Морфогенез плодовых тел и вегетативного мицелия Flammulina velutipes (Curt.: Fr.) P. Karst. (Tricholomataceae) по данным электронной микроскопии

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Морфогенез плодовых тел и вегетативного мицелия Flammulina velutipes (Curt.: Fr.) P. Karst. (Tricholomataceae) по данным электронной микроскопии (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ
ГЛАВА 1. ОБЗОР ДАННЫХ ЛИТЕРАТУРЫ ПО УЛЬТРАСТРУКТУРЕ ТРШШЛОМОВЫХ ГРИБОВ
ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
- 2. 1. Материал исследований
- 2. 2. Методы исследований
ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
- 3. 1. Ультраструктура клеток вегетативного мицелия
ПапнпиНпа ге1и11рез, собранного в природе. 2. Ультраструктура разных типов клеток ПашшНпа. ve3.uti.pes в ходе их развития
- 3. 2. 1. Зачатки плодовых тел
- 3. 2. 2. Ножка
- 3. 2. 3. Кожица и трама шляпки
- 3. 2. 4. Гименофор
  - 3. 2. 4. 1. Гладкий гименофор
  - 3. 2. 4. 2. Зачатки пластинок
  - 3. 2. 4. 3. Трама гименофора
  - 3. 2. 4. 4. Субгимений
  - 3. 2. 4. 5. Гимений
  - 3. 2. 4. 5. 1. Инициаль баеидии и парафизы
  - 3. 2. 4. 5. 2. Базидия с диплоидным ядром
  - 3. 2. 4. 5. 3. Базидия о гаплоидными ядрами
  - 3. 2. 4. 5. 4. Базидия в период формирования стеригм
  - 3. 2. 4. 5. 5. Базидия в период роста спор
  - 3. 2. 4. 5. 5. Базидия в период созревания и отбрасывания спор
  - 3. 2. 4. 5. 7. Цистида
  - 3. 2. 4. 5. 8. Парафиза
- 3. 3. Ультраструктура септ и порового аппарата разных типов клеток плодовых тел и вегетативного мицелия
Flarnmulina velutipes в ходе их морфогенеза
ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ
ВЫВОДЫ

Актуальность темы

Семейство Tricholomataoeae одно из крупных и гетерогенных по составу семейств агариковых (Affaricales s Л.) грибов. Электронно-микроскопическое изучение морфогенеза представителей избранного семейства представляет особый интерес, т.к., по мнению многих исследователей (Каламээс, 1975; Степанова, 1990 аСтепанова, Васильев, 1994 и др.), оно является одним из примитивных, близким к анцестральному типу в эволюции агариковых грибов.

До настоящего времени электронно-микроскопическому изучению подвергались в основном клетки вегетативного/мицелия трихоломовых грибов (Arrnillaria mellea: Berliner, Duff, 1965; Brove, Bracker, 1970; Motta, 1967, 1969, 1971; Peabody, Motta, 1979; Shrnid, Liese, 1970; A. bulbosa: Powell, Rayner, 1983; Flammulina velutipes: Di-hakasici., 1972; Kitarnoto, Qruen, 1976). Морфогенез всех типов клеток плодовых тел изучался на примере одного вида типового родаTricholoma focale (Степанова, 1990 аСтепанова, Васильев, 1994; Степанова 1989). Весьма ограниченные данные тлеются в литературе по тонкому строению клеток зачатков плодовых тел и стерильных элементов плодовых тел F. velutipes (Dihakasioi, 1972; Wong, Qruen, 1977; Williams, 1985).

Как было показано ранее (Степанова, Васильев, 1988;1994; Степанова, 1990 а), данные электронной микроскопии по морфогенезу клеток агариковых грибов могут использоваться при разграничении таксонов разного ранга — от вида до порядка, решении ряда вопросов их систематики и филогении. Поэтому дальнейшее расширение круга объектов исследований, прежде всего видов из других родов семейства Тгicho1omataoeae, будут еще одним шагом в разработке естественной системы, трихоломовых грибов.

Учитывая вышесказанное, представляло интерес детально изучить особенности морфогенеза у представителя трихоломовых грибов — F, velutipes и сравнить их с имеющимися в литературе (Tricholorna focale: Степанова, 1989, 1990 аСтепанова, Васильев, 1994).

