Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Механизм быстрого ростового ответа на натрий-хлоридное засоление у растений, различающихся по солеустойчивости

Диссертация: Механизм быстрого ростового ответа на натрий-хлоридное засоление у растений, различающихся по солеустойчивости
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Показано, что возрастание коэффициента растяжимости листа растений твердой пшеницы, ячменя и кукурузы при кратковременном действии ПЭГ происходило на фоне накопления ИУК в растущей части листа, что, по-видимому, могло быть следствием ростстимулирующего действия этого гормона. Создан молекулярный зонд с целью изучения уровня экспрессии гена экспансина (ехр 1) у кукурузы под влиянием ПЭГ… Читать ещё >

Механизм быстрого ростового ответа на натрий-хлоридное засоление у растений, различающихся по солеустойчивости (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Влияние засоления на растения
    • 1. 2. Водный обмен растений и его роль в реакции на засоление
    • 1. 3. Регуляция роста клеток растяжением в норме и при водном стрессе
    • 1. 4. Роль гормонов в регуляции роста и водного обмена у растений
      • 1. 4. 1. Абсцизовая кислота
      • 1. 4. 2. Ауксины
  • 2. ОБЪЕКТ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Условия выращивания растений и проведения экспериментов
    • 2. 2. Методы исследования
      • 2. 2. 1. Определение скорости транспирации
      • 2. 2. 2. Измерение роста растений
      • 2. 2. 3. Определение осмотического потенциала
      • 2. 2. 4. Определение устьичной проводимости
      • 2. 2. 5. Экстракция, очистка и концентрирование гормонов
      • 2. 2. 6. Твердофазный иммуноферментный анализ
      • 2. 2. 7. Определение содержания ионов натрия
      • 2. 2. 8. Экспрессия гена а-экспансина
      • 2. 2. 9. Статистическая обработка данных
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ
    • 3. 1. Добавление ПЭГ в питательную среду как модель для изучения реакции растений пшеницы и ячменя на дефицит воды
      • 3. 1. 1. Изменение транспирации и устьичной проводимости. Роль АБК в быстром закрытии устьиц
      • 3. 1. 2. Определение осмотического потенциала
      • 3. 1. 3. Изменение растяжимости листа при действии ПЭГ
      • 3. 1. 4. Изменение содержания ИУК в листьях при действии ПЭГ и его потенциальная роль в регуляции растяжимости
      • 3. 1. 5. Экспрессия гена экспансина в связи с увеличением растяжимости листа при действии ПЭГ на растения кукурузы
      • 3. 1. 6. Влияние ИУК на растяжимость листа и экспрессию гена экспансина
    • 3. 2. Влияние засоления на растения пшеницы, ячменя и кукурузы
      • 3. 2. 1. Транспирация и устьичная проводимость растений пшеницы и ячменя при действии засоления
      • 3. 2. 2. Изменение осмотического потенциала при действии засоления
      • 3. 2. 3. Сравнительный анализ растяжимости листа у растений твердой пшеницы и ячменя при засолении
      • 3. 2. 4. Экспрессия гена экспансина при действии засоления
  • ВЫВОДЫ

Актуальность. Засоление почвы — распространенное явление, которое отрицательно сказывается на росте и урожайности растений. В настоящее время около 20% всех посевных площадей в мире и около половины орошаемых земель засолены (Munns, 2003). Разрабатываются различные агротехнические приемы уменьшения засоленности почв. Однако даже после их использования на мелиорированных землях все еще должны засеваться устойчивые к засолению растения. Селекция таких сортов связана с выяснением механизма формирования солеустойчивости растений, поиском физиологических признаков солеустойчивости растений, поиском физиологических признаков солеустойчивости и разработкой на их основе биотестов, позволяющих быстро отбирать солеустойчивые формы. Засоление очень быстро подавляет рост как относительно солеустойчивых, так и чувствительных растений. Однако различия между ними по скорости роста можно выявить только через несколько недель после начала действия засоления (Cramer, Bowman, 1993). Это объясняют тем, что на первой стадии действия засоления преобладает осмотический компонент, т. е. реакция на дефицит воды, и лишь затем проявляются различия в способности растений защищать себя от токсического действия ионов (Munns et al, 1995; Passiora, Munns, 2000; Munns, 2003). Поэтому стандартная оценка солеустойчивости по ростовой реакции растений слишком трудоемка, требует времени и площадей для длительного выращивания растений. Вместе с тем, в литературе можно встретить противоречивые данные о времени проявления солеустойчивости при оценке ростовой реакции растений (Neumann, 1997), что указывает перспективность поиска быстрых тестов на солеустойчивость по ростовой реакции растений и указывает на целесообразность более тщательного ее изучения. Дефицит воды в растении сказывается, прежде всего, на росте растений растяжением (Воуег, 1978). Поддержание роста в этих условиях связано как с регуляцией водного обмена, так и с осмотическим приспособлением и изменением свойств клеточных стенок растений (Cosgrove, Li, 1993). В литературе можно встретить работы, где описаны механизмы поддержания роста при дефиците воды, вызванном как засолением, так и добавлением в питательную среду нейтрального осмотика полиэтиленгликоля 6000 (ПЭГ) (Chazen, Neumann, 1994; Fricke et al, 2004). Однако сравнительные исследования этих воздействий в одном эксперименте не проводились. Также не уделялось должного внимания сравнению быстрых ростовых реакций у растений, различающихся по солеустойчивости. Такие исследования должны помочь четко дифференцировать реакции растений на дефицит воды и токсическое действие ионов и выявить возможные различия в реакции растений с неодинаковым уровнем солеустойчивости.

В связи со сказанным цель данной работы состояла в сравнительном изучении физиологических процессов, от которых зависит рост растений при засолении, и выявлении тех из них, которые могут быть использованы в селекции на солеустойчивость.

Для достижения поставленной цели было необходимо решить следующие задачи:

1. Провести сравнительное изучение реакции относительно устойчивого к засолению ячменя и относительно чувствительной твердой пшеницы на добавление к питательному раствору NaCl и нейтрального непроникающего в растения осмотика полиэтиленгликоля (ПЭГ).

2. Исследовать влияние NaCl и ПЭГ на скорость роста листа и его растяжимость, транспирацию и устьичную проводимость для выявления физиологических показателей, регуляция которых определяет поддержание роста при дефиците воды и засолении.

3. Изучить влияние осмотического стресса на экспрессию гена аэкспансина 1 у растений кукурузы и выявить возможную роль экспансинов в быстрой регуляции растяжимости листьев и поддержании ростовых процессов при дефиците воды.

4. Провести определение содержания гормонов (ИУК и АБК) в растениях при действии засоления и дефицита воды и оценить возможную роль гормонов в приспособлении растений к действию этих неблагоприятных факторов.

5. Для уточнения роли АБК в приспособлении к засолению сравнить реакцию исходных и мутантных растений ячменя с пониженной способностью к синтезу данного гормона.

Научная новизна. Впервые обнаружены особенности в быстрой ростовой реакции на засоление у растений, различающихся по солеустойчивости. У относительно чувствительных растений твердой пшеницы засоление вызывало снижение коэффициента растяжимости листа, а у относительно устойчивых растений ячменя, наоборот, — увеличение. Сравнение реакции растений пшеницы на действие ЫаС1 и нейтрального, непроникающего в растения осмотика ПЭГ показало, что ростингибирующее действие засоления на чувствительные к нему растения определяется не только осмотическим, но и токсическим эффектом. Исследование ростовой реакции на засоление у мутантных растений ячменя с пониженным уровнем синтеза АБК, не способных быстро закрывать устьица, подтвердило роль данного гормона в поддержании оводненности и роста растений за счет закрытия устьиц на фоне засоления. Изучение экспрессии гена а-экспансина (ехр 1) в побегах растений показало быстрое накопление транскриптов данного гена при осмотическом стрессе, что указывает на возможное участие экспансинов в быстром увеличении растяжимости тканей листа.

Практическая значимость работы. Выявлены механизмы, определяющие быструю регуляцию роста растений при действии засоления, которые заключаются в изменении устьичной проводимости и растяжимости листьев. Показано, что у чувствительных к засолению растений на первых стадиях ответа удается проследить повреждающее действие не только дефицита воды, но и токсичных ионов. Обнаружены различия в характере изменения коэффициента растяжимости листа на засолении у растений, различающихся по солеустойчивости. Быстрое проявление этих различий позволяет рекомендовать их в качестве физиологического признака, который может быть использован в селекции на солеустойчивость.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Выводы.

1. Быстрая ростовая реакция растений пшеницы, ячменя и кукурузы на дефицит воды, при действии хлорида натрия и полиэтиленгликоля 6000 имеет сходный характер, который проявляется в прекращении роста и его последующем возобновлении со скоростью ниже исходной через 50−60 мин после начала воздействия.

2. Основную роль в возобновлении роста растений при засолении и действии ПЭГ играет закрытие устьиц и уменьшение испарения воды за счет транспирации, что компенсирует снижение поглощения воды из раствора с низким осмотическим потенциалом.

3. Установлено, что АБК играет важную роль в быстрой регуляции устьичной проводимости при засолении, об этом свидетельствует низкий уровень восстановления роста мутантных растений ячменя (Аг34), которые, в отличие от исходных растений, не накапливают АБК и не снижают устьичную проводимость.

4. Показано, что возрастание коэффициента растяжимости листа растений твердой пшеницы, ячменя и кукурузы при кратковременном действии ПЭГ происходило на фоне накопления ИУК в растущей части листа, что, по-видимому, могло быть следствием ростстимулирующего действия этого гормона.

5. Создан молекулярный зонд с целью изучения уровня экспрессии гена экспансина (ехр 1) у кукурузы под влиянием ПЭГ. Обнаружено, что возрастание коэффициента растяжимости листьев кукурузы при дефиците воды связано с увеличением уровня экспрессии этого гена.

