Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Усовершенствование биотехнологических методов получения и сохранения семени домашних коз и их гибридов с сибирским козерогом

Диссертация: Усовершенствование биотехнологических методов получения и сохранения семени домашних коз и их гибридов с сибирским козерогом
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Установлено, что эпидидимальные сперматозоиды козла, полученные методом катетеризации семяпровода, имеют высокую биологическую полноценность до и после криоконсервации. Подвижность, целостность акросом и количество морфологически нормальных клеток после оттаивания составили 45%, 75% 85%, соответственно. У эякулированных сперматозоидов подвижность, целостность акросом и количество морфологически… Читать ещё >

Усовершенствование биотехнологических методов получения и сохранения семени домашних коз и их гибридов с сибирским козерогом (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ВВЕДЕНИЕ 4 1.1. Актуальность темы 4 1.2 Цель и задачи исследований
    • 1. 3. Научная новизна
    • 1. 4. Практическая значимость
    • 1. 5. Положения, выносимые на защиту 6 1.6 Апробация работы
    • 1. 7. Публикации результатов исследований
    • 1. 8. Структура и объем диссертации
  • 2. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 2. 1. Значение козоводства в мировом сельском хозяйстве
    • 2. 2. Систематика рода Сарга и роль гибридизации в козоводстве
    • 2. 3. Особенности репродукции коз
    • 2. 4. Получение и криоконсервации эякулированного семени козлов
    • 2. 5. Получение эпидидимального семени козлов
    • 2. 6. Методы полученйя эпидидимального семени
  • 3. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 3. 1. Получение эякулированного семени
    • 3. 2. Определение количественных и качественных показателей сперматозоидов
      • 3. 2. 1. Определение подвижности сперматозоидов
      • 3. 2. 2. Определение концентрации сперматозоидов в камере Маклера
      • 3. 2. 3. Морфологическая целостность акросом
      • 3. 2. 4. Оценка переживаемости сперматозоидов
    • 3. 3. Методика разбавления и криоконсервации сперматозоидов
    • 3. 4. Методика искусственного осеменения коз
    • 3. 5. Методика цитогенетического исследования
  • 4. РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 4. 1. Модификация криопротективных сред
    • 4. 2. Создание криобанка семени козлов производителей
    • 4. 3. Хирургическое получение эпидидимального семени
      • 4. 3. 1. Катетеризация семяпровода
    • 4. 4. Отделение плазмы семени козлов
    • 4. 5. Сравнительная оценка различных методов получения и замораживания семени представителей рода Сарга
    • 4. 6. Результаты искусственного осеменения коз замороженно-оттаянными сперматозоидами и характеристика потомства
    • 4. 7. Цитогенетика гибридного потомства
  • 5. ВЫВОДЫ
  • 6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ
  • 7. Список основных работ, опубликованных по теме диссертации

1.1.

Актуальность темы

.

Создание новых высокоэффективных форм сельскохозяйственных животных с использованием высокой адаптационной способности дикой фауны является одной из важнейших задач сельскохозяйственной науки. В решении теоретических и прикладных вопросов конструирования новых селекционных форм животных главную роль играют исследования, которые включают комплекс мероприятий, связанных с сохранением и рациональным использованием генофонда [Багиров В.А. и др., 2009; Захаров-Гезехус И.А. и др., 2007; Насибов Ш. Н. и др., 2010].

По данным ФАО, за последние десять лет общая численность коз выросла с 730 млн. до 868 млн. голов, их разводят во всех зонах проживания человека, что обусловлено высокой приспособленностью данного вида животных к различным условиям обитания и высокой резистентностью [Багиров В.А. и др., 2009]. В связи, с чем наблюдается всевозрастающий интерес к проблемам генетики рода Сарга.

Во второй половине XX века, в связи с открытием и разработкой методов глубокого замораживания гамет, стало возможным создание криобанков репродуктивных клеток животных. Длительное время работа в основном проводилась с эякулированным семенем. Однако эпидидимальное семя также является важным, а зачастую и единственным источником для криоконсервации генетического материала диких животных. Так как сперматозоиды могут длительное время сохраняться в хвосте придатка в неактивном состоянии, влияние продолжительности их пребывания в последнем на оплодотворяющую способность и другие биологические свойства представляют интерес для более подробного изучения.