Цель и задачи исследования

Основной целью данной работы было проведение сравнительного ультраструктурного анализа всех типов клеток агарикового гриба Flammulina velutipes (Gurt: Fr.) Karst. (Tricholomataceae) в ходе их морфогенеза. Для достижения этой цели решались следующие задачи:

1. под световым микроскопом изучить особенности анатомического строения разновозрастных плодовых тел и их зачатков;

2. выяснить ультраструктуру клеток вегетативного мицелия, собранного в природе;

3. выяснить особенности морфогенеза клеток зачатков плодовых тел, а также стерильных (ножка, шляпка и гименофор) и-спорообразу-ницих (базидии) элементов плодовых тел;

4. изучить особенности ультраструктурных изменений латеральных клеточных оболочек гиф, септ и их порового аппарата в ходе развития клеток разного типа.

Научная новизна работы. Впервые проведен детальный сравнительный ультраструктурный анализ всех типов клеток трихоломового гриба F. velutipes в ходе их развития. Впервые для голобазидиоми-цетов получены данные по уль траструктуре первичных и вторичных ме-ристемоидов плодовых тел. Показано, что не вакуолизированная клетка является основным морфологическим элементом зачатков и плодовых тел. Впервые показаны четкие различия по ультраструктуре между инициалями гладкого гименофора и имения формирующихся пластинок, Показано, что особенностью зачатковпластинок, в сравнении с зачаткамиплодовых тел, — является то, что они составлены из клеток одного типа — не вакуолизированных. Сделан вывод., что наиболее сложным морфогенетическим преобразованиям подвергаются ядерный ал-парат и цитозоль формирующихся клеток ножки, цистид гимения и ба-зидии Па]пти1ипа уеХиМрезморфогенез остальных типов клеток в основном проходит сходно. Показано, что в отличии от цистид, парафи-зы и базидии развиваются из сходных инициалей. Определено, что для цистид зачатков, а также кожицы и ножки разновозрастных плодовых тел секреторная функция не характернаВыявлены таксонспецифичес-кие признаки ультраструктуры порового аппарата септ, а также бази-дий, которые могут быть использованы при составлении ключей при написании определителей.

Основные положения, выносимые на защиту:

— ультраструктура первичных и вторичных меристемоидов плодовых тел Р. Уе1и11рез сходна;

— основным морфогенетическим элементом, определяющим морфогенез плодового тела, является не вакуолизированная клетка;

— в ходе развития плодовых тел опенка зимнего наиболее сложным морфогенетическим преобразованиям подвергается ядерный аппарат и цитозоль клеток ножки, цистид гимения и базидий;

— в ходе морфогенеза клеток разного типа Г. ?е1и11рез наибольшую пластичность из компонентов порового аппарата септ проявляют наружные колпачки долипор, пробки и диафрагмы.

Практическая ценность работы. Полученные данные по биологии развития разных типов клеток опенка зимнего могут быть использованы для различного рода физиологических исследований. Результаты работы могут быть использованы в практике преподавания курсов миколоши и цитологии в высших учебных заведениях. Выявленные особенности тонкого отроения базидий и порового аппарата септ могут быть использованы в качестве диагностических признаков при написании современных определителей. Данные настоящего исследования могут быть использованы при разработке естественной системы трихоло-мовых грибов.

Апробация работы. Материалы диссертации докладывались на заседании научного студенческого кружка • «Физиология растений» ТГУ им. Магтымгулы (Ашгабат, 1995), на, заседании лаборатории экологии и морфогенеза грибов Института ботаники с ЦБС АН Туркменистана (Ашгабат, 1995, 1996, 1997), на Международной научно-практической конференции «Независимый, нейтральный Туркменистан: горизонты молодежной науки» (Ашгабат, 1996) и на Международной научно-практической конференции «Молодежь и наука — будущее человечества» (Ашгабат, 1997) .

Публикации. Материалы диссертации представлены в 8 печатных работах.

Структура и объем работы. Диссертация состоит из общей характеристики работы, 4 глав, выводов, списка использованной литературы и приложения. Она изложена на 196 страницах машинописного текста, из которых «156 основного, содержит 4 схемы, 2 цифровые таблицы и 26 рисунков микрофотографий. Список использованной литературы содержит 90 наименований работ, из них 62 зарубежных авторов.

ВЫВОДЫ.

