозяйств РФ, для выявления и количественной оценки специфических антител к ним при тестировании сывороток крови в одном разведении. Метод учета результатов тестирования предусматривает определение титра антител по уравнению регрессионной зависимости, осуществляемое автоматически с использованием компьютерной программы для регистрации, обработки, хранения результатов иммуноферментного анализа в ветеринарии «Синко-ИФА», разработанной во ВНИИЗЖ (ФГБУ «ВНИИЗЖ», свидетельство о регистрации № 2 000 611 338).

С помощью разработанных иммуноферментных тест-систем проведены исследования по распространению рота-, коронавирусной инфекций за 2007 — 2011гг. с анализом результатов серологического скрининга хозяйств из различных регионов РФ.

Практическая значимость. Для практического применения разработаны, одобрены ученым советом и утверждены директором ФГБУ «ВНИИЗЖ» следующие методики и методические рекомендации, которые используются в лабораторной практике:

Методика концентрирования и очистки ротавируса крупного рогатого скота";

Методика выявления антител к ротавирусу крупного рогатого скота в непрямом варианте иммуноферментного анализа при тестировании проб в одном разведении";

Методика определения титра антител к коронавирусу в сыворотках крови КРС иммуноферментным методом";

Методические рекомендации по выявлению антител к коронавирусу крупного рогатого скота в непрямом варианте иммуноферментного анализа при тестировании проб сывороток крови в одном разведении";

Методические рекомендации по выявлению антител к ротавирусу крупного рогатого скота в сыворотках крови лабораторных животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа".

Основные положения, выносимые на защиту:

— Выделение ротавируса КРС из проб патологического материала в перевиваемой культуре клеток, получение диагностического препарата антигена ротавируса КРС;

— тест-система на основе непрямого варианта ИФА для выявления и определения уровня антител к ротавирусу КРС при тестировании сывороток в одном разведении;

— тест-система на основе непрямого варианта ИФА для выявления и определения уровня антител к коронавирусу КРС при тестировании сывороток в одном разведении;

— результаты серологического исследования сывороток крови КРС, поступивших в ФГБУ «ВНИИЗЖ» в период 2007;2011 гг., с использованием разработанных тест-систем.

Публикации. По теме диссертационной работы опубликовано 8 научных статей, в том числе 4 работы в изданиях, рекомендованных ВАК Министерства образования и науки РФ.

Апробация работы. Результаты исследований по теме диссертации доложены и опубликованы в материалах Международных научно-практических конференций, посвященных 45-летию ФГУ «ВНИИЗЖ».

Владимир, 2003 г.), 50-летию ФГУ «ВНИИЗЖ» (Владимир, 2008 г.), в материалах конференции «Актуальные проблемы инфекционной патологии ветеринарной медицины (исследования молодых учёных)» (г. Покров Владимирской области, 2009 г., ГНУ ВНИИВВиМ), а также на заседаниях ученого совета ФГУ «ВНИИЗЖ» в 2008;2010 гг.

Личный вклад соискателя. Диссертационная работа выполнена автором самостоятельно. Отдельные этапы работы выполнены совместно с к.б.н. Дороненковой Г. Н., к.б.н. Бьядовской О. П., к.б.н. Чупиным С. А., д.б.н. Пономаревым А.П.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 133 страницах и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, собственные исследования: материалы и методы, результаты собственных исследований, их обсуждение, выводы, практические предложения и приложения.

Список литературы

включает 187 источников, в том числе 28 источников на русском языке и 159 источника зарубежных. Работа иллюстрирована 22 таблицами и 15 рисунками.

5. ВЫВОДЫ.

1. Выделены и адаптированы к перевиваемой культуре клеток три полевых изолята ротавируса КРС от больных телят, изучены биологические свойства выделенных изолятов, подготовлен производственный штамм ротавируса КРС.

2. Штамм ротавируса КРС «ТЕ87-ДЕП» депонирован в коллекции штаммов микроорганизмов ФГБУ ВГНКИ и рекомендован для использования при разработке и изготовлении средств диагностики ротавирусной инфекции КРС.

3. Для получения специфических антигенов отработан способ очистки и концентрирования ротавируса КРС хлороформом и ультрацентрифугированием путем наслаивания на 30%-ный раствор сахарозы.

4. Разработанная методика определения титра антител к ротавирусу в сыворотках крови КРС в непрямом варианте ИФА при тестировании проб в одной разведении является воспроизводимой, показала достаточно высокий уровень относительной чувствительности (95,3%) и относительной специфичности (94,4%) и может быть использована для проведения серологических исследований в хозяйствах.

5. Разработанная методика выявления антител к коронавирусу в сыворотках крови КРС в непрямом варианте ИФА при тестировании проб в одном разведении является воспроизводимой. Она показала уровень относительной чувствительности (100%) и относительной специфичности (94,4%) и может использоваться для проведения серологических исследований в хозяйствах.

6. Исследования 2495 проб сыворотки крови КРС, поступивших из 32 регионов РФ, на наличие антител к ротавирусам показали, что 43,1% были серопозитивными к возбудителю ротавирусной инфекции, а исследования 1344 проб сыворотки крови КРС, поступивших из 27 регионов РФ, на наличие антител к коронавирусам показали, что 67,7% были серопозитивными к возбудителю коронавирусной инфекции. Полученные результаты свидетельствуют о широком распространении этих болезней среди КРС и о необходимости выявления их с помощью разработанных диагностических методов.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

Результаты проведенных исследований явились основанием для следующих документов:

1. Патент 2 258 738 Российская Федерация, МПК -7 C12N 7/00 Штамм № «ТЕ87» Rotavirus крупного рогатого скота серотипов G8P7 для изготовления диагностических препаратов / 2 258 738, П. К. Аянот, Г. Н. Дороненкова, JI. Б. Прохватилова, С. А. Чупин, А. П. Пономарев, A.M. Тимипа, Г. С. СкитовичФГУ «ВНИИЗЖ». — № 2 003 136 945/13- Заявл. 24.12.2003; Опубл. 20.08.2005, Бюл. № 23.