6. В течение первого часа воздействия у относительно чувствительных к засолению растений твердой пшеницы ПЭГ увеличивал коэффициент растяжимости листьев, а засоление — снижало. У относительно устойчивых растений ячменя как при действии ПЭГ, так и при засолении обнаружено увеличение коэффициента растяжимости листьев. Различия в ростовой реакции растений пшеницы и ячменя на засоление и действие ПЭГ согласуются с их неодинаковой способностью предотвращать накопление токсичных ионов в клетках и могут быть использованы для оценки солеустойчивости.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Ч.Р., Гималов Ф. Р., Шакирова Ф. М., Вахитов В. А. Дегидрины растений: их структура и предполагаемые функции // Биохимия. — 2003. Т. 68. — Вып. 9. — С. 1157 — 1165.
  2. A.B., Раткович С. Транспорт воды в растениях: Исследования импульсным методом ЯМР.- М.: Наука, 1992.- 144 с.
  3. Д.С., Сабиржанова И. Б., Ахиярова Г. Р., Веселова C.B. и др. Роль гормонов в быстром ростовом ответе растений пшеницы на осмотический и холодовой шок // Физиология растений. 2002. — Т. 49. — С. 572−576.
  4. К.З. Ауксины как регуляторы деления клеток// Укр. ботан. журн. 1982. Т. 39. — N. 3. — С. 60 — 67.
  5. A.B. Датчик вертикального роста растения ДЛТ-1// Леса Башкортостана: Современное состояние и перспективы. Материалы научно практической конференции. Уфа. 1997. — С. 72−74.
  6. К. Гормоны растений. Системный подход. М.: Мир, 1985.206 с.
  7. Д.П., Каравайко H.H., Кулаева О. Н. Влияние теплового шока и картолина 2 на рост проростков ячменя и содержание в них фитогромонов // Докл. РАН.- 1992.- Т.323.- С.362−365.
  8. В.Н., Гусев H.A., Капля A.B., и др. Водный обмен растений.- М.: Наука. 1989. — 256с.
  9. В.Н., Кушниренко М. Д., Печерская С. Н. и др. О кинетике процессов водообмена листа // Докл. АН СССР. 1985. — Т. 280, № 6. — С. 1514−1516.
  10. В.Н., Пустовойтова Т. Н. Рост листьев Cucumbus sativus L. и содержание в них фитогормонов при почвенной засухе // Физиол. раст.-1993.- Т.40, № 4.- С. 676 680.
  11. В.Н., Талат М. М., Монахова О. Ф. Участие миозина в нагнетающей деятельности корня // Докл. РАН. 2000. Т. 371. С. 696−699.
  12. В.Н., Пузаков М. М., Монахова О. Ф. Участие актина в создании корневого давления // Докл. РАН. 2001. Т. 380. С. 404−407.
  13. Ф.Л., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев: Наук, думка, 1980. — 488 с.
  14. В.И., Коф Э.М., Власов П. В., Кислин E.H. Природный ингибитор роста абсцизовая кислота. — М.: Наука, 1989. — 484 с.
  15. И.С., Каминская O.A. Гормональная регуляция утилизации ассимилятов в листьях ячменя в связи с формированием донорной функции // Физиол. раст.- 2002 -Т.49, № 4.- С.596−602.
  16. E.H., Кефели В. И. Образование абсцизовой и индолил-3-уксусной кислот в побегах и корнях винограда и гороха // Известия РАН (сер. биол.) 1985. — № 3. — С. 375−382.
  17. О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка: 4-е Тимирязевское чтение.- М.: Наука, 1982.- 82 с.
  18. О. Н. Прокопцева О.С. Новейшие достижения в изучении механизма действия фитогормонов // Биохимия. 2004. — Т. 69. — №. 3. С. 293 310.
  19. А.К. Влияние температурного градиента на интенсивность транспирации озимой пшеницы в условиях фитотрона // Докл. ВАСХНИЛ. -1978.-№ 8.-С. 10−11.
  20. С.С. Физиологические основы полярности растений. СПб.: «Кольна». — 1996. — 160с.
  21. С.С. Электрофизиология растений. СПб: СпбУ. — 1998. — 180с.
  22. С.С., Маркова И. В., Батов А. Ю., Максимов Г. Б. Полярные потоки ионов кальция и рост растительных тканей // Физиол. раст. — 1989. -Т. 36. -№ 5. с. 990−997.
  23. О.В., Каравайко H.H. Динамика эндогенных фитогормонов в развивающихся проростках кукурузы // Физиол. раст. 1990. — Т. 37. — № 6. -С. 1113−1120.
  24. Г. С., Чкаников Д. И., Кулаева О. Н., Гамбург К. З. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: Агропромиздат, 1987.-383 с.
  25. В.Ф. Физиологически активные соединения и транспорт веществ в растениях // Физиол. биохим. культ, раст.- 1983. Т. 15. № 3.- С. 211 — 222.
  26. Г. Н., Безуглов В. К. Водный режим растений // Казань: Изд-во Казан. Унив-а, 1980. 252с.
  27. A.B., Танкелюн О. В., Полевой В. В. Быстрая дистанционная передача сигнала о локальном стрессов воздействии у проростков кукурузы // Физиол. раст.- 1997.- Т.44.- С.645−651.
  28. Т.Н. Рост растений в период засухи и его регуляция // Проблемы засухоустойчивости растений. — М.: Наука, 1978. С. 129 — 165.
  29. Т.Н. Стрессовые воздействия и изменение уровня регуляторов роста растений // Рост растений и дифференцировка (Кефели В.И. ред.). М.: Наука, 1981. — С. 225 — 244.
  30. Т.С., Иванова М. С., Исаченко JI.A. О механизме действия ауксина на дыхание отрезков колеоптилей кукурузы // Метаболизм и механизм действия фитогормонов. Иркутск, 1985. С. 88 — 93.
  31. А.Р. Регуляция салициловой кислотой устойчивости пшеницы к стрессовым факторам: Автореф. дис. канд. биол. наук. Уфа, 2001. -23 с.
  32. В.П. Транспирация и метаболизм листьев растений // Водный режим растений в связи с разными экологическими условиями: Казань: Изд.-во Казан, ун-та. 1978. — С. 279 — 281.
  33. Р. Водный режим растений. М. Мир, 1970.
  34. .П. Метаболизм растений в условиях засоления // 33-е Тимирязевское чтение. М., 1973. С. 51.
  35. .П. Физиологические основы солеустойчивости растений. -М.: АН СССР, 1962. С. 366.
  36. В.В., Титов А. Ф., Минаева C.B., Солдатов С. Е. Раздельное и комбинированное действие засоления и закаливающих температур на растения // Физиол. раст. 1993. — Т. 40. — С. 584 — 588.
  37. В.Ю., Колтунова И. Р. О пульсирующем характере транспирации и поступления воды в листья растений // Докл. АН СССР: -1982. Т. 266, № 3. — С. 766−768.
  38. Р.Г., Теплова И. Р., Митриченко А. Н., Кудоярова Г. Р., Веселов С. Ю. Влияние высокой температуры воздуха на содержание АБК и цитокининов и водный обмен проростков пшеницы // Известия РАН. Серия биологическая.- 2003 .-№ 2.- С. 195−200.
  39. Ф.М. Неспецифическая устойчивость растений к стрессовым факторам и ее регуляция. Уфа: Гилем, 2001. — 160 с.
  40. Ф.М., Безрукова М. В., Шаяхметов И. Ф. Влияние теплового стресса на динамику накопления АБК и лектина в культуре клеток пшеницы // Физиол. раст.- 1995.- Т.42.- С.700−702.
  41. Ф.М., Максимов И. В., Хайруллин P.M. и др. О влиянии септориоза колоса на динамику накопления лектина и содержание фитогормонов в развивающихся знрновках пшеницы // Физиол. биохимия культ, растений- 1994.-Т. 26.- С. 40−45.
  42. И.Ф., Шакирова Ф. М. Формирование соматических эмбриоидов в суспензионной культуре клеток пшеницы в присутствии АБК // Физиол. раст.- 1996.-Т. 43.-С. 101−103.
  43. Н.И. Метаболизм и физиологическая роль пролина при водном и солевом стрессе // Физиол. раст.- 1983.- Т.30.- С. 768−783.
  44. М.С. Биосинтез ауксинов у высших растений // В сб. Рост растений и дифференцировка (ред. В.И. Кефели). М., Наука, 1981.- С. 81 -94.
  45. Abel S, Theologis A. Early genes and auxin action // Plant Physiol. 1996. -V. 111.-P.9−17.
  46. Acevedo E., Hsiao T.C., Henderson D. W. Immediate and subsequent growth responses of maize leaves to changes in water status // Plant Physiol. 1971. — V. 48.-P. 631−636.
  47. Agre P., Sasaki S., Chrispeels M.J. Aquaporins A family of water-channel proteins // Am. J. Phisiol. — 1993. — V. 265. — P. 461.
  48. Allan E.F., Trewavas A.J. The role of calcium in metabolic control // In. The Biochemistry of Plants. A Comprehensive Treatise (vol. 12), (Stumpf P.K., Conn E.G., eds.).- Academic Press., New York., 1987. P. l 17−149.
  49. Allen R.D. Use of transgenic plants to study antioxidant defenses // Free Radic. Biol. Med.- 1997. V. 23.- P.473 — 479.
  50. Aloni R. The induction of vascular tissues by auxin and cytokinin // In: Plant Hormones/ Davies P.J., eds. Dortrecht Berlin London: Kluwer Academic Publisher, 1995.-P. 531 -546.
  51. Apse P.M., Aharon G.S., Snedden W.A., Blumwald E. Salt tolerance conferred by overexpression of a vacuolar NaVH4″ antiporter in Arabidopsis II Science.- 1999.- V. 285.- P. 1256- 1258.
  52. Arif I., Newman I.A., Keenlyside N. Proton flux measurements from tissues in buffered solution // Plant Cell Environ. 1995. — V. 18. — P. 1319 — 1324.
  53. Assmann S.M. Signal transduction in guard cells // Annu. Rev. Cell Biol. -1993.-V. 9.-P. 345−375.
  54. Assmann S.M., Armstrong F. Hormonal regulation of ion transporters: the guard cell system // Biochem. and Mol. Biol, of Plant hormones.- Elsevier, Amsterdam.- 1999. P. 337 — 361.
  55. Assmann S.M., Shimazaki K.-L. The multisensory guard cell, stomatal responses to blue light and abscisic acid // Plant Physiol. 1999. — V. 119. — P. 809 -816.
