Разработка и совершенствование методов иммуноферментной диагностики классической чумы свиней
Диссертация
Другой подход характерен для России и некоторых стран Восточной Европы, где в условиях высокой концентрации животных в свиноводческих хозяйствах вакцинация необходима. При наличии эпизоотического течения болезни широкое применение вакцин вполне оправдывает себя. До 1967 года профилактика КЧС основывалась на применении кристаллвиолетвакцины, которая, несмотря на ряд недостатков, в свое время… Читать ещё >
Список литературы
- Антитела. Методы / Под ред. Д.Кэтти.- М.: Мир, 1991.- 382 с.
- Багрецов В.Ф., Зелютков Ю. Г. Использование метода ИФА для выявления антител к вирусу чумы свиней // Сб. науч. тр. / Витебск, вет. ин-т.- 1992.-Т.20.-С.4−5.
- Вишняков И.Ф., Куриннов В. В., Яшин А. Т., Олейник Л. Я. Усовершенствование и разработка средств и методов диагностики чумы свиней // Эпизоотол. и меры борьбы с инфек. болезнями животных.-Новосибирск, 1985.- С. 152 155.
- Вишняков И.Ф., Мищенко Н. К., Куриннов В. В. и др. Классическая чума свиней// Ветеринария.-1998.-№ 11.-С.21−27.
- Вишняков И.Ф. Диагностика классической чумы свиней //Ветеринария.1986.-№ 3.-С.27−30.
- Вишняков И.Ф., Цыбанов С. Ж. Молекулярная биология пестивирусов II Вестн. РАСХН.-1996.-№ 3.-С.70−73.
- Волкова М.А. Разработка и применение иммуноферментных тест-систем для определения антител к вирусу ССЯ-76 и оценки качества вируссодержащего сырья: Дис. канд. биол. наук.-Владимир, 1999.-151 с.
- Джупина С.И. Классическая чума свиней. Эпизоотический процесс и его контроль,-М., 2001.-172 с.
- Дудникова Е.К. Разработка и применение ИФА для выявления противоящурных антител в сыворотках крови животных:
- Дис.канд.вет.наук, — Владимир, 1997.-161 с.
- Егоров A.M., Осипов А. П., Дзантиев Б. Б., Гаврилова Е. М. Теория и практика иммуноферментного анализа.-М.: Высшая школа, 1991.-288с.
- Ильясова Г. Х., Юсупов Р. Х. Прямой метод ИФА для выявления антител к вирусу КЧС // Тез.секц. и стенд.сообщ. всесоюз.иммунол.съезда. Сочи. 1517 ноября, 1989.-М., 1989.-Т.1 .-С.217.
- Ильясова Г. Х., Юсупов Р. Х., Барсков В. Г. Индикация вируса классической чумы свиней методом иммуноферментного анализа // Вирусные болезни с.-х. животных: Тез. докл. всерос. науч.-практ. конф.- Владимир, 1995.-С.42.
- Куриннов В.В. Средства и методы дифференциальной лабораторной диагностики классической чумы свиней // Вестн. РАСХН.-1999.-№ 3.-С.55−59.
- Куриннов В.В., Вишняков И. Ф., Хухоров И. Ю. Современные эпизоотические, патогенетические и диагностические особенности классической чумы свиней II Вопр. вет. вирусол., микробиол., эпизоотол.: Матер, науч. конф. ВНИИВВиМ.- Покров, 1992.-Ч.1.-С.75−86.
- Луговская Н.В. Совершенствование методов диагностики инфекционного бронхита кур: Дис.канд. биол.наук. -Владимир, 2001.-142 с.
- Лыска В.М., Куриннов В. В., Вишняков И. Ф. Метод иммунопероксидазного монослоя для обнаружения антител к вирусу КЧС // Вирусные болезни с.-х животных: Тез. докл. всерос. науч.-практ.конф.- Владимир, 1995.-С.45.
