Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Применение биологических днк-микрочипов в этиологической верификации острых кишечных инфекций бактериальной природы

Диссертация: Применение биологических днк-микрочипов в этиологической верификации острых кишечных инфекций бактериальной природы
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В последние десятилетия в диагностике инфекционных болезней, как и в других областях медицины все более широко применяется метод полимеразной цепнойреакции (ПЦР). В отечественной литературе уже имеется ряд сообщений о преимуществе метода полимеразной цепной реакции в этиологической расшифровке ОКИ, в частности, вирусных диарей. Особенно перспективными в диагностике ОКИ являются методы, основанные… Читать ещё >

Применение биологических днк-микрочипов в этиологической верификации острых кишечных инфекций бактериальной природы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СПИСОК УСЛОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ
  • ВВЕДЕНИЕ
  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. СОВРЕМЕННАЯ ЭТИОЛОГИЧЕСКАЯ И
  • ЭПИДЕМИОЛОГИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА. ОКИ
  • БАКТЕРИАЛЬНОЙ ПРИРОДЫ
    • 1. 2. СОВРЕМЕННЫЕ МЕТОДЫ ЭТИОЛОГИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИКИ ОКИ
    • 1. 3. БИОЛОГИЧЕСКИЕ МИКРОЧИПЫ: ОСНОВНЫЕ СВЕДЕНИЯ, ПРИНЦИП РАБОТЫ, ПРИМЕНЕНИЕ В
  • ПРАКТИЧЕСКОЙ МЕДИЦИНЕ
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • ГЛАВА 3. КЛИНИКО-ЛАБОРАТОРНАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА БОЛЬНЫХ ОКИ
  • ГЛАВА 4. КЛИНИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ПЦР В ВЫЯВЛЕНИИ ПАТОГЕННЫХ И УСЛОВНО-ПАТОГЕННЫХ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ОКИ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ПРИРОДЫ
    • 4. 1. Общая сравнительная характеристика бактериологического и ПЦР исследований в выявлении бактериальных возбудителей
  • ОКИ
    • 4. 2. Клиническая оценка ПЦР исследования в диагностике гастроинтестинальной формы сальмонеллеза (ГИФС)
    • 4. 3. Клиническая оценка ПЦР исследования в диагностике острой дизентерии (ОД)
    • 4. 4. Клинико-лабораторная характеристика больных с уточненным методом ПЦР кампилобактериозом
    • 4. 3. Клинико-лабораторная характеристика больных с выявленными методом ПЦР условно-патогенными кишечными бактериями
  • ГЛАВА 5. ХАРАКТЕРИСТИКА ДНК — МИКРОЧИПОВ ДЛЯ
  • ИДЕНТИФИКАЦИИ БАКТЕРИЙ КИШЕЧНОЙ ГРУППЫ
    • 5. 1. Разработка мультипраймерной ПЦР — системы для идентификации патогенных и условно патогенных кишечных бактерий
    • 5. 2. Оптимизация условий гибридизации
    • 5. 2. Клиническая апробация тест-системы с использованием биологических микрочипов в этиологической верификации
  • ОКИ

АКТУАЛЬНОСТЬ ПРОБЛЕМЫ.

Острые кишечные инфекции (ОКИ) остаются одними из самых актуальных инфекционных заболеваний в связи с повсеместной распространенностью и развитием у части больных состояний, представляющих непосредственную угрозу жизни [92, 94, 194, 203]. Не только в развивающихся, но и в индустриально развитых странах, несмотря на определенные успехи в диагностике и лечении, проблема ОКИ стоит достаточно остро [3, 42, 52, 71, 106, 127, 203]. Веским аргументом, подтверждающим значимость этой проблемы в патологии человека, являются наблюдаемые в настоящее время качественные изменения в структуре и характере течения острых кишечных заболеваний [106, 156, 202]. Спектр часто выявляемых при ОКИ патогенных кишечных микроорганизмов заметно расширился как за счет вирусных, так и бактериальных возбудителей. Во многих странах наряду с сальмонеллами, шигеллами, ротавирусами все чаще этиологическим фактором являются энтерогеморрагические штаммы Escherichia coli, Campylobacter jejuni, возросла этиологическая роль условнопатогенной микрофлоры, в частности, бактерий рода Proteus, Klebsiella и др. в развитии ОКИ [87, 97, 109, 116, 118, 120, 166]. Подобные эволюционные изменения в структуре ОКИ требуют совершенствования их лабораторной диагностики с использованием более новых и высокочувствительных диагностических методов. Кроме того, необходимо отметить, что лабораторная диагностика возбудителей является весьма важным аспектом не только эпидемиологического мониторинга, но и прогноза течения и вероятности проявления отдаленных последствий ОКИ иммунодефицитного, аллергического и аутоиммунного характера [135, 209]. В широкой практике отечественных медицинских учреждений возможности идентификации возбудителей ОКИ весьма ограничены. В соответствии с официальной статистикой федерального Центра Госсанэпиднадзора РФ, в период с 2000 по 2004 год регистрировалось до 65−75% ОКИ с неустановленной этиологией. В 2006 г. заболеваемость ОКИ неустановленной этиологии составила 306,0 на 100 000 населения [42].

Однако по данным большинства зарубежных публикаций эффективность этиологической верификации ОКИ намного более высокая [103, 106, 124, 128, 166]. Исходя из приведенных данных, можно прийти к заключению, что существующие в настоящее время рутинные методы диагностики ОКИ в России продолжают нуждаться в совершенствовании.

В последние десятилетия в диагностике инфекционных болезней, как и в других областях медицины все более широко применяется метод полимеразной цепнойреакции (ПЦР). В отечественной литературе уже имеется ряд сообщений о преимуществе метода полимеразной цепной реакции в этиологической расшифровке ОКИ, в частности, вирусных диарей [18, 43, 50, 51]. Особенно перспективными в диагностике ОКИ являются методы, основанные на мультиплексной ПЦР, когда появляется возможность единовременного выявления широкого спектра возбудителей, что существенно сокращает сроки этиологической верификации диагноза. Такие характерные особенности ОКИ, как однотипная клиническая картина заболевания, развитие вспышек с вовлечением большого количества больных приводят к необходимости более широкого использования подобных методов в диагностике ОКИ.