  56. Azaizeh H., Gunse B., Steudle E. Effects of NaCl and CaC12 on water transport across root cells of maize (Zea mays L.) seedlings // Plant Physiol. -1992.-V. 99.-P. 886−894.
  57. Bacon M.A., Wilkinson S., Davies W.J. pH regulated leaf cell expansion in draughted plants is abscisic acid dapandent // Plant Physiol.- 1998. — V. 118.- P. 1507- 1515.
  58. Baker D.A. Vascular transport of auxins and cytokinins in Ricinus // Plant Growth Regul. 2000. — V. 32. — P. 157−160.
  59. Baker J., Steele S., Dure L., Sequence and characterization of 6 Lea proteins and their genes of cotton // Plant Mol. Biol.- 1988.- V. 11.- P.277 291.
  60. Bandurski R.S., Cohen J.D., Slovin J., Reinecke D.M. Auxin biosynthesis and metabolism // In: Plant Hormones/ Davies P.J., eds. Dortrecht Berlin London: Kluwer Academic Publisher, 1995. — P. 39 — 65.
  61. Bano A., Dorffling K., Bettin D. and Hahn H. Abscisic acid and cytokinins as possible root to — shoot signals in xylem sap of rice in drying soil // Aust. J. Plant Physiol.- 1993.- V. 20. — P. 109 — 115.
  62. Bano A., Hansen H., Dorffling K., Hahn H. Chenges in the content of free and coonjugated abscisic acid, phaseic acid and cytokinins in xylem sap of droughy stressed sunflower plants // Phytochemistry — 1994.- V. 37. — P. 345 -347.
  63. Bartel B. Auxin biosynthesis // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.-1997.- V. 48.-P. 51−56.
  64. Battel B., LeClere S., Magidin M., Zolman B. Inputts to the active indol 3- acetic acid pool: De Novo synthesis, conjugate hydrolysis, and indol butyric acid P — oxidation // J. Plant Growth Regul. — 2001. — V. 20. — P. 198 — 216.
  65. Bewley J.D. Seed germination and dormancy // Plant Cell.- 1997. V. 9. — P. 1055- 1066.
  66. Birner TP, Steudle E. Effects of anaerobic conditions on water and solute relations and active transport in roots of maize (Zea mays L.) seedlings // Planta. -1993.-V. 190.-P. 474−483.
  67. Blackman P.G., Davies W.J. The effects of cytokinins and ABA on stomatal behaviour of maize and Commelina II J. of Exp. Bot.- 1983.- V.34, N 149.- P. 1619- 1626.
  68. Blatt M.R. Thiel G. Hormonal control of ion channel gating // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol.- 1993. V. 44.- P. 543 — 567.
  69. Blatt M.R. Potassium channel currents in intact stomatal guard cells // Planta 1990.- V. 180.-P.445−455.
  70. Bleecker A.B. Ethylene perception and signaling: an evolutionary perspective // Trends Plant Sci.- 1999. V. 4. — P. 269 — 274.
  71. Bohnert H.J., Su H., Shen B. Molecular mechanisms of salinity tolerance // In Molecular responses to cold, drought, heat, and salt stress in higher plants.-1999.- R.G. Landes Company, Austin, TX. P. 29 — 62.
  72. Boothe J.G., de Bens M.D., Johnson-Flanagan A.M. Expression of a low-temperature-induced protein in Brassica napus. Plant Physiol. 1995. V. 108. — P. 795 — 803.
  73. Bostock R.M., Quatrano R.S. Regulation of Em gene expression in rice // Plant Physiol.- 1992. V. 98. — P. 1356 — 1363.
  74. Boyer G.L., Zeevaart J.A.D. Isolation and quantitation of P glucopyranosyl abscisate from leaves of Xanthium and spinach // Plant Physiol.- 1982.- V. 70. — P. 227−231.
  75. Boyer J.S. Plant productivity and environment // Science. — 1982. V. 218. p. 443−448.
  76. Boyer J.S., Cavalieri A.J., Schulze E.D. Control of the rate of cell enlargement: excision, wall relaxation, and growth — induced water potentials // Planta. 1985. — V. 163. — P. 527 — 543.
  77. Boyer J.S., Wu G. Auxin decreases hydraulic conductivity of auxin-sensitive hypocotyl tissue // Planta. 1978. — V. 139. — P. 227−237.
  78. Bray E.A. Molecular responses to water deficit // Plant Physiol.- 1993. V. 103. — P. 1035 — 1040.
  79. Brenner M.L., Cheikin N. The role of hormones in photosynthate partitioning and seed filling // In: Plant Hormones/ Davies P.J., eds. Dortrecht Berlin London: Kluwer Academic Publisher, 1995. — P. 649 — 670.
  80. Busch H., Hedrich R., Raschke K. External calcium blocks inward rectifier potassium channels in guard cell protoplasts in a voltage and concentration dependent manner (abstract No. 96) // Plant Physiol. 1990. — V. 93. — P. 17.
  81. Carvajal M., Cooke D.T., Clarkson D.T. Responses of wheat plants to nutrition deprivation may involve the regulation of water-channel function // Planta- 1996. V. 199. — P. 372−381.
  82. Casimiro I., Beeckman T., Graham N., Bhalerao R., Zhang H., Casero P., Sandberg G., Bennett M. Dissecting Arabidopsis lateral root development // Trends in Plant Science. 2003. — V. 8. — N 4. — P. 165−171.
  83. Chazen O., Neumann P.M. Hydraulic signals from the roots and rapid cellwall hardening in growing maize (Zea mays L.) leaves are primary responses to polyethylene clycol-induced water deficits // Plant. Physiol. 1994.- V. 104.- N 6.- P. 1385 1392.
  84. Cho H.T., Kende H. Expansins in deepwater rice internodes // Plant Physiol.- 1997. V. 113.-P. 1137−1143.
  85. Chrispeels M.J., Maurel C. Aquaporins: the molecular basis of facilitated water movement through living plant cells // Plant Physiol. 1994. — V. 105. — P. 9- 15.
  86. Clarkson D.T., Carvajal M., Henzler T., Waterhouse R.W., Smyth A.J., Cooke D.T., Steudle E. Root hydraulic conductance: diurnal aquaporin expression and the effects of nutrient stress // J. Exp.Bot. 2000. — V. 51. — P. 61 — 70.
  87. Cleland R.E. Auxin and cell elongation / Davies P.J. Plant Hormones. -Dortrecht Berlin London: Kluwer Academic Publisher, 1995. P. 214 — 227.
  88. Cleland R.E. Cell wall extension // Annu. Rev. Plant Physiol. 1971. — V. 22.-P. 197- 122.
  89. Cleland R.E. Instability of the growth-limiting proteins of the Avena coleoptile and their pool size in relation to auxin // Planta 1971. — V. 99. — P. 1 -11.
  90. Cleland R.E. Wall extensibility: hormones and wall extension // Encyclopedia of Plant Physiology. Ed. Tanner W., Loewus F.A. Berlin, Heidelberg, New York: Springer, 1981. P. 255 — 273.
  91. Cleland R.E., Thompson M.L., Rayle D.L., Purves W.K. Differences in effects of gibberellins and auxins on wall extensibility of cucumber hypocotyls // Nature. 1968. — V. 219. — P. 510 — 511.
  92. Clewell D.B., Helinski D.R. Supercoiled circular DNA-protein complex in Escherichia coli: purification and induced conversion to an open circular DNA form // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1969. — V. 62. N 4. — P. 1159 — 1166.
  93. Clifton-Brown J., Jones M. Alteration of transpiration rate, by changing air vapour pressure deficit, influences leaf extension rate transiently in Miscanthus //Plant Physiol. 1999. — V. 50. — P. 1393 — 1401.
  94. Close T. J. Dehydrins: emergence of a biochemical role of a family of plant dehydration proteins // Physiol. Plant.- 1996. V.97. — P.795 — 803.
  95. Coen S.N., Chang A.C.Y., Hsu L. Nonchromosomal antibiotic resistance in bacteria genetic travsformation of E. coli by R-factor DNA // Proc. Natl. Acad. Sci. — 1972. — V. 69. — P. 2110 — 2114.
  96. Cohen J.D., Bandurski, R. S The bound auxins: protection of indole — 3 — acetic acid from peroxidase catalyzed oxidation // Planta. — 1978.- V. 139. — P. 203−208.
  97. Cohen J.D., Bandurski, R.S. Chemistry and physiology of the bound auxins // Annu. Rev. Plant Physiol. 1982. — V. 33. — P. 403 — 430.
  98. Comstock J. Hydraulic and chemical signaling in the control of stomatal conductance and transpiration // J. Exp. Bot. 2002. — V. 53. — N. 367. — P. 195 -200.
  99. Cornish K., Zeevaart J.A.D. Abscisic acid accumulation by in situ and isolated guard cells of Pisum sativum L. and Vicia faba L. in relation to water stress // Plant Physiol.- 1986. V. 81. — P. 1017 — 1021.
  100. Cornish K, Zeevaart J.A.D. Abscisic acid accumulation by roots of Xanthium strumarium E. and Lycopersicon vsculenlum Mill in relation-to water stress // Plant Physiol.- 1985. V. 79. — P. 653 — 658.
  101. Cosgrove D.J. Characterization of long-term extension of isolated cell walls from growing cucumber hypocotyls // Planta. 1989. — V. 177. — P. 121 — 130.
  102. Cosgrove D.J. Expansive growth of plant cell walls // Plant Physiol, and Biochem.- 2000.- V. 38.- P. 110 120.
  103. Cosgrove D.J. Wall extensibility: its nature, measurement and relationship to plant cell growth // New phytol. 1993. — V. 124. — P. 1 — 23.
  104. Cosgrove D.J., Bedinger P., Durachko D.M. Group I allergens of grass pollen as cell wall-loosening agents // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1997. — V. 94. -P. 6559−6564.
  105. Cosgrove D.J., Cleland R.E. Osmotic properties of pea stem internodes in relation to growth and auxin action // Plant Physiol. 1983a. — V. 72. — P. 332 -338.
