Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Функционально-анатомическое изучение токсического действия кадмия и свинца на корень проростков кукурузы

Диссертация: Функционально-анатомическое изучение токсического действия кадмия и свинца на корень проростков кукурузы
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Корни проростков кукурузы являются основным местом аккумуляции Сё и РЬ, в то время как побеги содержат значительно меньше металлов, локализованных, главным образом, в проводящей системе. Это коррелирует с большим ингибированием роста корня по сравнению с ростом побега. Прорастание зерновок кукурузы очень устойчиво к воздействию солей Сё и РЬ и при использованных концентрациях не зависит… Читать ещё >

Функционально-анатомическое изучение токсического действия кадмия и свинца на корень проростков кукурузы (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. 1. Функциональная анатомия корня
    • 1. 2. Поступление кадмия и свинца в растения
    • 1. 3. Влияние различных факторов на поступление Сё и Р
    • 1. 4. Распределение кадмия и свинца между различными органами растения
    • 1. 5. Распределение свинца по тканям растений
    • 1. 6. Транспорт кадмия и свинца по растению
    • 1. 7. Внутриклеточная локализация кадмия и свинца в растительных тканях
    • 1. 8. Влияние кадмия и свинца на активность ферментов
    • 1. 9. Влияние кадмия и свинца на водный обмен, транспирацию и другие процессы
    • 1. 10. Влияние кадмия и свинца на поглощение других катионов и анионов
    • 1. 11. Влияние кадмия и свинца на рост и морфологию корней
    • 1. 12. Действие кадмия и свинца на деление и растяжение клеток
    • 1. 13. Общие вопросы устойчивости растений к кадмию и свинцу и пути ее возможной эволюции
    • 1. 14. Задачи работы
  • Глава 2. Материал и методы исследования
  • Глава 3. Результаты
    • 3. 1. Морфологические изменения проростков под влиянием кадмия и свинца
    • 3. 2. Гистохимические методы изучения распределения кадмия и свинца в растениях
      • 3. 2. 1. Разработка новых гистохимических методов определения
  • Cd и Р
    • 3. 2. 2. Локализация свинца и кадмия в живых тканях растений
    • 3. 2. 3. Количественное определение содержания РЬ в побегах и различных участках корней проростков
    • 3. 2. 4. Распределение Cd и РЬ в прорастающих зерновках кукурузы
    • 3. 3. Роль эндодермы в устойчивости ветвления корней под воздействием кадмия и свинца
    • 3. 4. Передвижение ионов кадмия и свинца по тканям корня
    • 3. 4. 1. Закономерности передвижения Cd и РЬ при локальном воздействии высокими концентрациями
    • 3. 4. 2. Локализация кадмия и свинца между плазмалеммой и клеточной стенкой
    • 3. 5. Изучение характера отмирания клеток под воздействием кадмия и свинца
  • Глава 4. Обсуяедение результатов
    • 4. 1. Влияние Cd и РЬ на морфологию проростков
    • 4. 2. Распределение кадмия и свинца в проростках кукурузы
    • 4. 3. Является ли барьерная роль эндодермы единственной причиной устойчивости ветвления корня к действию Cd и РЬ?
    • 4. 4. Закономерности транспорта Cd и РЬ по тканям корня при различных условиях эксперимента

Актуальность темы

Проблема загрязнения окружающей среды тяжелыми металлами становится все более и более актуальной. Среди них наиболее распространены Cd и РЬ [Алексеев, 1987; Бингам и др., 1993; Кабата-Пендиас, Пендиас, 1989], изучение действия которых на корни было темой настоящей работы.

Загрязнение среды РЬ и Cd обусловлено в основном четырьмя видами хозяйственной деятельности человека: 1) сжиганием жидкого и твердого топлива, сопровождающимся выбросами в атмосферу, 2) металлоплавильным производством, 3) сбрасыванием сточных вод, в которых РЬ и Cd содержатся в повышенных количествах и 4) внесением в почву химикатов, в том числе удобрений [Cannon, Bowles, 1962; Добровольский, 1987; Садовникова, 1989; Dorr et al., 1990; Христофорова, 1994].

В организм человека и животных большая часть Cd и РЬ поступает из растительной пищи.

Многие растения аккумулируют металлы в концентрациях, во много раз превышающих концентрацию металлов в почве. Способность растений накапливать тяжелые металлы является отраже-нием их индивидуальных особенностей, которые еще мало изучены. Даже рядом растущие растения из разных семейств или даже виды одного рода могут различаться по способности аккумулировать тяжелые металлы [Козаренко, 1987].

Аккумуляция тяжелых металлов растениями с успехом используется для разных целей. Были предложены различные технологии очистки окружающей среды от тяжелых металлов при помощи растений: фиторемедиациявысокоэкономичная технология для очистки почвы и воды от тяжелых металлов. Фитоэкстракция — использование специально выведенных сортов растений и определенных обработок почвы для переноса элемента-загрязнителя в надземные части растения, которые затем скашиваются. Фитофильтрация — использование корней взрослых растений (ризо-фильтрация) и проростков (бластофильтрация), выращенных в аэрированном питательном растворе. Фитоволитализация — использование растений для экстрагирования летучих веществ из почвы. Фитостабилизацияиспользование растений для перевода веществ в безопасные соединения. [Kumar et al., 1995; Dushenkov et al., 1995; Ensley et al., 1995; Salt et al., 1995aHuang et al., 1997].

В последние годы наиболее широко разрабатываются методы очистки водоемов и почвы от тяжелых металлов путем выращивания растений, способных их концентрировать: водяного гиацинта Eichornia crassipes [От et al., 1987; Nir et al., 1990; Karel, Karel, 1990], Helianthus annuus и Brassica juncea, причем последний вид наиболее эффективно накапливал Pb [Kumar et al., 1995; Dushenkov et al., 1995; Ensley et al., 1995]. Степень удаления Cd в случае использования водяного гиацинта колебалась от 70 до 92%, причем Cd накапливался как в корнях, так и в листьях.

Растения могут также использоваться для индикации загрязнения почвы тяжелыми металлами. В последние годы в этих исследованиях широко используются мхи и лишайники. При оценке содержания Cd, Pb, Ni, Cu, Zn и S у 16 видов мхов было установлено, что хорошими индикаторами загрязнения окружающей среды являются Aulacomium palustre, A. turgidium, Hylocomium splendens, Sanionia uncinata, Tortula ruralis и Pleurozium schreberi [Grodzinska, Godzik, 1991; Godzik, Szarek, 1993; Grodzinska et al., 1993], что позволяет использовать мхи как индикаторы загрязнения окружающей среды [Козаренко, 1987].

Особенностью современных исследований является их преимущественная ориентация на изучение распределения металлов между различными органами растения, их влияние на метаболизм клеток, а также исследование биохимических механизмов устойчивости растений к тяжелым металлам. Практически неизученным остается вопрос о закономерностях аккумуляции и мобильности данных металлов по тканям растений в зависимости от времени экспозиции и концентрации их в окружающей среде.

До сих пор до конца не выяснена функциональная роль различных тканей корня в транспорте Сс1 и РЬ. В последнее время появляется все больше работ, посвященных барьерной роли эндодермы в транспорте различных соединений. Однако, остается невыясненным, определяется ли ограниченное поступление ионов металлов в ткани центрального цилиндра только барьерной ролью эндодермы. Кроме того, остается неясным вопрос об особенностях клеток ризодермы и коры, определяющие их способность накапливать и «транспортировать» ионы тяжелых металлов от ризодермы к центральному цилиндру.

Использование корней проростков кукурузы в качестве тест-объекта было обусловлено особенностями анатомического строения и роста главных корней проростков, важным сельскохозяйственным значением культуры, а также возможностью воспроизводства материала в удобное для эксперимента время. Выбор объекта исследования, заданные условия модельного эксперимента, а также разработка новых гистохимических реакций для определения Сс1 и РЬ в живых тканях растений позволили получить принципиально новые данные о закономерностях распределения и транспорта данных металлов по тканям растений.

Цель и задачи исследования

Изучение функциональной роли отдельных тканей в поглощении, накоплении и транспорте ионов кадмия (Сс12+) и свинца (РЬ2+) было целью данного исследования.

Для достижения цели предстояло решить следующие задачи:

• выбор условий проведения экспериментов и разработка новых гистохимических реакций для выявления Сё и РЬ в живых тканях растений;

• определение закономерностей распределения и транспорта Сё и РЬ по корню в зависимости от концентрации металлов в растворе и времени экспозиции;

• сравнение результатов гистохимического анализа с распределением отмерших клеток корня;

• сравнение относительной подвижности этих металлов по тканям корня при различных условиях эксперимента;

• исследование функциональной роли коры и эндодермы в транспорте Сё и РЬ по растению;

• анализ влияния различных концентраций солей Сё и РЬ на прорастание зерновок кукурузы и изучение роли перикарпия в аккумуляции тяжелых металлов.