- Непоклонов Е.А., Алипер Т. И., Ленева И. А. Методы лабораторной диагностики классической чумы свиней // Вопр. вирусологии.-1998.-№ 4.-С.152−158.
- Непоклонов Е.А., Алипер Т. И., Ленева И. А. Применение моноклональных антител для изучения вируса КЧС // Вопр. вирусологии.-1999.-№ 2.-С.54−60.
- Новиков Б.В., Илькиев Р. П., Семенихин А. Д. Содержание Ig М, G антител, нейтрализующих вирус КЧС в сыворотках крови подсосных свиноматок и поросят // Вопр. вет. вирусол., микробиол., эпизоотол.: Мат.науч.конф. ВНИИВВиМ.-Покров, 1992.-Ч.1.-С.128−129.
- Практическая химия белка / Под ред. А.Дарбре.-М.: Мир.-1989.-621 с.
- Селянинов Ю.О. Оценка иммуногенности рекомбинантного вируса осповакцины экспрессирующего структурные белки вируса КЧС // Акт.вопр.вет.:Тез. докл.1 науч.-практ. конф. факт. вет. мед. НГАУ.-Новосибирск, 1997.-С.75−76.
- Сергеев В.А. Тогавирусы // Вирусные вакцины.-Киев, 1993.-С.292−294.
- Собко А.И., Прискока В. А., Синицын В. А., Кирилов В. И. Метод иммуноферментного анализа для диагностики классической чумы свиней // 36. Стат. наук-практ. конф.: Збереженюто молодняка с/г тварин-запорука розвитку твариннцтво Укражи.-Харьков, 1994.-С.61−62.
- Сюрин В.Н., Самуйленко А. Я., Соловьев Б. В., Фомина Н. В. Чума свиней // Вирусные болезни животных.-М., 1998.-С.111−135.
- Хухоров И.Ю., Куриннов В. В., Вишняков И. Ф. Оценка поствакцинального иммунитета против классической чумы свиней в условиях свиноводческих хозяйств // Вопр. вет. вирусол., микробиол., эпизоотол.:Матер, науч. конф. ВНИИВВиМ Покров, 1992.-Ч.1.-С.93−99.
- Хухоров И.Ю., Вишняков И. Ф., Лыска В. М., Трапезникова Т. М. Реакция нейтрализации флюоресцирующих бляшек при диагностике классической чумы свиней II Ветеринария.-1991 .-№ 6.-С.26−28.
- Цибезов В.В., Богданова B.C., Забережный А. Д., и др. Применение рекомбинантного белка Е2 вируса классической чумы свиней для иммунизации животных // Вопр. вирусологии.-2000.-№ 2.-С.36−41.
- Цыбанов С.Ж., Куриннов В. В., Вишняков И. Ф., Семенихин А. Л. Современные достижения в изучении пестивирусов // Ветеринария.-1995.-№ 3.-С.14−18.
- ЗЗ.Чермашенцев В. И., Попов В. И. Динамика колострального иммунитета против классической чумы у подсосных поросят // Вопр. вет. вирусол., микробиол., эпизоотол.:Матер.науч. конф. ВНИИВВиМ.-Покров, 1992.-С.82−85.
- Afshar A. Application of peroxidase labelled antibody assays for detection of porcine IgG antibodies to hog cholera and bovine viral diarrhea viruses // J.Virol. Meth.-1989 Vol.23,№ 3.- P.253−262.
- Bouma A., De Smit A.J., De Kluijver E.P. et. al. Efficacy and stability of a subunit based on glycoprotein E2 of classical swine fever virus // Vet. Microbiol. -1999.-Vol.66.-P.101−114.
- Bouma A., De Smit A.J., De Jong. et. al. Determination of the onset of the herd-immunity induced by E2 sub-unit vaccine aganist classical swine fever virus // Vaccine .-2000.-Vol.18, — P. 1374−1381.
- Bruschke C.J., Moormann R.J., van Oirschot J.T., van Rijn P.A. A subunit vaccine based on glycoprotein E2 of bovine virus induces fetal protection in sheep against homologous challenge // Vaccine.-1997.-Vol.15.-P. 1940−1945.