Одним из наиболее быстро развивающихся экспериментальных направлений современной биологии являются биологические микрочипы [34, 35, 38]. Биологические ДНК — чипы предназначены для быстрого секвенирования, то есть определения нуклеотидной последовательности дезоксирибонуклеиновой кислоты в исследуемой пробе, в основе которого лежит принцип гибридизации ее с флюоресцентным олигонуклеотидом. Тип ДНК-микрочипов, так называемые «чипы с низкой плотностью» (low density microarrays), достаточно широко применяются для обнаружения различных инфекционных агентов. Основным достоинством такого подхода является возможность быстрого и одновременного выявления, множества потенциальных патогенов бактериальной и вирусной природы [137]. У нас в стране известны биочипы, выпускаемые ИМБ РАН для диагностики туберкулеза, сибирской язвы и вируса иммунодефицита — HIV [10, 157, 175].

ЦЕЛЬ ИССЛЕДОВАНИЯ.

Целью диссертационной работы явилась, разработка и клиническое применение биологических ДНК — микрочипов в этиологической верификации острых кишечных инфекций бактериальной природы.

ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ.

1. Разработать и оптимизировать методику детекции генетического материалаосновных возбудителей острых кишечных инфекций бактериальной этиологии в копрофильтрате с применением: биологических ДНК-микрочипов.

2. Дать сравнительную характеристику диагностической: эффективности бактериологического и ПЦР методов исследования: в. этиологической расшифровке ОКИ бактериальной: природы.

3. Изучить особенности клинического течения ОКИ у больных в зависимости от метода верификации диагноза.

4. Оценить диагностические возможности детекции бактериальных возбудителей ОКИ с использованием ДНК-микрочипов: на клиническом материале в сопоставлении с результатамиреферентного ПЦР исследования.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА.

Впервые разработана диагностическая ПЦР тест-система для детекции трех патогенных и двух условно-патогенных микроорганизмов бактериальных возбудителей острых кишечных инфекций: Salmonella spp.,.

Shigella spp. и Enteroinvasive Escherichia coli (ElEC), Campylobacter jejuni, Klebsiella pnneumoniae, Proteus mirabilis.

Впервые разработана методика идентификации бактериальных возбудителей острых кишечных инфекций с использованием ДНК-микрочипов.

Клинически обосновано применение биологических микрочипов в диагностике острых кишечных инфекций путем применения метода на копрофильтрате больных острыми кишечными инфекциями различной этиологии.

Дана сравнительная характеристика метода диагностики ОКИ с использованием ДНК-микрочипов с бактериологическим и ПЦР методами диагностики, описаны факторы, влияющие на результативность и информативность различных методов этиологической верификации ОКИ.

При использовании биологических ДНК-микрочипов описаны особенности клинического течения ОКИ при выявлении ассоциаций патогенных кишечных бактерий и условно-патогенных бактерий рода Klebsiella pneumoniae и Proteus mirabilis.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ.

Предложен новый отечественный набор реактивов для диагностики острых кишечных инфекций бактериальной этиологии, который позволяет в течение 12−14 часов протестировать диагностический материал (копрофильтрат) на наличие пяти микроорганизмов — патогенных и условно-патогенных возбудителей ОКИ.

Разработанная мультиплексная ПЦР тест-система позволяет единовременно выявлять в исследуемом материале следующие микроорганизмы: Shigella spp.+ElEC, Salmonella spp., Campylobacter jejuni, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis и не уступает по чувствительности и специфичности применяемым в настоящее время в практике ПЦР тест-системам для идентификации аналогичных возбудителей.

Результаты клинического применения метода позволили показать возможность использования методики на материале, полученном от больных.

Сравнительно невысокая себестоимость, автоматизация и неинвазивность диагностического процесса являются несомненными преимуществами предлагаемого метода олигонуклеотидного биочипа для диагностики ОКИ бактериальной этиологии.

Применение разработанного нами метода может быть рекомендовано при необходимости быстрого и единовременного выявления широкого спектра возбудителей на большом клиническом материале, а также в комплексной диагностике ОКИ наряду с рутинными методами диагностики.

ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

Разработана диагностическая тест-система на основе мультиплексной ПНР для единовременного выявления и идентификации ДНК патогенных и условно-патогенных возбудителей острых кишечных инфекций, а именно Shigella spp.+EIEC, Salmonella spp., Campylobacter jejuni, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis, характеризующаяся высокой специфичностью и чувствительностью, не уступающей специфичности и чувствительности используемых в настоящее время тест-систем для идентификации аналогичных возбудителей.

Разработан биологический ДНК — микрочип для комплексной этиологической верификации ОКИ бактериальной природы.

Информативность бактериологического исследования в этиологической верификации ОКИ достоверно уменьшается при заборе материала после использования антибактериальных препаратов, тогда как информативность метода ПНР после этиотропной терапии достоверно не меняется.

При использовании биологических микрочипов появляется возможность сократить сроки исследования по сравнению с рутинными методами диагностики, выявлять ассоциации микроорганизмов, характерные для острых кишечных инфекций, а также описать особеноости клинического течения при выявлении ассоциаций патогенных и условнопатогенных кишечных бактерий Shigella+Klebsiella, в отличие от моно-инфекцией Shigella.

ВНЕДРЕНИЕ В ПРАКТИКУ.

Разработанная мультиплексная система для идентификации возбудителей ОКИ бактериальной природы с детекцией результатов с использованием биологических ДНК-микрочипов «ММТест-ОКИ-ПЦР-Биочип» успешно прошла первый этап испытаний в диагностической лаборатории НИИ скорой помощи им. Н. В. Склифософского. Материалы работы включены в учебный курс кафедры инфекционных болезней ММА им. И. М. Сеченова и используются в учебном процессе при преподавании соответствующего раздела.

АПРОБАЦИЯ ДИССЕРТАЦИИ.

Основные положения и результаты исследования были обуждены на VIII международном конгрессе «Здоровье и образование в XXI векеконцепции болезней цивилизации» (Москва, РУДН, ноябрь, 2007) — научно-исторической конференции, посвященной 300-летию со дня открытия ГКВГ им. Н. Н. Бурденко «Роль Московской гошпитали в становлении и развитии отечественного государственного больничного дела, медицинского образования и науки№ (Москва, 2007), на научно-практической конференции, посвященной 75-летию кафедры инфекционных болезней РМАПО (Москва, 2008), на научно-практической конференции с международным участием «Актуальные проблемы гастроэнтерологии» (Василенковские чтения), посвященной памяти академика В. Х. Василенко (20 ноября, 2008 г., Москва), а также на научно-практических конференциях кафедры инфекционных болезней и общебольничных конференциях 4 ГКБ. Диссертация апробирована на совместном заседании кафедры инфекционных болезней, лаборатории по изучению токсических и септических состояний ГОУ ВПО ММА им. И. М. Сеченова и лаборатории генной инженерии ГОУ ВПО ММА им. И. М. Сеченова 13 июня 2009 г.

