Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Ротация режимов антимикробной терапии в отделении реанимации

Диссертация: Ротация режимов антимикробной терапии в отделении реанимации
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Одним из способов снижения уровней антибиотикорезистентности является ротация антимикробных препаратов, которая подразумевает циклическую смену режимов эмпирического лечения определенных инфекций в отделении реанимации. Поскольку развитие антибиотикорезистентности напрямую связано с селективным давлением антимикробных препаратов, после временного ограничения применения некоторых классов… Читать ещё >

Ротация режимов антимикробной терапии в отделении реанимации (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Введение
  • Глава I. Пути оптимизации антимикробного лечения нозокомиальных инфекций в отделении реанимации и интенсивной терапии (обзор литературы)
  • Глава II. Характеристика клинических наблюдений и методов 52−76 исследования

Глава III. Микробиологическое обоснование выбора антимикробных препаратов для эмпирической терапии в ОИТ. Влияние ротации режимов эмпирической терапии на микробный спектр и профиль антибиотикорезистентности грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций.

3.1 Введение.77

3.2 Динамика микробного спектра и 79−104 антибиотикорезистентности возбудителей нозокомиальных инфекций в зависимости от режима эмпирической антимикробной терапии.

3.3 Резюме.104

Глава IV. Сравнение клинической и микробиологической эффективности различных режимов эмпирической антимикробной терапии внебольничных и нозокомиальных инфекций в ОРИТ

4.1 Введение.110

4.2 Сравнительная оценка клинической эффективности 112−120 режимов эмпирической антимикробной терапии.

4.3 Сравнение бактериологической эффективности режимов 120−122 эмпирической антимикробной терапии

4.4 Сравнение объемов потребления карбапенемов на 123−126 различных этапах исследования

4.5 Резюме 126

Неуклонный рост устойчивости госпитальной микрофлоры к антимикробным препаратам является проблемой общемирового масштаба. На встрече лидеров большой восьмерки рост антибиотикорезистентности был назван угрозой национальной безопасности всех стран.

Ежегодно появляются сообщения о развитии новых форм приобретенной резистентности возбудителей внегоспитальных и нозокомиальных инфекций. Уровень резистентности госпитальных штаммов золотистого стафилококка к метициллину и прочим бета-лактамным антибиотикам в США составляет 59%, а в развивающихся странах превышает 80%. Есть данные о распространении устойчивости стафилококков к бета-лактамам и во внегоспитальной среде. В США резистентность энтеробактерий-возбудителей нозокомиальных инфекций к цефтриаксону составила 19%, а в развивающихся странах — 55%. Устойчивость псевдомонад к ципрофлоксацину в стационарах США приближается к 30%, а в стационарах стран «третьего мира» — к 60% (169, 170, 201). Тревожным фактом является появление и распространение резистентности энтерококков к ванкомицину, которая в США уже превысила 30%. Данные российских многоцентровых исследований свидетельствуют о весьма высоком уровне резистентности возбудителей нозокомиальных инфекций к антимикробным препаратам в стационарах нашей страны (21, 22, 31).

Особенно остро вопрос устойчивости госпитальной микрофлоры стоит в отделениях реанимации и интенсивной терапии, где объем потребления антимикробных средств и уровни резистентности микрофлоры существенно превышают таковые в других отделениях стационара.

Разработка новых антимикробных препаратов, преодолевающих существующие механизмы резистентности, не может полностью решить проблему устойчивости возбудителей нозокомиальных инфекций, тем более что в последнее десятилетие на фармакологический рынок вышло лишь весьма небольшое количество вновь созданных лекарственных средств.

Одним из способов снижения уровней антибиотикорезистентности является ротация антимикробных препаратов, которая подразумевает циклическую смену режимов эмпирического лечения определенных инфекций в отделении реанимации. Поскольку развитие антибиотикорезистентности напрямую связано с селективным давлением антимикробных препаратов, после временного ограничения применения некоторых классов антибиотиков или их отдельных представителей можно ожидать повышение чувствительности микрофлоры к ним, что позволило бы вновь успешно применять эти средства в дальнейшем.

Эффективность ротации антимикробных препаратов в качестве одной из мер по сдерживанию антибиотикорезистентности активно дискутируется. Несмотря на большое число публикаций, посвященных данному вопросу, до настоящего времени не выработана методика применения циклической смены режимов эмпирической терапии. В частности, нет четких рекомендаций относительно оптимальной продолжительности циклов, необходимого числа периодически чередующихся режимов лечения, возможности чередования антимикробных препаратов одной фармакологической группы. Кроме того, во всех проведенных ранее исследованиях по разным причинам объем применения «антибиотиков вне цикла» был весьма высоким, что снижает ценность полученных результатов.

Возможность и целесообразность ротации режимов эмпирической антимикробной терапии в отделениях реанимации нашли отражение лишь в немногих работах отечественных авторов. Следует весьма осторожно пользоваться выводами западных исследователей об эффективности ротации антимикробных средств, поскольку микробная структура нозокомиальных инфекций и профили антибиотикорезистентности ведущих возбудителей в российских стационарах обладают локальными особенностями, кроме того, существуют местные предпочтения при выборе режимов эмпирической и целенаправленной антимикробной терапии.

В этой связи работа по изучению эффективности ротации режимов эмпирической антимикробной терапии в отделениях реанимации в качестве одной из мер по сдерживанию резистентности возбудителей нозокомиальных инфекций к антибиотикам представляется на сегодняшний день актуальной.

ЦЕЛЬ И ЗАДАЧИ ИССЛЕДОВАНИЯ

Целью настоящего исследования является определение эффективности плановой ротации режимов эмпирической антимикробной терапии в ОРИТ для улучшения результатов лечения и сдерживания антибиотикорезистентности грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций.

При разработке программы исследования были поставлены следующие задачи:

1. Определение антибиотикорезистентности возбудителей НИ в зависимости от изменений в схемах эмпирической антимикробной терапии.

2. Определение влияния циклической смены режимов эмпирической антимикробной терапии в ОРИТ на микробный спектр НИ.

3. Оценка клинической и микробиологической эффективности различных режимов эмпирической антибактериальной терапии.

4. Определение оптимальной продолжительности циклов ротации эмпирической антимикробной терапии в ОРИТ.

НАУЧНАЯ НОВИЗНА.

Впервые в отечественной клинической практике определено влияние ротации режимов эмпирической антимикробной терапии на этиологический спектр нозокомиальных инфекций и профиль резистентности их возбудителей к антимикробным препаратам.

Оценена клиническая и микробиологическая эффективность различных режимов эмпирической антимикробной терапии внебольничных и нозокомиальных инфекций в отделении реанимации хирургического профиля.