2. Методика концентрирования и очистки ротавируса крупного рогатого скота / Г. С. Скитович, Л. Б. Прохватилова, Г. Н. Дороненкова, С. А. Чупин и др. — ФГУ «ВНИИЗЖ». — Владимир, 2002. — 7 с.

3. Методика определения титра антител к коронавирусу в сыворотках крови крупного рогатого скота иммуноферментным методом / Г. С. Скитович, О. П. Бьядовская, В. В. Думова, Л. Б. Прохватилова — ФГУ «ВНИИЗЖ». — Владимир, 2007. — 10 с.

4. Методика выявления антител к ротавирусу крупного рогатого скота в непрямом варианте иммуноферментного анализа при тестировании проб в одном разведении / Г. С. Скитович, О. П. Бьядовская, Л. Б. ПрохватиловаФГУ «ВНИИЗЖ». — Владимир, 2007. — 8 с.

5. Методические рекомендации по выялению антител к коронавирусу КРС в непрямом варианте иммуноферментного анализа при тестировании проб сывороток крови в одном разведении / Г. С. Скитович, О. П. Бьядовская, О. Г. Андреева [и др.] - ФГУ «ВНИИЗЖ». -Владимир, 2010. — 14 с.

6. Методические рекомендации по выявлению антител к ротавирусу крупного рогатого скота в сыворотках крови лабораторных животных в непрямом варианте иммуноферментного анализа / Г. С. Скитович, О. П. Бьядовская, C.B. Левченко, Л. Б. ПрохватиловаФГУ «ВНИИЗЖ». -Владимир, 2010. 9с.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.Ж. Антигенные и иммуногенные свойства ротавируса крупного рогатого скота: дис.. .канд. вет. наук. М., 1985. — 20 с.
  2. И.П., Васильев H.H., Амбросов В. А. Быстрые методы статистической обработки и планирование экспериментов. Л.: Изд-во Ленингр. ун-та, 1974. — 76 с.
  3. Вирусные гастроэнтериты смешанной этиологии и их профилактика / А. И. Собко, Ф. С. Вабишевич, В. Н. Ткацкая и др. // Вопросы вет. вирусологии, микробиологии и эпизоотологии: материалы науч. конф. -Покров, 1992.-4.1.-С. 154−155.
  4. В.В., Халенев Г. А., Сюрин В. Н. Вирусные и хламидиозные респираторные и кишечные инфекции крупного рогатого скота // Итоги науки и техники ВИНИТИ АН СССР. Животноводство и ветеринария. -М., 1975. Т.8. — С. 106- 108.
  5. Исследование ротавирусов методами электронной микроскопии и электрофореза РНК в полиакриламидном геле / В. И. Хаустов, Ю. А. Казачков, М. Б. Королев, J1.A. Шекоян // Вопросы вирусологии 1988. -№ 6.-С. 743−745.
  6. Г. Ф. Диареи телят, обусловленные вирусами // Итоги науки и техники. ВИНИТИ АН СССР. Животноводство и ветеринария. -Москва, 1980.-Т.13. С. 7−31.
  7. Коронавирусные инфекции животных / И. Ф. Вишняков, H.A. Лагуткин, A.A. Стрижаков и др. Покров, 1997. — 69 с.
  8. Культивирование и обнаружение коронавируса в культуре клеток / Н. Л. Соколова, И. Т. Сатторов, B.C. Авилов // Бюл. ВИЭВ. М., 1983.-Вып. 49. — С. 46−48.
  9. Культивирование ротавируса возбудителя неонатальной диареи телят / Н. М. Стрижаченко, Ы. А. Граевская, Н. Л. Соколова и др. // Ветеринария. — 1970. — № 10. — С. 68−70.
  10. Л. А., Гоголев М. М., Ишкова Т. А. Иммуноферментная тест-система для идентификации рота- и коронавирусного антигена, антигена диареи крупного рогатого скота. // С.-Х. биология- 2000.-№ 6.-С. 117−119.
  11. Ю.В., Буслаева Г. П., Соколова Н. Л. Морфогенез ротавируса телят в культуре клеток почки эмбриона коровы с добавлением трипсина // Проблемы молекулярной биологии и патологии с.-х. животных: сб. науч. тр. MBA. -М., 1982. С. 31−38.
  12. Практическая химия белка / под ред. А.Дабре. М.: Мир, 1989. — 623с.
  13. Применение ПЦР для определения Р-типов ротавирусов КРС / С. А. Чупин, В. А. Кудрявцев, Г. Н. Дороненкова, П. К. Аянот // Актуальные проблемы патологии свиней, крупного и мелкого рогатого скота: материалы конф. молодых ученых. Владимир, 2002. — С. 106−113.
  14. Простой метод выделения и очистки РНК / О. Г. Грибанов, A.B. Щербаков, H.A. Перевозчикова и др. // Биоорганическая химия. -1997. Т.23,№ 9. — С. 763−765.
  15. Л.Г., Маглакедзе Д. А., Лобадзе Т. Н. Выделение ротавируса собак и изучение его иммунобиологических свойств // Молекулярная генетика микробиология и вирусология. 2001. — № 2. -С. 521−523.
  16. Репродукция и индикация ротавируса крупного рогатого скота / М. М. Гоголев, Н. И. Матюгина, Л. А. Мникова, М. Т. Гололобова // Бюл. ВИЭВ, М, 1983.-Вып. 49.-С. 49−53.
  17. П.П. Экспериментальное изучение репродукции ротавируса телят в культуре клеток: автореф. дис. .канд. вет. наук. М., 1982. — 20 с.
  18. И.Т. Методы культивирования и индикация коронавируса КРС: автореферат дис. .канд. вет.наук. -М., 1984. 15 с.
  19. Серийное пассирование ротавируса крупного рогатого скота в гетерологичной культуре клеток / Л. Г. Рамишвили, Г. Г. Рухадзе, Е. А. Непоклонов и др. // Вопросы вирусологии. 1991. — № 6. — С.521−523.