Актуальной задачей является разработка новых методов получения эпидидимального семени, криопротективных сред, способствующих сохранению биологической полноценности эпидидимальных сперматозоидов при криоконсервации.

Контролируемое воспроизводство редких и исчезающих видов животных возможно благодаря использованию замороженного эпидидимального семени [Pukazhenthi В. et al., 1999]- сперма может быть получена от самцов в их естественной среде обитания и заморожена для последующего осеменения самок, содержащихся в неволе [Bailey Е. et al., 2003].

1.2. Цель и задачи исследований.

Целью диссертационной работы является разработка биотехнологических методов получения, криоконсервации семени и сравнительная характеристика эпидидимальных и эякулированных сперматозоидов животных.

Для достижения цели были поставлены и решены следующие задачи:

— разработать новый метод ¦ прижизненного получения эпидидимального семени с помощью фистулы семяпровода;

— провести сравнительную оценку и изучение биологической полноценности, морфологических показателей свежеполученных, охлажденных и замороженно-оттаянных эякулированных и эпидидимальных сперматозоидов;

— изучить оплодотворяющую способность сперматозоидов и результаты осеменения животных эпидидимальным и эякулированным семенем;

— разработать метод криоконсервации семени самцов рода Сарга;

— создать криобанк семени чистопородных и гибридных козлов-производителей;

— получить от осеменения замороженно-оттаянным эпидидимальным семенем гибридов сибирского козерога и зааненской козы разных генераций;

— изучить биологические характеристики гибридных самцов и самок;

1.3. Научная новизна.

Разработан новый метод прижизненного получения эпидидимального семени с помощью фистулы семяпровода. Впервые в сравнительном аспекте изучены биологические свойства эякулированного и прижизненно полученного эпидидимального семени от одного и того же животного. Дана сравнительная цитогенетическая характеристика видов рода Сарга и их гибридов. Установлено, что гибридные животные обладают нормальными репродуктивными качествами. Впервые получены гибриды второго поколения сибирского козерога и зааненских коз.

5. ВЫВОДЫ.

1. Разработан новый метод прижизненного получения эпидидимальных сперматозоидов с использованием фистулы семяпровода, позволяющий одновременно получать и оценивать качество эпидидимального и эякулированного семени одного и того же самца.

2. Установлено, что эпидидимальные сперматозоиды козла, полученные методом катетеризации семяпровода, имеют высокую биологическую полноценность до и после криоконсервации. Подвижность, целостность акросом и количество морфологически нормальных клеток после оттаивания составили 45%, 75% 85%, соответственно. У эякулированных сперматозоидов подвижность, целостность акросом и количество морфологически нормальных клеток после оттаивания составили 33,4%, 65,6%, 78% соответственно.

3. Разработанная модифицированная среда позволяет повысить криоустойчивость как эпидидимальных, так и эякулированных сперматозоидов, подвижность эпидидимальных и эякулированных сперматозоидов увеличилась на 8% и 21%, а сохранность акросом — на 8% и 5,6% соответственно.

4. Разработанный метод отделения плазмы эякулированного семени козлов с помощью фильтрации через фильтр Сатео25А8 с диаметром пор 45нм, позволяет повысить подвижность сперматозоидов, сохранность акросом и количество морфологически нормальных клеток в замороженно-оттаянном семени на 27,1%, 8,3% и 8%) соответственно.

5. Создан уникальный криобанк семени заанеской, нубийской, оренбургской пород коз и гибридов сибирского козерога с зааненской породой, позволяющий рационально использовать генофонд домашних и диких коз при создании новых селекционных форм.

6. Кариотипирование животных исходных видов и гибридов с использованием компьютерных программ показали что, разные представители рода Сарга характеризуются высоким сходством хромосомного набора. Цитогенетический анализ всех обследованных животных показал соответствие их видовой норме.

7. Гибриды второго поколения превосходят своих аналогов по высоте в холке на 12,5%, в крестце на 13,6%, косой длине туловища 24,8%, по обхвату и глубине груди на 11,2% и 21,7% соответственно.

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ.

1.В качестве альтернативного постмортальному методу получения эпидидимального семени животных рекомендуем использовать прижизненное получение эпидидимального семени с использованием фистулы семяпровода.

2. Для повышения эффективности криоконсервации сперматозоидов козлов рекомендуем использовать модифицированную среду, улучшающую биологическую полноценность сперматозоидов.