ПРАКТИЧЕСКАЯ ЗНАЧИМОСТЬ.

Установлены наиболее значимые возбудители госпитальных инфекционных осложнений в отделении интенсивной терапии хирургического профиля. Обоснована необходимость проведения тщательного локального микробиологического мониторинга.

На основании клинических и микробиологических наблюдений даны практические рекомендации по тактике применения антибактериальных препаратов на этапе эмпирической антимикробной терапии внебольничных и нозокомиальных инфекций у больных отделения реанимации хирургического профиля. Для эмпирической терапии внебольничных инфекций разной степени тяжести могут быть с одинаковым успехом применены цефалоспорины III-IV поколений, а также защищенный цефалоспорин III поколения цефоперазон/сульбактам. В случае развития нозокомиальных инфекционных осложнений у хирургических больных целесообразно использовать режимы с максимальной эффективностью: карбапенемы или цефоперазон/сульбактам в режиме монотерапии или в комбинации с гликопептидами при выделении MRS А.

В качестве одной из мер сдерживания антибиотикорезистентности госпитальных возбудителей в отделении реанимации предложена циклическая замена (ротация) режимов антимикробной терапии. В случае чередования антимикробных препаратов, близких по химической структуре, ощутимого снижения уровня резистентности микрофлоры можно ожидать при продолжительности цикла не менее 12 месяцев.

ВНЕДРЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ РАБОТЫ В ПРАКТИКУ.

Предложенные схемы антимикробной терапии нозокомиальных инфекций применяют в клинике факультетской хирургии им. С. И. Спасокукоцкого Российского государственного медицинского университета, в отделении реанимации и интенсивной терапии хирургического корпуса Городской клинической больницы № 1 им. Н. И. Пирогова г. Москвы и Городской клинической больницы № 7 г. Москвы. Основные положения работы используют для последипломного обучения врачей кафедре анестезиологии и реаниматологии ФУВ РГМУ, а также при подготовке аспирантов и ординаторов.

ПОЛОЖЕНИЯ, ВЫНОСИМЫЕ НА ЗАЩИТУ.

1. Этиологическая структура нозокомиальных инфекций и профиль антибиотикорезистентности их ведущих возбудителей претерпевает серьезные изменения с течением времени, что обуславливает необходимость проведение тщательного локального микробиологического мониторинга.

2. Циклическая смена (ротация) режимов антимикробной терапии в отделении реанимации оказывает существенной влияние на микробный спектр нозокомиальных инфекций и уровень чувствительности их возбудителей к антимикробным препаратам.

3. Для снижения уровня резистентности госпитальной флоры к цефалоспоринам Ш-1У поколений можно рекомендовать их исключение из формуляра антимикробных средств с заменой на близкие по структуре препараты на срок не менее 12 месяцев.

4. Чувствительность грамотрицательной госпитальной флоры к высокоэффективным препаратам, преодолевающим основные механизмы антибиотикорезистентности (карбапенемы, цефоперазон/сульбактам) может сохраняться весьма продолжительное время, несмотря на их широкое применение.

АПРОБАЦИЯ РАБОТЫ.

Основные положения диссертации доложены на:. Всероссийском образовательном конгрессе анестезиологов и реаниматологов с международным участием «Современные достижения и будущее анестезиологии-реаниматологии в Российской Федерации», октябрь 2008 г., г. Москва. Научном обществе анестезиологов — реаниматологов г. Волгограда и.

Волгоградской области, сентябрь 2008 г., г. Волгоград. Симпозиуме «Стратегия применения антибиотиков в интенсивной терапии», сентябрь 2008 г., г. Санкт-Петербург. XV Российском Национальном Конгресс «Человек и лекарство», апрель 2008 г., г. Москва VI Научно-практической конференции «Внутрибольничные инфекции в стационарах различного профиля, профилактика, лечение осложнений» апрель 2008 г., г. Москва III Хирургическом Конгрессе «Научные исследования в реализации программы «Здоровье населения России» февраль 2008 г., г. Москва IV Всероссийская научно-практическая конференция РАСХИ.

Абдоминальная хирургическая инфекция: перитонит" (Москва, 2005 г.). th 25 International Symposium on Intensive Care and Emergency Medicine.

ISICEM) (Brussels, 2005).. Симпозиуме «Российская ассоциация специалистов по хирургическим инфекциям (РАСХИ) — роль анестезиолога-реаниматолога в решении проблем хирургической инфекции» VI Сессия МНОАР (Голицино, 2005 г.). V Сессии МНОАР, Секция «Инфекция и сепсис в анестезиологииреаниматологии» (Голицино, 2004 г.).. Международном форуме «Неотложная медицина в мегаполисе» (Москва, 2004 г.) Международном конгрессе «Современные технологии в травматологии, ортопедии: ошибки и осложнения — профилактика, лечение» (Москва, 2004 г.). Конгрессе анестезиологов-реаниматологов ЦФО «Современные технологии в анестезиологии и реаниматологии» (Москва, 2003 г.).. Объединенной научно-практической конференции сотрудников кафедры анестезиологии и реаниматологии ФУВ РГМУ, анестезиологических и реанимационных отделений Городской клинической больницы № 1 им. Н. И. Пирогова и Городской клинической больницы № 7 г. Москвы.

ПУБЛИКАЦИИ.

По теме диссертации опубликовано 10 печатных работ.

ОБЪЕМ И СТРУКТУРА ДИССЕРТАЦИИ.

Диссертация изложена на 150 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, 4 глав, заключения, выводов, практических рекомендаций и библиографического указателя, который включает ссылки на 35 отечественных и 197 иностранных источника. В работе содержатся 42 таблицы и 3 рисунка.

выводы.

1. Микробиологическая структура и резистентность возбудителей нозокомиальных инфекций в ОРИТ динамически изменяются. Эти изменения зависят от режимов проводимой антимикробной терапии.

2. Широкое применение незащищенных бета-лактамов для эмпирической антимикробной терапии ведет к распространению энтеробактерий-продуцентов бета-лактамаз расширенного спектра (К. pneumoniae и Е. coli) и к повышению резистентности этих возбудителей к цефалоспоринам.

3. Для снижения уровня резистентности госпитальной флоры к цефалоспоринам III-IV поколений необходимо их исключение из формуляра антимикробных средств с заменой на близкие по структуре препараты на срок не менее 12 мес.

4. Режимы эмпирической антимикробной терапии, применявшиеся в рамках ротационной программы (цефтазидим, цефепим, цефоперазон/сульбактам), обладают весьма высокой клинической эффективностью при внегоспитальных инфекциях (89%, 93%, 95%, 91%, различия недостоверны).

5. При нозокомиальных инфекциях наибольшей клинической и микробиологической эффективностью (82 и 89% соответственно) обладает цефоперазон/сульбактам.