  20. В.Г., Проценко О. Г. Серологическое обследование КРС на наличие противоротавирусных антител // Профилактика и меры борьбы с болезнями молодняка с.-х. животных: тез. докл. науч.-произв. конф.-Минск, 1990.-С. 10.
  21. Н.Л. Коронавирусный энтерит новорожденных телят (обзор). М.: ВАСХНИЛ, 1990. — 60 с.
  22. Н.Л., Сатторов И. Т., Мникова Л. А. Коронавирус — возбудитель диареи новорожденных телят // Ветеринария. 1982. — № 11.-С. 26−27.
  23. В.Н., Белоусова Р. В., Фомина Н. В. Ветеринарная вирусология. 2-е изд. — М.: Агропромиздат, 1991. — 431 с.
  24. Х.Е., Белчес Д. Колибактериални и вирусни ентерити прителетата. София, 1980. — 128 с.
  25. Эффективность различных адъювантов при получении диагностических сывороток / В. А. Мищенко, А. И. Дудников, М. А. Базаров и др. // Вирусные и микробные болезни животных: сб. науч. тр. Владимир, 1995. — С. 149−152.
  26. Acres S.D., Babiuk L.A. Studies on rotaviral antibody in bovine serum and lacteal secretions, using radioimmunoassay // J. Am. Vet. Med. Assoc. -1978.-Vol. 173.-P. 555−559.
  27. Acres S.D., Saunders J.R., Radostits O.M. Acute undifferentiated neonatal diarrhea of beef calves: The prevalence of enterotoxigenic E. coli, reo-like (rota) virus and other enteropathogens in cow-calf herds // Can. Vet. J. -1977.-Vol. 18.-P. 113−121.
  28. A field trial to test the efficacy of a combined rotavirus-coronavirus/E. coli vaccine in dairy cattle / D. Waltner-Toews, S.W. Martin, A.H. Meek, I. McMillan // Proc. 4th Int. Symp. Neonatal diarrhoea. 1983. — P. 456−483.
  29. Age-dependent diarrhea induced by a rotaviral nonstructural glycoprotein / J.M. Ball, P. Tian, C.Q.Y. Zeng et al. // Science. 1996. — Vol. 272. — P. 101−104.
  30. Agrawal D.K., Singh N.P., Chauhan R.S. Colostral antibodies against rotavirus infection in neonatal calves // J. Immunology and Immunopathology. 2002. — Vol. 4. — P. 107−109.
  31. Almeida J.D., Craig C.R., Hall Т.Е. Multiple viruses present in the faeces of a scouring calf//Vet. Rec. 1978. — Vol. 102.-P. 170−171.
  32. A longitudinal study of bovine coronavirus enteric and respiratory infections in dairy calves in two herds in Ohio / R.A. Heckert, LJ. Saif, K.H. Hoblet, A.G. Agnes // Vet. Microbiol. 1990. — Vol. 22. — P. 187−201.
  33. Antigenic and biological relationships between human coronavirus OC43 and neonatal calf diarrhoea coronavirus / G. Ge ma, P.M. С ereda, M.G. Revello // J. Gen. Virol. 1981.-Vol. 54, № 1.-P. 91−102.
  34. Antigenic relationships among some animal rotaviruses: virus neutralization in vitro and crossprotection in piglets / S.K. Gaul, T.F. Simpson, G.N. Woode et al. // J. Clin. Microbiol. 1982. — Vol. 16. — P. 495−503.
  35. Antigenic relationships among some bovine rotaviruses: serum neutralization and cross-protection in gnotobiotic calves / G.N. Woode, N.E. Kelso, T.F. Simpson // J. Clin. Microbiol. 1983. — Vol. 18. — P. 358 — 364.
  36. A survey of G6 and G10 serotypes of group A bovine rotaviruses from diarrheic beef and dairy calves using monoclonal antibodies in ELISA / S.Y. Lucchelli, M.K. Kang, A.V. Jayasekera et al. // J. Vet. Diagn. Invest. -1994.-Vol. 6.-P. 175−181.
  37. Bachmann P.A. Viral gastroenteritis in calves // Modem Veterinary Practice. 1983. — Vol. 64, № 7. — P. 559 — 565.
  38. Bade H., Stegemann H. Rapid method of extraction of antibodies from hen egg yolk//J. Immunol. Methods. 1984. -V. 72. — P. 421−426.
  39. Beards G.M.F. Polymorphism of genomic RNAs within rotavirus serotypes and subgroups // Arch. Virol. 1982. — Vol. 74. — P. 65−70.
  40. Berg L.A. Pathologist’s view of the scouring calf //N.D.Farm. Ree. 1981. — Vol. 30, № 4. — P. 10−12.
  41. Bovine enteric Coronavirus structure and studied by a freez-drying technique / A. Roseto, P. Bobulesco, L. Laporte et al. // J. Gen. Virol. -1982.-Vol. 63.-P. 241−245.
  42. Bovine Virusdiarrhoe (BVD) und Mucosal Disease (MD): eine Ubersicht / W. Hochsteiner, K. Mostl, S. Franz et al. // Mschr. Wien. Tierarztl. 2002. -Vol. 89.-P. 270−280.
  43. Bridger J.C. A definition of bovine rotavirus virulence // J. Gen. Virol. -1994. Vol. 75. — P. 2807−2812.
  44. Bridger J.C., Wood G.N., Meyling A. Isolation of coronaviruses from neonatal calf diarrhoea in Great Britain and Denmark // Vet. Microbiol. -1978. Vol. 3. — P. 101−113.
  45. Bridger J.C., Woode G.N. Neonatal calf diarrhoea: identification of a reovirus-like (rotavirus) agents in faeces by immunofluorescense and immune electron microscopy // British Vet. J. 1975. — Vol. 131. — P. 528 535.
  46. Calf diarrhea (scours): reproduced with a virus from a field outbreak / C.A. Mebus, N.R. Underdahl, M.B. Rhodes, M.J. Twiehaus // Univ. Nebraska Res. Bull. 1969. — Vol. 233. — P. 1−16.