Научная новизна работы. Предложены новые методы гистохимического определения Сс1, РЬ и ряда других тяжелых металлов, основанные на использовании дитизона и диазосоединений, которые ранее не использовались в гистохимии. До сих пор для определения Сс1 не было гистохимических методов. С помощью разработанных в данной работе методов установлены закономерности постепенного накопления Сс1 и РЬ в разных тканях корня и побега при инкубации проростков в разных условиях. Предложены также новые приемы для анализа роли эндодермы как барьера транспорта ионов и показано, что низкая проницаемость эндодермы для тяжелых металлов не является единственной причиной устойчивости ветвления корня к тяжелым металлам. Установлены новые закономерности транспорта ионов Сс1 и РЬ по растению и продемонстрирована большая подвижность Cd при локальной обработке корней растворами с высокими концентрациями. Выяснена причина устойчивости прорастания зерновок кукурузы к действию тяжелых металлов — непроницаемость перикарпия для ионов Cd и РЬ.

Теоретическая и практическая значимость работы. Разработка новых гистохимических реакций для выявления Cd и РЬ в живых тканях растений открывают перспективы для исследования накопления и передвижения тяжелых металлов в разных органах и тканях растений. Это является необходимым звеном для понимания реакции растений на тяжелые металлы. Кроме того, определение содержания тяжелых металлов имеет важное значение для экологического мониторинга.

Апробация работы. Материалы диссертации были представлены на Международной конференции по анатомии и морфологии растений (С.-П. 2−6 июня 1997), на Международном симпозиуме «Структура и функции корня» (Slovakia, 1998), на семинарах лаборатории физиологии корня ИФР РАН (1998), на заседании кафедры ботаники МПГУ (1999).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 8 работ.

Структура и объем диссертации

Работа изложена на 190 страницах машинописного текста и состоит из введения, 4 глав, заключения и выводов.

Список литературы

включает 266 источников, из них 220 иностранных авторов. Работа содержит 21 таблицу и 34 рисунка.

выводы.

1. В настоящей работе разработаны и апробированы новые гистохимические реакции для выявления Сё и РЬ в живых тканях растений с дитизоном и 4-(2-пиридилазо)-резорцином. Высокая константа стабильности комплек-сов этих реагентов с изучаемыми металлами и достаточно высокая чувствительность позволяет выявить большую часть металлов, находящихся как в свободном, так и в связанном состоянии.

2. Корни проростков кукурузы являются основным местом аккумуляции Сё и РЬ, в то время как побеги содержат значительно меньше металлов, локализованных, главным образом, в проводящей системе. Это коррелирует с большим ингибированием роста корня по сравнению с ростом побега. Прорастание зерновок кукурузы очень устойчиво к воздействию солей Сё и РЬ и при использованных концентрациях не зависит от концентрации металла в среде, что связано со способностью клеточных стенок перикарпия аккумулировать ионы этих металлов.

3. Эндодерма является барьером для поступления Сё и РЬ в центральный цилиндр при инкубации проростков в присутствии не летальных концентраций. Однако, при воздействии концентраций, вызывающих полную остановку роста корня, Сё и РЬ свободно поступают в стель.

4. Клеточные стенки клеток коры, ризодермы и эндодермы, а также корневой чехлик и слизь являются основным местом аккумуляции Сё и РЬ, что согласуется с данными о характере отмирания клеток под воздействием этих металлов.

5. Структурные особенности апопласта клеток стели или их химический состав играют важную роль в транспорте металлов по корню, что ограничивает их поступление в перицикл и наряду с барьерной функцией эндодермы определяет нормальное развитие боковых корней как при раздельном, так и при комбинированном воздействии.

6. При локальном воздействии высоких концентраций Сс1 и РЬ на растущую часть корня, подвижность РЬ намного меньше по сравнению с Сс1, что подтверждается гистохимическими данными и нормальным заложением боковых корней в участках, не подвергавшихся воздействию РЬ при одинаковом токсическом действии этих металлов на рост главного корня.

7. Сс1 и РЬ ингибируют рост корней при концентрациях, близких к летальным, что свидетельствует об общетоксичном характере их действия.

8. Отдельные ткани корня играют различную функциональную роль в аккумуляции и транспорте Сс1 и РЬ. Многослойная кора, связывая большую часть металлов в апопласте, может наряду с эндодермой выполнять роль одной из систем защиты растения от токсического действия тяжелых металлов и обеспечивать нормальное заложение боковых корней в перицикле. При летальных концентрациях Сё и РЬ свободно поступают в ткани стели, что дает возможность предположить, что в этом случае транспорт через эндодерму происходит по симпласту.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В настоящей работе были поставлены следующие задачи:

1. разработка новых гистохимических реакций для выявления Сё и РЬ в живых тканях растений;

2. определение закономерностей распределения и транспорта Сё и РЬ в зависимости от концентрации металлов в растворе и времени экспозициисравнение полученных данных с распределением отмерших клеток корня;

3. сравнение относительной подвижности этих металлов по тканям корня при различных условиях эксперимента;

4. исследование функциональной роли коры и эндодермы в транспорте Сё и РЬ по растению;

5. анализ влияния различных концентраций солей С (3 и РЬ на прорастание зерновок кукурузы и изучение роли перикарпия в аккумуляции тяжелых металлов.

Использование новых реагентов позволило подобрать условия для гистохимического определения металлов в тканях растений. Полученные в данной работе результаты согласуются с литературными данными по распределению РЬ, которые были получены с использованием различных методов.

Сравнительный анализ диапазона действующих концентраций азотнокислых солей С (3 и РЬ показал близость летальной концентрации и концентрации, ингибирующей рост главного корня проростков кукурузы на 50% после 48 часов инкубации, что свидетельствует об общетоксичном действии кадмия и свинца.

Летальные концентрации и концентрации, вызывающие 50% ингибиро-вание роста корня различаются для С (3 и РЬ причем для Сё эти значения примерно в 10 раз меньше, чем для РЬ, что указывает на большую токсичность первого для проростков кукурузы.

Основным местом локализации Сё и РЬ являются корни, что свидетельствует о принадлежности кукурузы к растениям-исключителям. С этим может быть связано преобладающее ингибирование роста корня по сравнению с ростом побега.

В результате гистохимического анализа были обнаружены четкие различия между тканями корня по способности накапливать Сё и РЬ, причем при одинаковом токсическом действии солей этих металлов на рост корня наблюдались одинаковые закономерности аккумуляции Сё и РЬ по тканям. Характер распределения этих металлов по тканям корня зависит как от их концентрации в растворе, так и от времени экспозиции проростков в присутствии тяжелых металлов.

Наибольшие количества этих металлов были выявлены в клетках коры и ризодермы, а также в корневом чехлике и слизи. Принимая во внимание тот факт, что на долю клеток коры и ризодермы приходится около 85% площади главного корней проростков злаков, можно предположить, что клетки коры аккумулируют около 75% от всего поглощенного металла, играя, таким образом, роль одной из систем защиты других тканей от токсического действия тяжелых металлов.

Высокие концентрации Сё и РЬ были найдены в клеточных стенках внешних тканей, что коррелирует с преобладающим токсическим действием Сё и РЬ на клетки этих тканей, а также свидетельствует о преимущественно апопластном транспорте этих металлов.

Однако, скорость транспорта их по тканям корня может существенно различаться и зависит в первую очередь от концентрации металлов в растворе. При локальном воздействии высокими концентрациями металлов Сё обладает намного большей подвижностью по сравнению со РЬ, что может объясняться как меньшим радиусом иона Сё, так и большим сродством РЬ к слизи и материалу клеточных стенок.

Ветвление корней крайне устойчиво к действию Сё и РЬ. Время образования боковых корней практически не изменяется даже при комбинированном действии металлов, когда рост главного корня полностью ингибируется. Это свидетельствует о существовании барьера (ов) для транспорта тяжелых металлов, а также может быть следствием активации механизмов защиты.

Наиболее важным барьером для транспорта как Сё, так и РЬ является эндодерма, которая, благодаря наличию поясков Каспари, блокирует апопластный транспорт данных металлов. Однако, ограничение поступления ионов Сё и РЬ в клетки перицикла может быть обусловлено также особенностями апопласта клеток центрального цилиндра, что делает невозможным поступление Сё и РЬ в перицикл в разрезанных вдоль корнях. Это, по-видимому, и обуславливает нормальное заложение боковых корней в данных условиях. Необходимо также отметить, что эндодерма выполняет барьерную функцию только при концентрациях ниже определенной пороговой величины, при превышении которой металлы свободно поступают в центральный цилиндр, что ведет как к остановке ветвления, так и к ингибированию роста.

Наиболее устойчивым к воздействию Сё и РЬ оказалось время прорастания зерновок, которое практически не изменялось даже при их инкубации в присутствии концентраций, летальных для роста интактных проростков. Основной причиной высокой устойчивости прорастания зерновок является высокая аккумулирующая способность многослойного перикарпия зерновки кукурузы, что и обуславливает ее барьерную функцию.