6. Чувствительность грамотрицательной госпитальной флоры к препаратам, преодолевающим основные механизмы антибиотикорезистентности (карбапенемы, цефоперазон/сульбактам), сохранялась на всех этапах исследования, несмотря на их постоянное применение.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Поскольку микробный спектр нозокомиальных инфекций неодинаков в различных учреждениях и меняется с течением времени, возбудители нозокомиальных инфекций отличаются высокой устойчивостью к антимикробным препаратам, в каждом отделении реанимации необходимо проведение тщательного динамического микробиологического мониторинга.

2. Для эмпирической антимикробной терапии внегоспитальных инфекций могут быть с успехом применены цефтазидим, цефепим и цефоперазон/сульбактам. Наибольшей клинической и бактериологической эффективность у больных с нозокомиальными инфекциями обладают карбапенемы и цефоперазон/сульбактам.

3. Для снижения уровня резистентности госпитальной флоры к цефалоспоринам III-IV поколений можно рекомендовать их временное исключение из формуляра антимикробных средств с заменой на близкие по структуре препараты на срок не менее 12 мес.

4. Средства для эмпирической AMT, используемые для последующего «витка» ротации, должны преодолевать ведущие механизмы резистентности микрофлоры к предыдущему режиму.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Абдоминальная хирургическая инфекция: клиника, диагностика, антимикробная терапия: Практическое руководство / Под ред. B.C. Савельева, Б. Р. Гельфанда. — М.: Литтерра, 2006. — 168 с. — (Серия «Практические руководства»).
  2. В.Б. Антибактериальная терапия инфекций в отделениях реанимации и интенсивной терапии. Медицинский альманах «Университеты практического врача» Выпуск 2: Антимикробная терапия тяжелых инфекций в стационаре. С. 4−20
  3. В.Б. Деэскалационная антибактериальная терапия — концепция повышения эффективности лечения тяжелых инфекций. РМЖ 2004(5)
  4. Н.В., Лобачева Г. В., Востриков Т. Ю., Попов Д. А. Опыт ротации базовых антибиотиков в отделении реанимации и интенсивной терапии кардиохирургического стационара. Антибиотики и химиотерапия. 2004- 49: 20−25
  5. Ю.Б., Ушкалова Е. А. Нозокомиальные инфекции и принципы их лечения. Фарматека 2001, 12(53).
  6. .З. Нозокомиальная пнебмония, связанная с искусственной вентиляцией легких, у хирургических больных. Автореф. дисс.. к.м.н. М. 2000 г.
  7. .З., Гельфанд Е. Б., Попов Т. В., Карабак В. И., Краснов В. Г. Проблемные госпитальные микроорганизмы. Acinetobacter spp. -возбудитель или свидетель? Инфекции в хирургии. 2008 (6) — 1: с. 12−18.
  8. А.Г., Ромашов О. М., Яковлев C.B., Сидоренко C.B. Характеристики и клиническое значение бета-лактамаз расширенного спектра. Антибиотики и химиотерапия. 2003. 48(7)
  9. Ю.Европейское руководство по клинической оценке противоинфекционных средств./Под ред. TR. Beam, DN. Gilbert, CM.Kunin. Пер. с англ. под ред. А. Г. Чучалина, Л. С. Страчунского. Смоленск, 1996- 15−40.
  10. М.Н. Роль карбапенемов в условиях эскалации антибиотикорезистентности грамотрицательных бактерий. РМЖ 2008(2)
  11. В.И. Микробиологический мониторинг за возбудителями нозокомиальных инфекций (на примере отделений реанимации и интенсивной терапии) Антибиотики и химиотерапия, 2000 (3), с. 20−23.
  12. Т.В. Нозокомиальные инфекции в отделениях интенсивной терапии хирургического профиля. Автореф.. .дисс. к.м.н. М. 2005 г. 27 с.
  13. Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии. Под ред. JI.C. Страчунского, Ю. Б. Белоусова, С. Н. Козлова. Смоленск: МАКМАХ, 2007.-464 с.
  14. Д.Н. Нозокомиальная пневмония у больных в острый период тяжелой травмы. Автореф. дисс.. к.м.н. М., 2003.
  15. Д.Н., Гельфанд Б. Р., Игнатенко О. В., Ярошецкий А. И., Яковлев C.B. Цефоперазон/сульбактам (сульперазон) в схемах ротации антибактериальных препаратов в ОРИТ. Consilium medicum 2005 (7) — 4
  16. В.А. Формуляр антимикробных средств для отделений реанимации и интенсивной терапии. Клинич Микробиол и Антимикроб Химиотер. 2003- 5(4): 10−18
  17. В.А., Ложкин С. Н., Галеев Ф. С., Заболотских И. Б., Кон Е.М. и соавт. Фармакоэпидемиологический анализ лечения пациентов с хирургическим сепсисом в ОРИТ. Результаты многоцентрового исследования. Клинич Микробиол и Антимикро Химиотер 2003, № 2, т. 5
  18. C.B., Резван С. П. и соавт. Этиология тяжелых госпитальных инфекций в отделениях реанимации и антибиотикорезистентность среди их возбудителей. Антибиотики и химиотерапия. 2005- 50 (2−3): 33−41.
  19. Л.С., Белькова Ю. А., Дехнич А. В. Внебольничные MRS, А -новая проблема антибиотикорезистентности. Клин Микробиол Антимикроб Химиотер. 2005- (7)№ 1: 32−46
  20. Страну некий JI.C., Козлов С. Н. Современная антимикробная химиотерапия. Руководство для врачей М.: Боргес. 2002. — 436 с.
  21. JI.C., Козлов Р. С., Решедько Г. К. с соавт. Состояние антибиотикорезистентности грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций в отделениях интенсивной терапии.// Информационное письмо ЦНИИ эпидемиологии, 1997.
  22. В.П. Настоящее и будущее цефалоспорина IV поколения цефепима. Антибиотики и химиотерапия. 2003. 48(7)
  23. С.В. Критический анализ антибактериальных препаратов для лечения инфекций в стационаре. Инфекции и антимикробная терапия. 2003- 2: 54−56
  24. С.В. Современные подходы к антибактериальной терапии госпитальных инфекций. Лечащий врач. 2005- 9
  25. А.И., Проценко Д. Н., Яковлев С. В., Гельфанд Б. Р. Стратегия антибактериальной терапии у пациентов с тяжелой сочетанной травмой: значимость оценки исходной тяжести состояния. Инфекция в хирургии 2004 (2) — 3: 20
  26. Alvarez-Lerma F. Modification of empiric antibiotic treatment in patients with pneumonia acquired in the intensive care unit. ICU-Acquired Pneumonia Study Group. Intensive Care Med 1996- 22:387−394
  27. Alvarez-Lerma F., Palomar M., Josu J. et al. Infections caused by Acinetobacter spp. in critically ill ICU patients.