- Buonavoglia C. Falcone E., Pestalozza S. et. al. A rapid serum neutralization test in microplates for the detection of antibodies to hog cholera virus // J. Virol. Meth.-1989.-Vol.23, № 1 .-P.77−79.
- Carbrey E.A. Diagnostic Procedures // Classical Swine Fever and Related Virllnfections.-Boston, 1988.-P.99−114.
- ClavijoA., Zhou E.-M., Vydelingum S., Heskert R. Development and evaluation of a novel antigen capture assay for the detection of classical swine fever virus antigens // Vet. Microbiol.-1998.-Vol.60.-P.155−168.
- Collet H.C. Molecular genetics of pestiviruses // Comp.lmmun. Microbiol.-Infect. Dis.- 1992. -Vol.15. P. 145−154.
- Colijn E.O., Bloemraad M., Wensvoort G. An improved ELISA for the detection of serum antibodies directed aganist classical swine fever virus // Vet. Microbiol.-1997.-Vol.59.-P. 15−25.
- Dekker A., Wensvoort G., Terpstra C. Sex antigenic groups within the genus pestivirus as identified by cross- neutralization assays // Vet. Microbiol.-1995.-Vol.47.-P. 34−56.
- Depner K.R., Muller Т., Lange E. et. al. Tpansient CSFV infection in wild boar piglets partially protected by meternal antibodies // Dtsch tierarztl Wschr.-2000.-Bd. 107.-S.66−68.
- Deregt D., Bolin S.R., Heckert R.A., Loewen K.G. Monoclonal antibodies to bovine viral diarrhea virus: cross-reactivities to field isolates and hog cholera virus strains // Canad.J.Vet. Res.-1994.-Vol.58, № 1.- P.71−74.
- Dorset M. De Schweinitz E.A. New facts concerning the etiology of hog cholera // U.S. Bur. Anim. Ind. Ann. Rep.-1984 -V.20.-P.157−162.
- De Smit A.J., Eble P.L., De Kluijver E.P. et. al. Laboratory decision-making during the classical swine fever epidemic of 1997−1998 in the Netherlands // Prev. Vet. Med.-1999.-Vol.42, №¾.- P. 185−199.
- De Smit A.J., Eble P.L., De Kluijver E.P. et.al. Laboratory experience during the CSFV epizootic in the Netherlands // Vet. Microbiol.-2000.-Vol.73, № 2/3.-P. 197−208.
- De Smit A.J., Van Gennip H.G., Miedema G.K. et. al. Recombinant (CSF) virus derived from retain their avirulent and immunogenic characteristies // Vaccine-2000.- Vol.18.-P.2351 -2358.
- Edwards S., Moennig V., Wensvoort G. The development of an international reference panel of monoclonal antibodies for the differentiation of hog cholera virus from other pestivirusess // Vet.Microbiol.-1991 .-V.29.-P. 101−108.
- Edwards S. Survival and inactivation of classical swine fever virus // Vet. Microbiol-2000.- Vol.73, № 2/3.- P.175−181.
- Edwards S., Fukusho A., Lefevre P.C. et. al. Classical swine fever: the global situation // Vet. Microbiol.- 2000.-Vol.73, № 2/3.- P.103−119.
- Elber A.R., Stegeman A., Moser H. et. al. The classical swine fever epidemic 1997−1998 in Netherlands: descriotive epidemiology // Prev. Vet. Med.-1999.-Vol.42, №¾.- P. 157−184.
- Einzmann P.-J. Molecular biology of the virus // Classical Swine Fever and Related Virul lnfections.-Boston, 1983.- P.81−98.
- Erickson G. Hog cholera // Vet. Diagn. Virology / Ed. A.E. Castro, W.P. Heushele.-St. Louis, 1992.-P.228−230.
- Gay В., Chappuis C., Coulibaly C.O.Z., et.al. Comparative analysis of monoclonal antibodies against pestiviruses: report of an international workshop // Vet. Microbiol.-1989.-V.20.-P. 123−129.
