Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Устойчивость ценозов Cyperus esculentus L. к супероптимальной температуре в зависимости от основных факторов внешней среды

Диссертация: Устойчивость ценозов Cyperus esculentus L. к супероптимальной температуре в зависимости от основных факторов внешней среды
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В дальнейшем, в фазе адаптации, в зависимости от условий проведения эксперимента, происходило или необратимое повреждение надземной части растений (в случае 44 ч стресса при регулярном поливе через 6 ч питательным раствором с температурой 18°С) или приспособление к новым светотемпературным условиям при регулярном поливе через 3 ч. При этом при 150 Вт/м2 ФАР у ценозов чуфы на растворе Кнопа через… Читать ещё >

Устойчивость ценозов Cyperus esculentus L. к супероптимальной температуре в зависимости от основных факторов внешней среды (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. ПРОБЛЕМА УСТОЙЧИВОСТИ РАСТЕНИЙ К ВЫСОКОЙ ТЕМПЕРАТУРЕ НА РАЗЛИЧНЫХ УРОВНЯХ ОРГАНИЗАЦИИ И ЭКОЛОГО-ФИЗИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСОБЕННОСТИ РАСТЕНИЙ ЧУФЫ (Сурегш езсЫеМш Ь.)
    • 1. 1. Общее понятие стресса у растений
    • 1. 2. Устойчивость растений к высокой температуре
      • 1. 2. 1. Клеточные механизмы устойчивости к ТШ
      • 1. 2. 2. Устойчивость к ТШ на уровне целого растения
      • 1. 2. 3. Устойчивость к ТШ на уровне ценоза
    • 1. 3. Основные свойства и физиологические особенности растений чуфы (Сурегш е$си1еЫш Ь.)
  • ГЛАВА 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Объект исследования и условия выращивания растений
    • 2. 2. Условия проведения ТШ
    • 2. 3. Методы оценки состояния растений
      • 2. 3. 1. Методика определения параметров внешнего газообмена растений чуфы (Сурегш еБсШеМш Ь.)
      • 2. 3. 2. Методика определения содержания пигментов в листьях растений чуфы (Сурегш еяси1еЫш Ь.)
      • 2. 3. 3. Методика измерения импульсно-модулированной флуоресценции хлорофилла ФС 2 листьев растений чуфы
      • 2. 3. 4. Методика определения интенсивности перекисного окисления липидов в листьях растений чуфы (Сурегш еБсЫеМш Ь.)
      • 2. 3. 5. Методика определения минерального и биохимического состава растений чуфы (Сурегш еясикпШя Ь.)
  • ГЛАВА 3. ОЦЕНКА ВРЕМЕННЫХ ПРЕДЕЛОВ УСТОЙЧИВОСТИ РАСТЕНИЙ ЧУФЫ (Сурегш е^сикШш Ь.) К ВОЗДЕЙСТВИЮ ТЕМПЕРАТУРЫ ВОЗДУХА 45°С
    • 3. Л. Температурные кривые видимого фотосинтеза растений чуфы (Сурегш езсикЫш Ь.)
      • 3. 2. Влияние 44 ч ТШ на С02-газообмен растений чуфы (Сурегш езсиЫШш Ь.)
      • 3. 3. Влияние 6 ч ТШ на С02-газообмен растений чуфы (<Сурегш еяайеЫш Ь.)
      • 3. 4. Влияние 44ч ТШ на С02-газообмен растений чуфы (Сурегш ехайеЫш Ь.) при регулярном поливе через 3 ч
  • Выводы к главе
  • ГЛАВА 4. ВЛИЯНИЕ 20 Ч ТШ НА УСТОЙЧИВОСТЬ РАСТЕНИЙ ЧУФЫ {Сурегш еяси1еШш Ь.) К ВОЗДЕЙСТВИЮ ПОВЫШЕННОЙ ТЕМПЕРАТУРЫ ВОЗДУХА В ЗАВИСИМОСТИ ОТ ИНТЕНСИВНОСТИ ФАР И УСЛОВИЙ МИНЕРАЛЬНОГО ПИТАНИЯ
    • 4. 1. Влияние минерального состава питательных растворов на массу растений чуфы (Сурегш еясикпНм Ь.) к моменту начала эксперимента
    • 4. 2. Влияние условий минерального питания и интенсивности ФАР на устойчивость СОг-газообмена ценозов чуфы к 20 ч воздействию температурой воздуха 45°С
      • 4. 2. 1. Влияние условий минерального питания при 150 Вт/м ФАР на устойчивость СОг-газообмена ценозов чуфы к 20 ч воздействию температурой воздуха 45°С
      • 4. 2. 2. Влияние условий минерального питания при 250 Вт/м ФАР на устойчивость СОг-газообмена ценозов чуфы к 20 ч воздействию температурой воздуха 45°С
    • 4. 3. Влияние 20 ч ТШ на минеральный и биохимический состав надземной части растений чуфы (Сурегш езсЫепШБ Ь.)
    • 4. 4. Влияние 20 ч ТШ на состояние фотосинтетического аппарата растений чуфы (Cyperus esculentus L.) в зависимости от интенсивности ФАР и условий минерального питания
      • 4. 4. 1. Оценка состояния фотосинтетического аппарата листьев растений чуфы (Cyperus esculentus L.) на основании содержания фотосинтетических пигментов
      • 4. 4. 2. Оценка состояния фотосинтетического аппарата листьев растений чуфы (Cyperus esculentus L.) на основании флуоресцентных параметров
    • 4. 5. Влияние 20 ч ТШ на состояние клеточных мембран растений чуфы (Cyperus esculentus L.) в зависимости от интенсивности ФАР и условий минерального питания
  • Выводы к главе