1, В ходе развития клеток вегетативного мицелия, а также кожицы и трамы шляпки, гименофора, оубгимения и парафиз Flammulina velutipes число ядер не изменяется и равно двум. Развитие клеток ножки сопровождается увеличением числа ядер в 3 раза, тогда как цистид — в 2 раза, В базидиях число ядер закономерно меняется в соответствии со стадией их развития. В ходе развития разных типов клеток (за исключением клеток трамы шляпки и базидий) размеры ядер остаются стабильными.

2, Вегетативный мицелий F. velutipes, собранный в природе под группой молодых плодовых тел, в основном локализуется в содержимом и оболочках отмерших клеток коровой паренхимы клена. Морфогенез их проходит на фоне низкого содержания митохондрий, элементов ЭР и состоит в формировании центральной вакуоли, синтезе веществ запаса. .

3, Сравнительный ультраструктурный анализ клеток первичного и вторичного меристемоидов зачатков и плодовых тел F. velutipes показывает, что элементом, определяющим их морфогенез, является не вакуолизированная клетка. Отличительной особенностью тонкого строения зачатков пластинок, в сравнении с зачатками плодовых тел, является их более разнообразное строение и преобладание не вакуоли-зированных клеток,.

4, Развитие клеток ножки плодовых тел опенка зимнего проходит в базипетельном направлении и состоят е усилении вакуолизации, пролиферации хондриома и цистерн гранулярного ЭР, синтезе запасных веществ (только в клетках верхней части ножки).

5, В пределах кожицы одного плодового тела развитие клеток.

— iftt происходит асинхронно. Дифференциация клеток, трамы шляпки проходит в направлении от ее края к центру. Морфогенез обоих типов клеток протекает на фоне низкой численности митохондрий и элементов-эндо-мембранной системы, отсутствия запасных веществи заключается в формировании центральной вакуоли.

6, Формирование клеток трамы гименофора происходит синхронно и состоит в формировании центральной вакуоли и синтезе темных, глобулярных включений в ее содержимом.

7, Дифференциация — клеток оубгимения в пределах одного плодового тела происходит асинхронно, В ходе их развития численность митохондрий и элементов ЭР остается низкой. На заключительных стадиях их морфогенеза отмечается усиление уровня вакуолизации и аккумуляция запасных веществ, утилизирующихся развивающимися базиди-ями. ' «¦

8. В ходе морфогенеза базидий опенка зимнего существенные изменения ультраструктуры (увеличение числа митохондрий и элементов ЭР, синтез липидных капель и др.) наблюдаются после кариогамии и достигают максимума перед формированием отеригм. Зрелые (перед формированием спор) базидии и растущие базидиоспоры F. velutipes имеют высокоактивный облик.

9. Цистиды зачатков плодовых тел опенка зимнего, а также кожицы и ножки не выполняют секреторную функцию, характерную для таковых гимения. По особенностям ультраструктуры последние отличаются от инициали парафизы и базидии. Морфогенез цистид гимения сопровождается существенными преобразованиями их ультраструктуры, затрагивающими вакуом, хондриом, эндомембранную систему и вещества запаса. Максимальной сложности ультраструктура цистид достигает непосредственно перед появлением секреторной капли на ее апексе.

1Г~.

ОО.

10. Парафизы Р. уе! нЬ1рез развиваются из тех же инициалей. что и базидии. Морфогенез их в пределах гимения проходит асинхронно и состоит в увеличении уровня вакуолизации, пролиферации гранулярного ЭР и синтезе запасных веществ.

11. Отроение и параметры септ, долипоровых утолщений и парен-теоом идентичны во всех изученных•типах клеток опенка зимнего и не меняются по мере их развития. В ходе развития клеток разного типа наибольшую пластичность из компонентов перового аппарата оепт проявляют пробки. Наружные колпачки характерны только для порового аппарата септ клеток трамы гименофора зрелых плодовыхтел. Они двусторонние, симметричные, стабильной толщины, фибриллярные.

12. Дифференциация клеток вегетативного мицелия, кожицы, трамы шляпки, ножки, а также базидий и парафиз сопровождается утолщением и усложнением ультраструктуры (за исключением последних) их оболочек. В ходе развития остальных типов клеток толщина и строение клеточной оболочки остаются без изменений.