3. Предлагаем для отделения плазмы семени козлов при криоконсервации в разбавителях, содержащих желток куриного яйца, использовать метод мембранной фильтрации.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Ш. Н. Криосохранение и рациональное использование генетических ресурсов овец и коз / Насибов Ш. Н., Иолчиев Б. С., Кленовицкий П. М., Багиров В. А., Воеводин В. А., Зиновьева H.A. // Достижения науки и техники АПК. — 2010, № 9. — С. 50−51.
  2. , Ш. Н. Методы получения и криоконсервации семени для сохранения генетических ресурсов животных / Насибов Ш. Н., Воеводин
  3. B.А., Багиров В. А., Иолчиев Б. С., Кленовицкий П. М., Амиршоев Ф. С., Лесин
  4. C.А. // Вестник Казанского государственного аграрного университета. —
  5. ОА1 Л Т 1 О ЛГг> А Г* 1 Ю 1/11lo, Jli: T. v^. IJ7−1T1.
  6. В.А., Кленовицкий П. М., Насибов Ш. Н., Иолчиев Б. С., Зиновьева H.A., Эрнст Л. К. Цитогенетический анализ при отдаленной гибридизации полорогих // Достижения науки и техники АПК. 2009. № 8. С. 41−43.
  7. В.А., Кленовицкий П. М., Насибов Ш. Н., Иолчиев Б. С., Зиновьева H.A., Эрнст Л. К., Гусев И. В., Кононов В. П. Рациональное использование генетических ресурсов и гибридизация в козоводстве Сельскохозяйственная биология, 2009, № 6, с. 27−33.
  8. С.Н. Происхождение и преобразование домашних животных. М.: Советская наука. — 1959. — 600 с.
  9. A.C., Раджабли С. И. Хромосомы сельскохозяйственных и лабораторных животных. Атлас. Новосибирск: Наука. 1988. 284 с,
  10. Р.И. Хромосомные наборы млекопитающих Кавказа. Нальчик: Эльбрус. 1998. 256 с.
  11. Захаров-Гезехус И.А.- Столповский Ю.А.- Уханов C.B.- Моисеева И.Г.- Сулимова Г. Е. Мониторинг генофондов популяций животных в связи с задачами селекции и изучением филогении Сельскохозяйственные животные. М.: Рос. акад. наук. 2007. С. 122−124
  12. Г. К., Мамедов О. Т. Изучение кариотипов копытных животных Азербайджана// Материалы Всесоюзного симпозиума. Систематика и цитогенетика млекопитающих. М. 1975. С.37−39.
  13. В.К. Биология воспроизведения и искусственное осеменение животных // М: Сельхозгиз, 1962, с. 659
  14. Ю.Мишарев С. С. Козоводство. М.: Сельхозиздат. 1963. 198 с.
  15. В.Н., Булатова Н. Ш. Сравнительная цитогенетика и кари-осистематика млекопитающих. М.: Наука. 1983. 405 с.
  16. И., Ойвадис Р., Абилов А. и др. О значении акросомы в оценке семени самцов // Животноводство, 1981, № 9. С.45−46.
  17. Aamdal J. Artificial insemination in goats with frozen semen in Norway // Proc. 3rd Int. Conf. Goat Prod. Disease, 1982, Tucson, AZ, USA, p. 149−152.
  18. Adalsteinsson S., Sponenberg D.P., Alexieva S., Russel A. J. F. Inheritance of colour at goats // The Journal of Heredity. 1996. V. 85. № 2. P.262−272.
  19. Akusu M.O., Agiang E.A., Egbunike G.N. Ejaculate and plasma characteristics of west African Dwarf (WAD) buck // 10th Int Congr. Anim. Reprod. A.I., 1984, Illinois, 2, Abstract № 50.
  20. Amann, R.P., J. F. Hokanson, and J. O. Almquist. Cannulation of the bovine ductus deferens for quantitative recovery of epididymal spermatozoa. // J. Reprod. Fertil., 1963, 6:65−69.
  21. An, T. Z., S. Wada, K. Edashige, T. Sakurai, and M. Kasai. Viable spermatozoa can be recovered from refrigerated mice up to 7 days after death. // Cryobiology 1999, 38:27−34.
  22. Anel L, Guerra C, Alvarez M, Kaabi M, Anel E, Boixo JC, Paz P, Martinez F, Herraez P: Basic parameters in spermatozoa recovered post-mortem from the Spanish Cantabrian Chamois (Rupicapra pyrenaica parva). // Theriogenology. 2000- 53(1): 323−332.