С началом эры пилотируемых космических полетов перед человечеством встала новая практическая задача: обеспечение искусственной среды обитания для экипажей в гермокабинах ограниченного объема. Со времени зарождения идеи о биологической регенерации среды обитания человека стало общепринятым мнение о том, что непременной составной частью биолого-технической системы жизнеобеспечения (БТСЖО) должны стать ценозы фотоавтотрофных растений (Wheeler et al., 2004; Berkovich et al., 2005; Nelson et al., 2008). В Институте биофизики CO РАН на протяжении длительного времени разрабатываются биолого-технические системы жизнеобеспечения человека, в которых регенерация воды, воздуха и, частично, пищи осуществляется за счет звена высших растений (Gitelson et al., 2003). Включение в состав растительного звена БТСЖО растений чуфы (Cyperus esculentus L.), обусловлено тем, что клубни чуфы являются источником необходимых для человека жиров, в том числе, незаменимых жирных кислот. Содержащееся в клубнях масло близко по качеству к оливковому и арахисовому. Клубни содержат 20—25% (на сухую массу) жиров, до 60% углеводов и около 8% белков (Gitelson et al., 2003).

АКТУАЛЬНОСТЬ ИССЛЕДОВАНИЯ: температура воздуха является одним из основных факторов регулирования процессов роста и развития растений. При функционировании биолого-технических систем жизнеобеспечения (БТСЖО), в состав фотосинтезирующего блока которых входит звено высших растений, важно поддержание температуры в зоне оптимума. Для удовлетворения потребности человека в растительных жирах в состав звена высших растений предполагается включить растения чуфы (Гительзон и др., 1975; Gitelson et al. 2003). В связи с тем, что устойчивость фотосинтезирующего звена к воздействию экстремальных факторов среды определяется устойчивостью входящих в него звеньев, необходимо экспериментально оценить устойчивость растений чуфы к действию тех или иных стресс-факторов. Одним из таких факторов может быть повышение температуры воздуха в БТСЖО (из-за отказов в системе регулирования температуры воздуха) до значений, приводящих к необратимым нарушениям фотосинтетических процессов. Так как одним из возможных способов повышения степени замкнутости массообменных процессов в БТСЖО может быть использование минерализованных плотных и жидких выделений человека в качестве основы для приготовления питательных растворов для выращивания растений, необходимо знать, как это может повлиять на устойчивость растений к действию стресс-фактора. Поэтому важно оценить устойчивость ценозов чуфы к действию повреждающей температуры воздуха в зависимости от условий предварительного выращивании и выяснить возможные способы повышения термоустойчивости.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ, исследование устойчивости растений чуфы (Сурегш еъсиХегйт Ь.) к воздействию супероптимальной температуры воздуха 45 °C в зависимости от условий минерального питания, интенсивности фотосинтетически активной радиации (ФАР) во время стресса и длительности действия стресс-фактора.

ЗАДАЧИ:

1). Оценить устойчивость растений чуфы к кратковременному ступенчатому повышению температуры воздуха в зависимости от условий минерального питания и интенсивности ФАР во время стресса.

2). Оценить влияние воздействия высокой температуры воздуха различной длительности на С02-газообмен, состояние фотосинтетического аппарата и клеточных мембран листьев растений чуфы.

3). Оценить влияние условий минерального питания на С02-газообмен, состояние фотосинтетического аппарата и клеточных мембран листьев растений чуфы во время ТШ.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА. Показано, что в ответ на повреждающее воздействие высокой температуры у ценозов чуфы возникает фаза реакции, длительностью не менее 1 ч. По величине и характеру фазы реакции нельзя судить об адаптационных возможностях ценозов чуфы в фазе реституции.

Показано, что ценозы чуфы, выращенные в условиях интенсивной светокультуры при оптимальных условиях внешней среды, способны выдерживать воздействие температуры воздуха 45 °C в течение 44 ч без необратимых повреждений фотосинтетического аппарата.

Показано, что повышение интенсивности ФАР во время действия стресс-фактора, вне зависимости от условий минерального питания и исследуемой длительности экспериментов, снижает повреждающее воздействие повышенной температуры воздуха.