  106. Cosgrove D.J., Cleland R.E. Solutes in free space of growing stem tissues // Plant Physiol. 1983b. — V. 72. — P. 326 -331.
  107. Cosgrove D.J., Li Z.C. Role of expansin in developmental and light of growth and wall extension in oat coleoptiles // Plant. Physiol. 1993. V. 103. — P. 1321 — 1328.
  108. Cosgrove D.J., Sovonick-Dunford S.A. Mechanism of gibberellin -dependent steam elongation in peas // Plant Physiol.- 1989. V. 89. — P. 184 — 191.
  109. Cramer G., Bowman D.C. Cell elongation control under stress conditions // Pessarakli M. Handbook of plant and crop stress. New York: Marcel Dekker Inc., 1993. — P. 303 — 320.
  110. Cramer G., Bowman D. Kinetics of Maize Leaf Elongation. I. Increased Yield Threshold limits short term, steady — state elongation rates after exposure to salinity // J. of Exp. Bot.- 1991. — V. 42. N. 244. — P. 1417 — 1426.
  111. Cramer G., Krishnan K., Abrams S.R. Kinetics of Maize Leaf Elongation. IV. Effects of (+) — and (-) — abscisic acid // J. of Exp. Bot.- 1998.- V. 49. N. 319. -P. 191 198.
  112. Crowe J.H., Hoeksta F.A., Crow L.M. Anhydrobiosis // Ann. Rev. of Physiol.- 1992. V. 54. — P. 579 — 599.
  113. Crowell D.N., Kadlecek A.T., Amasino R.M. Cytokinin induced mRNAs in cultured soybean cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1990. — V. 87. — P. 8815 -8819.
  114. Cruz R.T., Jordan W.R., Drew M.C. Structural changes andassociated reduction of hydraulic conductance in roots of Sorghum bicolor L. following exposure to water deficit // Plant Physiol. 1992. — V. 99. — P. 203 — 212.
  115. Culter A.J., Krochko J.E. Formation and breadown of ABA // Trends in Plant Science.- 1999.- V. 4, N. 12. P. 472 — 478.
  116. Dannenhoffer J.M., Evert R.F. Development of the vascular system in the leaf of barley (Hordeum vulgare L.) II Int. J. of Plant Science.- 1994.- V. 155. P. 143 — 157.
  117. Davies F.S., Lakso A.N. Diurnal and seasonal changes in leaf water potentials components and elastic properties in response to water stress in apple trees // Physiol. Plant. 1979. — V. 46. — P. 109−114.
  118. Davies W.J., Metcalfe J., Lodge T.A., Costa A.R. Plant Growht substances and the regulation of growth under drought // Austalian Journal of Plant Physiol. -1986. -V. 13. P.105−125.
  119. Davies W.J., Zhang J. Root signals and the regulation of growth and development of plants in drying soil // Annual. Rev. Plant Pilysiol. Plant Mol. Biol. 1991.-V. 42.-P. 55−76.
  120. De Boer A.H., Katou K., Mizuno A. The role of electrogenic xylem pumps in K+ absorption from the xylem of Vigna unguiculata: the effect of auxin and ftisicoccin // Plant Cell Environ. 1985. — V. 8. — P. 579 — 586.
  121. De Silva D.L.R., Hetheringlon A.M., Mansfield T.A. Synergism calcium ions and abscisic acid in preventing stomatal opening // New Phytol.- 1985.- V. 100. P.473−482.
  122. Dietz K., Sauter A., Wichert K., Messdaghi D., Hartung W. Extracellular p -glucosidase activity in barley involved in the hydrolysis of ABA glucose conjugate in leaves // J. of Exp. Bot.- 2000.- V. 346. P.937−944.
  123. Ding B.L., Schopfer P. Metabolic involvement in acid -mediated extension growth of maize coleoptiles // J. Exp. Bot. 1997. — V. 48. — P: 721 — 728.
  124. Downes P.B., Steinbaker C.R., Crowell D.N. Expression and processing of a hormonally regulated p expansin from soybean // Plant Physiol. — 2001. — V. 126. -P. 244−252.
  125. Dunlap J.R., Binzel M.L. NaCl reduced indol-3-acetic levels in the roots of tomato plants independent of stress-induced abcisic acid // Plant Physiol. 1996. -V. 112.-P.379−384.
  126. Dure L., Crouch M., Harada J., Ho T., Mundy J., Quatrano R., Thomas T., Sung Z. R. Common amino acid sequence domains among the LEA proteins of higher plants // Plant Mol. Biol.- 1989. -V. 12.- P. 475 486.
  127. Edelman H.G. Wall extensibility during hypocotyls growth: A hypothesis to explain elastic-induced wall loosening // Physiologia Plantarum.- 1995.- V. 95.- P. 296−303.
  128. Edelmann H.G., Kohler K. Auxin increases elastic wall-properties in rye coleoptiles: implications of the mechanism of wall loosening // Physiol. Plant. 1995. V. 93. — P. 85 — 92.
  129. Edwards M., Meidner H. Direct measurements of turgor pressure potentials, IV. Naturally occurring pressures in guard cells and their relation to solute and matric potentials in the epidermis // J. Exp. Bot. 1979. — V. 30. — P. 829−837.
  130. Ettlinger C., Lehle L. Auxin induces rapid changes in phosphatidyl inositol metabolites//Nature.- 1988.- V. 33.- P. 176- 178.
  131. Evans M.L. Functions of hormones at the cellular level of organization // In: Encyclopedia of Plant Physiology, New Series (T.K.Scott, ed), 1984. V.10. P. 23 — 79. Springer-Verlag, Berlin.
  132. Fedina I.S., Tsonev T., Guleva E.I. The effect of pretreatment with prolin on the responses Pisum sativum to salt stress // Photosynthetica. 1993. — V. 29. — P. 521−527.
  133. Felle H. Auxin causes oscillations of cytosolic free calcium and pH in Zea mays coleoptiles // Planta 1988. — V. 174. — P. 495−499.
  134. Fox T. C., Geiger D.R. Osmotic response of sugar beet source leaves at C02 compensation point// Plant Physiol.- 1986. V. 80.- 239 — 241.
  135. Frensch J. Primery responses of root and leaf elongation to water deficits in the atmosphere and soil solution // J. of Exp. Bot.- 1997.- V. 48. P.985−999.
  136. Fricke W. Cell turtor, osmotic pressure and water potential in the upper epidermis of barley leaves in relation to cell location and in response to NaCl and air humidity. J. Exp. Bot. 1997. — V. 48. — N. 306. — P. 45−58.
  137. Fricke W., Flowers T.J. Control of leaf cell elongation in barley. Generation rates of osmotic pressure and turgor, and growth associated water potential gradients // Planta. — 1998.- V. 206. — P. 53 — 65.
  138. Fricke W., Akhiyarova G., Veselov D., Kudoyarova G. Rapid and tissue-specific changes in ABA and in growth rate in response to salinity in barley leaves. J. Exp. Bot. 2004. — V. 55. — P. 1115−1123.
  139. Fry S.C., Smith R.C., Renwick K.F., Martin D.J., Hodge S.K., Matthews K.J. Xyloglucan endotransglycosylase, a new wall loosening enzyme activity from plants // Biochem. J. — 1992. — V. 282. — P. 821 — 828.
  140. Fry S.C., The structure and functions of xyloglucan // J. Exp. Bot. 1989. -V. 40.-P. 1−12.
  141. Gehring C.A., Irving H.R., Parish R. W. Effects of auxin and abscisic acid on cytosolic calcium and pH in plant cells // Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.- 1990. V. 87.-P. 9645−9649.
  142. Gomez Caderas A., Tadeo F.R., Primo — Millo E., Talon M. Involvement of abscisic acid and ethylene in the responses of citrus seedlings to salt shock // Physiol. Plant.- 1998.- V. 103. — P. 475 — 484.
  143. Gosti F., Bertauche N., Vartanian N., Giraudat J. Abscisic acid dependent and — independent regulation of gene expression by progressive drought in Arabidopsis thaliana I I Molecular and General Genetics.- 1995.- V. 246. — P. 10 -18.
  144. Gowing D.J.C., Davies W.J., Jones H.G. A positive root sourced signal as an indicator of soil drying in apple, Malus domestica Borkh // J. Exp. Bot. — 1990. -V.41.-P. 1535- 1540.
  145. Gowing D.J.G., Davies W.J., Trejo C.L., Jones H.G. Xylem-transported chemical signals and the regulation of plant growth and physiology // Phyl. Trans. R. Soc. Lond. B. 1993. — V. 341. — P. 41 — 47.
  146. Graham D.E. The isolation of high molecular weight DNA from whole organisms or large tissue masses // Anal. Biochem. 1978. — V. 85, N 2. — P. 609 -613.
  147. Gray W.M., Ostin A., Sandberg G., Romano C.P., Estelle M. High temperature promotes auxin-mediated hypocotyl elongated in Arabidopsis II Proc. Natl. Acad. Sei. USA 1998. V. 95.-P. 7197 — 7202.
  148. Greenway H., Munns R. Mechanisms of salt tolerance in non-halophytes // An. Rev. of Plant Phys.1980. V. 31. — P. 149 — 190.
  149. Griffiths A., Parry A.D., Jones H.G., Tomos A.D. Abscisic acid and turgor presure regulation in tomato roots // J. Plant Physiol. 1996. V. 149. — P. 372 -376.
  150. Ha M.A., Apperley D.C., Jarvis M.C. Molecular rigidity in dry and hydrated onion cell walls // Plant Physiol. 1997. — V. l 15. — P. 593 — 598.
  151. Hager A., Debus G., Edel H-G., Stransky H., Serrano R. Auxin induced exocytosis and the rapid synthesis of a high turnover pool of plasma — membrane H+ - ATPase // Planta.- 1991.- V. 185.- P. 527 — 537.
  152. Hager A., Menzel H., Krauss A. versuche rheological properties of expansion zones of leaves // Planta.- 1971.- V. 100, N 1. P.47 — 75.