  23. Arangasamy, A., L. P. Singh, N. Ahmed, M. R. Ansari, and G. C. Ram. Isolation and characterization of heparin and gelatin binding buffalo seminal plasma proteins and their effect on cauda epididymal spermatozoa. // Anim. Reprod. Sci. 2005, 90:243−254.
  24. Armstrong U.T., Pfitzner Al., Warnes G.M., Ralph M.M., Seamark E.S. Endocrine responses of goats after induction of superovulation with PMSG and FSH // J Reprod Fertil, 1983, 395−401.
  25. Armstrong U.T., Pfitzner A.P., Warnes G.M., Seamark E.S. Superovulation treatments and embryo transfer in Angora goats // J Reprod Fertil, 1983, 403−410.
  26. Asdell S. A., and Smith Buchanan A. D. Inheritance of color, beard, tassels and horns in the goat//The Journal of Heredity. 1928. V.19. № 9. P.425−430
  27. Austin C.R. Observations on the penetration of the sperm into the mammalian egg. // AustJ Sci Res B 1951- 4:581−589.
  28. Azeredo, G.A., Esper, C.R., Resende, K.T. Evaluation of plasma membrane integrity of frozen-thawed goat spermatozoa with or without seminal plasma // Small Rumin. Res., 2001, 41, 257−263.
  29. Bailey E., Reid R.C., Skow L.C. Linkage of the gene for equine combined immunodeficiency disease to microsatellite markers HTG8 and HTG4- Synteny and FISH mapping to ECA9 // Animal Genetics, 1997, 28, 268−273.
  30. Bardoloi R.K., Sharma P. K. Abnormalities and live spermatozoa in goats // J. Res. Assam Agric. Univ., 1982, 3, p. 102.
  31. Bar-Gal G.K., Smith P., Tchernov E., Greenblatt C., Ducos P., Gardeisen A., Horwitz L.K. Genetic evidence for the origin of the agrimi goat (capra aegagrus cretica)// Journal of Zoology. 2002. V. 256. № 3. P. 369−377.
  32. Barker C.A. Some aspects of artificial insemination in swine and goats // Proc. lOth Ann. Conv. National Assoc. Artif. Breeders, 1957, Toronto, p. 127−132.
  33. Barrios, B., R. Perez-Pe, M. Gallego, A. Tato, J. Osada, T. Muino-Blanco, and J. A. Cebrian-Perez. Seminal plasma proteins revert the cold-shock damage on ram sperm membrane. // Biol. Reprod. 2000, 63:1531−1537.
  34. Basler K., Oesch B., Scott M., Westaway D., Walchli M., Groth D. F., McKinley M. P., Prusiner S. B., and Weismann C. Scrapie and cellular PrP isoforms are encoded by the same chromosomal gene // Cell, 1986, 46,417−428.
  35. Baumung R., Simianer H., Hoffmann I. Genetic diversity studies in farm animals a survey // J. Anim. Breed. Genet. 2004. Vol. 121. P. 361−373.
  36. Bavister B.D., Rogers BJ, Yanagimachi R. The effects of cauda epididymal plasma on the motility and acrosome reaction of hamster and guinea pig spermatozoa in vitro. // Biol Reprod 1978- 19:358 363.
  37. Bavister B.D., Yanagimachi R. The effects of sperm extracts and energy sources on the motility and acrosome reaction of hamster spermatozoa in vitro// Biol Reprod, 1977, 16, 228−237.
  38. Bellve A. The molecular biology of mammalian spermatogenesis. In Oxford Reviews of Reproductive Biology.Ed. C. Finn // London. Oxf Univ Press 1979, 159−261.
  39. Benau, D. A. and B. T. Storey. Characterization of the mouse sperm plasma membrane zona-binding site sensitive to trypsin inhibitors. // Biol. Reprod. 1987, 36:282−292.
  40. Bialy, G. and V. R. Smith. Cold shock of epididymal spermatozoa. // J. Dairy Sci. 1959, 42:2002.
  41. Bindon DM, Piper LR, Cahill LP, Driancourt MA. O’Shea T. Genetic and hormonal factors affecting superovulation // Theriogenology 1986- 25:53−70.