Показать весь текст

Список литературы

Бухало A.C., Соломко Э. Ф., Дудка И. А. и др. Рост съедобных базидиоомицетов на комплексных средах //Тезисы докл. Всео. конф, «Мицелиальн. грибы (физиология, биохимия, биотехнология)», Пущине. 1983. 168 с. '
Бухало A.C. Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре. Киев. 1988, 144 с,
Васильев А.Е. Функциональная морфология секреторных клеток растений, Л. 1977. 207 с.
Васильев А. Е, и примитивных чертах организации грибной клетки и происхождении эвкариотов //Еотан, журн, 1985, т.70, с,"1145−1158, л «': ' • :
Горовой Л, Ф, Морфогенез пластинчатых грибов. Киев, 1990. 167 с. — → ¦
Данилова М.Ф., Кашина. Т. К. Апикальные меристемы. Атлас ультраструктуры растительной ткани. Петрозаводск, 1980. 40 с. .
Денисова Н.П. Природа и биологическая роль базидиальных грибов //Микол. и фитопатол, „1984. вып. 18. N 2. с, 116−121.
Денисова Т.Н., Фалина Н, Н. Ферментативная активность препарата из опенка зимнего Flammulina velutipes (Fr,) Karst. /"/Микол, и фитопат. 1981, т, 5. N 2, с, 123−125,
Дудка И, А., Бухало А, А, Биол, изобр. Штамм Flammulina velutipes ИБК 112 продуцент биомассы //А.С. N 727 687 СССР. Биол, изобр. 198и¦ 12 с. — s „
Каламээс К. А, Агариковые грибы Эстонии (Polyporales, Boletales., Russulales, Agar i cal es) //Авт. дисс. на ооиок, уч. степени д.б.н. Таллин. 1975. 109 с,
Мелик-Хачатрян Д. Г. Семейство трихоломовые. Жизнь растений. М. 1978, т, 2, с. 273−277.
Рипачек Р. Биохимия дереворазрушэющих грибов // М: Лесная промышленность, 1981. 278 с,
Симонов Г, П, Маник С. И. Грибы макромицеты, лишайники, мохообразные. Киев, 1987. 199 с.
Степанова A.A. Цитология стерильных элементов базидиокарпа Coprinus truncorurn (Schaeff,) Fr. //Микол. и фитопатол. 1987- т, 21, Ы 3. с. 206−211.
Степанова А, А, Онтогенетическое изучение ультраструктуры цистид III, Suillus luieus //Тез. докл- VIII Конф, молодых ученых и специалистов Мн-та ботаники и ЦБС АН ТССР, Ашхабад: Ылым, 1988 а, 9р п1. ЕиО ,
Степанова A.A. Онтогенетическое изучение цистид VI, Pholiota sqarrosa //Тез, докл, VIII Конф, молодых ученых и специалистов Инта ботаники и ЦБС АН ТССР, Ашхабад: Ылым, 1988 б, 29 с,
Степанова А, А, Васильев А, Е. Структура долипор агариковых грибов как систематический признак // Микол, и фитопатол, 1988. т, 22. вып. 6, с, 503−511.
Степанова А, А- Ультраструктурные аспекты онтогенеза базидий Trioholoma focale (Fr,) Rick, //Изв. АНТ ТССР, сер. биол. наук. 1989. N 5. с. 7−13.
Степанова A.A. Сравнительный анализ ядер клеток агариковых грибов // Тез. докл. VIII конф, по споровым растениям Средней Азии и Казахстана. 1989. 158 с.
Степанова А, А, Онтогенетическое изучение ультраструктуры цистид II. Psathyrella candolieana //Тез. докл. IX Реопубл. конф. молодых ученых и специалистов. Ашхабад: Ылым, 1990. 232 с.
Степанова А.А. Морфогенез грибов порядка Agaricales зЛ.(сравнительный ультраструктурный анализ).• Дисс. на ооиск. уч. степ, д.б.н. л, 1990 а. 337 о.. • < •
Степанова А.А. Онтогенетическое изучение ультраструктуры цистид I. Coprinus trunoorum /7 Тез. докл. IX Респ, науч. конф, молодых ученых и специалистов, Ашхабад: Ылым, 1990 б. 231 с.
Степанова А. А, Васильев А. Е. Данные электронной микроскопии о морфогенезе базидий Inonotus tamariois (Pat.) Maire. (Hymenocha-etaceae) // Микол. и фитопатол. 1993. вып. 27. N 1. о. 29−35.
Степанова А.А., Васильев А. Е. Ультраструктурные основы морфогенеза шляпочных грибов. Ашгабат: Ылым, 1994. 263 с,