ПУБЛИКАЦИИ.

По теме диссертации опубликовано 9 научных работ.

ВЫВОДЫ.

1. Разработана диагностическая тест-система на основе ДНК-микрочипов для единовременного выявления и идентификации патогенных {Salmonella, Shigella и EIEC, Campylobacter) и условно-патогенных {Klebsiella, Proteus) возбудителей острых кишечных инфекций в копрофильтрате. 2. Оптимизированы условия постановки мультиплексной ПЦР с оригинальными праймерами, позволяющими обеспечить чувствительность и специфичность, не уступающую чувствительности и специфичности используемых в настоящее время ПЦР-тест-систем для идентификации аналогичных возбудителей.

3. Использование метода ПЦР, также, как и метода разработанного на основе мультиплексной ПЦР с использованием ДНК-микрочипа в клинических условиях позволяет повысить процент верификации этиологического диагноза ОКИ с 33,3% до 54,4%.

4. Использование разработанного ДНК-биочипа позволило установить в 9,6% случаев смешанную патологию: Shigella + Klebsiella в 4,1%, Salmonella -^Klebsiella в 2,7% случаев, Campylobacter + Klebsiella в 1,4% случаев, а также единичные случаи ассоциированного выявления Salmonella + Proteus и Shigella + Campylobacter + Klebsiella.

5. Длительность диарейного синдрома в группе больных с микст-инфекцией ShigellasKlebsiella достоверно продолжительнее, чем у больных с моноинфекцией Shigella.

6. Информативность и результативность метода ПЦР, как и разработанного метода с использованием ДНК-микрочипов не изменяется при раннем применении антибактериальной терапии, в отличие от информативности и результативности рутинного бактериологического исследования.

7. В группе больных с ОД, подтвержденной только методом ПЦР достоверно чаще выявляются ассоциации с Klebsiella pneumoniae, чем в группе больных, у которых диагноз был подтвержден и бактериологическим методом.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

Разработан новый отечественный набор — мультиплексная ПЦР тест-система с детекцией результатов с помощью ДНК-микрочипов для диагностики острых кишечных инфекций. Тест-система позволяет в течение 12−14 часов протестировать диагностический материал (копрофильтрат) на наличие пяти микроорганизмов — патогенных и условно-патогенных возбудителей ОКИ {Shigella spp. +ELEC, Salmonella spp., Campylobacter jejuni, Klebsiella pneumoniae, Proteus mirabilis). Чувствительность и специфичность разработанной тест-системы не уступает применяемым в настоящее время в практике ПЦР тест-системам для идентификации аналогичных возбудителей.