Исходя из всего вышеизложенного можно сделать следующие выводы.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ю.В. Тяжелые металлы в почвах и растениях // М: Агропромиздат, 1987.
  2. Ф.Т., Коста М., Эйхенбергер Э. и др. Некоторые вопросы токсичности ионов металлов (под ред. Зигель X., Зигель А.) // М: Мир. 1993.
  3. В.Я. О способах фиксации и подготовки материала для количественного цитохимического анализа // Цитология. 1960. Т.2, N.5. С.605−613.
  4. Д.Б. Пространственная организация ионного транспорта в корне // М: Наука. 1991 (49-е Тимиряз. чтение).
  5. М.Ф., Дертева Е. Ю. Данные анатомии и физиологии о передвижении воды и растворенных веществ по тканям корня // Бот. журн.1964. T.49.N.9. С.1347−1365.
  6. М.Ф., Стамболцян Е. Ю. О структуре «пояска Каспари» (к вопросу о барьерной функции эндодермы) // Бот. журн. 1969. Т.54. С.1288−1291.
  7. М.Ф. Структурные основы поглощения веществ корнем // Л: Наука. 1974.
  8. М.Ф., Стамболцян Е. Ю. Ультраструктура дифференцирующихся клеток первичной ксилемы корня в связи с вопросом о поступлении веществ в трахеальные элементы // Бот. журн. 1975.Т.60. N.7. С.913−926.
  9. М.Ф., Мазель Ю. Я., Стамболцян Е. Ю., Телепова М. Н. Формирование системы транспорта ионов в растении. II. Ультраструктура дифференцирующихся тканей корня кукурузы (Zea mays) II Физиол. раст. 1983. Т.30. N. 6. С.1061−1068.
  10. М.Ф., Мазель Ю. Я., Телепова М. Н., Житнева H.H. Формирование систем поглощения и транспорта ионов в корне кукурузы (Zea mays): анатомия и ультраструктура корня // Физиол. раст. 1990. Т.37. N. 4. С.629−635.
  11. М.Ф., Бармичева Е. М. Ф-утолщения и пояски Каспари в корнях рода Dryas octopetala и D.punctata (Rosaceae) // Труды конфер. по анатомии и морфол. растений С.-П.2−6 июня. 1997.
  12. Е.Ю. Строение и функции эндодермы // Бот. журн. 1965.Т.50. N.9. С.1327−1337.
  13. В.В. Глобальная геохимия свинца // Свинец в окружающей среде. Под ред.В. В. Добровольского.М:Наука. 1987. С.7−19.
  14. Ю.А., Плетенева Т. В. Механизмы токсического действия неорганических соединений // М. Медицина. 1989.
  15. В.Б. Клеточные основы роста растений // М.: Наука. 1974.
  16. В.Б. Активные красители в биологии // М.: Наука. 1982.
  17. В.М. Гетероциклические азотсодержащие азосоединения // М., Наука. 1982.
  18. Т.И., Косицин A.B. Устойчивость к свинцу карбоангидразы Melica nutans (Poaceae) II Бот.журн. 1990. T.75, N.8. С. 1144- 1150.
  19. Кабата-Пендиас А., Пендиас X. Микроэлементы в почвах и растениях // М.:Мир. 1989.
  20. Д. Транспорт ионов и структура растительной клетки // М: Мир. 1978.
  21. А.Е. Свинец в растениях // Свинец в окружающей среде. Под ред. Добровольского B.B. М: Наука. 1987. С.71−76.
  22. A.B., Алексеева-Попова Н.В., Игошина Т. И. Внутрипопу-ляционная изменчивость металлоустойчивости в некоторых южноуральских популяциях Aster alpinus (Asteraceae) // Бот.журн. 1985. T.70, N.8.C.1084−1091.
  23. В. Экология растений // М.:Мир. 1978.
  24. Э.Н. Общая токсикология металлов // Л.: Медицина. 1978.
  25. О.М., Обухов А. И. Состояние свинца в системе почва-растение в зонах влияния автомагистралей // Свинец в окружающей среде. Под ред. Добровольского B.B. М: Наука. 1987. С. 149−165.
  26. Ю.П., Лишко А. К., Калинин Ф. Л. Действие кадмия на синтез РНК, белка и ДНК в меристеме зародыша корня гороха при прорастании //Физиол.раст. 1982.Т.29, N. 4. С.655- 659.
  27. Ю.П. Влияние ионов кадмия на клеточное деление и рост растений // КиевгНаук.думка. 1990.
  28. Ю.П., Лишко А. К. Влияние ионов кадмия на деление клеток меристемы корней кукурузы // Физиол. и биох. культ, раст. 1991. Т. 3.C.291−293.
  29. А.Н. Воздействие ионов свинца, кадмия и цинка на клеточную организацию меристемы и рост проростков кукурузы // М: МГУ, дисс.к.б.н. 1989.
  30. А.Н. Действие тяжелых металлов на корни растений. 1. Поступление свинца, кадмия и цинка в корни, локализация металлов и механизмы устойчивости растений // Биологические науки. 1989. N.9.C.72−86.
  31. А.И., Лобанова Е. А. Свинец в почвах и почвообразующих породах // Свинец в окружающей среде. Под ред. Добровольского В. В. М: Наука. 1987.С.38−48.
  32. Д. Органические аналитические реагенты // М.: Мир. 1967.
  33. H.A. Биометрия // Новосибирск: Из-во СО АН СССР. 1961.
  34. Э.В., Каракис К. Д., Сидоршина Е. И. Роль клеточных оболочек растений в поглощении и накоплении ионов металлов // Физиол. и биохим.культ.раст. 1988.T.20,N 1.С.З-12.
  35. JI.K. Экологические последствия загрязнения почв тяжелыми металлами // Биол.науки. 1989, N.9.C.47−53.
  36. Е. Колориметрические методы определения следов металлов // М.:Мир. 1964.
  37. А.Ф., Таланова В. В., Боева Н. П., Минаева C.B., Солдатов С. Е. Влияние свинца на рост проростков пшеницы, ячменя и огурца // Физиол.раст. 1995.T.42,N.3.С.457−462.
  38. Ф., Филлипс И. Рост растений и дифференцировка // М. Мир. 1984.
  39. С.И., Трофимяк Т. В., Блюм Я. Б. Механизмы устойчивости растений к тяжелым металлам // Успехи совр. биол. 1995.Т.115, N.3.C.261−275.
  40. В.Н. Воздействие нитратов кадмия и свинца на ориентацию корней проростков кукурузы // Труды междунар.конф.по анатомии и морфол. раст.С.-Петербург, 2−6 июня. 1997.с.208−209.
  41. А.К. Окружающая среда крупного города и жизнь растений в нем //С.-П.: Наука. 1998.
  42. Н.К., Шулькин В. М., Кавунь В. Я. Тяжелые металлы в промысловых и культивируемых моллюсках залива Петра Великого // Владивосток. 1994.
  43. Ю.К., Николаевская А. Б. Сравнительное изучение металлохромных индикаторов для комплексонометрического определения кадмия // Ж. Приклодн.хим. 1974.T.XLVII, B.9.C. 1991−1995.
  44. Д.П., Матвеец М. А. Аналитическая химия кадмия // М.: Наука. 1973.
  45. К. Анатомия семенных растений //М.:Мир. 1980.
  46. К.Б. Введение в бионеорганическую химию // Киев: Наукова думка. 1976.
  47. Ahrend R., Kahle Н., Breckle S.-W. Effect of cadmium on transpiration of young beech trees (Fagus silvatica L.) // Air Pollution and Forest Decline (J.B.Bucher and I. Bucher Wallin, edc.). 1989.P.381−383.
  48. Alcantara E., Romera F.J., Canete M. Effects of heavy metals on both induction and function of root Fe (III) reductase in Fe defficient cucumber (Cucumis sativus) plants // J.Exp.Bot. 1994.V.45,N. 281.P.1893−1898.
  49. Alex S., Dupuis P. FT-IR and Raman investigation of cadmium by DNA // Inorg.chem.acta. 1989. V. l 57, N 2.P.271−282.
  50. Antosiewicz D.M. Adaptation of plants to an environment polluted with heavy metals //Acta Soc.Bot.Pol. 1992.V.61,N.2.P.281−299.
  51. Arduini I., Godbold D.L., Onnis A. Cadmium and copper change root growth and morphology of Pinus pinea and Pinus pinaster seedlings //Physiol, plant. 1994.V.92.P.675−680.
  52. Baker A.J.M. Accumulators and excluders-strategies in response of plants to heavy metals //J.Plant Nutr. 1981.V.3.P.643−654.
  53. Baker A.J.M. Environmentally-induced cadmium tolerance in the grass Holcus lanatus L. //Chemosphere. 1984.V.13.P.585−589.
  54. Baker A.J.M., Grant C.J., Martin M.H., Shaw S.C., Whitebrook J. Induction and loss of cadmium tolerance in Holcus lanatus and other grasses //New Phytol. 1986.V.102.P.575−587.
  55. Baker A.J.M. Metal tolerence//New Phytol. 1987.V.106.P.93−111.
  56. Baker A.J.M. Cadmium sensitivity and constitutive resistance // Comparetive plant ecology. 1991 .P.211−213.