  47. Calfhood coronavirus enterocolitis: Aclue to the etiology of winter dysentery / H.J. Kruiningen, L.H. Khairallah, V.G. Sarsvevylls et al. // Vet. Pathol. 1987. — Vol. 24, № 6. — P. 564−567.
  48. Cell culture adaptation and propagation of a reovirus-like agent of calf diarrhea from a field outbreak in Nebraska / A.L. Fernelius, A.E. Ritchie, L.G. Classick et al. // Arch. ges. Virusforschung. 1972. — Bd. 37. — S. 114 130.
  49. Characterization of field strains of group A bovine rotaviruses by using polymerase chain reaction-generated G and P type-specific cDNA probes / A.V. Parwani, H.A. Hussein, B.I. Rosen et al/. 111. Clin. Microbiol. 1993. -Vol. 3.,-P. 2010−2015.
  50. Characterization of virus-like particles produced by the expression of rotavirus capsid proteins in insect cells / S.E. Crawford, M. Labbe, J. Cohen et al. // J. Virol. 1994. — Vol. 68. — P. 5945−5952.
  51. Chauhan R.S., Singh N.P. Detection of rotavirus in experimentally infected calves using immunoperoxidase technique // Indian J. Animal Sciences. -1999.-Vol. 69.-P. 239−291.
  52. Chauhan R.S., Singh N.P. Demonstration of antirotavirus antibody producing cells in intestine of calves using immunoperoxidase technique // J. Immunology and Immunopathology. 2001. — Vol. 3. — P. 41—44.
  53. Chronic shedding of bovine enteric coronavirus antigen-antibody complexes by clinically normal cows / C.F. Crouch, H.B. Ohmann, T.C. Wattes et al. // J. Gen. Virol. 1985. — Vol. 66. — P. 1489−1500.
  54. Colostral antibodies against rotavirus infection in neonatal calves / D.K. Agrawal, N.P. Singh, R.S. Chauhan // J. Immun. Immunop. 2002. — Vol. 4. — P. 107−109.
  55. Comparative analysis of innate immune responses following infection of newborn calves with bovine rotavirus and bovine coronavirus / P. Aich, H.L. Wilson, R.S. Kaushik et al. // J. Gen. Virol. 2007. — Vol. 88. P. 27 492 761.
  56. Comparative studies of the antigenic polipeptide species VP4, VP6 and VP7 of three strains of bovine rotavirus / S. Zhen, G. Woode, D. Melengy, R.F. Ramig // J. Clin. Microbiol. 1989. — Sept. — P. 1939−1945.
  57. Comparison of rotavirus immunoglobulin A coproconversion with other indices of rotavirus infection in a longitudinal study in childhood / B.S. Coulson, K. Grimwood, P.J. Masendycz et al. // J. Clin. Microbiol. 1990. -Vol. 28.-P. 1367−1374.
  58. Comparison of serum and mucosal antibody responses following severe acute rotavirus gastroenteritis in young children / K. Grimwood, J.C. Lund, B.S. Coulson et al. // J. Clin. Microbiol. 1988. — Vol. 26. — P. 732−738.
  59. Coulson B.S., Kirkwood C. Relation of VP7 amino acid sequence to monoclonal antibody neutralization of rotavirus and rotavirus monotype // J. Virol. 1991.-Vol. 65.-P. 5968−5974.
  60. Coulson B.S., Masendycz P.J. Measurement of rotavirus-neutralizing coproantibody in children by fluorescent focus reduction assay // J. Clin. Microbiol. 1990. — Vol. 28. — P. 1652−1654.
  61. Crouch C.F., Oliver S., Francis M.J. Serological, colostral and milk responses of cows vaccinated with a single dose of a combined vaccine against rotavirus, coronavirus and Escherichia coli F5 (K99) // Vet. Rec. -2001.-Vol. 28 № 4.-P. 105−108.
  62. Dea S., Roy R.S., Begin M.E. Bovine coronavirus isolation and cultivation in continuous cell lines // Am. J. Vet. Res. 1980. — Vol. 41. — P. 30−38.
  63. Desselberger U., McCrae M.A. The rotavirus genome. Rotaviruses / ed. by R.F. Ramig. Berlin: Springer-Verlag, 1994. — P. 31−66.
  64. Detection of enteropathogenic viruses in paraffin embedded intestinal tissue of calves by immunoperoxidase / G.A. Hall, K.R. Parsons, D.J. Reynolds, J. I-I. Morgan // J. Med. Microbiology. 1985. — Vol. 19. — P. 14−16.
  65. Detection of rotavirus and coronavirus shedding in two beef cow herds in Idaho / M.S. Bulgin, A.C.S. Ward, D.P. Barrett et al. // Can. Vet. J. 1989. -Vol. 30.-P. 235−239.
  66. Development, Characterization, and Diagnostic Applications of Monoclonal Antibodies against Bovine Rotavirus / Y. Al-Yousif, F. Al-Majhdi, C. Chard-Bergstrom et al. // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2000. -Vol. 7, № 2. — P.288−292.
  67. Diarrhoea in dairy calves reduced by feeding colostrum from cows vaccinated with rotavirus / D.R. Snodgrass, J. Stewart, J. Taylor et al. // Res. Vet. Sci. 1982. — Vol. 32. -P.70−73.
  68. Distribution of G (VP7) and P (VP4) genotypes in buffalo group A rotaviruses isolated in Southern Italy / G. Pisanelli, V. Martella, U. Pagnini et al. // Vet. Microbiol. 2005. — Vol. 110. — P. 1−6.
  69. Doughri A.M., Storz J. Light and ultrastructural pathologic changes in intestinal coronavirus infection of newborn calves // Zentzbl. Vetmed. -1977. Vol. 24, № 5. — P. 267−386.