- Greiser-Wilke l., Moenning V., Coulibaly C.O.Z. et.al. Identification of conserved epitopes on a hog cholera virus protein II Arch. Virol.-1990.-Vol.11, №¾.-P.213−225.
- Hammond J.M., McCoy R.J., Jansen E.S. et.al. Vaccination with a singl dose of a recombinant porcine adenovirus expressing the classical swine fever virus gp55(E2) gene protects pigs against classical swine fever // Vaccine.-2000.-Vol.18.- P.1040−1050.
- Harkness J.W. Classical swine fever and its diagnosis: A current view II Vet. Rec.-1985.-Vol.116, № 11. P.288−293.
- Hayhow C.S. Development of antigen capture ELISA for detection of Enterovirous in commercial turkeys // Avian Dis.-1993.-Vol.37. P.375−379.
- Have P. Detection of antibodies against swine fever virus by enzyme-linked immunosorbent assay ELISA //Acta Vet. Scand.-1984.-Vol.25.-P.462−465.
- Hog cholera (Classical swine fever) II OIE. Manual of Standarts for Diagnostic Tests and Vaccines. 2-nd ed.-Paris, 1992.-P. 109−122.
- Horzinek M.C., Pestiviruses taxonomic perspectives // Arch. Virol.-1991.-V.3.-P.1−5. '
- Hess R.G., Coulibaly C.O.Z., Greiser-Wilke I. et.al. Identification of hog cholera viral isolates by use of monoclonal antibodies to pestiviruses // Vet. Microbiol. 1988.-Vol.16,№ 4.-P.315−321.
- Hulst M.M., WestraD.F., WensvoortG., Moorman R.J.M. Glycoprotein E1 of hog cholera virus expressed in insect cells protect swine from hog cholera // J. Virol.-1993.-Vol.67.-P.5435−5442.
- Jensen M. Detection of antibodies aganist hog cholera virus and bovine diarrhea virus in porcine serum. A comparative examination using CF, PLA, NPLA assay
- Acta. Vet. Scand.-1981.-Vol.22.-P.85−98.
- KadenV., Steyer H., Strebelow G. et.al. Detection of low virulent CSFV in bload of experimentally infected animals: comparison of different methods //Acta. Virol.- 1999. -Vol.46,№ 6.-P.373−380.
- Koenen F., Gay A., Leferbavre J. et al. Evalution of the complex trapping blocking-ELISA in serological survey during the Belgian classical swine fever epizootic in 1990 //Vet. Rec.-1992.-Vol.131.-P.396.
- Konig M., LengsfeldT., Pauly T. et.al. Classical swine fever virus: independent induction of protective immunity by two structural glycoprotein // J. Virol.-1995.-Vol.69.-P.6479−6486.
- Kosmidou A., Buttner M., Meyers G. Isolation and characterization of cytopathogenic classical swine fever virus (CSFV) // Arch. Virol.-1998. -Vol. 143.-P. 1295−1309.
- Kosmidou A, Ahl R., Weiland E. Differentiation of classical swine fever virus (CSFV) strains using monoclonal antibodies against structural glycoproteins // Vet.Microbiol.-1995.-V.47.-P.111−118.
- Kumagai Т., Shimizu Т., Ikeda S. etal. A new in vitro method (END) for detection and measurements of hog cholera virus and its antibody by means of effect of HCV on Newcastle diseases // J. lmmunol.-1961.-Vol.87,№ 3.-P.245−256
- Laevens H., Koenen F., Deluyker H., De Kruif A. Experimental infection of slaughter pigs with classical swine fever virus: transmission of the virus, course of the disease and antibody response // Vet. Rec.-1999.- Vol.145, № 9.-P.243−248.
- Lai S.S., Ho W.G. Application of monoclonal antibody on DOT immunoassay for the detection of hog cholera viral antigens and antibodies // J.Chin. Soc. Vet. Sci.-1989.-Vol. 15, № 1.4P.19−25.