  57. Barcelo J., Poschenrieder Ch., Andren I., Gunse B. Cadmium Induced Decrease of Water Stress Resistance in Bush Bean Plants (Paseolus vulgaris cv. Contender) //Plant.Physiol. 1986.V.125.P.17−25.
  58. Barcelo J., Vazques M.D., Poschenrieder Ch. Strustural and ultrastructural disorders in cadmium-treated bush bean plants (Phaseolus vulgaris L.) //New Phytol. 1988.V.108.P.37−49.
  59. Barcelo J., Poschenrieder C. Plant water relations as affected by heavy metal stress: A raview // J. Plant Nutr. 1990.V.13.P.1−37.
  60. Baszinsky T., Waida L., Krol M., Wolinska D., Krupa Z., Tukendorf A. Photosynthetic activities of cadmium-treated tomato plants // Physiol, plant. 1980. V.48.P.365−370.
  61. Bazzaz F.A., Rolfe G.L., Carlson R.W. Effect of Cd on Photosynthesis and Transpiration of Excised Leaves of Corn and Sunflower // Physiol. Plant. 1974.V.32,N.4.P.373−376.
  62. Blaylock M.J., Salt D.E., Dushencov S., Zakharova O., Gussman C., Kapulnik Y., Ensley B.D., Raskin I. Enhanced Accumulation of Pb in Indian Mustard by Soil-Applied Chelating Agents // Environ.Sci.Technol. 1997.V.31,N.3.P.860−865.
  63. Blinda A., Koch B., Ramanjulu S., Deitz K.-J. De novo synthesis and accumulation of apoplastic proteins in leaves of heavy metal-exposed barley seedlings // Plant.Cell.Eviron. 1997.V.20.P. 969−981.
  64. Bonaly J., Miginiae-Maslow M., Brochiero E., Hoarau A., Mestre J.C. Cadmium Effects on the Energetics of Euglena during the Development of Cadmium Resistance//J.Plant Physiol. 1986.V.123.P. 349−358.
  65. Borboa L., Delatorre C. The genotoxicity of Zn (II) and Cd (II) in Allium cepa root meristematic cells//New Phytol. 1996.V.134,N.3.P.481−486.
  66. Bradshaw A.D. The evolution of metal tolerance and its significance for vegetation establishement on metal contaminated sites // Intern. Conference on Heavy Metals in the Environm. Toronto.Canada. 1975.V.27−31.P.599−622.
  67. Breckle S.-W. Growth Under Stress: Heavy Metals //Plant roots: The Hidden Half Ed. Y. Waisel, A. Eshel and U.Kafkafi. New York.NY.: M. Dekker. 1991. P.351−373.
  68. Breckle S.-W. Growth of tree roots under heavy metal (Pb-) stress //Acta Phytogeogr.Suec. 1996.V.81.P.39−43.
  69. Briggs D. Population differentiation in Marchantia polymorpha L. in various lead pollution levels // Nature. 1972.V.238.P. 166−167.
  70. Broun H., Martin M.H. Pretreatment effects of Cadmium on the Root Growth of Holcus lanatus L. //New.Phytol. 1981.V.89.N4.P.621−629.
  71. Bujtas C., Csen E. Effect of heavy metals and chelating agents on potassium uptake of cereal roots //Structure and Function of Plant Roots (Brouwer R. et al.(eds.). 1981.P.347−350.
  72. Burzynski M., Jacob M. Influence of lead on auxin-induced cell elongation // Acta Soc.Bot.Pol. 1983.V.52,N.2−4.P.231−239.
  73. Burzynski M., Grabowski A. Influence of lead on NO3″ uptake and reduction in cucumber seedlinds //Acta Soc.Bot.Pol. 1984.V.53.N.1.P.77−86.
  74. Burzynski M. The influence of lead and cadmium on the absorption and distribution of potassium, calcium, magnesium and iron in cucumber seedlings //Acta Physiol. Plant. 1987.V.9.P.229−238.
  75. Cannon H.L., Bowles J.M. Contamination of vegetation by tetraethyl lead //Science. 1962.V.137.P.765−766.
  76. Cardinaels C., Put C., Van Assche F., Clijsters H. The superoxidedismutase as a biochemical indicator discriminating between zinc and cadmium toxicity // Acchives Intern.Physiol. Bioch. 1984.V.92. P.27−28.
  77. Cataldo D.A., Wildung R.C. Soil and plant factors influencing the accumulation of heavy metals by plants //Environ. Health. Perspect. 1978.V.27.P. 149−159.
  78. Cataldo D.A., McFadden K.M., Garland T.R., Wildung R.E. Organic Constituents and Complexation of Nickel (II), Iron (III), Cadmium (II) and Plutonium (IV) in Soybean Xylem Exudates // Plant Physiol. 1988. V. 86, N.3.P.734−739.
  79. Chaney R.L., White M.C., Van Tierhoven M. Interaction of Cd and Zn in phytotoxicity to and uptake by soybean // Agron.Abstr. 1976.V.68.P.21.
  80. Chen S.L., Kao C.H. Cd induced changes in proline level and peroxidase activity in roots of rice seedlings // Plant Growth Regul. 1995.V.17,N.1 P.67−71.
  81. Choudhary M., Bailey L.D., Grant C.A., Leisle D. Effect of Zn on the concentration of Cd and Zn in plant tissue of 2 durum wheat lines II Can J. Plant Sci. 1995.V.75,N.2.P.445−448.
  82. Cieslinski G., Vanrees K. C J., Huang P.M., Kozak L.M. Cadmium uptake and bioaccumulation in selected cultivars of durum wheat and flax as affected by soil type // Plant and Soil. 1996.V. 182.N. 1 .P. 115−124.
  83. Clain E., Daysson G. Cytotoxicite du cadmium: etude sur les meristemes radiculaires d' Allium sativum L.// C.R.Soc.Biol. 1977.V.171.P.l 151−1155.
  84. Coughtrey P.J., Martin M.H. Cadmium uptake and distribution in tolerant and nontolerant population of Holcus lanatus grown in solution culture //Oicos. 1978. V.30,N.3.P.555−560.
  85. Cox R.M., Hutchinson T.C. Multiple and co-tolerance to metals in the grass Deschampsia cespitosa: adaptation, predadaptation and «cost» //J.Plant Nutr. 1981V.3 JP.731 -741.
  86. Crowdy S.H., Tanton T.W. Water pathways in higher plants. 1. Free space in wheat leaves // J.Exp.Bot. 1970.V.21 .P. 102−111.
  87. Cutler J.M., Rains D.M. Characterization of Cadmium Uptake by Plant Tissue //Plant Physiol. 1974.V.54,N.1.P.67−71.
  88. Davies K.L., Davies M.S., Francis D. Zinc-induced vacuolation in root meristematic cells of Festuca rubra L. //Plant, Cell and Envir. 1991. V.14, N.4.P.399−406.
  89. Dorr H., Munnich K.O., Mangini A., Schmitz W. Gasoline lead in West German soils //Naturwissenschafit 1990.V.77.P.428−430.
  90. Drew M.C. Function of root tissues in nutrient and water transport // Root development and Function. Ed: P.J.Gregory, J.V.Lake, D.A.Rose. Cambridge university press. 1987.V.71−101.
  91. Dushencov V., Kumar N., Motto H., Raskin I. Rizofiltration: The Use of Plant to Remove Heavy Metals from Aqueous Streams //Environ.Sci. Technol. 1995. V.29.P.1239−1245.
  92. Enstone D.E., Peterson C.A. A rapid fluorescence technique to probe the permeability of the root apoplast // Can.J.Bot. 1992a.V.70.P. 1493−1501.
  93. Enstone D.E., Peterson C.A. The apoplastic permeability of root apices // Can.J.Bot. 19 926. V.70.P.1502−1512.
  94. Ernst W.H.O., Verclij J.A.C., Schat H. Metal tolerance in plants //Acta Bot.Neerl. 1992.V.43,N.3.P.229−248.
  95. Filippenko V.N. Evidences for passive and active nature of root chemo-tropisms //Int.Symp.on Structure and Function of Roots. 1998.P.20.
  96. Fodor E., Szabonagy A., Erdei L. The effect of cadmium on the fluidity and H -ATPase activity of plasma membrane from sunflower and wheat roots //J.Plant Physiol. 1995.V. 147, N. 1 .P.87−92.
  97. Francis D., Davies M.S., Braybrook C., James N.C. An effect of zinc on M-phase and Gi of the plant cell cycle in the synchrronous TBY-2 tobacco cell suspension // J.Exp.Bot. 1995.V.46, N. 293.P.1887−1894.
  98. Glater R.A., Hernandez L. Lead Detection in Living Plant Tissue Using a New Histochemical Method //J. Air Pollution Control Association. 1972.V.22,N 6.P.463−467.