Установлено, что выращивание ценозов чуфы на питательных растворах, приготовленных на основе минерализованных экзометаболитов человека с преимущественно нитратной формой азота, повышает их устойчивость к действию супероптимальных температур по сравнению с ценозами чуфы, выращенными на растворах, приготовленных на основе минерализованных экзометаболитов с аммонийной и амидной формами азота.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ.

Полученные результаты вносят вклад в представления о физиологии устойчивости ценозов растений к повышенным температурам воздуха в зависимости от условий предварительного выращивания и внешних факторов среды.

Полученные результаты могут быть использованы при создании биолого-технических систем жизнеобеспечения высокой степени замкнутости.

ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

1) Ценозы чуфы способны выдерживать воздействие повышенной температуры воздуха в течение 44 ч без необратимых повреждений фотосинтетического аппарата.

2) Повышение интенсивности ФАР от 150 до 250 Вт/м2 и увеличение частоты периодического охлаждения корнеобитаемого субстрата увеличивает термоустойчивость растений чуфы.

3) Устойчивость растений чуфы к действию температуры воздуха 45 °C зависит от условий минерального питания. Выращивание ценозов чуфы методом гидропоники на керамзите с использованием растворов, приготовленных на основе минерализованных экзометаболитов человека, содержащих азот в аммонийной и амидной формах, понижает устойчивость ценозов к действию температуры 45 °C по сравнению с растениями, выращенными на растворах, содержащих азот в нитратной форме.

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ.

Результаты исследований были доложены на VI-й Международной научной конференции, г. Минск, Белоруссия в 2009 гна 38-й Международной конференции Коспар в г. Бремен, Германия в 2010 гна Всероссийской, с международным участием, конференции молодых ученых, посвященной 90-летию Уральского государственного университета им. A.M. Горького, г. Екатеринбург, Россия в 2010 гна конференции молодых ученых Института биофизики СО РАН, г. Красноярск, Россия в 2010 гна Всероссийском симпозиуме «Растение и стресс», Москва, Россия в 2010 гна VII Съезде Общества физиологов растений России, г. Нижний Новгород, Россия 2011 г.

ПУБЛИКАЦИИ. По теме диссертационной работы было опубликовано 9 печатных работ, из них 4 печатные работы опубликованы в журналах, рекомендуемых ВАК РФ (2 статьи в журналах, издаваемых в России и 2 в журналах, издаваемых за рубежом).

ВКЛАД АВТОРА. Проведение экспериментов, обработка и анализ полученных результатов, подготовка публикаций.

ОБЪЕМ И СТРУКТУРА РАБОТЫ. Диссертационная работа изложена на 127 страницах, состоит из введения, обзора литературы (1 глава),.

ВЫВОДЫ.

1. Воздействие повреждающей температуры воздуха в течение 44 ч при 150 Вт/м2 ФАР при поливе через каждые 6 ч приводило к необратимым повреждениям ФСА и отмиранию листьев растений чуфы. В дальнейшем рост растений возобновлялся за счет появления новых листьев.

2. Увеличение частоты периодического охлаждения корнеобитаемого субстрата в 2 раза за счет полива ценозов чуфы питательным раствором увеличивает термоустойчивость ценозов чуфы. Вне зависимости от интенсивности ФАР, воздействие температурой воздуха 45 °C, как в течение 20 ч, так и в течение 44 ч, при регулярном поливе не приводило к значительным повреждениям фотосинтетического аппарата растений чуфы.

3. Выращивание ценозов чуфы на растворе минерализованных экзометаболитов человека снижало их термоустойчивость по сравнению с растениями, выращенными на растворе Кнопа. При выращивании на растворе минерализованных экзометаболитов человека с преимущественно нитратной формой азота повреждающее воздействие высокой температуры было меньше, чем при выращивании на растворах с аммонийной и амидной формами азота.

4. Повышение интенсивности ФАР во время действия повышенной температуры воздуха существенно увеличивало термоустойчивость ценозов чуфы. Степень увеличения термоустойчивости зависела от состава питательного раствора, на котором были выращены ценозы чуфы. Наиболее отзывчивыми на повышение интенсивности ФАР во время ТШ оказались ценозы чуфы, выращенные на растворах, приготовленных на основе минерализованных экзометаболитов человека с аммонийной и амидными формами азота.