- Laude H. Hog cholera virus: Art and fact //Ann. Rech. Vet.-1987.-Vol. 18, № 2.-P.127−138.
- LeforbanY., Edwards S., Ibata G. etal. A blocking ELISA to differentiale hog cholera virus antibody in pig sera from those due to other pestiviruses //Ann. Rech. Vet.-1990.-Vol.21.-P.119−129.
- Liess В. Serology // Classical Swine Fever and Related Viral Infections. -Boston, 1988.-P. 115−142.
- Loken Т., Krogsrud J., Larsen I.L. Pestivirus infections in Norway serological investigation in cattle, sheep and pigs //Acta. Vet. Scand.-1991.-Vol.32, № 1.-P.27−34.
- Lowing P., Ibata G., Needham J., Paton D. Classical swine fever virus diversity and evoluation // J.Gen. Virol.-1996.-Vol.77, V.6.-P.1311−1321.
- Mc Claren M.L., Lillywhite J.E., Andrew C.S. Indirect enzyme linkes immunosorbent assay (ELISA): Practical aspects of standartization and quality control // Med. Lab. Sci.-1981.-Vol.38.-P.245−251.
- Meyers G., Sterk R., Tautz N. et.al. Molecular biology of Pestiviruses and comparison with HCV // Viral Hepailis and River Disease.-Tokyo ets, 1994.- P. 106−110.
- Mittelholezer C., Moser C., Tratschin J.D., Hofmann M.A. Porcine cells persistenly infected with classical swine fever virus protected from pestivirus induced cytopathiс effect // J.Gen. Virol.-1998.-Vol.79,№ 12.-P.2981−2987.
- Moenning V. Characteristics of the virus // Classical Swine Fever and Relatedlnfections7 E3^B7Tiess.-Lancaster, 1988.-P.55−80.
- Moenning V. Pestiviruses: review // Vet. Microbiol.- 1990.-Vol.23.-P.34−35.
- Moening V., Schaegemon G., Dahle J., et.al. A new approach for the diagnosis of hog cholera // Dtsch. tierarztl. Wschr.-1990.-Bd.97.-S.91−93.
- Moening V. Introduction to classical swine fever: virus, disease and control policy // Vet. Microbiol.-2000.-Vol.73,№ 2/3.-P.93−102.
- Moormann R.J., Bouma A., Kramps J.A. et.al. Development of a classical swine fever virus subunit marker vaccine and companion diagnostic test // Vet. Microbiol.-2000.-Vol.73.-P.209−219.
- Moormann R.J., Warmerdam P., Van der Meer B.et. al. Molecular cloning and nucleotide sequence of hog cholera virus strain Brescia and mapping of the genome protein E1 //Virology.-1990.-Vol.177.-P. 184−198.
- Moser C., Ruggli N., Tratschin J.D., Hofman M.A. Detection antibodies against classical swine fever virus in swine sera by indirect ELISA using recombinant envelope glycoprotein E2 // Vet. Microbiol.-1996.-Vol.51.-P.41−53.
- Muller V. A., Depner K.P., Liess B. Evalution of a gp55(E2) recombinant-based ELISA for the detection of antibodies indused by classical swine fever virus // Dtsch. tierarztl. Wschr.-1996.-Bd.103.-S.451−453.
- Paton D.J., Ibata G., Edwarda S., Wensvoort G. An ELISA detecting antibody to conserved pestivirus epitopes // J.Virol. Meth.-1991.- Vol.31, № 2/3.-P.315−324.
- Paton D.J., Sands J.J., Lowings J.P. et al. A proposed division of the pestivirus genus using monoclonal antibodies, supported by cross-neutralization assays and genetic sequencing//Vet.Res.-1995.-Vol.26.-P.92−109.
- Pearson J. B. Hog cholera diagnostic techniques II Compar. Immunol. Microbiol. Infect. Dis.-1992.-Vol. 15, № 3.-P.213−219.