  99. Glavac V., Koenies H., Ebben U. Seasonal Variation and Axial Distribution of Cadmium Concentrations in Trunk Xylem Sap of Beech Trees (, Fagus sylvatica L.) // Angew.Botanik. 1990.V.64,N.¾.P. 357−364.
  100. Godbold D.L., Kettner C. Use of Root Elongation Studies to Determine Aluminium and Lead Toxicity in Picea abies Seedlings //J.Plant Physiol. 1991.V.138.P.231−235.
  101. Godzik B. Heavy metals content in plants from zink dumps and referense areas //Polish Bot.Stud. 1993.V.5.P.113−132.
  102. Godzik B., Szarek G. Heavy matals in mosses from the Niepolomice Forest, sousern Poland changes in 1975−1992 //Fragm. Flor.Geobot. 1993. V.38., N.l.P. 199−208.
  103. Greger M., Jensen. Interactions of Cd and Ca in roots of willow and Birsh at different Ca status //Plant root-from cells to systems 14th Long-Ashton international symposium. 1995.P.70,Bristol.
  104. Griling C.A., Peterson P.J. The significance of the cadmium species in uptake and metabolism of cadmium in crop plants // J. Plant Nutr. 1981. V.3, N.¼.P.703−720.
  105. Grill E., Winnacker E.L., Zenk M.H. Phytochelatins: the principal heavy-metal complaxing peptides of higher plants //Science.l985.V.230.P.674−676.
  106. Grill E., Winnacker E.-L., Zenk M.H. Phytochelatins, a class of heavy-metal-binding peptides from plants are functionally analogous to metallothioneins //Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. 1987.V.84. P.439 443.
  107. Grill E., Winnacker E.-L., Zenk M.H. Occurrence of heavy metal binding phytochelatins in plants growing in a mining refuse area // Experientia. 1988.V. 44, N 6.P.539−540.
  108. Grodzinska K., Godzik B. Heavy metals and sulphur in mosses southern Spitsbergen //Polar Research. 1991.V.9,N.2.P.133−140.
  109. Grodzinska K., Szarek G., Godzik B., Braniewski S., Chrzanowska E. Mapping air pollution in Poland by measuring heavy metal concentration in mosses //Climate and Atmospheric Deposition Studies in Forests. Ed: J.
  110. Solon, E. Roozielinska, A.Bytherowicz. Conference Papers. 1993. V.19. P. 197−209.
  111. Grymaszewscka G., Golinowski W. The structure of endodermis during the development of weat (Triticum aestivum L.) roots //Acta Soc.Bot.Pol. 1987.V.56,N.1.P.3−10.
  112. Guo Y.L., Marscher H. Genotypic differences in uptake and translocation of cadmium in bean and maize inbred lines // Z. Pflanzenernahrung und Bodeukunde. 1996. V. 159, N. 1 .P.55−60.
  113. Gussarsson M., Adalsteinsson S., Jensen P., Asp P. Cadmium and copper interactions on the accumulation and distribution of Cd and Cu in birch (.Betulapendula Roth) seedlings // Plant and Soil. 1995.V. 171, N. 1 .P. 185 187.
  114. Gzyl J., Przymusinski R., Wozny A. Organospecific reactios of yellow lupin seedlings to lead//Acta.Soc.Bot.Pol. 1997.V.66,N.1.P.61 -66.
  115. Haas D.L., Carothers L.B. Some ultrastructural observations on endodermal cell development in Zea mays //Amer.J.Bot. 1975.V.62.P.
  116. Hagemeyer J., Kahle H., Breckle S.-W., Waisel Y. Cadmium in Fagus sylvatica L. seedlings: leaching, uptake and interconnection with transpiration // Water, Air and Soil Poll. 1986.V.29.P.347−359.
  117. Hagemeyer J., Waisel Y. Excretion of ions (Cd2+, Li+, Na+, and CI") by Tamarix aphylla //Physiol.Plant. 1988.V.73.P.541−546.
  118. Hagemeyer J., Breckle S.-W. Growth Under Trace Element Stress// Plant roots: the hidden half. Ed: G. Waisel, U.Kafkafi. 1996.P.415−433.
  119. Haghiri F. Cadmium uptake by plants //J.Environ.Quality. 1973.V.2.P.93−96.
  120. Hammett F.S. Studies in the biology of metals: The influence of lead on mitosis and cell size in the growing root //Protoplasma. 1929.V.5.P.535−542.
  121. Hardiman R.T., Jacoby B. Absorption and translocation of Cd in bush beans (Paseolus vulgaris) //Physiol.plant. 1984.V.61,N 4.P.670- 674.
  122. Herich R., Bobak M. Influence of tetramethyl lead on the proplastids of plant cells //Acta biol.Acad.Sci.hung. 1974.V.25,N.4.P.289- 298.
  123. Hernandez L.E., Carpenaruiz R., Garate A. Alterations in the mineral nutrition of pea seedlings exposed to cadmium //J.Plant Nutr. 1996.V.19,N.12.P.1581−1598.
  124. Hernandez L.E., Garate A., Carpenaruiz R. Effects of cadmium on the uptake, distribution and assimilation of nitrate in Pisum sativum II Plant and Soil. 1997.V.189,N.1.P.97−106.
  125. Hertstein U., Jager H.J. Tolerances of different populations of three grass species to cadmium and other metals // Env.Exp. Bot. 1986.V.26.P.309−319.
  126. Hinesly T.D., Alexander D.E., Redborg K.E., Liegler E.L. Differential Accumulation of Cd and Zn by Corn Hybrids Grown on Soil Ammended with Sewage Sludge //Agronomy J. 1982.V.74.P.469−474.
  127. Hirt H., Sommergruber K., Barta A. Effects of Cadmium on tobacco: Synthesis and Regulation of Cadmium-binding Peptides // Biochem. Physiol. Pflanzen. 1990.V.186,N 3.P.153−163.
  128. Hollenbach B., Schreiber L., Hartung W., Dietz K.-J. Cadmium leads to stimulated expression of the lipid transfer protein genes in barley: implications for the involvement of lipid transfer proteins in wax assembly //Planta. 1997.V.203.P.9−19.
  129. Hoxha Y., Jablanovic M., Abdullai K., Filipovic R. Catalase activity in plants exposed to contomination with heavy metal //Acta Biol. Medica Experimentalis. 1985.V.10.P.21−24.
  130. Huang C.-Y., Bazzaz F.A., Vanderhoef L.N. The Inhibition of Soybean Metabolism by Cadmium and Lead//Plant.Physiol. 1974.V.54,N. LP. 122 124.
  131. Huang J.W.W., Chen J.J., Berti W.R., Cunningham S.D. Phytoremediation of lead contaminated soils role of synthetic chelates in lead phytoextraction //Envir.Sci.Technol. 1997.V.31,N.3.P.800−805.
  132. Huisinga B., Knijff A.M.W. On the function of the Casparian strips in roots //Acta Bot.Neerl. 1974.V.23,N.2.P. 171 -175.
  133. Ibakwe A.M., Angle J.S., Chaney R.L., Vanberkum P. Zinc and cadmium toxicity to alfalfa and its microsymbiont // J.Env.Qual. 1996. V.25,N.5. P. 1032−1040.
  134. Iglesias A.A., Andreo C.S. Inhibition of Zea mays phosphoenolpyruvate carboxylase by cupper and cadmium ions //Photosynthetica. 1984. V.18,N.1.P.134−138.
  135. Ivanov V.B. Root growth responses to chemicals // Sov. Scient. Rev. Ser. D. 1994.P.1−70.
  136. Ivanov V.B., Bystrova E.I., Obroucheva N.V., Antipova O.V., Sobotik M., Bergmann H. Growth response of barley roots as an indicator of lead-toxic effects // Angew.Bot. 1998. V.72.P. 140−143.
  137. Jarvis S.C., Jones L.H.P., Hopper M.J. Cadmium uptake from solution by plants and its transport from roots to shoots //Plant and Soil. 1976. V.44,N. l.P. 179−191.
  138. Kacabova P., Nart L. Effect of Lead on Growth Characteristics and Chlorophyll Content in Barley Seedlings //Photosynthetica.1986. V.20, N.4. P.411−417.
  139. Karataglis S.S., McNeilly T., Bradshaw A.D. Lead and Zink Tolerance of Agrostis capillaris L. and Festuca rubra L. Across a Mine Pasture Bondary at Minera, North Wales //Phyton. 1986.V.26.P.65−72.
  140. Karataglis S. Estimation of the Toxicity of Different Metals, Using as Criterion the Degree of Root Elongation in Triticum aestivum Seedlings //Phyton. 1987. V.26,N.2.P.209−217.
  141. Karel V., Karel D. Sorpce a Kumulace medi, zinku a kadmia vodnim hyacintem a babelkou rezanovition//Vod.Hosp. 1990.V.40.P.519−522 .