5. Включение в состав БТСЖО растений чуфы позволит не только ввести в состав диеты экипажа растительные жиры высокого качества, но и существенно повысить термоустойчивость фотосинтезирующего звена, обеспечив, в определенных пределах, нормализацию газового состава воздушной среды при нарушении системы терморегулирования.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Проведенные исследования реакции ценозов чуфы, сформированных в условиях интенсивной светокультуры, при постоянных оптимальных параметрах внешней среды, на длительное (до 44 ч) воздействие повреждающей температурой воздуха показали, что стресс у ценозов чуфы, в соответствии с теорией Селье, проходил в 3 фазы. Длительность фазы реакции продолжалась около 1−2 часов и мало зависела от условий минерального питания и интенсивности ФАР во время действия стресса. Длительность фазы реституции зависела как от условий минерального питания, так и от интенсивности ФАР во время стресса. Наиболее длительным период реституции был у ценозов чуфы, выращенных на растворах, приготовленных на основе минерализованных экзометаболитов и составлял примерно 8 ч, в то время как у ценозов, выращенных на растворе Кнопа, он составлял около 5 ч. Повышение интенсивности ФАР ускоряло процессы восстановления, а увеличение частоты периодического охлаждения корнеобитаемого субстрата за счет полива растений питательным раствором в сочетании с увеличением интенсивности ФАР значительно увеличивало термоустойчивость ценозов чуфы.

В дальнейшем, в фазе адаптации, в зависимости от условий проведения эксперимента, происходило или необратимое повреждение надземной части растений (в случае 44 ч стресса при регулярном поливе через 6 ч питательным раствором с температурой 18°С) или приспособление к новым светотемпературным условиям при регулярном поливе через 3 ч. При этом при 150 Вт/м2 ФАР у ценозов чуфы на растворе Кнопа через 20 ч ТШ интенсивность Рвид почти полностью вернулась к исходному значению, на растворе с минерализованными экзометаболитами преимущественно с нитратной формой N в растворе интенсивность Рвид составила 55% от исходной величины, а на растворе с аммонийной и амидной формами N была близка к 0. При 250 Вт/м2 ФАР интенсивность РВИд. стала фактически равна интенсивности Рвид. до стресса при 150 Вт/м ФАР у ценозов, выращенных на минерализованных экзометаболитах с аммоний и амидной формами азота, в остальных вариантах была выше исходных значений.