- Penzes Z., Meszaros I. Comparison of different computational methods for measuring antibodyies to avian Infectious bronchitis virus in singl serum dilution //Acta. Vet. Hungarica.-1992.-Vol.40.-P.311−321.
- Rivera V.B., Gualandi G.L., Ferrari M. et al. The lapinized Chinese (LC) strain of hog cholera virus (HCV) protects pigs aganist experimental infection with-virulent HCV// Microbiol. 1990.-Vol.13,№ 3.- P. 185−189.
- Van Rijn P.A., Miedema G.K.W., Wensvoort G. et al. Antigenic structure of hog cholera virus // J. Virol. -1999.-Vol.68.-P.3934−3942.
- Van Rijn P.A., Bossers Д., Wensvoort G., Moorman R.J.M. Classical Swine fever virus (CSFV) envelope glycoprotein E2 contaning one structural unit protect pigs from lethal CSFV challenge// J.Gen. Virol.-1996.-Vol.77.-P.2737−2745.
- Ruggli N., Moser C., Hofman M.A., Tratschin J.D. Expression of recombinant glycosylated and nonglycosylated protein E2 of classical swinefever virus for diagnostic purposes // 3 Cong. Europ. Soc. Vet. Virol.-Interiaken, Switzerland, 1994.-P.4−14.
- Rumenapf Т., MeyersG., Stark R., Thiel H.-J. Hog cholera virus characterization of specific antiserum and identification of cDNA clones // Virol.- 1989.- Vol.171 ,№ 1.-P.18−27.
- Rumenapf Т., MeyersG., Stark R., Thiel H-J. Structural protein of hog cholera virus expressed by vaccinia virus: further characterization and induction of protective immunity// J. Virol.-1991.-Vol.65.-P.589−597.
- Rumenapf Т., MeyersG., Stark R., Thiel H-J. Molecular characterization of hog cholera virus // Arch. Virol.-1991.- Suppl.3.-P.7−18.
- Rumenapf Т., Weiland E., Ahl R., Stark R. et.al. A second envelop glycoprotein mediates neutralization of a pestiviruses, hog cholera virus // J.Virol.-1992.-Vol.66.-P.3677−3682.
- Saunders G.C. Development and evaluated of an enzyme labeled test for the rapid detection of hog cholera antibodies // Am.J.Vet. Res.-1977.-Vol.38,№ 1.-P.21−25.
- Schagemann G., Greiser-Wilkel., LiessB. A sensitive enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) for serological detection of antibodies aganist European hog cholera virus II Tierarztl. Prax.-1991.-Bd.19.-S.54−57.
- Schrijver R.S., Kramps J.A. Critical factors affecting the diagnostic reliability of enzyme-linked immunosorbent assay formats // Rev. Sci. Tech. Off Int Epiz.-1998.-Vol. 17.-P.550−561.
- Shannon A.D., Morrissy C., et al. Detection of hog cholera virus antigens^ irTexfDerimentally infected pigs using an antigen capture ELISA // Vet. Microbiol.-1993.-Vol.34.-P.233−248.
- Snyder D.B., Marquardt W.W., Mallison E.T., RussecE. Rapid serological profiling by enzyme linked immunosorbent assay. 2. Comparison of computation methods for measuring antibody titers in a singl serum dilution // Avian Dis.-1982.-Vol.27.-P.474−484.
- Stair E.L., Rhodes M.B., Aiken J.M. et.al. A hog cholera virus fluorescence antibody system. Its potential use in stady of embryonic infection II Proc. Soc. Exptl. Biol. Med.-1963.-P.113.
- Stark R., Rumenapf Т., Meyers G., Thiel H.-J. Genomic localization of hog cholera virus glycoproteins // Virology.-1990.-Vol.174,№ 1.- P.286−289.
- Terpstra C. Epizootiology of hog cholera // Classical Swine Fever and Related Viral Infections. -Boston, 1988.-P.201−216.