  42. Bissett, C. and R. T. Bernard. The effect of prolonged cold storage of eland (Taurotragus oryx) cauda epididymides on the spermatozoa: Possible implications for the conservation of biodiversity. Theriogenology 2005, 63:1592−1604
  43. Blash, S., D. Melican, and W. Gavin. Cryopreservation of epididymal sperm obtained at necropsy from goats. // Theriogenology 2000, 54:899−905.
  44. Bou S, Hanada A. Penetration of zona-free hamster eggs in vitro by ejaculated goat spermatozoa after treatment with ionophore A23187 // Jpn J Anim Reprod 1985- 31(3): 115−116
  45. Bowen, J.A., Fonda, E.S., Kooyman, D.L.,. Ultrastructural study of goat spermatozoa frozen at different diluent osmolalities. // Proceedings of the Western Section, American Society of Animal Science. J. Anim. Sei. 1988 (39) 312−315.
  46. Bracken B.G., Keefer C.L., Troop C.G., Donawick W.J., Bennett K.A. Bovine twins resulting from in vitro fertilization // Theriogenology 1984- 21:224.
  47. Bracken B.G., Oliphant G. Capacitation of rabbit spermatozoa in vitro // Biol Reprod 1975- 12:260−274.
  48. Bracken B.G., Younis A., Fayrer-Hosken R.A. Enhanced viability after in vitro fertilization of bovine oocytes matured in vivo with high concentrations of luteinizing hormone. // Fertil Steril 1989- 52:319−324.
  49. Bracken BG, Bousquet D, Boice ML, Donawick WJ, Evans JF, Dressel MA. Normal development following in vitro fertilization in the cow//Biol Reprod 1982- 27:147−158.
  50. Bradley R. Prion Diseases // J. Collinge, M. Palmer eds., Oxford, 1997.
  51. Bruemmer, J. E., H. Reger, G. Zibinski, and E. L. Squires. 2002. Effect of storage at 5 °C on the motility and cryopreservation of stallion epididymal spermatozoa. Theriogenology 58:405−407.
  52. F.C., Adams L.J., Littlejohn R.P. // Genomics. 1994. Vol. 22(2). P. 397−403.
  53. Buckland R.A., Evans H.J., Cytogenetic aspects of phylogeny in the bovidae. 1-G banding. // Cytogenet. Cell Genet. 1978. V. 21. № 1. P. 42−63
  54. Buschmann A., Ltihken G., Schultz J., Erhardt G., Groschup M.H. Neuronal accumulation of abnormal prion protein in sheep carrying a scrapie-resistant genotype (PrPARR/ARR) // Gen. Virol. 2004. -V. 85.-P. 2727−2733.
  55. Carriere, F., Thirstrip, K., Boel, E., Verger, R., Thim, L., Structure-function relationships in naturally occurring mutants of pancreatic lipase. // Protein Eng. 1994, 7, 563−569.
  56. Cary, J. A., S. Madill, K. Farnsworth, J. T. Hayna, L. Duoos, and M. L. Fahning. A comparison of electroejaculation and epididymal sperm collection techniques in stallions. Can. Vet. J. 2004, 45:35−41.
  57. J. E., Painter C. L., Adkison R. W., Menon M. A., Hoyt P. G. 1988 Semen Quality Characteristics of Dairy Goats // J Dairy Sci 1988,71:1638−1646
  58. Chang M.C. Fertilizing capacity of spermatozoa deposited into the fallopian tubes. // Nature 1951- 168:697.
  59. Chemineau, P., Cagnie, Y., Guerin, Y., Orgeur, P., Vallet, J.C., Training manual on artificial insemination in sheep and goats. // FAO Reproduction and Health Paper. Food and Agriculture Organization of the United Nations 1991., pp. 115−161.
  60. Coetzee K, Kruger TF, Lombaard CJ. Predictive value of normal sperm morphology: a structural literature review. // Hum Reprod 1998- 4: 73−84.
  61. Cooper, T. G. Cytoplasmic droplets: The good, the bad or just confusing. // Hum. Repro. 2005, 20:9−11.
  62. Corteel J.M., Production, storage and artificiel insemination of goat semen. // Management of Reproduction in Sheep and Goats Symposium, Madison, 1977, July 24−25, pp. 41−57.