  153. Hansen H., Dorffling K. Changes of free and conjugated abscisic acid and phaseic acid in xylem sap of drought stressed sunflower plants // J. of Exp. Bot.-1999.-V. 50-P. 1599- 1605.
  154. Hare P.D., Cress W.A., Van Staden J. Proline synthesis and degradation: a model system for elucidating stress-related signal transduction // J. Exp. Bot.-1999.-V. 50.-P. 413−434.
  155. Harris M.J., Outlaw W.H. Rapid adjustment of guard-cell abscisic asid levels to current leaf water status // Plant Physiol. 1991. -V. 95.- P. 171 — 173.
  156. Hartung W., Jeschke W.D. Abscisic acid a long distance stress signal in salt — stressed plants // Lerner H. Plant responses to environmental stresses: from phytohormone to genome reorganization. — New York: Marcel Dekker Inc. 1999. -P. 333−348.
  157. Hasegava P.M., Bressan N.A., Zhu J.K., Bohnert H.J. Plant cellular and molecular responses to high salinity // An. Rev. of Plant Phys. 2000. — V. 51. — P. 463 — 499.
  158. Haughton P.M., Sellen D.B., Preston R.D. Dynamic mechanical properties of the cell wallof Nitella opaca // J. Exp. Bot. 1968. — V. 19. — P. 1 — 12.
  159. Hayashi T., Xyloglucans in the primary cell wall // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1989. — V. 40. — P. 139 — 168.
  160. He T., Cramer G.R. Abscisic acid concentrations are correlated with leaf area reductions in two salt stressed rapid — cycling Brassica species // Plant Soil — 1996. — V. 179.-P. 25−33.
  161. Henzler T., Steudle E. Reversible closing of water channels in Chara internodes provides evidence for a composite transport model of the plasma membrane // J. Exp. Bot. 1995. — V. 46. — P. 199 — 209.
  162. Henzler T., Waterhouse R.N., Smyth A.J., Carvajal M. et al. Diurnal variations in hydraulic conductivity and root pressure can be correlated with the expression of putative aquaporins in the roots of Lotus japonicus // Planta 1999. -V.210.-P. 50−60.
  163. Hernandez J.A., Capillo A., Jimeenez A., Alarcon J.J., Sevilla F. Response of antioxidant systems and leaf water relations to NaCl stress in pea plants // New Phytol. 1999. — V. 141. — P. 241 — 251.
  164. Hernandez J.A., Olmos E., Corpas F., Sevilla F., del Rio L.A. Salt -induced oxidative stress in chloroplasts of pea plants // Plant Science.- 1995.- V. 105.-P. 151−167.
  165. Hetherington A.M., Quatrano R.S. Mechanisms of action of abscisic acid at the cellular level // New Phytol.- 1991. V. 119. — P. 9 — 32.
  166. Heyn A.N.J. Further investigation of the mechanism of cell elongation and the properties of the cell wall in connection with elongation. Protoplasma 1932.-V. 19.-P. 78−97.
  167. Hoad G.V. Effect of water stress on abscisic acid levels in white lupin (Lapinus albus L.) fruit, leaves and phloem exudates // Planta.- 1978.- V. 142. P. 287 — 290.
  168. Hofte H., Hubbard L., reizer J., Ludevid D. et al. Vegetative and seed-specific isoforms of a putative solute transporter in the tonoplast of Arabidopsis thaliana II Plant Physiol. 1992. — V. 99. — P. 561 — 570.
  169. Hsiao T.C. Plant responses to water stress //Anna. Rev. Plant Physiol. -1976. -V. 24. P. 519—570.
  170. Hsiao T.C., Frensch J., Rojas Lara B.A. The pressure — jump technique shows maize leaf growth to be enhanced by increases in turgor only when water status too high // Plant Cell and Environ.- 1998. — V. 21. — P.33 — 42.
  171. Jia W., Zhang J. Comparison of exportation and metabolism of xylem -delivered ABA in maize leaves at different water status and xylem sap pH // Plant Growth Regulation. 1997. — V. 21. — P. 43 — 49.
  172. Johansson I., Larsson C., Ek B., Kjellbom P. The major integral proteins of spinach leaf plasma membranes are putative aquaporins and are phoshorylated in response to Ca2+ and apoplastic water potential // The Plant Cell- 1996. V. 8. — P. 1181−1191.
  173. Jones H., Leigh R.A., Tomos A.D. Jones R.G.W. The effect of abscisic acid on cell turgor pressure solute content and growth of wheat roots // Planta. 1987. -V. 170. N2.-P. 257−262.
  174. Jones H.G. Stomatal control of photosynthesis and transpiration // J. Exp. Bot. 1998. — V. 49. — P. 387−398.
  175. Kaiser G., Weiler E.W., Hartung W. The intracellular distribution of abscisic acid in mesophyll cells. The role of the vacuole // J. of Plant Physiol. 1985. — V. 119.-P. 237−245.
  176. Kallarackal J., Komor E. Transport of hexoses by the phloem of Ricinus communis L. seedlings // Planta 1989. — V. 177. — P. 336 — 341.
  177. Kameli A., Losel D. Contribution carbohydrates and other solutes to osmotic adjustment in wheat leaves under water stress // J. Plant. Physiol. -1995.- V. 145.-P. 363−366.
  178. Kammerloher W., Ficher U., Piechottka G.P., Schaffher A.R. Water channels in the plant plasma membrane cloned by immunoselection from a mammalian expression system // Plant J. 1994. — V. 6. — P. 187 — 199.
  179. Katou K., Furumoto M. A mechanism of respiration dependent water uptake enhanced by auxin // Protoplasma. — 1986. — V. 133. — P. 174 — 185.
  180. Katsumi M., Kazama H. Gibberellin control of cell elongation in cucumber hypocotyl sections//Bot. Mag. Tokyo, special issue- 1978. V. 1. — P. 141 — 158.
  181. Kaufman P., Wu L., Brock T., Kim D. Hormones and the orientation of growth // Davies P.J. Plant Hormones. Dortrecht Berlin London: Kluwer Academic Publisher, 1995. — P. 547 — 571.
  182. Keegstra K., Talmadge K.W., Bauer W.D., Albersheim P. Cell wall structure // Plant Physiol. 1973. — V. 51. — P. 188 — 196.
  183. Kende H., Zeevaart J.A.D. The five «classical» plant hormones// Plant Cell.-1997.-V. 9.-P. 1197−1210.
  184. Kicheva M.I., Tsonev T.D., Popova L.P. Stomatal and nonstomatal limitations on photosynthesis in two wheat cultivars subjected water stress // Photosynthetica. 1994. — V. 30. — P. 107 — 116.
  185. Kjellbom P., Larsson C., Johansson I. et al. Aquaporins and water homeostasis in plants // Trends in Plant Sci. 1999. — V. 4. — P. 308 — 314.
  186. Kovtun Y., Chiu W.L., Tena G., Sheen J. Functional analysis of oxidative stress activated mitogen — activated protein kinase cascade in plants // Proc. Natl. Acad.Sci. USA- 2000. — V. 97. — P. 2940 — 2945.
  187. Kramer P.J. Changing concepts regarding plant water relations // Plant Cell and Environ. 1988. — V. 11. — P. 565 — 568.
  188. Kramer P.J., Boyer J.S. Water relations of plants and soils. Orlando: Academic Press, 1995. — V. 13. — P. 277−285.
  189. Kudoyarova G.R., Farhutdinov R.G., Mitrichenko A.N., Teplova I.R. et al. Fast Changes in Growth Rate and Cytokinin Content of the Shoot Following Rapid Cooling of Roots of Wheat Seedling // Plant Growth Regulation. 1998. — V.26. -P. 105- 108.
  190. Hormonal Regulation of Development. II.- Berlin etc.: Springer-Verlag, 1984. P.4.22.
  191. Maggio A., Joly R.J. Effects of mercuric chloride on the hydraulic conductivity of tomato root systems: evidence for a channel-mediated pathway // Plant Physiol. 1995. — V. 109. — P. 331−335.
  192. Manmood A., Quarrie S.A. Effects of Salinity on Growth, Ionic Relations and Physiological Traits of Wheat, Disomic Addition Lines from Thinopyrum bessarabicum, and Two Amphiploids // Plant Breeding- 1993.- V. 110. P. 265 -276.
  193. Mansfield T.A. Stomatal behavior following treatment with auxin-like substances and phenylmercuric acetate // New Phytol. 1967. — V. 66. — P. 325 330.
  194. Mansfield T.A., Atkinson C.J. Stomatal behaviour in water stressed plants // In: Alscher R.G., Cumming G.R., (ed.): Stress responses in plants: adaptation and acclimation mechanism.- Willey-Liss, New York.- 1990. P. 241 — 264.
  195. Mansfield T.A., McAinsch M.R. Hormones as regulators of water balance // Plant Hormones/ Davies P.J., eds. Dortrecht Berlin London: Kluwer Academic Publisher, 1995. P. 598 — 616.
  196. Marler T.E., Zozor Y. Salinity influences photosynthetic characteristics, water relations, and foliar mineral composition of Annona squamosa L. // J. Am. Soc. Hortic. Sci. 1996. — V. 121. — P. 243 — 248.
  197. Martre P., Cochard H., Durand J-L. Hydraulic architecture and water flow in growing grass tillers (Festuca arundinacea Schreb.) // Plant Cell Environ. 2001. -V. 24. — P. 65 — 76.
  198. Masuda Y. Cell wall modifications during auxin induced cell extension in Monocotyledonous and Dicotyledonous plants // Biogia Plantarum.- 1985. — V. 27. -P. 119−124.
  199. Masuda Y. Auxin-induced cell elongation and cell wall changes // Bot. Mag. 1990.-V. 103.-P. 345−370.
  200. Matsuda K., Riazi A. Stress Induced Osmotic Adjustment in Growing Regions of Barley Leaves // Plant Physiol. — 1981. — V. 68. — P. 571 — 576.