- Terpstra C., Bloemroad M., GieLkens A.L.J. The neutralizing peroxidase-linked assay for detection of antibody against swine fever virus //Vet. Microbiol.- 1984.-Vol.9.-P. 113−120.
- Terpstra C., Wensvoort G. Influence of the vaccination regime on the herd immune response for swine fever// Vet. Microbiol.- 1987.-Vol.13,№ 2.-P.143−151.
- Terpstra C., Wensvoort G. Natural infection of pigs with bovine viral diarrhoea virus associated with signs resembling swine fever // Res. Vet. Sci.- 1988.-Vol.45, № 2.-P.137−142.
- Terpstra C., Wensvoort G. The protective value of vaccine induced neutralizing antibody titres in swine fever // Vet. Microbiol.-1988.-Vol.16, № 2.-P. 123−128.
- Thiel H.-J., Stark R., Rumenapf Т., Meyers G. Hog cholera virus: molecular composition of virions from a pestivirus // J.Virol.-1991 .-Vol.65.-P.4705−4712.
- Trautwein G. Patology and pathogenesis of the disease // Classical Swine Fever and Related Viral Infections.-Boston, 1988.-P.27−54.
- Vanderhallen H., Mittelhozer C., Hofmann M.A., Koenen F. Classical swine fever virus is genetically stable in vitro and in vivo // Arch. ViroL-1999.-Vol.144.- P.1669−1677f
- Vannier P., Colcanop M., Camera R. et. al. Study of the origin of an epizootic of classical swine fever//J.Vet. Med. Sci.B.-1986.-Bd.33,№ 4.-S.294−302.
- Van Oirshot G.T. Description of the virus infection // Classical Swine Fever and Related Viral Infections.-Boston, 1988.-P. 1−25.
- Van Oirshot G.T. Effect of infections with swine fever virus an immunefunction.3. Antibody response to lipopolysaccharide and sheep red blood cells II Vet.Microbiol.-1983.-Vol.8,№ 1.-P.97−103.
- Van Oirshot J.T., De Jong D., Huffels N.D. Effect of infections with swine fever virus on immune functions. 2. Lymphocyte subpopulations // Vet. Microbiol. -1983.-Vol.8,№ 1.- P.81−95.
- Van Oirshot J.T., Terpstra G. Hog cholera virus // Virus Infections of Porcines.-Amsterdam, 1989.-P. 113−130.
- Van Oirshot G.T. Hog cholera // Diseases of Swine.- Ames, Iowa, 1994 -P.274 -285.
- Van Oirshot J.T. Diva vaccines that reduce virus transmission II J. Biotechnol.-1999.-Vol.73.-P. 195−205.
- Weiland E., Ahl R., Stark R. etal. A second envelop glycoprotein mediates neutralization of a pestivirus, hog cholera virus II J. Virol.-1992. -Vol.66.-P.3677- 3682.
- Weiland E., Stark R., Hass B. et al. Pestivirus glycoprotein wich induces neutralizing antibodies forms part of a disulfide linked heterodimer // J. Virol. -1990.-Vol.64,№ 8.- P.3563−3569.
- Weiland F., Weiland E., Unger G. et al. Localization of pestivirus envelope proteins E (rns) and E2 at the cell surface and on hog cholera virus with monoclonal antibodies // J. Gen. Virol.-1999.-Vol.80.-P. 1157- 1165.
- Wensvoort G. Topografical and functional mapping of the epitopes on Hog cholera virus with monoclonal antibodies // J.Gen.Virol.-1989.-Vol.70.-P.2865−2876.
- Wensvoort G., Bloemroad M., Terpstra С. An enzyme immunoassay monoclonal antibodies and detecting specifically antibodies to classical swine fever virus // Vet. Microbiol.-1988.-Vol.17.-P.129−140.
- Wensvoort G., Boonstra J., Bodzinger B.G. Immunoaffiniti purification and characterization of the envelope protein E1 of hog cholera virus// J.Gen.Virol.-1990.-Vol.71 ,№ 3.-P.531−540.