ФедоровН.И., Неустроева Л. И. Биохимический состав Flammuli-na velutipes, выращенного в глубинных условиях // Тез, докл. Всес. конф., „Мицелиальн, грибы“, Пущине, 1983, с, 10−12.
Aisan E.V., Sands F, The biology and cultivation of edible mushrooms, New York et. s: Acad, Press. 1978, p. 137−168,
Aschan K, Studies on dediploidisation mycelia of the Basidio-mycete Collybia velutipes //Sven, Bot. Tid, 1952, v. 46. p, 3−11,
Berliner M. D., Duff“ R.H. ultrastructure of Arrnillaria rriellea hyphae //Can, J, Bot. 1965, v. 43, N 1. p. 171−172.. .
Blayney G.P., Marchant R. Glycogen and protein inclusions in elongating stipes of Coprinus cinereus // J.Gen. Microbiol. 1977. v. 95. N 2, p.457−475.
Chang S.T., Ling K.L. Nuclear behavior in the basidiomycete, Yolvarieiia volvaoeae // Airier. J. But. 1970, v, 57. N 2. p. 165 171.
Clemencon H, Ultrastructure of hyrnenial cells in two Boletus // Beih, Nova Hedw. 1975. Bd. 51. s.-93−98.
Craig G.D., Newsaro R, J, Gull K., Wood D.A. An ultrastructural and autoradiographic study of -stipe elongation in Agaricus bi-sporus /"/"Protoplasma, 1979, v, 95, N 1−2, p. 15−70.
Delgado J.C., Cook A.A. Nuclear condition of the basidia, ba-sidiospores, and mycelium of Marasrriius perniciosus // Can, J, Bot, 1976, v. 54, N 1. p. 67−83,
Dihakasici S, Cell rnorphogenetic studies in Flamrnulina velu-tipes, with special reference to ultrastructure, nucleic acids- ri-bonucleates //' Ann, Univ. Turkuensis, ser. A, Geograph, gevl, 1972, v. 48, p. 7−50.
Duncan E, J, Post-meiotic events in Boleti // Trans, Brit, Myco 1, Soc. 1970, v. 63, N 3, p, 115−120,
Duncan E.G., Galbraith M, H, Post-meotic events in the Homoba-sidiomycetidae // Trans, Brit, Mycol. Soc, 1972, v, 58, N 3, p. 387−392,
Duncan T.J., Galbraith M, H, Post-meiotic events in the Horno-basidiomycetes //' Trans, Brit, Mycol, Soc, 1972, v. 58, N 3, 387−391,
Gaurnan E.A. Dodge C.W. Comparative morphology of“ fungi.
McGrawHill Book Company, Inc. 1928. p. 398−466,
Grove S.N., Bracker C, E, Protoplasmic organization of hyphae tips among fungi: vesicles and Spitzenkorper //J. Baoteriol. 1970, Bd. 104. N 2. s. 989−1009,. ' ¦
Gruen H.E. Growth and rotation of Flammulina velutipes fruit-bodies and the dependence of stipe elongation on the cap /7 Myco-logia. 1969, v. 61. N 1, p. 149−166,. '
Gruen H.E. Promotion of» stipe elongation in Flammulina velutipes by a diffusate from excised lamellae supplied with nutrients // Can. J. Bot. 1976. v. 54. p, 1306−1315.
Gruen H.E. Control of rapid stipe elongation by the lamellae in fruitbodies of Flammulina velutipes // Can. J. Bot. 1979. v.57. N 10. p. 1131−1135,
Gruen H.E., Wu S. Dependence of fruitbodies elongation on the mycelium in Flammulina velutipes // Mycologia. 1972. v, 64. N 5. p. 995−1007, «/
Gruen H. E, Wong W.M. Distribution of cellular amino acids, protein, and total organic nitrogen during fruitbody development in Flammulina velutipes II. Grows on potato-glucose solution // Can. J. Bot. 1982 b. v. 60. N 8. p. 1342−1351. • .
Hafner L, Thielke C. • Kernzahl und Zellgrosse irn Fruohtkor-perstiel von Coprinus radiatus (Solt.) Fr, //•Ber. Deutch. Bot, Besell. 1970. Bd. 83- H.l. s. 27−31.
Henderson L.E., Ross I.K.•Ultrastructural studies of vegetative and fruiting: mycelia of Coprinus oongregatus // Mycologia. 1983, v.75. N4, p. 843−657. :