  142. Kawasaki T., Moritsugu M. Effect of calcium on the absorption and translocation of heavy metals in excised barley roots: Multicompartment transport box experiment //Plant and Soil. 1987.V.100.P.21−34.
  143. Keck R.W. Cadmium Alteration of Root Physiology and Potassium Ion Fluxes // Plant Physiol. 1978.V.62,N. l.P.94−96.
  144. Khan D.N., Duckett J.G., Frankland B., Kirkham J.B. An X-ray Microanalytical Study of the Distribution of Cadmium in Roots of Zea mays L. //Plant.Physiol. 1984.V. 115.P. 19−28.
  145. Kiyosue T., Takano K., Kamada H., Harada H. Induction of somatic embryogenesis in carrot by heavy metal ions //Can.J.Bot. 1990.V. 68, N.10. P.2301−2303.
  146. Klapheck S., Fliegner W., Zimmer I. Hydroxymethyl-phytochelatins (y-glutamylcysteine)n-serine. are metal-induced peptides of the Poaceae //Plant Physiol. 1994.V.104.P. 1325−1332.
  147. Klapheck S., Schlunz S., Bergmann L. Synthesis of Phytochelatins and Homo-Phytochelatins in Pisum sativum L. //Plant Physiol. 1995. V.107. P. 515−521.
  148. Kocjan G., Samardakiewicz S., Wozny A. Regions of lead uptake in Lemna minor plants and localization of this metal within selected parts of the root // Biol. Plant. 1996. V.38,N.1.P.107−117.
  149. Kopsinska J., Golinowski W. The structure of endodermis during the development of pea (Pisum sativum L.) roots // Acta Soc.Bot.Pol. 1987. V.56, N.l.P.l 1−18.
  150. Krotz R.M., Evangelou B.P., Wagner G.J. Relationships bettween Cadmium, Zinc, Cd-Peptide, and Organic Acid in Tobacco Suspention cells //Plant Physiol. 1989 .V.91.P.780−787.
  151. Ksiazek M., Wozny A. Lead Mouvement in Poplar Adventions Roots // Biol. Plant. 1990.V.32,N l.P.54−57.
  152. Kuboi T., Noguchi A., Yazaki J. Family-dependent cadmium accumulation characteristics in higher plants //Plant and Soil.1986.V.92.P.405- 415.
  153. Kuboi T., Noguchi A., Yazaki J. Relationship bettween tolerance and accumulation characteristics of cadmium in higher plants //Plant and Soil.1987.V.104,N.2.P.275−280.
  154. Kumar P.B.A.N., Dushenkov V., Motto H., Raskin I. Phytoextraction: The Use of Plants To Remove Heavy Metals from Soils // Environ.Sci.Technol. 1995.V.29,N.5.P. 1232−1238.
  155. Kurkova E.B. Distribution of plasmodesmata in root epidermis // Structure and Function of Plant Roots. Ed: R. Browwer et al. 198 l.P. 107−109.
  156. Lane S.D., Martin E.S. A Histochemical investigation of Lead Uptake in Raphanus sativus IINew Phytol. 1977.V.79,N 2.P.281−286.
  157. Lane S.D., Martin E.S., Garrod J.P. Lead toxicity effect on indole-3-acetic acid-induced cell elongation //Planta. 1978.V.144.P.79
  158. Lane S.D., Martin E.S. An Ultrastructural Examination of Lead Lacolization in Germinating Seeds of Raphanus sativus II Z. Pflanzenphysiol. 1982. V.107.P.33−40.
  159. Leblova S., Mucha A., Spirhanzlova E. Compartmentation of cadmium, copper, lead and zinc in seedlings of maize (Zea mays) induction of metallothionein //Biologia (Bratislava). 1986.V.41,N.8.P.777- 785.
  160. Lee A.H., Sharon B., Eddy R. Incresed template activity in chromatin from cadmium chloride treated pea tissue // Biochem. Biophys.Res.Communs. 1973.V.50,N.4.P.1120−1126.
  161. Leita L., Marchiol L., Martin M., Petessotti A. Transpiration Dynamics in cadmium treated soybean (Glycine max L.) plants // J.Agron.Crop Sci. Zeitschrift Acker Pflanzenban. 1995. V. 175.N.3.P. 153−156.
  162. Leita L., Denobili M., Cesco S., Mondini C. Analysis of intercellular cadmium forms in roots and leaves of bush bean //J. Plant Nutr. 1996. V. 19, N.¾.P.527−533.
  163. Lepp N.W. Interections between Cadmium and other Heavy Metals in affectiny the Growth of Lettuce (Lactuca sativa L.) Seedlings // Z. Pflanzenphysiol. 1977.V.84.P.363−367.
  164. Liu D., Jiang W., Wang W., Zhai L, Lu C. Effects of lead on root growth, cell division, and nucleolus of Allium cepa //Environ. Pollut. 1994. V.86, N.l.P.1−4.
  165. Liu D., Jiang W., Wang W., Zhai L. Evaluation of metal ion toxicity on root tip cells by the Allium test //Israel J. Plant Sci. 1995.V.43.P.125−133.
  166. MacLeod R.D., McLachlan S.M. Tritiated-thymidine Labelled Nuclei in Primordia and Newly-emerged Lateral Roots of Vicia faba L. // Ann.Bot. 1975.V.39.P.535−545.
  167. Malone C., Koeppe D.E., Miller J. Localization of Lead Accumulated by Corn Plants //Plant Physiol. 1974.V.53.P.388−394.
  168. Marcenko E. Cadmium cytotoxicity and resistance in Euglena gracilis //Acta Bot.Croat. 1986.V.45.P.33−42.
  169. McCully M.E., Canny M.J. Pathways and processes of water and nutrient movement in roots //Plant and Soil. 1988.V.111 .P. 159−170.
  170. McCully M. How Do Real Roots Work? Some New Views of Root Structure//Plant Physiol. 1995.V.109. N.l. P. 1−6.
  171. Meharg A.A. The role of plasmalemma in metal tolerance in angiosperms //Physiol.plant. 1993. V.88.P. 191−198.
  172. Meharg A.A. Integrated tolerance mehanisms: constitutive and adaptive plant responses to elevated metal concentrations in the environment // Plant, Cell Environ. 1994.V.17.P.989−993.
  173. Mench M., Morel J.L., Guckert A. Metal binding properties of high molecular weight soluble exudates from maize (Zea mays) roots //Biol. Fertil. Soils. 1987.V.3.P.165−169.
  174. Miles L.I., Parker G.R. Effect of soil Cd Addition on termination of Native Plant Species //Plant and Soil. 1980.V.54,N.27.P.243- 247.
  175. Miller R.J., Bittell J.E., Koeppe D.E. The Effect of Cadmium on Electron and Energy Transfer Reactions in Corn Mitochondria // Physiol. Plant. 1973. V.28,N.l.P.166−171.
  176. Morel J.L., Mench M., Guckert A. Measurement of Pb, Cu and Cd binding with mucilage exudates from maize (Zea mays L.) roots // Biol.Fertil. Soils. 1986.V.2.P.29−34.
  177. Neiboer E., Richardson D.H.S. The replacement of the non-descriptive term «heavy metals» by a biologically and chemically significant classification of metal ions//Environ. Pollut. 1980.V.1.P.3−26.
  178. Nir R., Gasith A., Perry A.S. Cadmium uptake and toxicity to water hyacinth: effect of repeated exposures under controlled conditions // Bull. Environ. Contam.Toxicol. 1990.V.44,N l.P.149−157.
  179. Obata H., Inoue N., Umebayashi M. Effect of Cd on plasma membrane ATPase from plant roots differing in tolerance to Cd // Soil Sci. Plant Nutr.1996. V.42,N.2.P.361−366.
  180. Obata H., Umebayashi M. Effects of cadmium on mineral nutrient concentrations in plant differing in tolerance for cadmium //J.Plant Nutr.1997.V.20.N.1.P.97−105.
  181. Om P., Mehrotra Indu, Kumar P. Removal of cadmium from water by water hyacinth //J.Environ Eng. 1987.V.113,N 2.P.352−365.
  182. Ophus E.M., Gullvag B.N. Localization of lead within leaf cell pf Rhytidiodelphus squarosus (Hedw.) Warnst, by means of transmission electron microscopy and X-ray microanalysis 11 Cytobias. 1974.V.10.P.45−48.
  183. Ouariti O., Gouia H., Ghorbal M.H. Responses of bean and tomato plants to cadmium growth, mineral nutrition, and nitrate reduction //Plant Physiol.Biochem. 1997.V.35,N.5.P.347−354.
  184. Ouzounidou G., Moustakas M., Eleftherion E.P. Physiological and ultrastructural effects of cadmium on wheat (Triticum aestivum L.) leaves // Arch.Env.Contam.Toxicol. 1997.V.32,N.2.P.154−160.
  185. Page A.L., Bingham F.T., Nelson C. Cadmium adsorption and growth of vareous plant species as influenced by solution cadmium concentration // J. Environ.Qual. 1972 .V.1,N.3.P.283−291.