В ранее проведенных в Институте биофизики исследованиях по оценке термоустойчивости ценозов пшеницы и редиса было показано, что воздействие температурой воздуха 45 °C в течение 20 ч приводило к необратимым повреждениям фотосинтетического аппарата и гибели растений. Ценозы этих растений оказались способны пережить температурный стресс без необратимых повреждений процессов роста и развития только в течение 7 ч (Ushakova, Tikhomirov, 2002). Таким образом, ценозы чуфы, как и предполагалось, имеют более высокую термоустойчивость по сравнению с ценозами пшеницы и редиса, выращенными в аналогичных условиях. Поэтому, в случае нарушения системы терморегуляции в процессе функционирования БТСЖО, ценозы чуфы позволят обеспечить нормализацию газового состава воздушной среды, а выращивание растений чуфы на растворах, приготовленных на основе минерализованных экзометаболитов человека, позволит повысить степень замыкания БТСЖО.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Т. В. Балагурова Н.И., Титов А. Ф. Влияние локального прогрева на тепло-, холодо- и солеустойчивость клеток листа и корня растений. // Физиология растений, 1999. Т.46. — № 1. — С. 119 — 123.
  2. Н.Д. Физиология растений: Учебник для вузов/ Н. Д Алехина, Ю. В. Балнокин, В. Ф. Гавриленко и др.: М.: Академия, 2005. -С.530 — 550.
  3. В.Ф. Действие повышенных температур на растения. // Известия Академии Наук СССР, Серия биологическая, 1963. С. 57 — 73.
  4. В.Ф. Действие повышенной температуры на растение в эксперименте и природе. М: Наука, 1981. 56 с.
  5. В.А. Механизмы стресса и перекисное окисление липидов. // Успехи современной биологии, 1991.-Т. 111,-вып.6. С. 923 — 931.
  6. П.С., Мелехов Е. И. Реактивация фотосинтеза в условиях действия и последействия супероптимальных температур. // Физиология растений, 1980. Т.27. вып. 4. — С. 855 — 861.
  7. П.С., Мелехов Е. И. Временной ход фотосинтеза у листа фасоли в условиях прогрева различной продолжительности. // Физиология растений, 1972. Т. 19. — вып. 6. — С. 1193 — 1197.
  8. П.С., Мелехов Е.И.Типы кривых временного хода фотосинеза и их зависимость от силы и длительности прогрева листа. // Физиология растений, 1975. Т. 22. — вып. С. 466.
  9. Биохимия растений / Под ред. Чл.-корр. АН СССР В. Л. Кретовича. -М.: Мир, 1968. С. 262 — 268.
  10. П.Гречкин А. Н., Королев О. С., Курамшин P.A. и др. Новый физиологически активный продукт окисления линолеата в гомогенате листьев гороха 12-оксидодец-9г-еновая кислота. // Докл. АН СССР, 1987.-Т. 297. -№ 5. — С. 1257
  11. А.Н., Кухтина Н. В., Курамшин P.A. и др. Метаболизация 1−14С. коронаровой и [1−14С] верноловой кислот в гомогенате эпикотилей гороха. // Биоорганич. Химия, 1990. Т.16. — № 3. — С. 413 — 418.
  12. А.Н., Курамшин P.A., Ефремов Ю. А. и др. Новые продукты окисления а-линоленовой кислоты липоксигеназой из клубней картофеля. // Докл. АН СССР, 1990. Т. 314. — № 5. — С. 1247 — 1249.
  13. А.Н., Курамшин P.A., Тарчевский И. А. Образование нового а-кетола гидропероксиддегидразой из семян льна. // Биоорганич. Химия, 1991.-Т. 17.-№ 7.-С. 997−998.
  14. А.Н. Пути образования октадеканоидов в высших растениях: Автореф.дис.. д-ра хим. наук. М.: 1992. 39 с.
  15. А.Н., Тарчевский И. А. Липоксигеназная сигнальная система. // Физиология растений, 1999. Т. 46. — № 1. — С. 132−142.
  16. С.Н., Курец В. К. Титов А.Ф. Терморезистентность активно вегетирующихрастений. — Л.: 1984. — 168 с.
  17. Замкнутая система: человек высшие растения / Под ред. Г. М. Лисовского. Новосибирск: Наука, 1979. — С. 50−51.
  18. Г. С., Жила Н. О., Волова Т. Г. Липиды зеленой водоросли Botryococcus в ходе стадийного развития в периодической культуре // Микробиология, 2001. Т. 70. -№ 3. — С. 305−312.
  19. В.Ф. Влияние непрерывного и прерывистого действия повышенной температуры на ультраструктуру хлоропластов пшеницы. // Физиология адаптации растений к температурным условиям среды. / Под ред. В. Ф. Альтергота. Новосибирск: Наука, 1982.-С.5−18.
  20. Ф.Г., Тарчевский H.A., Мурсалимова Н. У., Гречкин А. Н. Влияние продукта липоксигеназного метаболизма -12-гидроксидодеценовой кислоты на фосфорилирование белков растений. //Физиология растений, 1999. Т.46. — № 1. — С.148−152.
  21. С.Ф. Растение в опыте. С. Ф. Коваль, В. П. Шаманин. Омск: ИЦиГ СО РАН, ОмГАУ, 1999. 204 с.
  22. Л.Г., Луценко Э. К., Акимова В. А. Физиология устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды. Ростов-на-Дону: Ростовский университет, Под ред. Мокроносова А. Т. 1993. — 240 с
  23. А.И. Роль температуры в минеральном питании. Л: Гидрометеоиздат, 1972. -281 с.
  24. В.В., Старостенко, Н.В. Ситез белков теплового шока и их вклад в выживание интактных растений огурца при гипертермии // Физиология растений, 1994. Т 41. — № 3. — С. 374 — 380.