- Wensvoort G., Terpstra C., Coonstra J. et al. Production of monoclonal antibodies against swine fever virus and their Use in laboratory diagnosis //Vet. Microbiol.-1986.-Vol.12,№ 2.-P. 101−108.
- WensvoortG., TerpstraC., de Kluijver E.P. et al. Antigenic differentiation of pestivirus strains with monoclonal antibodies against hog cholera virus // Vet. Microbiol.- 1989.-Vol.21, № 1.-P.9−20.
- Wong M.L., Liu J.J., Chang Y., Chang T.J. Expression of the glycoprotein E2 of the classical swine fever virus in E. coli // J. Vet. Med. Sci.-1998.-Vol.60.-P.541−544.
- Zegers J.J.W., Horzinek M.C. Some properties of bovine viral diarrhoea virus and their RNAs // Commis. Europ. Commun. EUR 5904 En.-1977.-P.52−57.
- Zhou Y., Moenning V., Coulibaly C.O.Z. et al Differentiation of hog cholera and bovine virus diarrhoea viruses in pig using monoclonal antibodies // J. Vet. Med 1989.-Vol.36,№ 1.-P. 76−80.
- Van Zijl M., Wensvoort G., Keuyver E., et al. Live Attenuated Pseudorabies Virus Expressing Envelope Glycoprotein E2 of Hog Cholera Virus Protected Swine Against both Pseudorabies and Hog Cholera // J.Virol. 1991.-Vol.65.-P.2761−2765.к о Й И 1
- МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА И ПРОДОВОЛЬСТВИЯ РФ
- ВСЕРОССИЙСКИЙ НАУЧНО-ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИНСТИТУТ ЗАЩИТЫ животных
- СОГЛАСОВАНО Заместитель’Ди^ек^ора по НИР В. М. Захаров 2000 г.1. Статута А. Гусев 2000 г.1. МЕТОДИКА
- ВЫЯВЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К ВИРУСУ КЛАССИЧЕСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ В НЕПРЯМОМ ВАРИАНТЕ ИММУНОФЕРМЕНТИОГО АНАЛИЗА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ РЕКОМБИНАНТНОГО БЕЛКА gp 55(Е2)1. Авторы:
- О.П.Бьядовская, вед. биол. лаб. № 13 О. Г. Андреева, главн.техн. лаб. № 13 С. В. Безбородова, м.и.с. лаб. № 13 В. Ф. Ковалишин, с.н.с. лаб. № 13 В. Г. Андреев, зав.лаб. № 13
- Рассмотрена и одобрена Ученым советом ВНИИЗЖ «О 40 2000г. протокол № 9§ 8 «1от 27 сентября 2000 г. г. Владимир
- О проведении комиссионной проверки методики выявления антител к вирусуклассической чумы свиней в непрямом варианте иммуноферментного анализа сиспользованием рекомбинантного белка gp55(E2).
- Составлен комиссией в составе:
- Байбиков Т.З.- председатель комиссии, заведующий лабораторией, доктор ветеринарных наук, Андреев В.Г.- заведующий лабораторией, кандидат биологических наук,
- Егорова А.И. старший научный сотрудник, кандидат ветеринарных--------------------------наук,------------
- Камалова Н.Е.- старший научный сотрудник, кандидат ветеринарных наук,
- Андреева О.Г.- главный технолог, Бьядовская О.П.- ведущий биолог, Канылина А.В.- ветврач.
- Результаты качественной оценки сывороток крови свиней, исследованных в непямом варианте ИФА сравнивали с результатами референтного теста-реакцией нейтрализации (РН) и коммерческого теста Chekit-CSF-Sero (Бг.ВоттеН, Щвейцария) .
- Результаты исследований сывороток крови свиней на наличие антител к вирусу классической чумы свиней в непрямом варианте ИФА, в реакции нейтрализации и с помощью коммерческого теста Chekit-CSF-Sero (Бг.ВоттеН, Щвейцария) представлены в таблице 1.