  201. Matzner S., Comstock J. The temperature dependence of shoot hydraulic resistance: implications for stomatal behaviour and hydraulic limitation // Plant Cell Environ. 2001. — V. 24. — P. 1299 — 1307.
  202. McAinsh M.R., Brownlee C., Hetherington A.M. Abscisic acid-induced elevation of guard cell cytosolic Ca2' precedes stomatal closure // Nature. 1990. -V. 343.-P. 186- 188.
  203. McQueen Mason S., Durachko D.M., Cosgrove D.J. Two endogenous proteins that induce cell wall extension in plants // Plant Cell 1992. — V. 4. — P. 1425 — 1433.
  204. McQueen Masson S.J., Rochange F. Expansins in plant growth and development: an update on an emerging topic // Plant Biol. 1999. — V. 1. — P. 1 -7.
  205. McQueen-Mason S., Cosgrove D.J. Disruption of hydrogen bonding between wall polymers by proteins that induce plant wall extension // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1994. — V. 91. — P. 6574 — 6578.
  206. McQueen-Mason S., Cosgrove D.J. Expansin mode of action on cell walls: Analysis of wall hydrolysis, stress relaxation, and binding // Plant Physiol. 1995. -V. 107.-P. 87- 100.
  207. Meahcheryakov A., Steudle E., Komor E. Gradients of turgor, osmotic pressure, and water potential in cortex of the hypocotyl of growing Ricinus ssedlings // Plant Physiol. 1992. — V. 98. — P. 840 — 852.
  208. Melchior W., Steudle E. Water transport in onion (Allium cepa L.) roots. Changes of axial and radial hydraulic conductivities during root development // Plant Physiol. 1993. — V. 101. — P. 1305 — 1315.
  209. Merritt F., Kemper A., Tallman G. Inhibitors of ethylene synthesis inhibit auxin-induced stomatal opening in epidermis detached from leaves of Vicia faba L. // Plant Cell Physiol. 2001. — V. 42. — P. 223 — 230.
  210. Metzger J.D. Hormones and reproductive development // Davies P.J. Plant Hormones. Dortrecht Berlin London, 1995. — P. 617 — 648.
  211. Milborrow B. The chemistry and physiology of abscisic acid // Annu. Rev. of Plant Physiol. 1974. — V. 25. — P. 259 — 307.
  212. Milborrow B., Lee H-S. Endogenous biosynthetic precursors of (+) -abscisic acid. VI. Carotinoids and ABA are formed by the non mevalonate triose — pyruvat pathway in chloroplasts // Aust. J. of Plant Physiol. — 1998. — V. 25. — P. 507−512.
  213. Montero E., Cabot C., Poschenrieder C.H., Barcelo J. Relative importance of osmotic stress and ion — specific effects on ABA — mediated inhibition of leaf expansion growth in Phaseolus vulgaris II Plant Cell Environ. — 1998. — V. 21. — P. 54−62.
  214. Moons A., Bauw G., Prinsen E. Molecular and physiological responses to abscisic acid and salts in roots of salt sensitive and salt — tolerant indica rice varieties // Plant Physiol. — 1995. — V. 107. — P. 177 — 186.
  215. Moons A., Prinsen E., van Montagu M. Antagonistic effect of abscisic acid and jasmonates on salt stress inducible transcripts in rice roots // Plant Cell.-1997. — V. 9. — P. 2243 — 2259.
  216. Morgan J.M. Osmoregulation and water stress in higher plants // Annu. Rev. Plant Physiol. 1984. — V. 35. — P. 299 — 319.
  217. Mulholland BJ, Taylor IB, Jackson AC, Thompson AJ Can ABA mediate responses of salinity stressed tomato // Env. And Exp. Bot. 2003. — V. 50. — P. 17 -28.
  218. Munns R. A leaf elongation assay defects an uknown growth ingibitor in xylem sap from wheat and barley // Aust. J. Plant Physiol. 1992. — V. 19. — P. 127 -135.
  219. Munns R. Physiological processes limiting plant growth in saline soils: some dogmas and hypoththeses // Plant Cell Environ. 1993. — V. 16. — P. 15 — 24.
  220. Munns R., Brady C.I., Barlow E.W.R. Solute accumulation in the apex and leaves of wheat during water stress // Aus. J. Plant Physiol. 1979. — V. 6. — P. 379 389.
  221. Munns R., Cramer G.R. Is coordination of leaf and growth mediated by abscisic acid? II Plant and soil. 1996. — V. 185. — P. 33 — 40.
  222. Munns R., Guo J., Passioura J.B., Cramer G.R. Leaf water status controls• day time, but not daily rates of leaf expansion in salt — treated barley // Aust. J. Plant Physiol. — 2000. — V. 27. — P. 949 — 957.
  223. Munns R., Passioura J.B. Hydraulic resistance of plants. III. Effects of NaCl in barley and lupin// Austr. J. PI. Physiol. 1984. — V. 11. — P. 351 — 359.
  224. Munns R., Passioura J.B., Guo J., Chazen O., Gramer G.R. Water relations and leaf expansion: importance of time scale // Journal of Experimental Botany. 2000.-V. 51.-P. 1495- 1504.
  225. Munns R., Schachtman D.P., Condon A.G. The significance two phasegrowth response to salinity in wheat and barley // Austr. J. Plant Physiol. — 1995. -V. 22.-P. 561−569.
  226. Munns R., Termaat A. Whole — plant responses to salinity // Aust. J. of Plant Physiol.- 1986. V. 13. — P. 143 — 160.
  227. Munns R. Screening methods for salinity tolerance: a case study wiht tetraploid wheat // Plant and soil. 2003. — V. 253. — P. 201 — 218.
  228. Munns R., Husian S., Rivelli A., James R., Condon A., Lindsay M., Lagudah E., Schachtman D., Hare R. Avenues for increasing salt tolerance of crops and the role of physiologically beased selection traits // Plant and Soil. 2002. — V.• 247.-P. 93- 105.
  229. Nakahori K., Katou K., Okamoto H. Auxin changes both the extensibility and the yield threshold of the cell wall of Vigna hypocotyls // Plant Cell Physiol.-1991.-V. 32.-P. 121 129.
  230. Nass R., Cunningram K.W., Rao R. Intracellular sequstration of sodium by a novel Na+/H+ exchanger in yeast is enhanced by mutations in the plasma membrane FT ATP- ase // J. Biol. Chemistry. — 1997. — V. 272. — P. 26 145 -26 162.
  231. Neill S.J., Horgan R. Abcisic acid production and water relations in wiltytomato mutants subjected to water deficiency // J. Exp. Bot. 1985. — V. 36. — P. 1222−1231.
  232. Neumann P. Salinity resistance and plant growth revisited // Plant, Cell and• Env. -1997. V. 20. — P. 1193 — 1198.
  233. Neumann P.M. Rapid and reversible modifications of extension capacity of cell walls in elongating maize leaf tissues responding to root addition and removal ofNaCl // Plant Cell Environ. 1993. — V. 16. — P. 1107−1114.
  234. Nilsen E.T., Muller W.H. The influence of photoperiod on drought induction of dormancy in Lotus scoparius II Oecologia. 1982. — V. 53. — P. 79 — 83.
  235. Niu X., Bressan R.A., Hasegva P.M., Pardo J.M. Ion homeostasis in NaCl stress // Plant Physiol. 1995. — V. 109. — P. 735−742.
  236. Nobel P. S. North G.B., Radial hydravlic conductivity of individual root tissues of Opuntia Ficus indica (L.) Miller as soil moisture varies // Annals Bot. -1996.-V. 77.-P. 133−142.
  237. Nonami H., Wu Y., Boyer J.S. Decreased growth induced water potential. A primary cause of growth inhibition at low water potential // Plant Physiol.- 1997. — V. 114.-P. 501 -509.
  238. Nonami H, Boyer J. Primary events regulating stem growth at low water potentials // Plant Physiol. 1990. — V. 94. — P. 1601 — 1609.
  239. Normanly J., Slovin J.P., Cohan J.D. Rethinking auxin biosynthesis and• metabolism // Plant Physiol. 1995. V. 107. — P. 323 — 329.
  240. Olmos E., Hellin E. Mechanism of salt tolerance in a cell line of Pisum sativum: biochemical and physiological aspects // Plant Sci. 1996. — V.120. -P. 37−45.
  241. Parrish D.J., Wolf D.D. Kinetics of tall fescue leaf elongation: responses tochanges in illumination and vapor pressure // Crop Science- 1983. V. 23. — P. 659 -663.
  242. Parry A.D., Griffiths A., Horgan R. Abscisic acid biosynthesis in roots. II. The effects of water stress in wild — tipe and abscisic acid — deficient mutant (notabilis) plants of Lycopersicon esculentum Mill // Planta. — 1992. — V. 187. — P. 192−197.
  243. Passioura J.B. Response to Dr. P.J. Kramer’s article 'Changing concepts regarding plant water relations // Plant Cell Environ. 1988. — V. 11. — P. 569 -571.
  244. Passioura J.B. Water transport in and to roots // Ann. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1988. — V. 39. — P. 245−265.
  245. Passioura J.B., Munns R. Rapid environmental changes that affect leaf status induce transient surges or pauses in leaf expansion rate // Aust. J. Plant Physiol. -2000. V. 27. — P. 941−948.
  246. Pelah D., Altman A., Shoseyov O. Drought tolerance: A molecular respective // In: Altman A., Ziv M. (ed.): Horticulture biotechnology. 1997. — P. 439−445.
  247. Pemadasa M.A. Differential abaxial and adaxial stomatal responses to indol-3-acetic acid in Commelina communis L. // New phytol. 1982. — V. 90. — P. 209 219.
  248. Peterson C.A., Steudle E. Lateral hydraulic conductivity of early metaxylem vessels in Zea mays L. roots // Planta- 1993. V. 189. — P. 288−297.