Kitarnoto Y., Gruen H.E. Distribiution of cellular carbohydrates during development of the mycelium and fruitbodies of Flammu-lina velutipes //Plant Physiol. 1976. v. 58. N 4. p. 485−491.
KornarsuJ., Tarekawa H, Nakanishi K.,¦ Watanable J. Flaromu-lin, a basis protein of Flamrnuiina velutipes with antitumor activities /7 Antibiotic. 1963. ser. A 16. p. 139−143.
Korhonen K. Observation on nuclear migration arid heterokaryo-tization in Armillaria // Cryptogamie Myool, — 1983. v.4, N 1. p. 79−85.
Kuhner R. Les Hymenornycetes agaricoides // Bull. Soc. Linn, Lyon. 1980. v. 49. 1027 p. »: >. ' .
Manocha M. S, Fine structure of the Agaricus carpophore //Can, J.Bot. 1965. v. 43. N 11. p. 105−110.
Matthews T, R, Niederpruem D. J. Differentiation-in Coprinus lagopus. II. Histology .and ultrastructural. aspects of developingprimordia // Arch, Microbiol, 1973 Bd.88. H, 3, s. 169- 180, .
McLaughlin D. J, Centrosornes and microtubules during meiosis in the mushroom Boletus rubinellus /7 J. Cell, Biol, 1971. v.50. N 3. p.737−745,
McLaughlin D, J, Ultrastructural localization of carbohydrate in the hymeniuiri and subgimenium of" Coprinus: evidence for the function of" the Goldgi apparatus // Protoplasrna. 1974. v.82. N 4. p. 341−363.
Mims C.W. Ultrastructure of" basidia and basidiospores of" the myoorrhizal fungus Pisolithus tinctorius // Can. J, Bot. 1980. v.58. N 4. p. 1525−1533.
Moore D. .Elhiti M.M.Y., Butler R.D. Morphogenesis of" the carpophore of" Coprinus cinereus /7 New Phytol. 1979. v. 83. N 3, p.1. U C? ij f !→ a
Moore R.T., Elhiti M=M,, Butler R, D, Morphogenesis of" the carpophore of" Coprinus cinereus /7 New Phytol, 1979, v.83. N 3, p. 695−722,
Motta J. J, A note on the mitotic apparatus in the rizomorph meristem of Armillaria rnellea //Mycologia, 1967, v. 59, N 2= p. 370−375.
Motta J.J. Cytology .and morphogenesis in the rhizomorph of Armi llaria rnellea //Amer, J. Bot. 1969, v. 56. N 6= p. 610- 619,
Motta J.J. Histochemistry of the rhizomorph meristem of Armi llaria rnellea //Arner. J. Bot. 1971. v. 58= N 1= p. 80 87,
Motta J.J.j Peabody D=C, Rhizomorph cytology and morphogenesis in Armillaria tabescens /7 Mycologia, 1982= v.74, p.671 674,
Nagl to, Nuclear ultrastructure: condensed chromatin in plants is species-specific (karyotypical). but not tissue-specific (functional) // Protoplasma. 1979. v, 100. N 1. p. 53−71.
Nakai Y. Cytological studies on shiitake, Lentinus edodes // Reports Tottori Myool. Inst. 1986 v. 24. 202 p. •
Nichols S.P.The nature and origin of binucleate cells of some basidiomycetes // Trans. Brit, Myool, Soc, Bot, 1904, v, 35. 35 p.
Olah Q.M. The fine structure of" Psilocybe quebecensis // My-copatol. Myool. Appl. 1973. v.49. N 3. p. 321−338.
Peabody R. B, Peabody D, Haploid rnonokaryotic basidiocarp tisues in species of Arrnillaria // Can. J, Bot. 1987, v. 65, N 1. p. 69−71. ' «» :
Powell K.A., Rayner A, D.M. Ultrastructure of the rhizomorph apex in Arrnillaria bulbosa in relation to mucilage production // Trans, Brit. Mycol. Soc. 1983, v. 81, N 3, p, 529 534,
Schmid R, I., Liese W, Feinstruktur der Rhisomorphen von Arrnillaria rnellea // Phytopat, Zeit, 1970. Bd. 68. N 3. p. 221−231.
Stephenson N.A.,. Sooday B.W. Nuclear number in the stipe cells of Coprinus cinereus // Trans, Brit. Mycol, Soc, 1984,1. V.82. N 3. p. 531−534.
Thielke C, Int. ranucleare Meiose bei Agaricus bisporus //Z.Pizkunde, 1976. Bd. 42, s. 57−66,