  28. Archibald LK, Manning ML, Bell LM, Banerjee S, Jarvis WR. Patient density, nurse-to-patient ratio and nosocomial infection risk in a pediatric cardiac intensive care unit. Pediatr Infect Dis J. 1997−16:1045−8
  29. Ascar JF. Consequences of bacterial resistance to antibiotics in medical practice. Clin Infect Dis. 1997−24:S17-S18
  30. Bennett K.M., Scarborough J.E., Sharpe M. et al. Implementation of antibiotic rotation protocol improves antibiotic susceptibility profile in a surgical intensive care unit. J Trauma. 2007- 63: 307−311
  31. Bergogne-Berezin E. Current guidelines for the treatment and prevention of nosocomial infections Drugs 1999- 58: 51−67.
  32. Bergogne-Berezin E., Towner KJ. Acinetobacter spp. as Nosocomial Pathogens: Microbiological, Clinical and Epidemiological Features. Clin Microbial Rev. 1996- 9(2): 148−165.
  33. Bodi M., Ardanuy C., Olona M. et al. Therapy of ventilator-associated pneumonia: the Tarragona Strategy. Clin Microbiol Infect 2001- 7: 32−33
  34. Bonhoffer S., Lipsitch M., Levin BR. Evaluating treatment protocols 1.0 prevent antibiotic resistance. Proc Natl Acad Sci USA. 1997- 94:12 106−12 111.
  35. Bonnet R. Growing group of extended-spectrum beta-lactamases: the CTX-M enzymes. Antimicrob Agents Chemother 2004- 48:1−14
  36. Bonten M.J., Austin D J., Lipsitch M. Understanding the spread of antibiotic resistant pathogens in hospitals: mathematical models as tools for control. Clin InfectDis 2001−33:1739−1746.
  37. Bonten M.J., Bergman S.D.C., Spejer H. et al. Characteristics of polyclonal endemicity of Pseudomonas aeruginosa colonization in intensive care units. Implications for infection control. Am J Respir Crit Care Med 1999- 160: 12 121 219
  38. Bonten M.J., Weinstein R.A. The role of colonization in the pathogenesis of nosocomial infections. Infect Control Hosp Epidemiol. 1996−17:193−200.
  39. Brown E.M., Nathwani D. Antibiotic cycling or rotation: a systematic review of the evidence of efficacy. J Antimicrob Chemother 2005- 55: 6−9
  40. Brown RB, Hosmer D, Chen HC, et al. A comparison of infections in different ICUs within the same hospital. Crit Care Med 1985- 13:472−476
  41. Brun-Buisson C. Do antibiotic protocols impact on resistance?. In: Controversies in Intensive Care Medicine. Eds. Kuhlen R., Moreno R., Ranieri M., Rhodes A. Medizinisch Wissenschaftliche Verlagsgesellschaft. P.183−192
  42. Brunkhorst F.M. et al. Procalcitonin for early diagnosis and differentiation of SIRS, sepsis, severe sepsis, and septic shock. Int Care Med 2000- 26(Suppl 2): S148−152
  43. Burke J.P. Antibiotic resistance — squeezing the balloon? JANA 1998- 280: 1270−1271
  44. Carlet J., Ben Ali A., Chltine A. Epidemiology and control of antibiotic resistance in the intensive care unit. Curr Opin Infect Dis 2004- 17: 309−316
  45. Carmeli Y., TroilletN., Karchmer A.W., Samore M.H. Health and economic outcomes of antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa. Arch Intern Med. 1999- 159:1127−1132
  46. Cartolano G.L., Cheron M., Benabid D. Et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) with reduced susceptibility to glucopeptides (GISA) in 63 French general hospitals. Clin Microbiol Infect 2004- 10: 448−451
  47. Chambers H. The changing epidemiology of Staphylococcus aureus? Emerg Inf Dis 2001- 7: 178−182
  48. Chamot E., Boffi E.L., Amari E., Rolmer P. et al. Effectiveness of combination antimicribial therapy for Pseudomonas aeruginosa bacteriemia. Antimicrob Agents Chemother 2003- 47: 2756−2764
  49. Chandrasekar PH, Kruse JA, Matthews MF. Nosocomial infection among patients in different types of intensive care units at a city hospital. Crit Care Med 1986- 14:508−510
  50. Chastre J., Fagon J.Y. State of Art: Ventilator-associated pneumonia. Am J Respir Crit Care Med. 2002- 165: 867−903
  51. Chastre J., Wolff M., Fagon J.Y. et al. Comparison of 15 vs 8 days of antibiotic therapy for ventilator-associated pneumonia in adults: a randomized trial. JAMA 2003- 290: 2588−2598
  52. Cometta A, Calandra T, Gaya H, et al. Monotherapy with meropenem versus combination therapy with ceftazidime plus amikacin as empiric therapy for fever in granulocytopenic patients with cancer. Antimicrob Agents Chemother 1996- 40: 1108−1115
  53. De Mol P. Antibiotic treatment rotation: effect on bacterial resistance in an intensive care unit abst. K-1205. Abstracts of 41st Interscience Conference on
  54. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. Chicago, USA, December 16−19, 2001, p. 411.
  55. Dennesen P.J.W., van der Ven A.J., Kessels A.G.H. et al. Resolution of infectious parameters after antimicrobial therapy in patients with ventilator-associated pneumonia. Am J Resp Crit Care Med 2001- 163: 1371−1375
  56. Dignani M.C. et al. Stenotromonas maltophilia infections. Semin Resp Crit Care Med. 2003 — 28: 696−698
  57. Doebbeling BN, Stanley GL, Sheetz CT, et al. Comparative efficacy of alternative hand-washing agents in reducing nosocomial infections in intensive care units. N Engl J Med. 1992- 327:88−93.
  58. Domingues E.A., Smith T.L., Sanders C.C., Sanders W.E. Jr. A pilot study of antibiotic cycling in a hematology-oncology unit. Infect Control Hosp Epidemiol 2000- 21: S4-S8
  59. Donchin Y, Gopher D, Olin M, et al. A look into the nature and causes of human errors in the intensive care unit. Crit Care Med 1995- 23:294−300
  60. Donowitz LG, Wenzel RP, Hoyt JW. High risk of hospital-acquired infection in the ICU patient. Crit Care Med 1982- 10:355−357
  61. Dubberke E.R., Fraser V J. Чередование и другие стратегии замедления и реверсирования антибиотикорезистентности. St Louis Infect Med 2004- 21(11): 544−556
  62. Dunagan WC, Woodward RS, Medoff G, et al. Antibiotic misuse in two clinical situations: positive blood culture and administration of aminoglycosides. Rev Infect Dis. 1991−13:405−412.