Применение разработанного нами метода может быть рекомендовано при необходимости быстрого и единовременного выявления необходимого спектра возбудителей ОКИ на большом клиническом материале, а также в комплексной диагностике ОКИ наряду с рутинными методами диагностики.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Е.В., Афанасьев Е. Н., Тюменцева И. С. Новое в диагностике кампилобактериоза и листериоза. // Вестник Российской военно-медицинской академии. — СПб. — 2006. — Приложение 1(15). — С.221
  2. В., Колчинский А., Лысов Ю., Мирзабеков А. Биологические микрочипы, содержащие иммобилизованные в гидрогеле нуклеиновые кислоты, белки и другие соединения: свойства и приложения в геномике //Мол. биол.- 2002. Т. 36. — С.563−584.
  3. В. М. Факторы патогенности бактерий и их роль в развитии инфекционного процесса. // Журн. микробиол.- 1999. № 5.-С.34−39
  4. В. М. «Острова» патогенности бактерий. // Журн. микробиол, — 2001, — № 4. С.67−74
  5. В. М. Дисбактериоз кишечника как клинико-лабораторный синдром: современное состояние проблемы // В. М. Бондаренко, Т. В. Мацулевич. — М.: ГОЭТАР-Медиа, — 2006. С.304
  6. Л.Е., Ющук Н. Д., Малеев В. В. Диагностика и лечение острых кишечных инфекций. // Эпидемиология и инфекционные болезни. — 1997.- № 4. С.4−6.
  7. А.А., Сичинский Л. А., Дратвин С. А. Возможности лабораторной диагностики инфекций, вызванных бактериями рода Campylobacter. // Журнал микробиологии и эпидемиологии.- 2000.-№ 1.- С.95−103
  8. А.Н. Медицинская статистика: Учебное пособие. М.: ООО «Медицинское информационное агенство». — 2007.- 480 с.
  9. Ю.Грядунов Д., Михайлович В., Носков А., Лапа С., Соболев А., Паньков С., Рубина А., Заседателев А., Мирзабеков А. // Обнаружение Bacillus Anthracis методом мультиплексной ПЦР на олигонуклеотидных биочипах. Докл. Акад. Наук. 2001.- Т. 381. — № 2.- С. 265.
  10. П.Гюлазян Н. М., Белая О. Ф., Малов В. А., Пак С. Г. Клинические и диагностические особенности смешанных острых кишечных инфекций //Международный Евро-Азиатский конгресс по инфекционным болезням. Витебск, Беларусь.- 5−6 июня.- 2008.- С. 130.
  11. А.Н., Шипулин Г. А., Бочкарев Е. Г., Рюмин Д. В. Новейшие технологии в генодиагностике: полимеразная цепная реакция в реальном времени (Real- time PCR). //Вестник последипломного медицинского образования. -2001.- № 3.- С.4−8
  12. Н.Ю., Валишин Д. А., Мавзютов А. Р. Перспектива генетической оценки потенциальной патогенности условно-патогенных энтеробактерий, выделенных при острых кишечных инфекциях. // Клиническая лабораторная диагностика. 2006. — № 9. — С.50−51.
  13. В.Т., Шептулин А. А., Баранская Е. К., Секачева М. И. Рекомендации по обследованию и лечению больных с синдромом острой диареи. // Методическое пособие для врачей.- Москва.- 2002.-С.17
  14. Т.Е., Голутвин И. А., Насикан Н. С., Иванова О. Е., Еремеева Т. П. Применение атомно-силовой микроскопии для детекции кишечных вирусов. // Вопросы вирусологии.- № 6. -2003.- С.66−69
  15. Е.Н. Актуальные аспекты типирования микробов и вирусов. // Материалы V Всероссийской научно практической конференции «Генодиагностика инфекционных болезней», — Москва.- 2004.- Том 2.-С.32−33
  16. Клинико-лабораторная диагностика инфекционных болезней. // Руководство для врачей.- СПб.: Фолиант.- 2001.- С. 273−276.
  17. В.Е. Преимущества метода ПЦР в реальном времени (Real Time PCR). //Сборник тезисов IV Всероссийской научно-практической конференции ««Генодиагностика инфекционных болезней» Москва.-2002.-С. 182−185
  18. . Мюллис. Необычная история о том, как родилась полимеразная цепная реакция. //В мире науки (Scientific American) Июнь № 6.-1990- Ст.Петербург.- 2006
  19. Ю. В. Дисбактериоз кишечника (клиника, диагностика, лечение): руководство для врачей / Ю. В. Лобзин, В. Г. Макарова, Е. Р. Корвякова, С. М. Захаренко. — СПб.: ООО «Издательство ФОЛИАНТ».- 2006.- 256с.
  20. В.И., Шахмарданов М. З., Корнилова И. И. и соавт. Шигеллёз Флекснера (клиника, диагностика, лечение). // Методические рекомендации.- Москва.- 2000.-22с.
  21. А.Р., Фиалкина С. В., Бондаренко В. М. «Острова» патогенности условно-патогенных энтеробактерий //Журн. микробиол.-2002.- № 6.- С.5−9.
  22. В. А. Горобченко А. Н., Дмитриева Л. Н. Острые инфекционные диарейные заболевания: вопросы терапии // Лечащий врач.- 2007.- № 5.-С.67−72.
  23. Медицинские лабораторные технологии // под ред. А. И. Карпищенко.-СПб.: Интермедика.- 2002, — Т.2.- 600 с.
  24. Л.Н., Гурьева О. В., Рожнова С. Ш. Эволюция лекарственной резистентности Salmonella enteritidis, выделенных от детей. //Эпидемиол. и инфекц. Болезни.- 2008.- № 2.- С.44−47.
  25. А.Д. Биочипы в биологии и медицине. //Вестник Российской Академии наук. 2003.- Т.73.- № 5.- С.412
  26. А.Д. с соавт.- 2004.- Патент РФ № 2 175 972.
  27. В.М., Наседкина Т. В., Рубина А. Ю., Чечеткин В. Р., Прокопенко Д. В. Заседателев А.С. Биочипы для медицинской диагностики. // Лабораторная диагностика России 2007/2008: Справочник. С-Пб.:Человек.- 2007.- с.43−46
  28. Молекулярная клиническая диагностика. //Методы: пер. с англ. под ред. С. Херрингтона и<�Дж. Макги. -М.: Мир.- 1999.-558с.
  29. Пак С. Г. Инфекционные болезни: взгляд через призму времени (Актовая речь). М.: Издание ГОУ ВПО ММА им. И. М. Сеченова.-2005. -44 с.
  30. Пак С.Г., Пальцев М. А., Турьянов М. Х. Сальмонеллёз. М.: Медицина.- 1986.- 304 с.
  31. М.А. Фундаментальные науки и развитие молекулярной медицины. // Молекулярная медицина.- 2003.- № 1.- С.4−11
  32. Письмо департамента Государственного Санитарно-Эпидемиологического Надзора от 16 апреля 2004 г. N 1100/1067−04−113 «О мерах по совершенствованию эпиднадзора за кампилобактериозами».
  33. Письмо Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав ¦ потребителей и благополучия человека от 18 июня 2008 года № 01/63 558−32 «Об улучшении эпидемиологического надзора за сальмонеллезами в Российской Федерации».