  25. В.В. Физиология растений: Учебник для вузов / В. В. Кузнецов, Г. А. Дмитриева: М.: Высшая школа, 2005. — С. 674 — 687.
  26. В.И. Усовершенствование метода определения серы в растительных объектах по Шенигеру / В. И. Кузнецов, H.H. Басаргин, Л. Г. Мясищева // Агрохимия, 1968. № 3. — С. 134−137.
  27. A.C., Голованова B.C. Перекисное окисление липидов у теплолюбивых растений. // Физиология растений, 1988. Т.35. — вып. 4. — С.773 — 780.
  28. A.C. Холодовое повреждение теплолюбивых растений и окислительный стресс. Саранск.: Изд-во Мордовского ун-та, 2002. -208 с.
  29. Е.И., Долгих Т. А., Беликов П. С. Временной ход фотосинтеза в условиях быстрого и медленного нагрева. // Физиология растений, 1979.-Т. 26.-С. 167−172.
  30. И.А. Влияние загущения посевов томата на рост и водный режим стеблей и корней. // Физиология растений, 1975. Т.22. — № 4.г* о 1 с. оос О I U — OiJ.
  31. И.А. Зависимость площади листьев растений в посеве от величины ценотического действия. // Физиология растений, 1976. Т. 23. -№ 3. — С. 588−592.
  32. И.А., Шульгин И. А. Составляющие баланса истинного фотосинтеза томатов в период вегетативной фазы их роста. // Физиология растений, 1977. Т. 24. — № 6. — С. 1140 — 1147.
  33. В.М. Практическое руководство по спектрофотометрии и колориметрии. В. М. Пешкова, М. И. Громова. М.: МГУ, 1961.-173 с.
  34. .П. Биохимия сельскохозяйственных растений. 5-е изд., доп. и перераб. — М.: Агропромиздат, 1987. — С. 254 — 256.
  35. В. Н., Антипина О. В., Трунова Т. И. Перекисное окисление липидов при низкотемпературной адаптации листьев и корней теплолюбивых растений табака. // Физиология растений, 2010. Т.57. -№ 1. — С.153−156
  36. В.В. Физиология растений: Учеб. Для биол.спец.вузов. -Высш. шк., 1989. С. 414 — 424.
  37. Н.С. Методы анализа по фотометрии пламени. Н. С. Полуэктов М.: Химия, 1959. — 230 с.
  38. О.Г. Растительная клетка и активные формы кислорода: учебное пособие / О. Г. Полесская- Под ред. И. П. Ермакова. М: КДУ, 2007. — 140с.
  39. Х.Н. Методы биохимического анализа растений. Киев: тт.,.1 тс ~ауiwioci д^млй, 1 у / и. — jjt
  40. А.Б. Принципы организации и регуляции первичных процессов фотосинтеза. // Тимирязевские чтения. ОНТИ ПНЦ РАН, 1995. 38 с.
  41. Г. Е., Кенжебаева, С.С., Лихтенталер X. К. Адаптационный потенциал фотосинтеза у сортов пшеницы с признаком «свернутый лист» при действии высокой температуры. // Физиология растений, 2010.-Т. 57. — № 1. с. 32−41.
  42. В. Атомно-абсорбционная спектроскопия. Л.: Химия, 1971. -296 с.
  43. Светокультура растений: биофизические и биотехнологические основы. Учеб. Пособие. / Тихомиров А. А., Шарупич В. П., Лисовский Г. М. Новосибирск: Изд-во Сибирского отделения Российской Академии наук, 2000. — С. 23−33.
  44. O.A. Энергетика дыхания растений при повышенной температуре. Л.: Наука, 1974. 112 с.
  45. O.A. Энергетика дыхания растений в норме и при экологическом стрессе. Л.: Наука, 1990. 73 с.
  46. И.А. Регуляторная роль деградации биополимеров и липидов. Физиология растений, 1992. Т. 39. — № 6. — С. 1215 — 1223.
  47. И.А. Катаболизм и стресс у растений. М.: Наука, 1993. 83 с
  48. И.А. Метаболизм растений при стрессе. Избранные труды. Изд."Фэн" (Наука). Казань, 2001. 448 с.
  49. ТарчевскийИ.А. Процессы деградации у растений // Соросовский образовательный журнал, 1996. № 6. — С. 13−19.
  50. А.Ф. Устойчивость растений в начальный период действия неблагоприятных температур. / Титов А. Ф., Акимова Т. В., Таланова
  51. B.В., Топчиева Л.В.- под ред. Н.Н.Немова- Институт биологии КарНЦ РАН. М: Наука, 2006. — 143 с.
  52. A.A., Сидько Ф. Я. Состояние пигментного аппарата и формирование структуры ценозов редиса в связи с их продуктивностью при различной интенсивности и спектре излучения. // Физиология растений, 1989. Т. 29. — № 3. — С. 457 — 463.
  53. Е.В. Влияние повышенной температуры на глутаминсинтетазную активность, содержание белка, аммиачного и амидного азота у овса. // Физиология растений, 1979. Т 26. — вып. 1.1. C. 174- 178.
  54. Х.Г. Оптимальная фотосинтетическая деятельность посевов при ценотическом взаимодействии растений. // Физиология растений, 1982, Т.29, № 5, С. 964−971.
  55. Т.Х., Тооминг Х. Г. Функциональность архитектуры фитоценозов. // Физиология растений, 1985. Т. 32, № 4, С. 629 635.
  56. X. Г. Солнечная радиация и формирование урожая. -Ленинград: Гидрометеоиздат, 1977. 169 с.
  57. Х.Г. Экологические принципы максимальной продуктивности посевов. Ленинград: Гидрометеоиздат, 1984. — 261 с.
  58. Шиленко М. П, Лисовский Г. М., Трубачев И. Н. Чуфа (Cyperus esculentus) как источник растительных жиров в замкнутой системе жизнеобеспечения. // Космическая биология и авиакосмическая медицина, 1979. Т. 5. — С. 70−73.