  63. Evans R.S., Pestotnic S.L., Classen D.C. et al. A computer-assistedmanagement program for antibiotics and other antiinfective agents. N Engl J Med. 1998- 338: 232−238 j
  64. Fridkin SK. Routine cycling of antimicrobial agents as an infectioncontrol measure. Clin Infect Dis 2003 -3 6:143 8−1444.
  65. Fridkin S.K., Gaynes R.P. Antimicrobial resistance in intensive care units. Clin Chest Med 1999- 20: 303−316
  66. Fridkin SK, Pear SM, Williamson TH, Galgiani JN, Jarvis WR. The role of understaffing in central venous catheter-associated bloodstream infections. Infect Control Hosp Epidemiol. 1996−17:150−8
  67. Fridkin SK, Welbel SF, Weinstein RA. Magnitude and prevention of nosocomial infections in the intensive care unit. Infect Dis Clin North Am 1997- 11:479−96.
  68. Garnacho-Montero J. et al. Treatment of multidrug-resistant A. baumannii ventilator-associated pneumonia with intravenous colistin: a comparison with imipenem-susceptible VAP. Clin Infect Dis 2003- 36: 1111−1118
  69. Garnacho-Montero J., Garcia-Garmendia J.L., Barrero-Almondovar A. et al. Impact of adequate empirical therapy on the outcome of patients admitted to the intensive care unit with sepsis. Crit Care Med 2003- 31: 2742−2751
  70. Gerding D.N. Antimicrobial cycling: lessons learned from the aminoglycoside experience. Infect Control Hosp Epidemiol 2000- 21(1 Suppl): S12-S17
  71. Gerding D.N., Larson T.A., Hughes R.A., Weiler M., Shanholtzer C., Peterson L.R. Aminoglycoside resistance and aminoglycoside usage: ten years of experience in one hospital. Antimicrob Agents Chemother 1991- 35: 1284−1290
  72. Gerding DN, Martone WJ. SHEA conference on antimicrobial resistance: Society for Healthcare Epidemiology of America. Infect Control Hosp Epidemiol 2000- 21:347−351
  73. Giantsou E., Liratzopoulos N., Efraimidou E., Panopoulou M., Alepopoulou E. Et al. De-escalation therapy rates are significantly higher by bronchoalveolar lavage than by tracheal aspirate. Intensive Care Med. 2007- 33: 1533−1540
  74. Giraud T, Dhainaut JF, Vaxelaire JF, et al. Iatrogenic complications in adult intensive care units: a prospective two-center study. Crit Care Med 1993- 21:40−51
  75. Goldman D., Larson E. Hand-washing and nosocomial infections. N Engl Med 1992- 327: 120−122 :
  76. Goldmann DA, Leclair J, Macone A. Bacterial colonization of neonates admitted to an intensive care environment. J Pediatr 1978- 93:288−293
  77. Goldmann DA, Weinstein RA, Wenzel RP, Tablan OC, Duma RJ, Gaynes RP, et al. Strategies to prevent and control the emergence and spread of antimicrobial-resistant microorganisms in hospitals. A challenge to hospital leadership. JAMA. 1996−275:234−40
  78. Gross R., Morgan A.S., Kinky D.E., Weiner M,. Gibson G.A., Fishman N.O. Impact of a hospital-based antimicrobial management program on clinical and economic outcomes. Clin Infect Dis 2001−33 :289−295.
  79. Gruson D, Hilbert G, Vargas F. Et al. Strategy of antibiotic rotation: long-term effect on incidence and susceptibilities of gram-negative bacilli responsible for ventilator-associated pneumonia. Crit Care Med 2003- 31(7): 1908−1914
  80. Gruson D., Hilbert G., Vargas F., Valentino R., Bebear C., Allery A., Bebear C., Gbikpi-Benissan G., Cardinaud J.P. Rotation and restricted use ofantibiotics in a medical intensive care unit. Am JRespir Crit Care Med 2000−162:837−843.
  81. Haley RW, Bregman DA. The role of understaffing and overcrowding in recurrent outbreaks of staphylococcal infection in a neonatal special-care unit. J Infect Dis 1982- 145:875−885
  82. Haley RW, Cushion NB, Tenover FC, et al. Eradication of endemic methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections from a neonatal intensive care unit. J Infect Dis 1995- 171:614−624
  83. Hanberger H, Garcia-Rodriguez JA, Gobernado M, et al. Antibiotic susceptibility among aerobic gram-negative bacilli in intensive care units in 5 European countries: French and Portuguese ICU Study Groups. JAMA 1999- 281:67−71
  84. Harbarth S., et al. Diagnostic value of procalcitonin, interleukin-6 and interleukin-8 in critically ill patients admitted with suspected sepsis. Am J Respir Crit Care Med 2001- 164: 396−402
  85. Harbarth S., Cosgrove S., Carmeli Y. Effects of antibiotics on nosocomial epidemiology of vancomycin-resistant enterococci. Antimicrob Agents Chemother 2002- 46: 1619−1628
  86. Harbarth S., Garbino J.K., Pugin J. et al. Inappropriate initial antimicrobial therapy and its effects on survival in a clinical trial of immunomodulating therapy for severe sepsis Am J Med 2003- 115: 529−535
  87. Harbarth S., Samore M.H., Lichtenberg D. et al. Prolonged antibiotic prophylaxis after cardiovascular surgery and its effect on surgical site infections. and antimicrobial resistance. Circulation 2000- 101:2916−2921
  88. Harbarth S, Sudre P, Dharan S, et al. Outbreak of Enterobacter cloacae related to understaffing, overcrowding, and poor hygiene practices. Infect Control Hosp Epidemiol 1999- 20:598−603
  89. Higuera F, Rosenthal VD, Duarte P, Ruiz J, Franco G, Safdar N. The effect of process control on the incidence of central venous catheter-associated bloodstream infections and mortality in intensive care units in Mexico. Crit Care Med. 2005−33:2022−7.
  90. Hiramatsu K, Hanaki H, Ino T, et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus clinical strain with reduced vancomycin susceptibility. J Antimicrob Chemother 1997- 40:135−136
  91. Hooper D.C. Bacterial topoisomerases, anti-topoisomerases, and anti-topoisomerases resistance. Clin Infect Dis. 1998- 27(Suppll): S54-S63
  92. Howden B.P. et al. Treatment outcomes for serious infections caused by MRS A with reduced vancomycin susceptibility. Clin Infect Dis. 2004- 38: 521 528
  93. Huebner J, Pier GB, Maslow JN, et al. Endemic nosocomial transmission of Staphylococcus epidermidis bacteremia isolates in a neonatal intensive care unit over 10 years. J Infect Dis 1994- 169:526−531