  70. Durham P.J.K. Rotavirus and coronavirus induced diarrhoea in Zealand cattle // 47 Session Generate du Comite de O.I.E., Paris, 2 1−26 mai, 1979.- Rapport 106. P. 9.
  71. Electropherotype heterogeneity within serotypes of human rotavirus strains circulating in Italy / G. Gerna, S. Arista, N. Passarani et al. // Arch. Virol.- 1987.-Vol. 95.-P. 129−135.
  72. Ellis G.R., Daniels E. Comparison of direct electron microscopy and enzyme immunoassay for the detection of rotaviruses in calves, lambs, piglets and foals//Australian Vet. J. 1988.-Vol. 65.-P. 133−135.
  73. England L.I. Viruses associated with neonatal diarrhea of calves // Vet. Med. Small Anim. Clin. 1977. — Vol. 72, № 5. — P. 925 — 927.
  74. Epizootic diarrhoea of adult cattle assocoated with a coronavirus-like agent / E. Takahashi, J. Inaba, K. Sato et al. // Vet. Microbiol. 1980. — Vol. 5. -P. 151 -154.
  75. Espejo R.T., Lopez S., Arias C. Structural polypeptides of simian rotavirus SA11 and the effect of trypsin//J. Virol. 1981. — Vol. 37. — P. 156−160.
  76. Estes M.K., Graham D.Y., Dimitrov D.H. The molecular epidemiology of rotavirus gastroenteritis // Prog. Med. Virol. 1984. — Vol. 29. — P. 1−22.
  77. Estes M.K. Rotaviruses and their replication // Fields Virology / Ed. by B.N. Fields, D.M. Knipe, P.M. Howley. 3rd ed. — Philadelphia, 1996. — P. 1625−1655.
  78. Estes M.K. Rotaviruses and their replication // Fields Virology / Ed. by D.M. Knipe, P.M. Howley et al. 4th ed. — Philadelphia, 2001. — P. 17 471 785.
  79. Estes M.K. The rotavirus NSP4 enterotoxin: current status and challenges // Elsevier Science, Amsterdam, Netherlands, 2003. P. 207−224.
  80. Evaluation of immune response to bovine rotavirus following oral and intraperitoneal inoculation in mice / R. Rathi, S.K. Kadian, B. Khurana et al. // Indian J. Experimental Biology. 2007. — Vol. 45. — P. 212−216.
  81. Evaluation of recombinant BCG expressing rotavirus VP6 as an anti-rotavirus vaccine / M. Dennehy, W. Bourn, D. Steele // Vaccine. 2007. -Vol. 25.-P. 3646−3657.
  82. Experimentally induced coronavirus infections in calves: viral replication in the respiratory and intestinal tracts / L.J. Saif, D.R. Redman, P.D. Moorhead, K.L. Theil // Am. J. Vet. Res. 1986. — Vol. 47. — P. 1426−1432.
  83. G and P genotypes of group A rotavirus strains circulating in calves in Brazil, 1996−1999 / A.F. Alfieri, A.A. Alfieri, M.A. Barreiros et al. // Vet. Microbiol. 2004. — Vol. 99. — P. 167−173.
  84. Gill H., Prasad J. Probiotics, immunomodulation, and health benefits // Adv. Eperim. and Med. Biol. 2008. — Vol. 606. — P. 423−454.
  85. Greenberg H.B., Clark H.F., Offit P.A. Rotavirus pathology and pathophysiology // Rotaviruses / ed. R.F. Ramig. — Berlin-Heidelberg, 1994.-P. 256−283.
  86. Group A rotavirus in calves in Minas Gerais State, Brazil / E.F. Barbosa, H.C.P. Figueiredo, A.M. Garcia et al. // Ciencia Rural. 1998. — Vol. 28. -P. 435−439.
  87. Heckert R.A., Saif L.J., Myers G.W. Mucosal and systemic isotype-specific antibody responses to bovine coronavirus structural proteins in naturally infected dairy calves // Am. J. Vet. Res. 1991. — Vol. 52. — P.852−857.
  88. Herrmann J.E. DNA vaccines against enteric infections // Vaccine. 2006. -Vol. 24.-P. 3705−3708.
  89. Hogue B.G., B. King, D.A. Brian. Antigenic relations-hips amond proteins of bovine coronavirus OC43 and mouse hepatitis coronavirus A59 // J. Virology. 1984. Vol. 51, № 2. -P. 384−388.
  90. Holland R.E. Some infectious causes of diarrhea in young farm animals // Clinical Microbiological Reviews. 1990. — Vol. 3. — P. 345−375.
  91. Identification of the catalytic sites of a papain-like cysteine proteinase of murine coronavirus / S.C. Baker, K. Yokomori, S. Dong et al. // Virology.- 1993. Vol. 67, № 10. — P. 6056−6063.
  92. Kaye H.S., Yasbrough W.B., Reed C.J. Calf diarrhoea coronavirus // Lancet.- 1975.-Vol. 11.-P. 509−511.
  93. Kohara J., H. Tsunemitsu Correlation between maternal serum antibodies and protection against bovine rotavirus diarrhea in calves // J. Vet. Med. Science. 2000. — Vol. 62. — P. 219−221.
  94. Komoto S., Sasaki J., Taniguchi K. Reverse genetics system for introduction of site-specific mutations into the double-stranded RNA genome of infectious rotavirus // Proc. Nat. Acad, of Sci. USA. 2006. — Vol. 103. — P. 4646−4651.
  95. Lactogenic antibody responses in cows vaccinated with recombinant bovine rotavirus-like particles (VLPs) of two serotypes or inactivated bovinerotavirus vaccines / Y. Kim, P.R. Nielsen, D. Hodgins et al. // Vaccine. -2002a.-Vol. 20.-P. 1248−1258.