  249. Peyrano G., Taleisnik E., Quiroga M. et. al. Salinity effects on hydraulic conductance, lignin content and peroxidase activity in tomato roots. // Plant Physiol: Biochem. 1997. — V. 35. — P. 387−393.
  250. Pierce M., Raschke K. Synthesis and metabolism of ABA in detached leaves of Phaseolus vulgaris L. after loss and recovery of turgor // Planta. 1981. — V. 153.- P.156−165.
  251. Pla M., Vilardell J., Guiltinan M.J., Marocoite W.R., Niogret M.F., Quatrano R.S., Pages M. The cis regulatory element CCACGTGG is involved in ABA andwater stress responses of maize gene rab28 // Plant Molecular Biology.- 1993.-V. 21. — P.259−266.
  252. Poovaiah B.W., Reddy A.S.N. Calcium and signal transduction in plants // CRC Critical Rev. Plant Sci.- 1993.- V.12.- P.185−211.
  253. Poovaiah B.W., Reddy A.S.N. Calcium messenger systems in plants // CRC Critical Rev. Plant Sci.- 1987.- V. 6.- P. 47−103.
  254. Preston G.M., Carrol T.P., Guggino W.B., Agre P. Appearance of water channels in Xenopus oocites expressingred cell CHIP28 protein // Science 1992. -V.256.-P. 385−387.
  255. Quarrie S.A. Abscisic acid as a factor in modifying drought resistance // Environ. Stress Plants. Biochem. Physiol. Mech. NATO Adv. Res. Workshop. Norwich Aug. 2−7. Berlin etc. 1989. — P.27−37.
  256. Quarrie S.A. The role of abscisic acid in regulating water status in plant // Biol. Vest. 1991. — V.39. P. 67 — 76.
  257. Radermacher W., Drabe JE. Hormonal changes in developing kernels of two spring wheat differing in storage capacity. Ber. Deutch Bot. Gas. 1984. V. 97: P. 167−181.
  258. Radin J.W., Eidenbock M.P. Hydraulic conductance as a factor limiting leaf expansion in phosphorus-deficient cotton plants // Plant Physiol. 1984. — V. 75. -P. 372−377.
  259. Ray P.M. Auxin binding sites of maize coleoptilesare localized on membranes of the endoplasmic reticulum // Plant Physiol. 1977. — V. 59. N. 4. -P. 594 — 599.
  260. Rayle D.L., Cleland R.E. The acid growth theory of auxin-induced cell elongation is alive and well // Plant Physiol. 1992. — V. 99. — P. 1271 — 1274.
  261. Reid M.S. Ethylen in plant growth, development, and senescenes// Davies P.J. Plant Hormones. Dortrecht Berlin London, 1995. — P. 486−508.
  262. Rhodes D., Hanson A.D. Quaternary ammonium and tertiary sulfonium compounds in higher plants // Annu. Rev. of Plant Physiol. And Plant Mol. Biology. 1993. — V. 44. — P. 357 — 384.
  263. Rhodes D., Hanson A.D. Quaternaty ammonium compounds in higher plants // Aust. J. Plant Physiol. 1995. — V. 44. — P. 357 — 384.
  264. Ribaut G-M., Pilet P-E. Effects of water stress on growth osmotic potential and abscisic acid content of maize roots // Physiol. 1991. — V. 81, N 1. — P. 156 162.
  265. Robertson A., Ishikawa M., Gusta L., MacKenzie S. Abscisic acid — induced heat tolerance in Bromus inermis Leyss cell suspension culture // Plant Physiol.-1994.-V. 105.-P. 181 — 190.
  266. Robinson D.G., Sieber H., Kammerloher W. et al. Localization of highly abundant PIP1 aquaporins in Arabidopsis thaliana // Plant Physiol. 1996. — V. 111.-P. 645−649.
  267. Romanto C.P., Robson P.R.H., Smith H., Estelle M., Klee H.J. Transgene mediated Auxin overproduction in Arabidopsis // Plant. Mol. Biol. 1995. — V.27. -P. 1071 — 1083.
  268. Rose J.K.C., Lee H.H., Bennett A.B. Expression of a divergent expansin gene is friut specific and ripening — regulated // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. — 1997. — V. 4. — P. 5955 — 5960.
  269. Roxas V.P. et al. Overexpression of glutathione S transferase/glutatione peroxidase enhances the growth of transgenic tobacco seedlings during stress // Nat. Biotechnol.- 1997.- V. 15. — P. 988 — 991.
  270. Saab I.M., Sharp R.E. Non hydrolic signals from maize roots in drying soil: inhibition of leaf elongation but not stomatal conductance // Planta.- 1989.- V. 179.-P. 466−474.
  271. Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular Cloning. A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press. 1989. — P. 1626.
  272. Sangwan V., Foulders I., Singh J., Dhindsa R.J. Cold activation of Brassica napus BNl 15 promoter is mediated structural changes in membranes and cytoskeleton, and requires Ca21″ influx // Plant. — 2001. — V. 52. — P. 627 — 658.
  273. Sauter A., Hartung W. Radial transport of abscisic acid conjugates in maize roots: its implication for long distance stress signals // J. of Exp. Bot. 2000. — V. 51.-P. 929−935.
  274. Schaffher A.R. Aquaporin function, structure, and expression: are there more suprises to surface water relations? // Planta. 1998. — V. 204. — P. 131 -139.
  275. Schmalstig J.C., Cosgrove D.J. Coupling of solute transport and cell expansion in pea stems // Plant Physiol.- 1990. V. 94. — P. 1625 — 1633.
  276. Schreiber L. Chemical composition of Casparian strips isolated from Clivia miniata Reg. Roots: evidence for lignin // Planta 1996. — V. 199. — P. 596−601.
  277. Schreiber L., Hartmann K., Skrabs M., Zeier J. Apoplastic barriers in roots: chemical composition of endodermal and hypodermal cell walls // J. Exp. Bot. -1999.-V. 50- P. 1267−1280.
  278. Schroeder J., Hagiwara S. Cytosolic calcium regulates ion channels in the plasma membrane of Vicia faba guard cells // Nature. 1989. — V. 338. — P. 427 430.
  279. Schroeder J., Hedrich R. Involvement of ion channels and active transport in osmoregulation and signaling in higher plant cells // Trends Biochem. Sci. 1989. -V. 14.-P. 187−192.
  280. Schroeder J.I., Raschke K., Neher E. Voltage dependence of K+ channels in guard cell protoplasts // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1987. — V. 84. — P. 41 084 112.
  281. Scott T.K. Auxins and roots // Ann. Rev. Plant Physiol.- 1972.- V.23.- P. 235 258.
  282. Sealey P.G., Southern E.M. Gel electrophoresis of DNA // In: Gel electrophoresis of nucleic acids. A practical approach. IRL Press- Oxford- - 1982.- P. 3976.
  283. Serna L. Stomatal biology // Trends in Plant Science. 2001. — V. 6. — P. 12
  284. Serpe MD, Matthews MA (1992) Rapid changes in cell wall yielding of elongating Begonia argenteo-guttata L. leaves in response to changes in pant water status. Plant Physiol 100: 1852−1857.
  285. Serrano R., Mulet J.M., Rios G. A glimpse of the mechanisms of ion homeostasis during salt stress // J. Exp. Bot. 1999. — V. 50. — P. 1023−1036.
  286. Shakirova F.M., Sakhabutdinova A.R., Bezrukova M.V., Fatkhudinova R.A., Fatkhudinova D.R. Changes in the hormonal status of wheat seedlings induced by salicylic acid and salinity // Plant Science. 2003. — V. 164. — P. 317 -322.
  287. Sharp R.E., Hsiao T.C., Silk W.K. Growth of the maize primary root at low water potentials. II. Role of growth and deposition of hexose and potassium in osmotic adjustment// Plant Physiol.- 1990.- V. 93. P. 1337 — 1346.
  288. Sheen J. Ca2+ dependent protein Kinases and stress signal transduction in plants // Science. — 1996. — V. — 274. — P. 1900 — 1902.
  289. Shi H., Ishitani M., Kim C., Zhu J.-K. The Arabidopsis thaliana solt tolerance gene SOS1 encodes putative Na7FF antiporter // Proceedings of the National Academy of Science USA.- 2000.- V. 97.- P. 6896 6901.
  290. Siefert F., Langebartels C., Boiler T., Grossmann K. Are ethylene and 1-aminocyclopropan-l-carboxylic acid involved in the induction of chitinase and p-1,3-glucanase activity in sunflower cell suspension cultures // Planta. 19 941 — V. 192.-P. 431−440.
  291. Simonneau T., Barrieu P., Tardieu F. Accumulation rate of ABA in detached maize roots correlates with root water potential regardless of age and branching order // Plant Cell Environ. 1998. — V. 21. — P. 1113 — 1122.
  292. Singh N.K., La Rosa P.C., Handa A.K. Hormonal regulation of protein synthesis associated with salt tolerance in plant cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.- 1987.-V. 84.-P. 739 743.
  293. Skriver K., Mundy J. Gene expression in response to abscisic acid and• osmotic stress// Plant cell. 1990. — V. 2.- P. 503 — 512.
  294. Slovin J., Bandurski R., Cohen J. Auxin. In: Hooykaas P., Hall M., Libbenga K., editors. Biochemistry and molecular biology of plant hormones. Elsevier: Amsterdam. 1999 P. 115 — 140.
  295. Smirnoff N., Cumber Q.J. Hydroxyl radical scavenging activity of compatible solutes// Phytochemistry- 1989. V. 28. — P. 1057 — 1060.
  296. Snaith P., Mansfield T.A., Studies of the inhibition of stomatal opening by naphthil acetic acid and abscisic acid // J. Exp. Bot. 1984. V. 35. — P. 1410 — 1418.