  34. А.Т., Мухина А. А. Шипулин Г. А., Кузьмина В. Н. и соавт. Изучение этиологии острых кишечных инфекций у детей, госпитализированных в инфекционные отделения стационаров Москвы. // Инфекционные болезни.- 2004.- Том 2.- № 4.- С. 85−91.
  35. А.Т., Мухина А. А., Шипулин Г. А., Малеев В. В. Калицивирусная инфекция. //Инфекционные болезни, — 2004.- Т.2.- № 2.-С.64−73
  36. А. Т., Фенске Е. Б., Абрамычева Н. Ю., Шипулин Г. А. и др. Сезонность и возрастная структура заболеваемости острымикишечными инфекциями на территории РФ //Терапевтический архив. -2007. -№ 11. -С. 10−16
  37. O.K. Медицинская микробиология. // Под редакцией В. М. Покровского. -2 изд., испр, — М.: ГОЭТАР-МЕД.-2004.- 768 с.
  38. O.K., Федоров Р. В. Энтеробактерии: руководство для врачей. // М.: ГЭОТАР -Медиа- 2007.- 720 с.
  39. В.И., Онищенко Г. Г., Черкасский Б. Л. Эволюция инфекционных болезней в России в XX веке. //М.: Медицина.- 2003.-664с.
  40. В.И., Ющук Н. Д. Бактериальная дизентерия. М.: ' Медицина.- 1994.- 256 с.
  41. Г., Трякина И. Энтеровирусные инфекции. //Мед. газ. 2007. -№ 49. — С. 8−9.
  42. Е.С., Пальцев М. А. История и современное состояние молекулярной диагностики. //Молекулярная медицина.- 2006.- № 4.-С.13−25
  43. В.И. Этиологическая структура и экологическая классификация острых кишечных инфекций // Эпидемиология* и инфекционные болезни. 1997. — № 6. — С.8−9.
  44. С.В. Микроорганизмы семейства Enterobacteriaceae: клиническое значение и этиотропная терапия. Consilium Medicum.-2004.- Том.6.- № 1.-С.78−80
  45. К.А. Значение определения генов инвазивности, шигоподобных и энтеротоксинов методом ПЦР для клиники идиагностики острой дизентерии. //Автореф., дисс. канд. мед. н. М.-2003.
  46. Е.А., Шляпников Ю. М., Грановский И. Э., Афанасьева, Г.В., Гаврюшкин А. В., Белецкий И. П. Биологические микрочипы в медицине. Лабораторная диагностика России 2007/2008: Ежегодный справочник. //СпБ.: Человек.-2007, — С.43−46
  47. Е.П. Ошибки в диагностике инфекционных болезней: Монография. Изд. 4-е, перераб., доп. //М.: Медицина.- 2001.- С. 27.
  48. Е.П., Беляева Т. В., Осипова Г. И. Клиника, диагностика и терапия дизентерии. //Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии, колопроктологии.-1997.- № 5.- С.60−66.
  49. В. Биохимия и молекулярная биология. Пер. с англ. // М.:
  50. МАИК «Наука/Интерпериодика». — 2002.- 446с. 69. Эпидемиологический надзор и профилактика энтеровирусной (неполно) инфекции. Методические Указания МУ 3.1.1.2363−08. -Москва.- 2008.
  51. Н.Д., Бродов Л. Е. Острые инфекционные диарейные заболевания. // Мед. Газета.- 2000.- № 31
  52. Н.Д., Маев И. В., Гуревич К. Г., Бродов Л. Е. Современные принципы лечения диареи. //Тер. архив. 2002. — № 2. — С.73−78.
  53. Н.Д., Шестакова И. В. Проблемы лабораторной диагностики иерсиниозов и пути их решения. // Журн. микробиол.-2007.- № 3.- С. 61 -66.
  54. Abu-Elyazeed R., Wierzba T.F., Frenk R.W. Epidemiology of Shigella-associated diarrhea in rural Egiptian Children. //Am. J. Trop. Med. Hyg.-71(3).- 2004.- P. 367−372
  55. Adekunle O.C., Coker A.O., Kolawole D.O. Incidence, isolation and characterization of Campylobacter species in Osogbo, Nigeria. // Biology and Medicine.-2009.- Vol. 1 (l).-P. 24−27.
  56. Alizadeh A.A., Eisen M.B., Davis RE, Ma C, Lossos IS. Distinct types of diffuse large B-cell lymphoma identified by gene expression profiling. //Nature .-2000.- 403.- P.503−511
  57. Alios В. M. Campylobacter jejuni infections: update on emerging issues and trends. //Clin. Infect. Dis. -2001, — Vol.32.-No.8.-P.1201−6
  58. Altekruse S.F., Stern N.J., Fields P.I., Swerdlow D.L. Campylobacter jejuni— An emerging foodborne pathogen. //Emerging Infectious Diseases.-1999.-Vol.5-No.l.-P.28−35
  59. Ansaruzzaman M., Bhuiyan N.A., Begum Y.A., Characterization of enterotoxigenic Escherichia coli from diarrhoeal patients in Bangladesh' using phenotyping and genetic profiling. //Journal of Medical Microbiology.- 2007.-Vol.56.-P.217−222
  60. Aranda K.R., Fagundes-Neto U., Scaletsky I.C. Evaluation of multiplex PCRs for diagnosis of infection with diarreagenic Escherichia coli and Shigella spp. // J Clin Microbiol.- 2004.- Dec.- Vol.42.-No.l2.-P.5849−53
  61. S., Wang Q. // Expression profiling of cardiovascular disease. Hum Genomics.- 2004.-Vol.l.- No.5.- P. 355−370.
  62. Arnheim N., Erlich H. Polymerase chain reaction strategy // Annu. Rev. Biochem.- 1992.-Vol. 61.-P. 131−156
  63. Ya., Grammatin A., Ivanov A., Kreindlin E., Kotova E., Barskii V., Mirzabekov A. // Wide-field luminescence microscopes for analyzing biological microchips. J. Opt. Technol. -1998. -V.65. -No.ll.- P. 938.
  64. Bavykin S.G., Akowski J.P., Zakhariev V.M., Barsky V.E., Mirzahekov A.D. Microbial identification: A portable system for sample preparation and oligonucleotide microarray hybridization // Appl. & Environ. Microbiology. 1997.- Vol. 67.- P. 922−928.
  65. Berg R.D. The indigenous gastrointestinal microflora. //Biochem. Pharmacol.-1996.- Jun 15, — Vol. 47.-No.-12.- P.2294−2297.
  66. Blanchard A.P., Kaiser R.J., Hood L.E. High density oligonucleotide arrays. // Biosensors & Bioelectronics.- 1996.-No.l l.-P. 687−690.
  67. Blanton LH, Adams SM, Beard RS, et al. Molecular and epidemiologic trends of caliciviruses associated with outbreaks of acute gastroenteritis in the United States, 2000−2004. //J. Infect. Dis.- 2006.-Vol.193.-No3.- P.413−421.
  68. Bosch A. Human enteric viruses in the water environment: a minireview. //Internal Microbiol.- 1998, — Vol.l.-P. 191−196
  69. Bounnanh P., Sithivong N. et al. Pathogenesity of Shigella in healthy carriers: a study in Vientiane, Lao People’s Democratic Republic. //Jpn. J. Infect. Dis.-2005.- Vol.58.- P. 232−234
  70. CDC. FoodNet Surveillance Report for 2004 (Final Report). P.7−15
  71. CDC. Turtle-associated salmonellosis in humans—United States, 20 062 007. MMWR Morb Mortal Wkly Rep.- 2007.-Vol.56.-No.26.-P.649−652.