  96. Langpap T.J., Bergeland M.E., Reed D.E. Coronaviral enteritis of young calves: virologic and pathologic findings in naturally occurring infections // Am. J. Vet. Rec. 1979. — Vol. 40, № 10. — P. 1476 — 1478.
  97. Lawton J.A., Estes M.K., Prasad B.V. Comparative structural analysis of transcriptionally competent and incompetent rotavirus-antibody complexes // Proc. Nat. Acad, of Sci. USA. 1999. — Vol. 96. — P. 5428−5433.
  98. Lawton J.A., Estes M.K., Prasad B.V. Mechanism of genome transcription in segmented dsRNA viruses // Adv. Virus Res. 2000. — Vol. 55. — P. 185 229.
  99. Lecce J.G., King M.W. Rotavirue antibodies in cow’s milk // Canad. J. Comp. Med. 1982. — Vol. 46, № 4. — P. 434 — 436.
  100. Lewis L.D., Phillips R.W. Pathophysiologic changes due to coronavirus-induced diarrhea in the calf // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1978. — Vol. 173. -P. 636 — 642.
  101. Light and electron microscopic studies of the changes in the intestinal mucosa of gnobiotic calves infected with a wild rotavirus / H.C. Dubourguier, O. Mandard, M. Contrepois, P. Gouct // Ann. Virol. 1982. -Vol. 132, № 2.-P. 217−227.
  102. Localization of VP4 neutralization sites in rotavirus by three-dimensional cryo-electron microscopy / B.V.V. Prasad, J. W. Burns, E. Marietta et al. // Nature. 1990. — Vol. 343. — P. 476−479.
  103. Losonsky G.A., Reymann M. The immune response in primary asymptomatic and symptomatic rotavirus infection in newborn infants // J. Infect. Dis. 1990. — Vol. 161. — P. 330−332.
  104. Maass D.R., Atkinson P.H. Rotavirus proteins VP7, NS28, and VP4 form oligomeric structures // J. Virol. 1990. — Vol.64, N6. — P. 2632−2641.
  105. Massip A. La diarrhee du vean: consideration physiopathologiques et notions de rehydratation. I. Consideration physiopathologiques // Ann. Med. Vet. 1976. — Vol. 120. — P. 9−26.
  106. Matsuno S., Inouye S. Purification of an outer capsid glycoprotein of neonatal calf diarrhea virus and preparation of its antisera // Infect. Immun. -1983.-Vol.39.-P. 155−158.
  107. McClurkin A.W. Probable role of viruses in calf hood diseases // J. Dairy Science. 1976. — Vol. 60, № 2. — P. 278 — 282.
  108. McNulty M.S., Curran W.L., McFerran J.B. The morphogenesis of a cytopathic bovine rotavirus in Madin-Darby bovine kidney cells // J. Gen. Virol. 1976. — Vol. 33. — P. 503−508.
  109. Mebus C.A., Wyatt R.G., Kapikian A.Z. Intestinal lesions induced in gnotobiotic calves by the virus of human infantile gastroenteritis // Vet. Pathol. 1977. — Vol. 14. — P. 273−282.
  110. Meyling A. Occurrence of rota- and corona-virus infections in calves in Denmark. Experimental infection of calves with isolamed agents // 47 Session Generale du Comite de O. I. E., Paris, 21 -26 May, 1979. Raport № 106.
  111. Middleton P.J. Pathogenesis of rotavirus infection // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1978. — Vol. 173. — P. 544−546.
  112. Molecular characterization and analysis of bovine rotavirus strains circulating in Ireland 2002−2004 /N. Reidy, G. Lennon, S. Fanning et al. // Vet. Microbiol. 2006. — Vol. 117. — P. 242−247.
  113. Molecular characterization of bovine rotavirus circulating in beef and dairy herds in Argentina during a 10-year period (1994—2003) / L. Garaicoechea, K. Bok, L.R. Jones et al. // Vet. Microbiol. 2006. — Vol. 118. — P. 1−11.
  114. Mostl K., Burki F. Ursachliche Beteiligung boviner Coronaviren an respiratorischen Krankheitsausbruchen bei Kalbern und pathogenetischimmunologische Uberlegungen hierzu // Tierarztl. Umschau. 1988.-Bd. 95,№ 1.-S. 19−22.
  115. Mucosal immune responses following oral immunization with rotavirus antigens encapsulated in alginate microspheres / B. Kim, T. Bowersock, P. Griebel et al. // J. Controlled Release. 2002b. — Vol. 85. — P. 191−202.
  116. Mullaney T.P., Newman L.E., Whitehair C.K. Hummoral immune respose of the bovine fetus to in utero vaccination with attenuated bovine Coronavirus // Am. J. Vet. Res. 1988. — Vol. 49. — P. 156−159.
  117. Myers L.L., Snodgrass D.R. Colostral and milk antibody titres in cows viccinated with a modified live-rotavirus-coronavirus vaccine // J. Am. Vet. Med. Assos. 1982. — Vol. 181.- P.486−488.
  118. Nasal immunization of mice with a rotavirus DNA vaccine that induces protective intestinal IgA antibodies / A. Garcia-Diaz, P. Lopez-Andujar, J. Rodriguez Diaz et al. // Vaccine. 2004. — Vol. 23. — P. 489−498.
  119. Neonatal calf diarhea induced bu a coronavirus-like agent / Mebus C.A. et al. // Vet. Pathol. 1973. — Vol. Ic, № 1. — P. 45 — 64.
  120. Neonatal calf diarrhea: purification and electron microscopy of a coronavirus-like agent / E.L. Stair, M.B. Rhodes, R.G. White, C.A. Mebus // Am. J. Vet. Ree. 1972. — Vol. 33. — P. l 147−1156.