  59. Н. И. Физиология растений. -М.: Просвещение, 1993.
  60. Ф., Элиальтиглу С., Ильдис К. Действие засоления на антиокислительные защитные системы, перекисное окисление липидов и содержание хлорофилла в листьях фасоли. // Физиология растений, 2008. Т.55. — № 6. — С.869−873.
  61. Al=Khatib К. and Paulsen G. М. High-Temperature Effects on Photosynthetic Processes in Temperate and Tropical Cereals. // Crop science, 1999. V. 39. — P. 119−125.
  62. Bukhov N.G., Christian Wiese, Spidol Neimanis &Ulrich Heber. Heat sensitivity of chloroplasts and leaves: Leakage of protons from thylakoids and reversible activation of cyclic electron transport. // Photosynthesis Research, 1999. -V. 59. P. 81−93.
  63. Camejo D, Rodriguez P, Morales M. A, DeH’Amico J. M, Torrecillas A, Alarcon JJ. High temperature effects on photosynthetic activity of two tomato cultivars with different heat susceptibility. // J Plant Physiol, 2005. -V.162. P. 281−289.
  64. Cheeseman J. M. Hydrogen Peroxide and Plant Stress: A Challenging Relationship. // Plant Stress Global Science Books, 2007. V. 1. — P. 4−15.
  65. Ducrubt J. M. Relation between the heat-indused increase ofFO fluorescence and a shift in the electronic equilibrium at the acceptor side of photosystem 2. // Photosynhetica, 1999. V. 37. — № 2. — P. 335 — 338.
  66. Cheniae GM and Martin IF Site and function of manganese within Photosystem II. Role in 02 evolution and system II. // Biochim. Biophys. Acta, 1970. -V. 197. P. 219−239.
  67. Gitelson I.I., Lisovsky G.M. Manmade Closed Ecological Systems. London -NY: Tailor & Francis, 2003. P. 403.
  68. Gounaris K, Brain ARR, Quinn PJ and Williams W.P. Structural and functional changes associated with heat-induced phase-separations of non-bilayer lipids in chloroplast thylakoid membranes. // FEBS Lett, 1983. V. 153. — P. 47−52
  69. Gounaris K., Brain A. P., Quinn P.J. and Williams W. Structural reorganization of chloroplast thylakoid membranes in response to heat stress. //Biochim. Biophys. Acta, 1984. -V. 766. P. 198−208.
  70. Guo Yan-Ping, Zhou Hui-Fen, Zhang Liang-Cheng. Photosynthetic characteristics and protective mechanisms against photooxidation duringhigh temperature stress in two citrus species. // Scientia Horticulturae, 2006. -V. 108.-P. 260−267.
  71. Dat J., Vandenabeele S., Vranova E., Van Montagu M., Inze D., Van Breusegem F. Dual action of the active oxygen species during plant stress responses. // Cellular and Molecular Life Sciences, 2000. V. 57. — P.779 -795.
  72. Dai Z., Maurice S., Ku. B. and Edwards C. E. C4 Photosynthesis. The Effects of Leaf Development on the CC^-Concentrating Mechanism and Photorespiration in Maize. // Plant Physiol., 1995. V. 107. — P. 815−825.
  73. De Las Rivas J., Barber J., Structure and thermal stability of photosystem II reaction centers studied by infrared spectroscopy. // Biochemistry, 1997. -V. 36.-P. 8897−8903.
  74. De Ronde J.A. D., Cress W.A., Kruger G.H.J., Strasser R.J., Staden J.V., Photosynthetic response of transgenic soybean plants containing an Arabidopsis P5CR gene, during heat and drought stress. // J. Plant Physiol., 2004.-V. 61.-P. 1211−1244.
  75. Jiang M. and Zhang J. Effect of abscisic acid on active oxygen species, antioxidative defence system and oxidative damage in leaves of Maize seedlings. //Plant Cell Physiol., 2001. -V. 42. P. 1265 — 1273.
  76. Karim Md.A., Fracheboud Y. and Stamp P. Photosynthetic activity of developing leaves of Zea mays is less affected by heat stress than that of developed leaves.//Physiologiaplantarum., 1999.-V. 105.-P. 685−693.
  77. Katoh S. and San Pietro A. Ascorbate-supported NADP photoreduction by heated Euglena chloroplasts. // Arch. Biochem Biophys., 1967. V. 122. -P. 144−152.
  78. Kalacheva G.S., Gubanov V.G., Gribovskaya I.V., Gladchenko I.A., Zinenko G.K., Savitsky S.V. Chemical analysis of lake Shira water (19 972 000) // Aquat. Ecol., 2002. V. 36. — P. 123−141
  79. Kepova K.D., Holzer R., Stoilova L.S., Feller, U. Heat stress effects on ribulose-l, 5-bisphosphate carboxylase /oxygenase, Rubisco bindind protein and Rubisco activase in wheat leaves. // Biol.Plant., 2005. V. 49. — P. 521— 525.
  80. Koniger M., Harris G. C., Pearcy R. W. Interaction between photon flux density and elevated temperatures on photoinhibition in Alocasia macrorrhiza. // Planta, 1998. V. 205. — P. 214 — 222.
  81. Kudenko Yu.A., Gribovskaya I.A., Zolotukchin I.G. Physical-Chemical treatment of wastes: a way to close turnover of elements in LSS, J. // Acta Astronautica, 2000. -V. 46. -P 585−589.