  186. Peterson T.A., Swanson E.S., Hull R.J. Use of Lantanum to Apoplastic Solute Transport in Intact Plants // J. Exp.Bot.1986. V.37,N. 179.P.807−822.
  187. Popelka J.C., Shubert S., Schulz R., Hansen A.P. Cadmium Uptake and Translocation during Reproductive Development of Peanut (Arachis hypogaea L.) //Angew.Bot. 1996.V.70,N.¾.P.140−143.
  188. Poskuta J.W., Parys E., Romanowska E. The effects of lead on the gaseous exchange and photosynthetic carbon metabolism of pea seedlings //Acta Soc.Bot.Pol. 1987. V. 56, N. l.P. 127−137.
  189. Poulter A., Collin H.A., Thurman D.A., Hardwick K. The role of cell wall in the mechanism of lead and zinc tolerance in Antoxanthum odoratum L. //Plant Sci. 1985.V.42.P.61−66.
  190. Prassad D.D.K., Prassad A.R.K. Altered 8-aminolaevulinic acid metabolism by lead and mercury in geminating seedlings of Baira (Pennisetum typhoideum) //?Plant Physiol. 1987.V.127.P.241−149.
  191. Preer J.R., Abdi A.N., Sekhon H.S., Murchison G.B. Metals in urban gardens effect of lime and sludge // J.Env. Sci. Health. 1995.V.30,N.9.P. 2041 -2056.
  192. Przymusinski R., Rucinska R., Gwozdz E.A. The stress sti-mulated 16 kDa polypeptide from lupin roots has properties of cytosolic Cu: Zn-superoxide dismutase//Environ.Exp.Bot. 1995.V.35,N.4.P.485−495.
  193. Punz W.F., Sieghardt H. The response of roots of herbaceous plant species to heavy metals //Environ.Exp.Bot. 1993.V.33.P.85−95.
  194. Pzugarova A., Kovac M. Investigation on lead and cadmium binding to gluteuproteins of wheat flour//Nahrung. 1990.V.34,N.1.P.103−106.
  195. Qureshi J.A., Collin H.A., Hardwick K., Thurman D.A. Metal Tolerance in Tussue Cultures of Anthoxanthum odoratum IIPlant. Cell. Reports. 1981. V.l.P.80−82.
  196. Qureshi J.A., Hardwick K., Collin H.A. Intracellular Localization of Lead in a Lead Tolerant and Sensitive Clone of Anthoxanthum odoratum II Plant.Physiol. 1986.V.122.N. 4.P.357−364.
  197. Radecki J., Banaszkiewicz T., Klasa A. The effect of different lead compounds on mitotic activity of maize root tip cells //Acta Physiol.plant. 1989.V.11,N.2.P.125−130.
  198. Ratsch H.C., Johndro D. Comparative toxicity of test chemicals to lettuce using two root elongation test methods //Environ. Monitoring and Assessment. 1986. V.6.P.267−276.
  199. Rauser W.E., Ackerley C.A. Localization of cadmium in granuls within differentiating and mature root cells //Can.J.Bot. 1987.V.65,N.4.P.643−646.
  200. Rauser W.E., Meuwly P. Retention of cadmium in roots of maize seedlings. Role of complexation by phytochelatins and related thiol peptides//Plant.Physiol. 1995.V.109.N. l.P.195−202.
  201. Rauser W.E. Phytochelatins and Related Peptides: Structure, Biosynthesis and Function //Plant Physiol. 1995 .V. 109, NAP. 1141−1149.
  202. Reese R.N., Roberts L.M. Effect of cadmium on whole cell and mitochondrial respiration in tobacco cell suspention cultures (Nicotiana tobacum L. var. Xanthi)//J.Plant Physiol. 1985.V.120.N.2.P. 123−130.
  203. Reese R.N., McCall R.D., Roberts L.W. Cadmium-induced ultrastrastructural changes in suspention-cultured tobacco cells (Nicotiana tabacum var. Xanthi) //Environ. Exp. Bot. 1986.V.26,N 2, p. l69−173.
  204. Robinson N.J., Wilson J.R.Turner J.S., Fordham-Skeleton A.P., Groom Q.J. Responses of roots to Metals: Biochemistry and Genetics //Plant roots-from cells to systems 14th Long Ashton international symposium. 1995. P.29−30 Bristol.
  205. Robinson N.J., Tommey A.M., Kuske C., Jackson P.J. Plant metallo-thioneins //Biochem.J. 1993.V.295.P.1−10.
  206. Roderer G. On the toxic effects of tetraethyllead and its derivatives on the Chrysophate Ptenoochromonas melhamensis. II. Triethyllead, diethyllead and inorganic lead//Environ.Res. 1981.V.25.P. 360−370.
  207. Sajwan K.S., Ornes W.H., Youngblood T.V., Alva A.K. Uptake of soil applied cadmium, nickel and selenium by bush beans //Water Air Soil Pol. 1996. V.91,N.¾.P.209−217.
  208. Salt D.E., Blaylock M., Kumar N.P.B.A., Dushenkov V., Ensley B.D., Chet I., Raskin I. Phytoremediation: A Novel Strategy for the Removal of Toxic Metals from the Environment Using Plants//Biotechnology. 1995. V.13. P.468−474.
  209. Salt D.E., Prince R.C., Pickering I.J., Raskin I. Mechanisms of Cadmium Mobility and Accumulation in Indian Mustard //Plant Physiol. 1995. V.109.P. 1427−1433.
  210. Samardakiewicz S., Strawinski P., Wozny A. The influence of lead on callose formation in roots of Lemna minor L. //Biol. Plant. 1996. V.38, N.3. P.463−467.
  211. Schreinemakers W.A.C. The interaction between Cd-absorption and Cd-compartmentation in Wolffiella cladiata //Acta Bot.Neerl. 1986. V.35, N.l.P. 23−34.
  212. Sela M., Tel-Or E., Fritz E., Huttermann A. Localization and Toxic Effects of Cadmium, Copper, and Uranium in Azolla //Plant Physiol. 1988. V.88, N.l. P.30−36.
  213. Sela M., Garty J., Tel-Or E. The accumulation and the effect of heavy metals on the water fern Azolla filiculoides //New Phytol. 1989. V.112, N.l.P.7−12.
  214. Senden M.H.M.N., Vandermeer A.J.G.M., Verburg T.G., Wolterbeek H.T. Citric acid in tomato plant roots and its effect on cadmium uptake and distribution//Plant and Soil. 1995.V.171,N.2.P.333- 339.
  215. Shah K., Dubey R.S. Effect of cadmium on RNA level as well as activity and molecular forms of ribonuclease in growing rice seedlings //Plant Physiol. Bioch. 1995.V.33,N.5.P.577−584.
  216. Sharpe V., Denny P. Electron microscope studies on the absorption and localisation of lead in the leaf tissue of Potamogeton pectinatus L. // J.Exp. Bot. 1976.V.27.P.1155−1162.
  217. Shaw A.J. Metal tolerances and cotolerances in the moss Funaria hygrometrica //Can.J.Bot. 1990.V.68.P.2275−2282.
  218. Simon L., Martin H.W., Adriano D.C. Chicory (Cichorium intybus) and dandelion (Taraxacum officinale Web.) as phytoindicators of cadmium contamination //Water Air Soil Pol. 1996.V.91,N.¾.P.351−362.
  219. Skaar H., Ophus E., Gullvag B.M. Lead Accumulation within Nuclei of Moss Leaf Cells //Nature. 1973.V.241, N. 5384.P.215−216.
  220. Southworth A., Siccama T.G. The Fate of Lead And Other Trace Metals In New England Soils//Belowground Ecology. 1991.V.2,N.1.P.10−12.
  221. Srivastava A., Jaiswal V.S. Biochemical changes in duck weed after cadmium treatment//Water, Air and Soil Pollut. 1990.V.50.P.163−170.
  222. Stiborova M., Doubravova M., Brezinova A., Friedrich A. Effect of Heavy Metal Ions on Growth and Biochemical characteristics of Photosynthesis of Barley (Hordeum vulgare L.)//Photosynthetica. 1986. V.20. N.4.P. 418−425.
  223. Stiborova M. Cd2+ ions affect the quaternary structure of ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase from barley leaves // Bioch. Physiol.Pflanzen. 1988.V.183.P.371−378.
  224. Stobart A.K., Griffiths W.T., Ameen-Bukhari I., Sherwood R.P. The effect of Cd2+ on biosynthesis of chlorophyll in leaves of barley // Physiol, plant. 1985. V.63.P.293−298.
  225. Stoyanova D.P., Tchakalova E.S. The effect of lead and copper on the photosynthetic apparatus in Elodea canadensis Rich. // Photosynthetica. 1993. V.28. P.63−74.