  121. Novel porcine rotavirus of genotype P27. shares new phylogenetic lineage with G2 porcine rotavirus strain / P. Khamrin, N. Maneekarn, S. Peerakome [et al.] // Virology. 2007. — Vol. 361. — P. 243−252.
  122. Oral administration of specific egg Volk antibodies to prevent diarrhoea in newborn calves enteropathogen dependent effects / M.H. Erhart, K. Doll,
  123. U. Losch, M. Stangassinger // Proc. 19 World Buiatrics Congress. -Edinburgh, 1996.-Vol. 1.-P. 121−124.
  124. Palombo E.A. Genetic analysis of Group A rotaviruses: evidence for interspecies transmission of rotavirus genes // Virus Genes. 2002. — Vol. 24. — P. 11−20.
  125. Passive immunity in calf rotavirus infections: material vaccination increases and prolongs immunoglobulin G1 antibody secretion in milk / D.R. Snodgrass, K.L. Fahey, P.W. Wells et al. // Infec. Immun. 1980. — Vol. 28.-P. 344−349.
  126. Pathogenic relationships of rotavirus, Escherichia coli, and other agents in mixed infections in calves / H.W. Moon, A.W. McClurkin, R.E. Isaacson et al. // J. Am. Vet. Med. Assoc. 1978. — Vol. 173. — P. 577−583.
  127. Pathology of neonatal calf diarrhoea induced by a reo-like virus / C.A. Mebus, E.L. Stair, N.R. Underdahl, M.J. Twiehaus // Vet. Pathol. — 1971. — Vol. 8.-P. 490−505.
  128. Paul P. S., Lyoo Y.S. Immunogens of rotaviruses // Vet. Microbiol. 1993. -Vol. 37.-P. 299−317.
  129. Pearson G.R., Logan E.F. The Pathology of neonatal enteritis in calves with observations on E. coli, rotavirus and Cryptosporidium // Ann. Res. Vet. -1983. Vol. 14, № 4. — P. 422−426.
  130. Persistent antigenic variation of influenza A viruses, after incomplete neutralization in vivo with heterologie immune serum / G. Archetti, L. Franc, F.L. Horsfall // J. Exp. Ved. 1950. — № 5. — P. 441−462.
  131. Prevalence of bovine group A rotavirus shedding among dairy calves in Ohio / A. Lucchelli, S.E. Lance, P.B. Bartlett et al. // Am. J. Vet. Res. -1992.-Vol. 53.-P. 169−174.
  132. Prevalence of group A and group B rotaviruses in the feces of neonatal dairy calves from California / J. Chinsangaram, C.E. Schore, W. Guterbock et al. // Comp. Immun. and Microb. 1995. — Vol. 18. — P. 93−103.
  133. Properties of a coronavirus isolated from a cow with epizootic diarrhea / H. Akashi, Y. Inaba, Y. Miura et al. // Vet. Microbiol. 1980. — Vol. 5. — P. 265 -276.
  134. Prophylaxis of neonatal diarrhoea in dairy calves using egg yolk immunoglobulins (IgY) / G.N. Bilbao, P.A. Chacana, A. Mendiburu et al. // Revue Medicinica Veterinaria Buenos Aires. 2006. — Vol. 87. — P. 135— 139.
  135. Protective effects of orally administered immunoglobulins against experimental calf diarrhea / T. Murakami, N. Hirano, A. Inque et al. // Japanese J. Vet. Sc. 1986. — Vol. 48. — P. 237−245.
  136. Ramadass P., Parthiban M., Thiagarajan V. Development of single serum dilution ELISA for detection of infectious bursal disease virus antibodies // Vet. Arhiv. 2008. — Vol. 78, № 1. — P. 23−30.
  137. Rapid detection of bovine rotavirus with semi-nested RT-PCR assay / J.J. Luan, S.H. Yang, W.J. Zhang et al. // Chinese J. Zoonoses. 2006. — Vol. 22.-P. 671−673.
  138. Reactivities of serotyping monoclonal antibodies with culture-adapted human rotaviruses / R.L. Ward, M.M. McNeal, J.D. Clemens et al. // J. Clin. Microbiol. 1991. — Vol. 29. — P. 449−456.
  139. Relation between viruses from acute gastroenteritis of children and new born calves / T.H. Flewett, A.S. Bryden, H.A. Savies et al. // Lancet. 1974. -Vol. 2.-P. 61−63.
  140. Reovirus-like agent (rotavirus) associated with neonatal calf gastroenteritis in France / R.J. Scherrer, R.L. Cohen, S. Haridon et al. // Ann. Rech. Vet. -1976.-Vol. 7. P. 25−31.
  141. Rodak L., Babiuk L.A., Acres S.D. Detection by radioimmunoassay and enzymelinked immunosorbent assay of coronavirus antibodies in bovine serum and lacteal secretions // J. Clin. Microbiol. 1982. — Vol. 16. — P. 3440.
  142. Rotavirus and coronavirus prevalence in healthy calves and calves with diarrhea / S.O. Gumusova, Z. Yazici, H. Albayrak // Medycynica Weterynaryjna. 2007. — Vol. 63. — P. 6 -64.
  143. Rotavirus infections in calves: efficacy of oral vaccination in endemically infected herds / P.W. Leeuw, D.J. Ellens, F.P. Talmon et al. // Res. Vet. Sci. 1980. — Vol. 29. — P. 142−147.
  144. Rotavirus isolation and cultivation in the presence of trypsin / L. A. Babiuk, K.A. Mohammed, L. Spence et al. // J. Clin. Microbiol. 1977. — Vol. 6. -P. 610−617.
  145. Rotavirus is released from the apical surface of cultured human intestinal cells through nonconventional vesicular transport that bypasses the Golgi apparatus / N. Jourdan, M. Maurice, D. Delautier // J. Virol. 1997. — Vol. 71. — P. 8268−8278.