  82. Kolber Z. S., Prasil O., Falkowski P. G. Measurements of variable chlorophyll fluorescence using fast repetition rate techniques: defining methodology and experimental protocols. // Biochimica et Biophysica Acta, 1998.-V. 1367.-P. 88−106
  83. R., Lazar D., Ilik P., Skotnica J., Krchnak P. & Naus J. High-temperature induced chlorophyll fluorescence rise in plants at 40−50°C: experimental and theoretical approach. // Photosynthesis Research, 2004. -V. 81.-P. 49−66.
  84. Larcher W., Wagner J. and Lutz C. The effect on photosynthesis, dark respiration and cellular ultrastructure of arctic-alpine psychrophyte Ranunculus glacialis L. // Photosynthetica, 1998. V. 34. — №. 2. — P. 219 -232.
  85. Lazar D. Review. Chlorophyll a fluorescence induction. // Biochimica et Biophysica Acta, 1999. V. 1412. — P. 1 — 28.
  86. Lootens P. and Vandercastee P. A cheap chlorophyll a fluorescence imaging system. // Photosyntetica, 2000. V. 38. — № 1. — P. 53 — 56.
  87. McDonald G.K. and Paulsen G.M. High temperature effects on photosynthesis and water relations of grain legumes. // Plant and Soil, 1997. -V. 196.-P. 47−58.
  88. Mishra R. K. and Singhal G. S. Function of Photosynthetic Apparatus of Intact wheat leaves under high light and heat stress and its Relationship with peroxidation of thylakoid lipids. // Plant Physiol, 1992. V. 98. — P. 1 — 6.
  89. Mulkey S. S., Pearcy R. W. Interactions between acclimation and photoinhibition of photosynthesis of a tropical forest understorey herb, Alocasia macrorrhiza, during simulated canopy gap formation. // Funct Ecol., 1992. V. 6. — P. 719 — 729
  90. Nicotra A. B., Cosgrove M. J., Cowling A., Schlichting C. D., Jones C. S. Leaf shape linked to photosynthetic rates and temperature optima in South African Pelargonium species. // Oecologia, 2008. V. 154. — P. 625 635.
  91. Pospisil P, Skotnica J., Naus J. Low and high temperature dependence of minimum F0 and maximum Fm chlorophyll fluorescence in vivo. // Biochimica et Biophysica Acta, 1998. V. 1363. — P. 95−99
  92. Pospisil P.& Tyystjarvi 1E. Molecular mechanism of high-temperature induced inhibition of acceptor side of Photosystem II. // Photosynthesis Res., 1999.-V. 62. P. 55−66.
  93. Raghavendra A. S and Rowan F. Sage (eds.). C4 Photosynthesis and Related CO2 Concentrating Mechanisms. Springer Science+Business Media B.V., 2011.-P. 161−195.
  94. Rohacek K., Bartak M. Technique of the Modulated Chlorophyll Fluorescence: Basic Concepts, Useful Parameters, and Some Applications // Photosynthetica, 1999. V. 37. — P. 339−363.
  95. Schmidt A. and Kunert K. J. Lipid peroxidation in higher plants. The role of glutathione reductase. // Plant Physiol, 1986. V. 82. — P. 700−702
  96. . B. & baric-stankovic. A. Molecular ecology of the plant adaptation to high temperatures. // ekol. Zast. Zivot. Sred, 1997. V 5. — № l.-P. 11−19.
  97. Tikhomirov A.A., Ushakova S.A. Manipulating light and temperature to minimize environmental stress in the plant component of bioregenerative life support systems // Adv. Space Res., 2001. V. 27, №. 9. — P. 15 351 539
  98. Todorov, D.T., Karanov, E.N.-Smith, A.R.-Hall, M.A. Chlorophyllase Activity and Chlorophyll Content in Wild Type and eti 5 Mutant of Arabidopsis thaliana Subjected to Low and High Temperatures. // Biologia Plantarum, 2003. V. 46. — P. 633 — 636.
  99. Ushakova S., Tikhomirov A., Shikhov V. et al. Increased BLSS closure using mineralized human waste in plant cultivation on a neutral substrate // Advances in Space Research, 2009. V. 44. — № 8. — P. 971 978.
  100. Ushakova S.A., Tikhomirov A.A. Tolerance of LSS Plant Component to Elevated Temperatures // Acta Astronautica, 2002. V. 50. — №. 12. — P. 759 — 764
  101. Van Kooten O., Snel J.F. The Use of Chlorophyll Fluorescence Nomenclature in Plant Stress Physiology // Photosynth. Res., 1990. V. 25. -P. 147−150.
  102. Velichkova M. and Fedina L. Response of photosynthesis of Pisum sativum to salt stress as affected by methyl jasmonate // Photosynthetica, 1998. V. 35. — №. 1. — P. 89 — 97.
  103. Wahid A., Ghazanfar A. Possible involvement of some secondary metabolites in salt tolerance of sugarcane // Journal of Plant Physiology, 2006.-V. 163.-P. 723−730.
  104. Wahid A., Gelani S., Ashraf M., Foolad M.R. Heat tolerance in plants: An overview. // Environmental and Experimental Botany, 2007. V. 61. -p 199−223.
  105. Yamane Y., Shikanai T., Kashino Y., Koike 1 H. & Satoh K. Reduction of Qa in the dark: Another cause of fluorescence Fo increases by high temperatures in higher plants. // Photosynthesis Research, 2000. V. 63.-P. 23−34.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!