  94. Hughes M.G., Evans H.L., Chong T.W. et al. Effect of intensive care unit rotating empiric antibiotic schedule on the development of hospital-acquired infections on the non-intensive care. unit ward. Crit Care Med. 2004- 32: 53−60
  95. Hugonnet S, Harbarth S, Sax H, Duncan RA, Pittet D. Nursing resources: a major determinant of nosocomial infection? Curr Opin Infect Dis. 2004- 17: 329−33.
  96. Hyatt J.M., Schentag J.J. Pharmacodynamic modelling of risk factors for ciprofloxacin resistance in Pseudomonas aeruginosa. Infect Control Hosp Epidemiol. 2000- 21 (Suppl):S9-Sll.
  97. Ibrahim EH, Ward S, Sherman G, Schaiff R, Fraser VJ, KollefMH. Experience with a clinical guideline for the treatment of ventilator-associated pneumonia. Crit Care Med 2001−29:1109−1115.
  98. Jarvis WR. Selected aspects of the socioeconomic impact of nosocomial infections: morbidity, mortality, cost, and prevention. Infect Control Hosp Epidemiol. 1996−17:552−7.
  99. Johanson W.Y., Pierce A.K., Sanford J.P. Changing pharyngeal bacterial flora of hospitalized patients: emergence of Gram-negative bacilli. N Engl J Med 1969- 281: 1137−1140
  100. Johanson W.Y., Pierce A.K., Sanford J.P. et al. Nosocomial respiratory infections with Gram-negative bacilli: the significance of colonization of the respiratory tract. Ann Int Med 1972- 77: 701−706
  101. John J.F. Jr. Antibiotic cycling: is it ready for prime time? Infect Control Hosp Epidemiol 2000- 21: 9−11
  102. John JF Jr, Fishman NO. Programmatic role of the infectious diseases physician in controlling antimicrobial costs in the hospital. Clin InfectDis 1997- 24: 471−485.
  103. John J.F., Rice L.B. The microbial genetics of antibiotic cycling. Infect Control Hosp Epidemiol. 2000- 21(lSuppl): S22-S31
  104. Klastersky J., Zinner S.H. Synergistic Combinations of Antibiotics in Gram-negative Bacillary Infections. Rev of Infect Dis, 1982- 4(2): 294.
  105. Kollef M.H. Is antibiotic Cycling the answer to preventing the emergence of bacterial resistance in the intensive care unit? Clin Inf Dis 2006- 43: S82-S88
  106. Kollef M.H. Optimizing antibiotic therapy in the intensive care unit setting Crit Care 2001- 5: 189−195
  107. Kollef M.H., Fraser V.J. Antibiotic resistance in the intensive care unit. Ann Intern Med 2001- 134: 298−314
  108. Kollef M.H., Micek S.T. Strategies to prevent antimicrobial resistance in the intensive care unit. Crit Care Mad 2005- 33: 1845−1853
  109. Kollef M.H., Sherman G., Ward S., et al. Inadequate antimicrobial treatment of infections: a risk factor for hospital mortality among critically ill patients. Chest 1999- 115:462−474
  110. KollefMH, Vlasnik J, Sharpless L, et al. Scheduled change of antibiotic classes: a strategy to decrease the incidence of ventilator-associated pneumonia. Am J Respir Crit Care Med 1997- 156:1040−1048
  111. Kollef M.H., Ward S., Sherman G. et al. Inadequate treatment of nosocomial infections is associated with certain empiric antibiotic choices. Crit Care Med. 2000- 28: 3456−3464
  112. Kristensen B, Smedegaard HH, Pedersen HM, et al. Antibiotic resistance patterns among blood culture isolates in a Danish county 1981−1995. J Med Microbiol. 1999−48:67−71.
  113. Landman D., Chockalingam M., Quale J.M. Reduction in the incidence of methicillinresistant Staphylococcus aureus and ceftazidime-resistant Klebsiella pneumoniae following changes in a hospital antibiotic formulary. Clin Inf Dis. 1999- 28: 1062−1066
  114. Lepper PM, Grusa E, Reichl H et al. Consumption of imipenem correlates with beta-lactam resistance in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Agents Chemother 2002- 46 (9): 2920−5.
  115. Lieberman JM. Appropriate antibiotic use and why it is important: the challenges of bacterial resistance. Pediatr Infect Dis J. 2003- 22: 1143−1151.
  116. Linden P.K., Kusne S., Coley K., Fontes P., Kramer D.J., Paterson D. Use of parenteral colistin fort he treatment of serious infection due to antimicrobial-resistant Pseudomonas aeruginosa. Clin Infect Dis 2003- 37: el74−160
  117. Livermore D.M. Bacterial resistance: origins, epidemiology, and impact. Clin Infect Dis 2003- 36: SI 1−23
  118. Livermore D.M., Yuan M. Antibiotic resistance and production of extended-spectrum beta-lactamases amongst Klebsiella spp. From intensive care units in Europe. J Antimicrob Chemother 1996- 38: 409−424
  119. Lode H. Pharmacokinetics and clinical results of parenterally administered new quinolones in humans.- In: Ciprofloxacin, selected of papers at the Intern. Symp. On new Quinolones, Geneva, 1988 (Rev Inf Dis., 1989- 121: suppl. 5): 41−49
  120. Luna CM, Vujacich P, Niederman MS, et al. Impact of BAL data on the therapy and outcome of ventilator-associated pneumonia. Chest 1997- 111:676 685
  121. Manthous CA. Toward a more thoughtful approach to fever in critically ill patients. Chest 2000- 117:627−628
  122. Marik PE. Fever in the ICU. Chest 2000- 117:855−869
  123. Martinez J. A., Nicolas J.M., Marco F. Et al. Comparison of antimicrobial cycling and mixing strategies in two medical intensive care units. Crit Care Med. 2006- 34: 329−36.
  124. McGowan JE Jr. Antimicrobial resistance in hospital organisms and its relation to antibiotic use. Rev Infect Dis. 1983- 5: 1033−1048
  125. McGowan JE Jr. Do intensive hospital antibiotic control programs prevent the spread of antibiotic resistance? Infect Control Hosp Epidemiol 1994- 15:478—483
  126. McGowan JE Jr. Strategies for study of the role of cycling on antimicrobial use and resistance. Infect Control Hosp Epidemiol. 2000- 21(1 suppl): S36-S43
  127. McGowan J., Carlet I. Antimicribial resistance. A worldwide problem for health care institutions. Am J Infect Control 1998- 26: 541−543
  128. McGowan JE Jr, Gerding DN. Does antibiotic restriction prevent resistance? NewHoriz 1996- 4:370−376