  146. Rotavirus serotypes 6 and 10 predominate in cattle / D.R. Snodgrass, T. Fitzgerald, I. Campbell et al. // J. Clin. Microbiol. 1990. — Vol. 28. -P.504 — 507.
  147. Rotavirus Spike Protein VP4 Is Present at the Plasma Membrane and Is Associated with Microtubules in Infected Cells / M. Nejmeddine, G. Trugnan, C. Sapin // J. Virol. 2000. — Vol. 74, № 7. — P. 3313−3320.
  148. Rotaviruses in human and veterinary medicine / B. Dodet, E. Heseltine, C. Mary et al. // Sante. 1997. — Vol. 7. — P. 195−199.
  149. Saif L.J. Development of nasal, fecal and serum isotype-specific antibodies in calves challenged with bovine Coronavirus or rotavirus // Vet. Immunol. Immunopathol. 1987. — Vol. 17. — P. 425−439.
  150. Saif, L.J., Fernandez, F.M. Group A rotavirus veterinary vaccines // J. Infec. Dis. 1996.-Vol. 174.-P. 98−106.
  151. Saif L.J. Passive immunity to Coronavirus and rotavirus infections in swine and cattle: enhancement by maternal vaccination // Infectious Diarrhoea in the Joung / ed. by S. Tzipori et al. Amsterdam, 1985. — P. 456−467.
  152. Schirrmeier H., Heinrich H.-W. Der Einsatz der Immunofluoreszentechnik fur die Diagnostik der Rotavirusinfektion des Kalbes // Arch. exp. Veterinarmed. 1981. — Bd. 35, № 2. — S. 187- 188.
  153. Shahrabadi M.S., Lee P.W.K. Bovine rotavirus maturation is a calcium-dependent process // Virology. 1986. — Vol. 152. — P. 298−307.
  154. Sharpee R.L., Mebus C.A., Bass E.P. Characterization of a calf diarrheal Coronavirus//Am. J. Vet. Res. 1976. — Vol. 37. — P. 1031−1041.
  155. Steele A.D., Geyer A. Gerdes G.H. Rotavirus infections // Infectious diseases of Livestock / eds: J.A.W. Coetzer, R.C. Tustin Oxford University Press, Southern Africa, 2004. — P. 1256−1264.
  156. Studius on the Relationship betweem coronaviruses from the intestinal and respiratory tract of calvies / D.I. Reynolds, T.G. Debney, G.A. Hall et al. // Arch. Virol. 1985.-Vol. 85, № 1−2.-P. 71−83.
  157. Subunit rotavirus vaccine administered parenterally to rabbits induces active protective immunity / M. Ciariet, S.E. Crawford, C. Barone et al. // J. Virol. 1998. — Vol. 72. — P. 9233−9246.
  158. Systemic and mucosal immune responses to rhesus rotavirus vaccine MMU 18 006 / G.A. Losonsky, M.B. Rennels, Y. Lim et al. // Pediatr Infect. Dis. J. 1988. — Vol. 7. — P. 388−393.
  159. The effect of trypsin on the growth of rotavirus / J.D. Almeida, T. Hall, J.E. Babatvala et al. //J. Gen. Virol. 1978. — Vol.40. — P. 213−218.
  160. The efficacy of colostrum from cows vaccinated with rotavirus in protecting calves to experimentally induced rotavirus infection / G. Castrucci, F. Frigeri, M. Ferrari et al. // Comp. Immun. and Microb. 1984a. — Vol. 7. -P. 11−18.
  161. The protection of newborn calves against experimental rotavirus infection by feeding mammary secretions from vaccinated cows // G. Castrucci, F. Frigeri, M. Ferrari et al. Microbiologica. — 1988a. — Vol. 11. — P. 379 385.
  162. Theil K.W., Bohe E.H., Cross R.F. Pathogenesis of porcine rotaviral infection in experimentaly inoculated gnotobiotic pigs // Amer. J. Vet. Res. 1978. — Vol. 39, № 2. — P. 213−220.
  163. Theodoridis A., Prosesky L., Els H. The isolation and cultivation of calv rotavirus in the Republic of South Africa // J. Vet. Rus. 1979. — Vol. 46, № 2.-P. 65−69.
  164. Three-dimensional structure of rotavirus / B.V. Prasad, G.J. Wang, J.P. Clerx, W. Chiu //J. Mol. Biol. 1988. — Vol. 199. — P. 269−275.
  165. Three-dimensional structure of the rotavirus haemagglutinin VP4 by cryo-electron microscopy and difference map analysis / M. Yeager, A. Berriman, T.S. Baker, A.R. Bellamy // The EMBO J. 1994. — Vol. 13, N5. — P. 10 111 018.
  166. Welch A., Thompson T.L. Physicochemical characterization of a neonatal calf diarrhea virus // Can. J. Compr. Med. 1973. — Vol. 37. — P. 295−301.
  167. Winter dysentery in adult dairy cattle / A. I. Fleetwood, S. Edwards, P.W. Foxell, C.I. Thorns // Vet.Rec. 1989. — Vol. 125, № 22. — P. 553−554.
  168. Winter dysentery in adult dairy cattle: detection of Coronavirus in the faeces / L.J. Saif, D.K. Redman, K.V. Brock // Vet. Ree. 1988. — Vol. 123, № 11. -P. 300−301.
  169. Woode G.N., Bridger J.C. Viral enteritis of calves // Vet. Ree. 1975. -Vol. 96.-P. 85−88.
  170. Woode G.N. Epizootology of bovine rotavirus infection // Vet. Ree. 1978. -Vol. 103.-P. 44−46.
  171. Woode G.N., Jones J., Bridger J. Levels of colostral antibodies against neonatal calf diaahoea virus // Vet. Ree. 1975. — Vol. 97. — P. 148−149.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!