  63. Corteel, J.M., Viabilite des spermatozoides de bouc conserves et congeles avec ou sans leur plasma seminal: effet du glucose. // Ann. Biol. Anim., Biochim., Biophys. 1974, 14 4 B, pp. 741−745.
  64. Courtens J.L., Paquignon M. Ultrastructure of fresh, frozen and frozen-st thawed spermatozoa of the boar. Proc. 1 Int. Conf. Deep Freez. Boar Semen. Uppsala. 1985- pp. 977−980.
  65. Crozet N, Huneau D, Desmedi V, Theron MC, Szollosi D, Torres S, Sevellec C. In vitro fertilization with normal development in the sheep.//Gamete Res 1987- 16:159−170.
  66. Deka, B.C. and Rao, A.R., 1987. Effect of extenders and thawing methods on post thawing preservation of goat semen. Indian Vet. J. 64, pp. 591−594.
  67. Delgadillo J.A.- Leboeuf B.- Chemineau P. Maintenance of sperm production in bucks during a third year of short photoperiodic cycles // Reprod. NutritDevelopm, 1993- Vol.33,N 6. P. 609−617
  68. Delgadillo, J. A., Leboeuf, B., and Chemineau, P. Abolition of seasonal variations in semen quality and maintenance of sperm fertilizing ability by short photoperiodic cycles in goat bucks. Small Rumin. Res. 1992, 9, 47−59.
  69. Deutscher, G. H., M. E. Wells, and R. A. Battaglia. Evaluation of epididymal sperm by the cannulation technique and the effects of in vivo storage in Angus bulls. // J. Anim. Sci. 1974, 39:1136−1143.
  70. Di Berardino, D., Hayes, H., Fries, R. and Long, S. E ISCNDA (1989) (International System for Cytogenetic Nomenclature of Domestic Animals) // Cytogenet. Cell. Genet. 1990. V.53. N 1. P. 65−79
  71. Dong Q., Rodenberg SE, Huang C, Vandevoort CA: Cryopreservation of Rhesus monkey (Macaca muitatta) epididymal spermatozoa before and after refrigerated storage. // J. Androl. 2008- 29 (3): 283−292.
  72. Dow M.P.D., Bavister B.D. Direct contact is required between serum albumin and hamster spermatozoa for capacitation in vitro. // Gamete Res 1989- 23:171−180.
  73. Duan EK, Wang GY, Ma BH, Wang JC. Xenogenous fertilization of goat ovulated oocytes in the rabbit oviduct. Theriogenology 1990- 33:219 (abstract).
  74. Evans H.J., R. A. Buckland and A. T. Sumner Chromosome homology and heterochromatin in goat, sheep and ox studied by banding techniques // Chromosoma. 1973. V. 42. № 4. P.383−402.
  75. Evans, G. and Maxwell, W.M.C., Salamon S. Artificial Insemination of Sheep and Goats, Butterworths, Sydney 1987, 194 pp.
  76. Evenson D., Darzynkiewicz Z., Melamed M. Relation of mammalian sperm heterogeneity to fertility // Science, 1980, 210: 1131−1133.
  77. Fawcett D., Anderson W., Phillips D. Morphogenetic factors influensing the shape of sperm head. // Dev Biol 1971- 26: 220−251
  78. Fawcett D.W., Phillips D.M. Recent observations on the ultrastructure of mammalian spermatozoa // In: Comparative Spermatology. B. Bacetti (Ed). Academic Press, New York, 1972, p. 2−46.
  79. First N.L., Parrish J.J. Sperm maturation and in vitro fertilization // Proc 11th tnt
  80. Foote R. H: Letter to the Editor. // J. Androl. 2000- 21 (3): 355.
  81. Fraser LR. Albumin is required to support the acrosome reaction but not capacitation in mouse spermatozoa in vitro. // J Reprod Fertil 1985−74:185−196.
  82. Garner, D. L. and E. S. Hafez. Spermatozoa and seminal plasma. In: B. Hafez and E. S. Hafez (Eds.). Reproduction in Farm Animals. 2000, pp. 96−109. .
  83. Gerber, D., P. C. Irons, A. Arlotto, and D. Cooper. Quality and freezability of epididymal semen from African buffalo (Syncerus Caffer) under field conditions. // Theriogenology 2001, 55:384.