Yoshioka Y., Sano T., Irekawa T. Studies on antitumor polysaccharides of Flammulina velutipes //Chern, Pharm, Bui, 1973, V. 21, p. 1175−1180.
Wells K. Ultrastructural features of developing and mature basidia and basidiospores of Schizophyllum commune //Mycologia,-1965. v, 57, N.2. p. 236−261.
Williams M.A.J. Ultrastructural aspects of fruitbody differentiation in Flammulina velutipes //Developmen. Biol, of" Fungi. 1985. p. 3429−449.
Wong W.M.5 Gruen H.E. Changes in cell size and nuclear number during elongation of Flammulina velutipes fruitbodies //Mycologia, 1977. v, 69. N 5. p. 899−913.
Zhang W.-J, Dong Z. The ultrastructure of the rhizomorph of" Armillaria meIlea //Acta rnycol. sin. 1986, v, 5, N 2, C.98−103.
Условные обозначения к таблицам микрофотографий, А анастомоз
ПТВ полярное тельце веретена1. Пф полифосфатная гранула1. Сб субгимений1. Сек секреторная капля1. Сл слизь1. СК синалтонемный комплекс- 1681. Сп септа1. Ст стеригма1. ТГ трама гименофора
ЭР эндоплазматический ретикулум1. Я ядро1. Ядр ядрышко- 169
Рис. 2. Фрагменты клеток вегетативного мицелия, расположенных в короеой паренхиме без запасных включений (а) и с розетками гликогена (б).
Рис. 3. Продольный срез зачатка плодового тела под световым микроскопом (а) и фрагменты составляющих его клеток на электронно-микроскопическом уровне (б).
Рис. 4. а общий вид не вакуолизированной клетки зачатка плодового тела с ядром, митохондриями и другими компонентами- б — фрагмент зачатка плодового-с не вакуо-лизированными, стареющими и опустошенными клетками.
Рис. 5. Фрагмент зачатка плодового тела с клетками разного типа.
Рис. 6. Фрагменты не вакуолизированных клеток (а) и с большим числом мелких вакуолей (б) е верхней части ножки плодового тела высотой 0,07 см. ножки плодового тела высотой 0,07 см.
Рис. 8. а общий вид нижней части ножки плодового тела высотой 0,07 см- б — клетки верхней части ножки плодового тела высотой 3,0 см.
Рис. 9. Общий вид цистиды (а), слабо (б) и сильно вакуолиро-ванных (в) клеток кожицы шляпки плодового тела высотой 0,07 см. 1. Рис- 10.
Общий вид клеток края шляпки плодового тела высотой 0,07 см под световым (а) и электронным (б) микроскопами.
Рис. 11. Клетки кожицы (а) и трамы шляпки (б) плодового тела ч*, высотой 0,1 см.
Рис. 12. Вакуоли, митохондрии, ЭР и другие органеллы в клетках трамы гименофора плодового тела высотой 0,5 см. доэдн1. Жъ&е. ШЯ 41
Рис. 16. а, в фрагменты клеток гимения молодого плодового тела высотой 2,0 см- б — фрагмент диплоидного ядра ссинаптонемным комплексом.
Рис. 19. Общий вид гимения (а) и фрагмента бавидии с гаплоидными ядрами (б) плодового тела высотой 3,0 см.
Рис. 20. Общий вид стеригмы (а) и зрелой базидии гимения плодового тела высотой 2,0 см. I
Рис. 22. Полярное тельце веретена (а) и гаплоидные ядра бази-дии после мейоза (б). .
Рис. 24. Растущая (а) и закончившая рост (б) инициаль цистиды гимения.
Рис. 25. Апикальная (а), базальная (б) и центральная (в) ти формирующейся цистиды гимения.'час
Рис. 26. Фрагменты зрелых цистид гимения.
Рис. 28. Фрагменты разновозрастных парафиз гимения с ядром, вакуолью и запасными веществами.
Рис. ?9. Септы, долипоровые утолщения, парентесомы и пробки в траме гименофора закончившего рост плодового тела (а) и вегетативного мицелия (б).
Рис. 30. Особенности ультраструктуры порового аппарата септ в клетках тралы гименофора закончившего рост плодового тела (а) и его зачатка (б). ,.

Заполнить форму текущей работой