  129. Mebis I., Goossens H., Bmyneel P. et al. Decreasing antibiotic resistance of Enterobacteriaceae by introducing a new antibiotic combination therapy for neutropenic fever patients. Leukemia. 1998- 12:1627−1629.
  130. R.M., Niederman M.S. Резистентность к антибиотикам флоры, вызывающей инфекции у больных отделений реанимации и интенсивной терапии (ОРИТ) Медицинский альманах. Университеты практического врача. Вып. 2 с. 21
  131. Meisner М. Procalcitonin. A new innovative infection parameter. Biochemical and clinical aspects. 2000 Georg Thieme Verlag. Stuttgart-New York
  132. Merz L.P., Warren D.K., Kollef M.H., Fraser V.J. Effects of an Antibiotic cycling Program on antibiotic prescribing practices in an intensive care unit. Antimicrob Agents and Chemother 2004- 48(8): 2861−2865
  133. Merz L.P., Warren D.K., Kollef M.H., Fridkin S.K., Fraser V.J. The impact of an antibiotic cycling program on empirical therapy for gram-negative infections Chest 2006- 130: 1672−1678
  134. Mesaros N., Nordman P., Plesiat P. Et al. Pseudomonas aeruginosa: resistance and therapeutic options at the turn of the new millennium. Clin Microbiol Imfect 2007- 13: 560−578
  135. Micek S.T., Isakow W., Shannon W. et al. Predictors of hospital mortality for patients with severe sepsis treated with Drotrecagin alfs (activated). Pharmacotherapy 2005- 25: 26−34
  136. Micek S.T., Lloyd A.E., Ritchie D.J. et al. Pseudomonas aeruginosa blood-srteam infections: importance of appropriate initial antimicrobial treatment. Antimicrob Agents Chemother 2005- 49: 1306−1311
  137. Micek S.T., Ward S., Fraser V.J. et al A randomized controlled trial of an antibiotic discontinuation policy for clinically suspected ventilator-associated pneumonia. Chest 2004- 125: 1791−1799
  138. Molstad S, Cars O. Major change in the use of antibiotics following a national programme: Swedish Strategic Programme for the Rational Use of Antimicrobial Agents and Surveillance of Resistance (STRAMA). Scand J Infect Dis. 1999−31:191−195.
  139. Montravers P., Veber B., Auboyer G. Rt al. Diagnostic and therapeutic management of nosocomial pneumonia in surgical patients: results of the Eole study. Crit Care Med. 2002 (30): 368−375
  140. Moss W.J., Beers M.C., Johanson E. et al. Pilot study of antibiotic cycling in a pediatric intensive care unit. Crit Care Med 2002- 30: 1877−1822
  141. Murray B.E. Vancomycic-resistant enterococcal infections. N Engl J Med. 2000- 342: 710−721
  142. Murthy R. Implementation of strategies of control antimicrobial resistance Chest 2001- 119: 405S-411S
  143. National Committee for Clinicali Laboratory Standarts. Perfomance standarts for antimicrobial susceptibility testing. 2002.
  144. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report, data summary from January 1992 through June 2003, issued August 2003. Am J Infect Control. 2003- 31: 481−498.
  145. National Nosocomial Infections Surveillance (NNIS) System Report, data summary from January 1992 through June 2004, issued October 2004. Am J Infect Control. 2004- 32: 470−85.
  146. Neuhauser M.M., Weinstein R.A., Rydman R. et al. Antibiotic resistance among gram-negative bacilli in US intensive care units: implications for fluoroquinolone use. JAMA 2003- 289: 885−888
  147. Niederman M.S. Is «Crop Rotation» of antibiotics the solution to a «resistant» problem in the ICU. Am J Respir Crit Care Med. 1997- 156:10 291 031.
  148. Nobre V., Harbarth S., Graf J.D., Rohner P., Pugin J. Use of Procalcitonin to Shorten Antibiotic Treatment Duration in Septic Patients. A Randomized Trial. Am J Respir Crit Care Med. 2008 t
  149. O’Grady NP, Alexander M, Dellinger EP, et al. Guidelines for the prevention of intravascular catheter-related infections. Infect Control Hosp Epidemiol. 2002- 23: 759−769.
  150. Palomar M., Alvarez-Lerma F., De la Cal M.A. et al. ICU-acquired infections in Spain: predominant pathogens abstract. Intensive Care Med 1996- 22(suppl 3):S325
  151. Paterson D.L., Mulazinoglu L.,.Casellas J.M. et al. Epidemiology of ciprofloxacin resistance and its relationship to extended-spectrum beta-lactamase production in Klebsiella pneumoniae isolates causing bacteremia. Clin Infect Dis. 2000- 30: 773−478
  152. Paterson D.L., Rice L.B. Empirical antibiotic choice for the seriously ill patients: are minimization of selection of resistant organisms and maximization of individual outcome mutually exclusive? Clin Infect Dis 2003- 36: 1006−1012
  153. Paul M., Soares-Weiser K., Leibovici L. Beta-lactam monotherapy versus beta-lactam aminoglycoside combination therapy for fever with neutropenia:. sustematic review and metaanalysis. BMJ 2003- 326: 1111
  154. Perilli M., Ettore D., Segatore B. et al. Overexpression sustem and biochemical profile of CTX-M-3 extended-spectrum beta-lactamase expressed in E. coli. FEMS Microbiol Lett 2004- 241: 229−32
  155. Pestotnik S.L., Classen D.C. Evans R.S. et al. Implementing antibiotic practice guidelines through computer-assisted decision support: clinical and financial outcomes Ann Intern Med 1996 — 124: 884−890
  156. Petrak RM, Sexton DJ, Butera ML, et al. The value of an infectious diseases specialist. Clin Infect Dis. 2003−36:1013−1017.
  157. Pittet D, Hugonnet S, Harbarth S, Mourouga P, Sauvan V, Touveneau S, Perneger TV. Effectiveness of a hospital-wide programme to improve compliance with hand hygiene. Lancet 2000- 356: 1307−1312.
  158. Ploy MC, Grelaud C, Martin C, et al. First clinical isolate of vancomycin-intermediate Staphylococcus aureus in a French hospital letter. Lancet 1998- 351:1212
  159. Prashanth K., Badrinath S. Nosocomial infections due to Acinetobacter species: Clinical findings, risk and prognostic factors. Indian J Med Microbiol. 2006- 24: 39−44.
  160. Procop G.W., Tuohy M.J., Wilson D.A. et al. Cross-class resistance to non-beta-lactam antimicrobials in extended-spectrum beta-lactamase producing Klebsiella pneumoniae. Am J Clin Pathol 2003- 120: 265−7