  72. Centers for Disease Control and Prevention. Diagnosis and Management of Foodborne Illnesses: a Primer for Physicians. // MMWR -2001.-Vol.50.-No. RR-2.- P.4
  73. Cho S.-H., Kim J.-H., Kim J.-C. Surveillance of Bacterial Pathogens Associated with Acute Diarrheal Disease in the Republic of Korea During One Year, 2003. // The Journal of Microbiology.-2006.- Vol.44.-No.3.-P:327−335.
  74. Choudary P.V., Molnar M., Evans S.J. et al. Altered cortical glutamatergic and GABAergic signal transmission with glial involvement in depression. //Proc Natl Acad Sci USA.- 2005.-Vol.102.- No.43.- P. 15 653−58.
  75. Clarke S.C. Diarrhoeagenic Escherichia coli: an emerging problem? Diagn. Micrbiol.Infect. Dis.-2001.-Vol.41- P.93−98
  76. Clarke P.A., te Poele R., Wooster R., Workman P. //Gene expression microarray analysis in cancer biology, pharmacology and drug development: progress and potential. Biochem. Pharmacol.- 2001.- Vol. 62.- No. 10.- P. 1311
  77. Coker A.O., Isokpehi R.D., Thomas B.N., Amisu K.O. et al. Human campylobacteriosis in developing countries Synopsis- Statistical Data Included. //Emerging Infectious Diseases.-2002.-Vol.8.-No.3.- P.237−243
  78. Cornells G.R. Yersinia enterocolitica, a very sophisticated pathogen in our everyday life. // Resent Advances in the Pathogen, of Gastrointestinal Bacterial. Infect./ Eds. P. Rampal, P. Boquet / Paris.- John Libbey Eurotext-1998.- P. 97−109
  79. Departement of Preventive Medicine and Field Epidemiology Training Program. Salmonella Food Poisoning Outbreak in Riyadh, Saudi Arabia 2001. //Saudi Epidemiology Bullet~n.- 2002.-Vol. 9.- No 1.
  80. Diniz-Santos D.R., Santana J.S., Barretto J. R. et al. Epidemiological and microbiological aspects of acute bacterial diarrhea in children from Salvador, Bahia, Brazil.- The Brazilian Journal of Infectious Diseases.- 2005.-Vol.9.-No. 1.- P.77−83
  81. Doane F.W., Electron microscopy for detection of gastroenteritis viruses. In A.Z. Kapikian (ed.).Viral infection of the gastrointestinal tract, 2nd ed. Marcel Dekker, Inc., New York, N.Y.-1994.-P. 101−130
  82. Dolin R. Noroviruses- challenges to control. //The New England Journal ofMedecine.-2007.-Vol.357.- Noll.- P.1072−1073
  83. Eastwood K., Schuster H., Gascoyne-Binzi D. Comparison of realtime PCR and direct culture for the detection of Campylobacter spp. from human faecal samples. // 17th European Congress of Clinical ICC. 2007.-Germany.- 31 Mar — 04 Apr.
  84. , M. В. & Brown, Р. О. DNA arrays for analysis of gene expression.//Methods Enzymol.- 1999.-Vol.303.-P. 179−205
  85. Ekins R.P. An overview of present and future ultrasensitive nonisotopic immunoassay development. // Clin. Biochem. Revs.- -1987.-Vol.8.-P. 12−22.
  86. Elnifro E.M., Ashshi A.M., Cooper R.J., Klapper P.E. Multiplex PCR: optimization and application in diagnostic virology. // Clin Microbiol Rev-2000.-Vol. 13.- No.4.- P.559−570
  87. Falk P.G., Hooper L.V., Midtvedt Т., Gordon J.I. Creating and maintaining the gastrointestinal ecosystem: what we know and need to know from gnotobiology // Microbiol. Molec. Biol. Rev.- 1998.-Vol.62.-No.4-P.l 157−1170.
  88. Favre-Bonte S., Darfeuille-Michaud A., Forestier C. Aggregative adherence of Klebsiella pneumoniae to human intestine-407 cells. // Infect, and Immun.- 1995.-Vol.63 .-No.4.-P. 1318−1328
  89. Fernandez-Delgado M., Contreras M., Carcia-Amado M. et al. Occurrence of Proteus mirabilis associated with two species of Venezuelan oysters. //Rev. Inst. Med. trop. S. Paulo.-2007.- Vol.49.-No.6.- P. 355−359
  90. Fong T.T., Lipp E.K. Enteric Viruses of humans and animals in aquatic environments: health risks, detection, and potential water quality assessment tools. // Microbilolgy and Molecular Biology Reviews.-2005.-Vol.69.- No.2.- P.357−371.
  91. Friedman C.R., Neimann J., Wegener H.C., Tauxe R. V Campylobacter.il in: I. Nachamkin, M.J. Blaser (Eds.), ASM Press, Washington DC.- 2000.- P. 121−138.
  92. Galanis E. Campylobacter and bacterial gastroenteritis. //CMAJ-JAMC.-2007.- Vol.177.- No.6.- P.570−571
  93. Garcia L.S., Garcia J.P. Detection of Giardia lamblia antigens in human fecal specimens by a solid-phase qualitative immunochromatographic assay. IIJ. Clin. Microbiol. -2006.-Vol.44.- P. 4587−4588
  94. Gerhold D.L., Jensen R.V., Gullans S.R. Better therapeutics through microarrays. //Nature Genetics.- 2002.- Vol. 32.- Supplement.- P. 547.
  95. Gerold D., Rushmore Т., Caskey C.T. DNA chips: promising toys have become powerful tools // Trends. Biochem. Sci.- 1999.- Vol. 24.- P. 168−173.
  96. Gill C.J., Joseph L., Gorbach S. L. and Hamer D. H. Diagnostic accuracy of stool assays for inflammatory bacterial gastroenteritis in developed and resource-poor countries.// Clin. Infectious Diseas.- 2003.-Vol. 37.- P.365−75
  97. Golub T. R. et al. Molecular classification of cancer: class discovery and class prediction by gene expression monitoring. Science .-1999.-Vol.286.-P:531−537.
  98. Gonzalez SF, Krug MJ, Nielsen ME, Santos Y, Call DR: Simultaneous detection of marine fish pathogens by using multiplex PCR and a DNA microarray. //J Clin Microbiol.- 2004.-Vol.42.-No.4.- P.1414−1419
  99. Guerrant R.L., Gilder T.V., Steiner T.S., Thielman N.M., Slutsker L. et al. Practice guidelines for the management of infectious diarrhea.// Clin. Infect. Dis.- 2001.- Vol.32.-P.331−50
  100. Guerrant R.L., M. Kosek A.A. Lima B. Lomtz and H.L. Guyatt. Updating the DALYs for diarrhoeal disease. Trends Parasitol.- 2002.-Vol.18.-P. 191−193.
  101. Guschin D., Mobarry В., Proudnikov D. et al. Oligonucleotide microchips as genosensors for determinative and environmental studies in microbiology // Applied and Environmental Microbiology.- 1997.- Vol. 63.- P. 2397−2402.
  102. Haque R. Human intestinal parasites. // Journal of Health, Population and Nutrition. -2007.-Vol. 25.- No. 4, — P.387−391