  297. Sohan D., Jasoni R., Zajicek J. Plant water relations of NaCI and calcium — treated sunflower plants // J. of Exp. Bot. — 1999. — V. 42. — P. 105 — 111.
  298. Steudle E. Water uptake by roots: effects of water deficit // J. Exp. Bot. -2000.-V. 51.-P. 1531−1542.
  299. Steudle E., Jeschke W.D. Water transport in barley roots // Planta- 1983. V. 158. — P. 237−248.
  300. Steudle E., Peterson C.A. How does water get through roots? // J. Exp. Bot. -1998. V. 49. — P. 775 — 788.
  301. Storey R., SchachtmanD P., Thomas M.R. Root structure and cellular• chloride, sodium and potassium distribution in salinized grapevines // Plant, Cell and Env. 2003.- V. 26. — P. 789 — 800.
  302. Straub P.F. Shen Q., Ho T.H.J. Structure and promoter analysis of an ABA — and stress regulated barley gene, HVA1 // Plant Molecular Biology.- 1994. — V. 26.-P. 617−630.
  303. Su G.H., Magen H., Tarchitzky J., Kafkafi U. Advances in chloride nutrition of plants // Advances in Agronomy. 2000.- V.68. — P. 97 — 150.
  304. Taiz, Plant cell expansion: regulation of cell wall mechanical properties // Annu. Rev. Plant Physiol. 1984. — V. 35. — P. 585 — 657.
  305. Talbott L. D., Ray P.M. Changes in molecular size of previously deposited• and newly synthesized pea cell wall matrix polysacchrides // Plant Physiol.- 1992.- V. 98.-P. 369−379.
  306. Taleisnik E., Peyrano G., Cordoba A., Arias C. Water retention capacity in root segments differing in the degree of exodermis development // Ann. Bot. -1999. V. 83. — P. 19−27.
  307. Tamas I.A. Hormonal regulation of apical dominance // Davies P.J. Plant Hormones. Dortrecht Berlin London, 1995. — V. 59. — P. 572−597.
  308. Tang A-C., Boyer J.S. Growth induced water potentials and the growth of• maize leaves // J. of Exp. Bot. 2002. — V. 53. — P. 489 — 503.
  309. Tardieu F., Lafarge T., Simonneau T. Stomatal control by fed or endogenous xylem ABA in sunflower: interpretation of correlations between leaf water potential and stomatal conductance in anisohydric species // Plant Cell Env. 1996.- V. 19. P. 75−84.
  310. Taylor C. Proline and water deficit: ups, down, ins, and outs // Plant Cell.1996.-V. 8.-P. 1221 1224.
  311. Taylor H, Burden R. Preparation and metabolism of 2 14C — cis, trans xanthoxin // J. Exp. Bot. — 1973. — V. 24. — P. 873 — 880.
  312. Termaat A., Munns R. Use of concentrated macronutrient solutions to separate osmotic from NaCI specific effects on plant growth // Aust. J. of Plant Physiol. — 1986. — V. 13. — P. 509 — 522.
  313. Termaat A., Passioura J.B., Munns R. Shoot turgor does not limit shoot growth of NaCI affected wheat and barley // Plant Physiol.- 1985. — V. 77.• P.869−872.
  314. Thiel G., Lynch J., Lauchli A. Short terra effects of salinity stress on the• turgor and elongation of growing barley leaves // J. Plant Physiol.- 1988. V. 132. -P. 38−44.
  315. Thomas J., McElwain E., Bohnert H. Convergernt induction of osmotic stress-responses: abscisic acid, cytokinin, and the effect of NaCI // Plant Physiol.• 1992.-V. 100.-P. 416−423.
  316. Thompson D.S., Wilkinson S., Bacon M.A., Davies W.J. Multiple signals and mechanisms that regulate leaf growth and stomatal behaviour during water deficit // Physiol. Plantarum. 1997. — V. 100. — P. 303 — 313.
  317. Timasheff S., Arakawa T. Stabilization of protein structure by solvents // Creighton T.E. Protein structure. A practical approach. Oxford: IRL Press, 1989. -P. 331−345.
  318. Tyerman SD, Bohnert SJ, Maurel C, Steudle E, Smith JAC. Plant Aquaporines: Their Molecular Biology, Biophysics and Significance for Plant Relations. // J. Exp. Bot. 1999. V. 50. — P. 1055 — 1071.
  319. Tyree M.T., Jarvis P.G. Water in tissues and cells // In: Physiological plant ecology II. Encyclopedia of plant physiology new series. Eds. Lange O.L. et al. -Springer-Verlag: Berlin-Heidelberg, 1982. V. 12. — P. 35−77.
  320. Ulmassov T, Hagen H, Guilfoyle TJ Activation and repression of transcription by auxin response factors // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1999. — V. 96.-P. 5844−5849.
  321. Varney G., Canny M.J. Rates of water uptake into the mature root system of maize plants // New Phytol. 1993. — V. 123. — P. 775 — 786.
  322. Walton D.C., Li Y. Abscisic acid biosynthesis and metabolism// Davies P.J. Plant Hormones. Dortrecht Berlin London, 1995. — P. 140−157.
  323. Wang T.L., Donkin M.E., Martin S.E. The physiology of a wilty pea: abscisic acid production under root water stress // Journal of Exp. Bot. 1984. — V. 47.-P. 1222- 1232.
  324. Wang Y., Mopper S., Hasenstein H. Effects of salinity on endogenous ABA, IAA, JA, and SA in Iris hexagona II J. Chemie. Ecology. 2001. — V. 27. — P. 327 -341.
  325. Wareing P.F. Abscisic acid as a natural growth regulation // Phil. Trans. Roy. Soc. London. B. 1978. — P. 483−498.
  326. Weatherley P.E. Water uptake and flow into roots // In: Encyclopedia of plant physiology / Lange O.L., et al. eds. Berlin: Springer-Verlag, 1982. — V. 12. -P. 79−109.
  327. Wen T.J., Ashlock D.A., Schnable P. S. Expressed Sequence Tags from B73 Maize Seedlings // 1997 Unpublished.
  328. Wolf O., Jeschke W.D., Hartung W. Long distance transport of abscisic acid in NaCI treated plants of Lupinus albus II J. Exp. Bot.- 1990: — V. 41. — P.593 -600.
  329. Wood A., Paleg L. The influence of gibberellic acid on the permeability of model membrane systems // Plant Physiol.- 1972. V. 14. — N 3. — P. 633 — 638.
  330. Wright S.T.C., Hiron R.W.P. (+) abscisic acid, the growth inhibitor induced in detached wheat leaves by a period of wilting// Nature. 1969.- V. 224. — P. 719 -720.
  331. Wright S.T., Hiron R.W. Abscisic acid, the growth inhibitor induced in detached leaves by a period of wilting // Nature. -1969. V. 224. — P. 719−720.
  332. Wu S.J., Ding L., Zhu J.-K. SOS1, a genetic locus essential for salt tolerance and potassium acquisition // Plant Cell.- 1996.- V. 8.- P. 617 627.
  333. Wu Y., Meeley R.B., Cosgrove D.J. Analysis and expression of the alpha-expansin and beta-expansin gene families in maize // J. Plant Physiol. -2001. V. 126.-N. l.-P. 222−232.
  334. Xiong L., Zhu J. Molecular and genetic aspects of plant responses to osmotic stress // Plant, Cell and Env. 2002. — V. 25. — P. 131 — 139.
  335. Yordanova I., Velikova V., Tsonev T. Plant responses to drought, acclimation, and stress tolerance // Photosynthetica.-2000.-V.31.-P.171−186.
  336. Zeevaart J.A. D. Changes in the levels of abscisic acid and it metabolites excised leaf blades of Xanthium strumarian During and after water stress // Plant Physiol. -1989.- V. 66. P. 672−678.
  337. Zeevaart J.A.D., Boyer G.L. Accumulation and transport of abscisic acid and its metabolites in Ricinus and Xanthium II Plant Physiol.- 1984.- V. 74. P. 934−393.
  338. Zeevaart J.A.D., Creelman R.A. Metabolism and physiology of abscisic acid // Annu. Rev. Plant Physiol.- 1988. V. 39.- P. 439−473.
  339. Zeevaart J.A.M. Abscisic acid metabolism and its regulation // Hooykaas• P.J.J., Hall M.A., Libbenga K.R. Biochemistry and molecular biology of plant hormones. Amsterdam, The Netherland: Elsevier Science, 1999. — P. 189−207.
  340. Zhang C., Li P., Zhang J., Davies W. Changes in the concentration of ABA in xylem sap as a function of changing soil water status can account for changes in leaf conductance and growth // Plant Cell Envir. 1990a. V. 13. — P. 277 — 285.
  341. Zhang J., Davies W.J. Does ABA in the xylem control the rate of leaf growth in soil-dried maize and sunflower plants? // J. Exp. Bot. 1990b. — V. 41. -P. 1125−1132.
  342. Zhang W.H., Tyerman S.D. Inhibition of water channels by HgC12 in intact wheat root cells // Plant Physiol. 1999. — V. 120. — P. 849−858.
  343. Zhao K., Munns R., King R.W. Abscisic acid synthesis in NaCI treated barley, cotton and saltbush // Aust. J. Plant Physiol.- 1991. — V. 18. — P. 17 — 24.
  344. Zhu J.K. Salt and Drought Stress Signal Transduction in plants // Annu. Rev. Plant Biol. 2002. — V. 53. — 247 — 273.
  345. Zimmerman U. Cell turgor pressure regulation and turgor pressure mediated transport processes. In: Jennings DH (ed.) Intergation of activity in the higher plant. Univ. press, Cambridge. 1977 — P. 117−154.
  346. Zimmermann H.M., Hartmann K., Schreiber L., Steudle E. Chemical composition of apoplastic transport barriers in relation to radial hydraulic conductivity of roots (Zea mays L.) // Planta 2000. — V. 210. — P. 302−311.
  347. Zimmermann H.M., Steudle E. Apoplastic transport across young maizeroots: effect of the exodermis // Planta 1998. — V. 206. — P. 7−19.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!