  161. Puzniak LA, Leet T, May field J, Kollef M, Mundy LM. To gown or notto gown: the effect on acquisition of vancomycin-resistant enterococci. Clin Infect Dis 2002−3 5:18−25.
  162. Quale J, Landman D, Saurina G, et al. Manipulation of a hospital antimicrobial formulary to control an outbreak of vancomycin-resistant enterococci. Clin Infect Dis 1996- 23:1020−1025
  163. Rahal J. J., Urban C., Horn D. Et al. Class restriction of cephalosporin use to control total cephalosporin resistance in nosocomial Klebsiella. JAMA. 1998- 280: 1233−1237
  164. Raymond D.P., Pelletier S.J., Crabtree T.D. et al. Impact of a rotating empiric antibiotic schedule on infectious mortality in an intensive care unit. Crit Care Med 2001- 29: 1101−1108
  165. Rello J. Acinetobacter baumannii infections in the ICU. Customization is the key. Chest 115 (5) May 1999: 1227−1229.
  166. Rello J., Vidaur L., Sandiumenge A., Rodrigues A. et al. De-escalation therapy in ventilator-associated pneumonia. Crit Care Med. 2004- 32: 21 832 190
  167. Rice L.B., Ecstein E.C., Devente J. Et al. Ceftazidime resistant Klebsiella pneumoniae isolates recovered at the Cleveland Department of Veterans Affairs Center. Clin Infect Dis. 1996- 23: 118−124
  168. Richards MJ, Edwards JR, Culver DH, et al. Nosocomial infections in medical intensive care units in the United States: National Nosocomial Infections Surveillance System. Crit Care Med 1999- 27:887−892.
  169. Robert J, Fridkin SK, Blumberg HM, et al. The influence of the composition of the nursing staff on primary bloodstream infection rates in a surgical intensive care unit. Infect Control Hosp Epidemiol 2000- 21:12—17
  170. Rosenthal VD, Guzman S, Crnich C. Impact of an infection control program on rates of ventilator-associated pneumonia in intensive care units in 2 Argentinean hospitals. Am J Infect Control. 2006−34:58−63.
  171. Rosenthal VD, Guzman S, Safdar N. Reduction in nosocomial infection with improved hand hygiene in intensive care units of a tertiary care hospital in Argentina. Am J Infect Control. 2005−33:392−7.
  172. Rosental V.D., Maki D.Y., Salomao R. et al. Device-associated Nosocomial Infections in 55 intensive care units of 8 developing countries. Ann Intern Med 2006- 145: 582−591
  173. Scannapieco F.A., Stewart E.M., Mylotte J.M. Colonisation of dental plaque by respiratory pathogens in medical intensive care patients Crit Care Med 1992- 20(6): 740−745
  174. Schacht P., Bruch H., Shysky V. Et al. Overall clinical results of ciprofloxacin. Proc. 14th Intern. Congr. Chemother. Cyoto, 1985- 81−84
  175. Smith TL, Pearson ML, Wilcox KR, et al. Emergence of vancomycin resistance in Staphylococcus aureus: Glycopeptide-Intermediate Staphylococcus aureus Working Group. N Engl J Med 1999- 340:493−501
  176. Solomkin JS, Dellinger EP, Christou NV, et al. Results of a multicenter trial comparing imipenem/cilastatin to tobramycin/clindamycin for intraabdominal infections. Ann Surg 1990- 212:581−591
  177. Tarnow-Mordi WO, Hau C, Warden A, et al. Hospital mortality in relation to staff workload: a 4-year study in an adult intensive-care unit. Lancet 2000- 356:185−189
  178. Toltzis P., Dul M.J., Hoyen C. et al. The effect of antibiotic rotation on colonisation with antibiotic-resistant bacilli in a neonatal intensive care unit. Pediatrics 2002- 110(4): 707−711
  179. Torres A, Aznar R, Gatell JM, et al. Incidence, risk and prognosis factors of nosocomial pneumonia in mechanically ventilated patients. Am Rev Respir Dis 1990- 142:523−528
  180. Vicca AF. Nursing staff workload as a determinant of methicillin-resistant Staphylococcus aureus spread in an adult intensive therapy unit. J Hosp Infect 1999- 43:109−113
  181. Vincent J.L. Nosocomial infections in adult intensive care units. Lancet 2003−361:2068−2077
  182. Warren DK, Fraser VJ. Infection control’measures to limit antimicrobial resistance. Crit Care Med. 2001−29(4 suppl):N128-N134.
  183. Warren D.K., Hill H.A., Merz L.R. et al. Cycling empirical antimicrobial agents to prevent emergence of antimicrobial-resistant gram-negative bacteria among intensive care unit patients Crit Care Med 2004- 32: 2450−2456
  184. Washio M, Mizoue T, Kajioka T, et al. Risk factors for methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) infection in a Japanese geriatric hospital. Public Health 1997- 111:187−190
  185. Weber David J., Raasch Ralph, Rutala William A. Nosocomial Infections in the ICU The Growing Importance of Antibiotic-Resistant Pathogens Chest Volume 115 Number 3 March 1999
  186. Williams JD. b-lactamase inhibition and in vitro activity of sulbactam and sulbactam/cefoperazone. Clin Infect Dis 1997- 24: 494−7
  187. Wilson SE. Carbapenems: monotherapy in intra-abdominal sepsis. Scand J Infect Dis Suppl 1995- 96:28−33
  188. Winokur P.L., Eidelstain M.V., Stetsiouk O. et al. Russian Klebsiella pneumoniae isolates that express extended-spectrum beta-lactamases. Clin Microbiol Infect 2008- 6: 103−8
  189. Wood G.C. et al. Tetracyclines for treating multidrugresistant Acinetobacter baumannii VAP. Int Care Med. 2003- 29: 274−278
  190. Wullt M. et al. A double-blind randomized controlled trial of fusidic acid and metronidazole for treatment of on initial episode of Clostridium difficile associated diarrhea. J Antimicrob Chemother. 2004- 54: 211−216
  191. Young E.J., Sewell C.M., Koza M.A., Clarridge M.E. Antibiotic resistance patterns during aminoglycoside restriction. Am J Med Sei 1985- 290: 223−227.
  192. Yu W.L., Pfaller M.A., Winokur P.L., Jones R.N. Cefepime MIC as a predictor of the extended-spectrum bata-lactamase type in Klebsiella pneumoniae. Taiwan Eneerg Infect Dis. 2002- 8: 522−4
  193. Zack J.E., Garrison T., Trovillion E. et al. Effect of an education program aimed at reducing the occurence of ventilator-associated pneumonia. Crit Care Med. 2002- 30: 2407−2412
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!