  103. Haque R., Huston Ch. D., M.D. et al. Amebiasis. //The New England Journal of Medecine.-2007.-Vol.348.- No.16.- P. 1565−1573
  104. Haque R, Roy S., Siddique A., Mondal U., Rahman S.M., Mondal D. et al. Multiplex real-time PCR assay for detection of Entamoeba histolytica,
  105. Giardia intestinalis, and Cryptospordium spp. // Am J Trop Med Hyg -2007.-Vol.76.-P.713−717.
  106. Hauser M.A., Li Y.J., Xu H., Noureddine M.A., Shao Y.S. et al. Expression profiling of substantia nigra in Parkinson disease, progressive supranuclear palsy, and frontotemporal dementia with parkinsonism. Arch Neurol.- 2005.- Vol.62.-No.6.-P. 917−921.
  107. Higuchi R. Kinetic PCR analysis: Real time monitoring of DNA amplification reactions. // Biotechnology. — 1993.- No. l 1.- P. 1026−1030
  108. Hill Gaston J.S., Lillicrap M. Arthritis associated with enteric infection. //Best Practice & Research Clinical Rheumatology.- 2003. -Vol. 17.-No. 2.-P. 219−239
  109. A.J., Piiparinen H., Lappalainen M., Koskiniemi M., Vaheri A. // Multiplex-PCR and oligonucleotide microarray for detection of eight different herpesviruses from clinical specimens. //J Clin Virol.- 2006.-Vol.37.-No.2.- P.83−90.
  110. James P. Nataro and James B. Kaper. Diarrheagenic Escherichia coli. //Clin. Microbiol. Rev.- 1998.-Vol.ll.- P.142−201.
  111. Kartalija M, Sande MA. Diarrhea and AIDS in the era of highly active antiretroviral therapy. //Clin Infect Dis.- 1999.- Vol.28.-P.701−7.
  112. Khrapko K., Lysov Yu., Khorlin A. et al. An oligonucleotide hybridization approach to DNA sequencing // FEBS Letters.- 1989.- Vol. 256.-P. 118−122.
  113. Kongmuang U., Luk J.M., Lindberg A.A. Comparisom of three stool-processing methods for detection of Salmonella serogroups В, C2, and D by PCR. //-J. Clin. Microbiol.- 1994.- Vol. 32.- P.3072−3074.
  114. Kosek M, Bern С, Guerrant RL. The global burden of diarrhoeal disease, as estimated from studies published between 1992 and 2000. //Bull World Health Organ 2003.-Vol.8l.-No3.- P. 197−204
  115. Kovats RS, Edwards SJ, Charron D. Climate variability and Campylobacter infection: an international study. //Int J Biometeorol.- 2005.-Vol.49.-No.4.-P.207−14.
  116. LaGier M.J., Joseph L.A., Passaretti T.V., Musser K.A., Cirino N.M. A real-time multiplexed PCR assay for rapid detection and differentiation of Campylobacter jejuni and Campylobacter coli. И Mol Cel Probes.- 2004.-Vol.l8.-No.4.- P.275−82
  117. Lan R., Lumb В., Ryan D. at al. Molecular evolution of large virulence plasmid in Shigella colones and Enteroinvasive Escherichia coli. II Infect. Immun. 2001.-Vol.69.- P.6303−6309.
  118. Lapa S., Mikheev M., Shchelkunov S., Mikhailovich V., Sobolev A., Blinov et al. Species-level identification of orthopoxviruses with an oligonucleotide microchip. //J. Clin. Microbiol.- 2002.- Vol. 40. No.3. P. 753.
  119. Leushner J., Kelly M. Detection of pathogenic enteric bacteria in stool by multiplex PCR. // Qiagennews. 2000.- No.4.- P.21
  120. Liu R., Wang X., Chen G.Y., Dalerba P. et al. //The prognostic role of a gene signature from tumorigenic breast-cancer cells. N Engl J Med.- 2007.-Vol.356.- No.3.-P.217−226.
  121. Lockhart D.J., Winzeler E.A. Genomics: gene expression and DNA arrays. //Nature. -2000. -Vol. 405(6788). P. 827.
  122. Louie M., Louie L., Simor A. E. The role of DNA amplification technology in the diagnosis of infectious diseases. // CMAJ (Canadian Medical Association Journal) — 2000.- Vol. 163.-No.3.-P. 301−309
  123. Mahadevappa M., Janet A. Warrington. Microarrays- optimizacion and application to cancer discovery. // QIAGEN news. — 2000.- № 4.-P:3−6
  124. Mandell G.L., Bennett J. E, Dolin R. Douglas and Bennett’s principles and practice of infectious diseases. 6th edn. Pennsylvania: Elsevier, Churchill Livingstone, 2005.-2006.-Vol. 17.- No. 1.-P. 11−17
  125. Marshall, M. M., Naumovitz, Y. Ortega, C. R. Sterling. Waterborne protozoan pathogens. Clin. Microbiol. Rev. -1997-. Vol. l0.-P.67−85
  126. Michael J., Sharon L. New Gram-negative enteropathogens: fact or fancy? //Rev. Med. Microb.-2006.-Vol.l7.-No.l.-P.27−37
  127. Moor J.E., Corcoran D., Dooley J.S.G. et al. Campylobacter. Vet. Res. -2005.-Vol.36.- P. 351−382
  128. Nachamkin I. Chronic effects of Campylobacter infection.// Microbes and Infection.-Vol. 4.-2002.-P. 399103
  129. Nanni L., Romualdi C., Maseri A., Lanfranchi G. Differential gene expression profiling in genetic and multifactorial cardiovascular diseases. //J Mol Cell Cardiol.- 2006.-Vol.41.-No.6.- P. 934−48.
  130. Ng C.T., Gilchrist C.A., Lane A., Roy S., Haque R., Houpt E.R. Multiplex real-time PCR assay using Scorpion probes and DNA capture for genotype-specific detection of Giardia lamblia on fecal samples. //J Clin Microbiol.- 2005.- Vol.43.-P. 1256−60
  131. Oberhelman RA, Taylor DN. Campylobacter infections in developing countries. In: Nachamkin I, Blaser MJ, editors. Campylobacter, 2nd edition. Washington: American Society for Microbiology.-2000.- P.139−53.
  132. M.F., Godvin A.K. // Microarrays in cancer: research and applications. BioTechniques. -Vol. 34.- Supplement. -P. 17−21.
  133. Т., Suzuki Т., Yamamoto N. // Microarray fabrication with covalent attachment of DNA using Bubble Jet technology. Nature Biotechnology. -2000. -V.18. No4.- P.438.
  134. Pachiadakis I., Karavassilis V., Vasdeki A. at al. Direct detection of Salmonella spp. in faecal specimens by real-time PCR assay. // 16th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases, France. 2006,-April 1−4
  135. Parashar U.D., Bresee J.S., Gentsh J.R., Glass R.I. Rotavirus. //Emergihg Infect. Dis.-1998.-Vol.4.-No. 4.- P.561−570
  136. Pemov A., Modi H., Chandler D.P., Bavykin S. DNA analysis with multiplex microarray-enhanced PCR. Nucleic Acids Res. 2005.-Vol. 33.-No.2.- P. 1−9
  137. Peterson MC. Clinical aspects of Campylobacter jejuni infections in adults. //Wes J Med.- 1994.-Vol.l61.-P.148−52.