  226. Symeonidis L., Karataglis S. Interactive effects of cadmium, lead and zinc on root growth of two metal tolerant genotypes of Holcus lanatus L. //BioMetals. 1992.V.5.P.173−178.
  227. Theiss H.-B. Localisation of Lead in Seedlings of Lepidium sativum II Sci. Tech. Inform. 1990.V.IX, N.7.P.246−252.
  228. Titov A.F., Talanova V.V., Boeva N.P. Growth responses of barley and wheat seedlings to lead and cadmium//Biol. Plant. 1996. V.38,N.l. P. 431−436.
  229. Tomsett A.B., Thurman D.A. Molecular biology of metal tolerances of plants //Plant, Cell and Environ. 1988.V.1 l, N.5.P.383−394.
  230. Tu Shu I, Brouillet J.N. Metal ion inhibition of corn root plasma membrone ATPase//Phytochemistry. 1987.V.26,N l.P.65−69.
  231. Tukendorf A., Rauser W.E. Changes in glutathione and phytocheletins in roots of maize seedlings exposed to cadmium // Plant.Science. 1990. V.70, N 1. P.155−166.
  232. Tung G., Temple P.J. Uptake and localization of lead in corn (Zea mays L.) seedlings, a study by histochemical and electron microscopy // Sci.Total. Env. 1996.V.188,N.2/3.P.71−85.
  233. Vakhmistrov D.B. Specialization of root tissues in ion transport //Structure and Function of Plant Roots Ed: R. Browwer. 1981.P.203−208.
  234. Van Assche F., Glijsters H. Effects of metals on enzyme activity in plants //Plant, Cell and Environ. 1990.V.13.N.3.P. 195−206.
  235. Varney G.T., McCully M.E., Canny M.J. Sites of entry of water into the symplast of maize roots //New Phytol.1993. V.125. P.733−741.
  236. Verkley J.A.C., Koevoets P., Van T., Riet J., Bank R., Nigdam, Ernst W.H.O. Poly (y -glutamylcysteinyl)glycines or phyto-chelatins and their role in cadmium tolerance of Silene vulgaris II Plant. Cell and Environ. 1990. V.13.P.913−921.
  237. Vojtechova M., Leblova S. Uptake of Lead and Cadmium by Maize Seedlings and the Effect of Heavy Metals on the Activity of Phosphoenolhyruvate carboxylase Isolated from Maize //Biol.Plant. 1991. V.33,N.5.P.386−394.
  238. Walker W.M., Miller J.E., Hassett J.J. Effect of lead and cadmium upon the calcium, magnesium, potassium and phosphorus concentration in young corn plants // Soil Sci. 1977.V. 124.P. 145−151.
  239. Wang W. Root elongation method for toxicity testing of organic and inorganic pollutants // Environ.Toxicol.Chem. 1987.V.6.P. 409−414.
  240. Weigel H.J., Jager H.J. Subcellular Distribution and Chemical Form of Cadmium in Bean Plants //Plant Physiol. 1980.V.65.P.480−482.
  241. Waigel H.J. The effect of Cd2+ on photosynthetic reactions of mesophyll protoplasts //Physiol.plant. 1985.V.63.P.192−200.
  242. Wierzbicka M. Ultrastructural location of lead in the cell walls of Allium cepa L. roots //Postepy Biologii Komorki. 1984.T.III. N 3−4.P.509−512.
  243. Wierzbicka M. Lead translation and localization in Allium cepa roots // Can. J.Bot. 1987.V.65,N. 9.P.1851−1860.
  244. Wierzbicka M. Lead accumulation and its translocation barriers in roots of Allium cepa L. autoradiographic and ultrastructural studies // Plant, Cell and Environ. 1987.V.10.P.17−26.
  245. Wierzbicka M. Disturbances in cytokinesis caused by inorganic lead // Environ.Exp.Bot. 1989. V.29,N.2.P. 123−133.
  246. Wierzbicka M., Antosiewicz D. How lead can easily enter the food chain -a study of plant roots // Sci. Total Environ.Suppl. 1993.P.423−429.
  247. Wierzbicka M. Resumption of metotic activity in Allium cepa root tips during treatment with lead salts // Environ.Exp. Bot. 1994.V.34,N.2.P.173−180.
  248. Wierzbicka M., Obidzinska J. The effect of lead on seed imbitions and germination in different plant species // Plant Sci. 1998.V.137, N 2.P. 155 171.
  249. Willkins D.A. The measurment of tolerance to edaphic factors by means of root growth // New Phytol. 1978.V.86,N.3.P.623−633.
  250. Wojtyla-Kuchta B., Gabara B. Changes in the Content of DNA and NYS-stained Nuclear, Nucleolar and Cytoplasmic Proteins in Cortex Cells of Pea {Pisum sativum cv. De Grace) Roots Treated with Cadmium // Bioch. Physiol.Pflanzen. 1991.V.187.P.67−76.
  251. Wong M.N., Bradshaw A.D. A comparison of toxicity of heavy metals, using root elongation of rye grass, Lolium perenne II New Phytol. 1982. V.91. P.255−261.
  252. Wong J.S., Lam H.M., Dhillion E., Tam N.F.Y., Leung W.H. Physiological effect and uptake of cadmium in Pisum sativum II Environ. Int. 1988. V.14. P.535−543 .
  253. Wozny A., Zatorska B., Mlodzianowski F. Influence of lead on the development of lupin seedlings and ultrastructural localization of this metal in the roots //Acta Soc.Bot.Pol. 1982.V.51,N.3−4.P. 345−351.
  254. Wozny A., Jerczynska E. The Effect of Lead on Early Stage of Phaseolus vulgaris L. Growth in vitro Conditions //Biol.plant. 1991.V.33, N.l. P.32−39.
  255. Wu L., Antonovics J. Experimental ecological genetics in Plantago. II. Lead tolerance in Plantago lanceolata and Cynodon dactylon from a roadside // Ecology. 1976.V.57.P.205−208.
  256. Yang X., Baligar V.C., Martens D.C., Clark R.B. Influx, transport and accumulation of cadmium in plant species grown at different Cd2+ activities //J.Env.Sci.Health. 1995.V.30,N.4.P.569−583.
  257. Yang X., Baligar V.C., Martens D.C., Clark R.B. Cadmium effects on influx and transport of mineral nutrients in plant species // J. Plant Nutr. 1996.V. 19, N.¾.P.643−656.
  258. Yasmin H., Kumar S.A., Rai L.S. Cadmium toxicity to photosynthesis and associated electron transport system of Nostoc linckia // Bull.Environ. Contam. and Toxicol. 1991.V.46,N l.P.146−150.
  259. Zeier J., Schreiber L. Chemical Composition of Hypodermal and Endodermal Cell Walls and Xylem Vessels Isolated from Clivia miniata. Plant Physiol. 1997.V.113,N.4.P. 1223−1231.
  260. Zheljazkov V.D., Nielsen N.E. Effect of heavy metals on peppermint and cornmint // Plant and Soil. 1996. V.178.N.1 .P. 12−20.
  261. И.В., Иванов В. Б. Гистохимические методы изучения распределения кадмия и свинца в растениях // Физиол. раст. 1997. Т.44, N.6. С. 915−921.
  262. И.В., Иванов В. Б. Является ли барьерная функция эндодермы единственной причиной устойчивости ветвления корней к солям тяжелых металлов // Физиол.раст. 1997. Т.44, N.6. С.922−925.
  263. И.В., Иванов В. Б. Барьерная роль эндодермы при поступлении Cd и РЬ в корень //Труды Междунар. конф по анатом, и морфол. раст. С.-П. 2−6 июня 1997. С.40−41.
  264. И.В., Иванов В. Б. Передвижение ионов кадмия и свинца по тканям корня // Физиол.раст. 1998. Т.45, N.6. С.899−905.
  265. Obroucheva N.V., Bystrova E.I., Ivanov V.B., Antipova O.V., Seregin I.V. Root growth responses to lead in young maize seedlings // Plant and Soil. 1997. V. 200. P.55−61.
  266. Sobotic M., Ivanov V.B., Obroucheva N.V., Seregin I.V., Martin M.L., Antipova O.V., Bergmann H., Barrier role of root system in lead exposed plants //Angew.Bot. 1998. V.72. P. 144−147.
  267. Obroucheva N.V., Antipova O.V., Ivanov V.B., Seregin I.V., Bystrova E.I., Sobotik M., Bergmann Y. Root growth inhibition by lead // Int.Symp. on Structure and Function of Roots. Slovakia. 1998. P.81.
  268. Obroucheva N.V., Ivanov V.B., Sobotik M., Bergmann Y., Antipova O.V., Bystrova E.I., Seregin I.V., Shpigun L.K. Lead effects on cereal roots in terms of cell growth, root architecture and metal accumulation //Plant and Soil (в печати).
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!