  138. Person S., Olsen K.E.P. Multiplex PCR for identification of Campylobacter coli and Campylobacter jenini from pure culture and directly on stool samples. Journal of Medical Microbiology.-2005.-Vol.54.- P. 10 431 047
  139. Preliminary FoodNet data on the incidence of foodborne illnesses ~ selected sites, United States, 2002. //MMWR Morb Mortal Wkly Rep .-2003.-52.-P.340−343.
  140. Public Health Labortory Services (PHLS). Gastrointestinal infections. PHLS. //1998 Annual review of communicable diseases. London: PHLS publications.- 2000.- P. 79−88.
  141. Pupo G.M., Karaolis D.K., Lan R., et al. Evolutionary relationships among pathogenic and nonpathogenic Escherichia coli strains inferred from multilocus enzyme electrophoresis and mdh sequence studies. // Infect. Immun.- 1997- Vol.65.- P.2685−2692
  142. J. // Microarray analysis and tumor classification. N. Eng. J. Med.-2006. -V. 354.- № 23.- P. 2463.
  143. Roy S., Kabir M., Mondal D., Ali I.K., Petri W.A., Jr., Haque R. Real-time-PCR assay for diagnosis of Entamoeba histolytica infection. //J Clin Micrbiol.- 2005.- Vol.43.-P.2168−72.
  144. Sair A.I., D’Souza D.H., Jaykus L.A. Human Enteric Viruses as Causes of Foodborne Disease. //Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety.-2002.-Vol.l.- P.73−89
  145. Samal S.K., Khunitia H.K., Nanda P.K. et al. Incidence of bacterial Enteropathogens among hospitalized diarrhea patients from Orissa, India. // Jpn. J. Infect. Dis.-2008.-Vol.61.- P.350−355
  146. Selvapandiyan A, Stabler K, Ansari NA et al. A novel semi-quantitative fluorescence-based multiplex PCR assay for rapid simultaneous detection of bacterial and parasitic pathogens from blood. //J Mol Diagn.- 2005.-Vol.7.No.2.- P.268−275
  147. Sen K, Asher D. M Multiplex PCR for detection of Enterobacteriaceae in blood. //Transfusion.- 2001.-Vol.41.-No. 11.-P. 13 56−1364
  148. D.K. // From patterns to pathways: gene expression data analysis comes of age. Nature Genetics. -2002.-Vol. 32. -Supplement.- P. 502.
  149. Sopwith W., Birtles A., Matthews M., Fox A. Campylobacter jejuni Multilocus Sequence Types in Humans, Northwest England, 2003−2004.-Emerging Infectious Diseases.-2006.-Vol.l2.-No.l0.-P.1500−1507
  150. Spencer K.L., Soave R., Acosta A., Gellin B. et al. Cryptosporidiosis in HIV-infected Persons: Prevalence in a New York City Population. // International Journal of Infectious Diseases.- 1997.-Vol. l.-No. 4.-217−221
  151. R.L., Martinsky Т., Schena M. // Trends in microarray analysis. Nature Medicine. -2003. -Vol. 9. No.l.- P. 140.
  152. R.B. // Applications of DNA microarrays in biology. Annu. Rev. Biochem.-2005. -Vol. 74.- P. 53.
  153. Takahashi M., Koga M., Yokoyama K., Yuki N. Epidemiology of Campylobacter jejuni isolated from patients with Guillain-Barre' and Fisher syndromes in Japan // Journ. of Clin. Microb.- 2005.-Vol.43.-No.l.- P.335−339
  154. Tam С. С., Rodrigues L. С. and O’Brien S. J. Guillain-Barre' syndrome associated with Campylobacter jejuni infection in England, 20 002 001. // Clinical Infectious Diseases. -2003.- Vol.37.-P.307−10
  155. Tauxe R.V. Emerging foodborne pathogens. //Int. J. Food Microbiol.-2002.-Vol.78.- P.31−41.
  156. The Campylobacter sentinel surveillance scheme collaborators. Ciprofloxacin resistance in Campylobacter jejuni: case-case analysis as a tool for elucidating risks at home and abroad. // J. Antimicrob. Chemother. 2002.-Vol. 50.-P.561−568.
  157. The Increasing Incidence of Human Campylobacteriosis. Report and Proceedings of a WHO Consultation of Experts Copenhagen, Denmark, 21−251. November 2000- 135
  158. Thielman N.M., Guerrant R.L. Clinical practice. Acute infectiousdiarrhea. //N Engl J Med.- 2004.-Vol. 350.-P.38−47
  159. Tillib S., Strizhkov В., Mirzabekov A. Integration of multiple PCR amplification and DNA mutation analyses by using oligonucleotide microchip //Analyt. Biochem.- 2001.-Vol. 292.-P. 155−160.
  160. E., Mirzabekov A. //Immobilization of DNA in polyacrylamide gel for the manifacture of DNA and DNA-oligonucleotide microchips and protein microchips. //Anal.Biochem.- 1998.-2Vol.59.- P. 3441.
  161. Tomioka K., Peredelchuk M., Zhu Xian. Arena R. //A Multiplex Polymerase chain reaction microarray assay to detect bioterror pathogens in blood. // JMD Journal of molecular diagnostics.- 2005.-Vol. 7.- No. 4.-P.486−494
  162. Tzipori S, Widmer G. A hundred-year retrospective on cryptosporidiosis. //Trends Parazitol. -2008.- Vol.24.-No4.- P. 184−9
  163. Voetsch AC, Van Gilder TJ, Angulo FJ, et al. Food-Net estimate of the burden of illness caused by nontyphoidal Salmonella infections in the United States. //Clin Infect Dis.- 2004.- Vol.38.-Suppl 3.-P.S127-S134.
  164. Wilhelmi, I., E. Roman, and A. Sanchez-Fauquier. Viruses causing gastroenteritis. //Clin. Microbiol. Infect.- 2003.-Vol. 9.-P.247−262
  165. World Health Statistics 2008. Geneva, World Health Organization, 2008.
  166. Worley J., Bechtol K., Penn S., Roach D., Hanzel D., Trounstine M., Barker D. A system approach to fabricating and analyzing DNA microarrays. //In: MicroarrayBiochip Technology (ed. Schena M.). Eaton Publ., Natick, MA.- 2000.- P.65−86.
  167. Yates J. Traveler’s diarrhea. //American Family Physician.-2005.-Vol.71 .-No. 11 .-P.2095−2100
  168. Yauk C.L., Williams A., Boucher S., Berndt L.M. et al. Novel design and controls for focused DNA microarrays: applications in quality assurance/control and normalization for the Health Canada ToxArray. BMC Genomics.- 2006.-Vol. 7.- P.266.
  169. Yolken R.H., Lennette D.A., Smith T.F., Waner J.L. Algorithms for detection and identification of viruses. In: Murray P.R., Baron E.J., Pfaller M.A., Tenover F.C., Yolken R.H., editors. //Manual of clinical microbiology. 7thed.-1999.- P.843−846
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!