  84. Goto, K., A. Kinoshita, Y. Takuma, and K. Ogawa. Fertilisation of bovine oocytes by the injection of immobilised, killed spermatozoa. //Vet. Rec. 1990 127:517−520.
  85. Hamilton, D.W. and D. W. Fawcett. In vitro synthesis of cholesterol andtestosterone from acetate by rat epididymis and vas deferens. // Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1970. 133:693−695.
  86. Hanada A. In vitro fertilization in goat. // Jpn J Anim Reprod 1985- 31:21−26.
  87. Hancock J.L., The morphology of Boar spermatozoa // J. R. Microsc. Soc., 1957, 76, p. 84−97.
  88. Harayama, H., T. Shibukawa, M. Miyake, Y. Kannan, and S. Kato. Fructose stimulates shedding of cytoplasmic droplets from epididymal boar spermatozoa. // Reprod. Fertil. Develop. 1996 8:1039−1043.
  89. Harshan, H. M., L. P. Singh, A. Arangasamy, M. R. Ansari, and S. Kumar. Effect of buffalo seminal plasma heparin binding protein (HBP) on freezability and in vitro fertility of buffalo cauda spermatozoa. //Anim. Reprod. Sci. 2005, 93:124−133.
  90. Hashida, N. H, Abdullah, R. B, Rajikin, M. H. and Mat Noor, M Ultrastructural studies of fresh, frozen-thawed and acrosome-reacted goat sperm // Biomedical Research 2005- 16 (2): 119
  91. Haushteck-Jungn E., Muli R. Vergleich der Chromosomensatze von Steinwild (Capra Ibex) und Hausziege (Capra Hircus) // Chromosoma. 1967. V.21. № 2. P. 198−210.
  92. Hayes H. and Petit E. Comparison of RBG-banded karyotypes of cattle, sheep and goat // Citogenet. Cell Genet. 1991. V.57. N 1. P.51−55.
  93. Hewitt, D.A., R. Leahy, I. M. Sheldon, and G. C. England. Cryopreservation of epididymal dog sperm. // Anim. Reprod. Sei. 2001.67:101−111.
  94. Hirabayashi, M., M. Kato, T. Aoto, A. Sekimoto, M. Ueda, I. Miyoshi, N. Kasai, S. Hochi. Offspring derived from intracytoplasmic injection of transgenic rat sperm. // Trans. Res. 2002 11:221−238.
  95. Holstein A. Ultrastructural observations on the differentiation of spermatids in man. //Andrologia 1976- 8: 157−163.
  96. Holt W.V.,. Basic aspects of frozen storage of semen. // Anim. Reprod. Sei. 2000 62, 3−22.
  97. Holtz, W. and R. H. Foote. 1974. Cannulation and recovery of spermatozoa from the rabbit ductus deferens. J. Reprod. Fertil. 39:89−92.
  98. Hopkins, S., D. L. Armstrong, S. K. Hummel, and S. Junior. 1988. Successful cryopreservation of gaur (Bos gaurus) epididymal spermatozoa. J. Zoo Anim. Med. 19:195−201.
  99. Hori, T., K. Hagiuda, E. Kawakami, and T. TsutsuL. Unilateral intrauterine insemination with prostatic fluid-sensitized frozen caudal epididymal sperm in beagle dogs. // Theriogenology 2005 63:1573−1583.
  100. Iannuzzi L., Di Meo G.P., Perucatti, A. G- and R-banded prometaphase karyotypes in goat (Capra hircus L.)// Caryologia 1996. V.49. N2. P. 267−277.
  101. Iannuzzi L., Meo G.P., Perucatti A. An improved characterization of goat chromosomes by means of G- and R-band comparison // Hereditas. 1994. V.120. № 3. P. 245−251.
  102. Iritani, A. and Nishikawa, Y., Studies on the egg coagulating enzyme in goat semen: IV. On the position of yolk constituents attacked by the coagulating enzyme. // Jpn. J. Anim. Reprod. 1963 8 4, pp. 113−117.
  103. Ishii K.- Morita Z. A collection of epididymal sperm by spermatic fistula from bulls // Bull.Fac.Agr., Tottori Univ. Tottori, 1992- Vol.45. P. 167−172 1992
  104. Jindal S.K. Sperm concentration in different segments of the goat epididymis Theriogenology 1984 V22 № 5:545−551
  105. Kaabi, M., P. Paz, M. Alvarez, E. Anel, J. C. Boixo, H. Rouissi, P. Herraez, and L. Anel. Effect of epididymis handling conditions on the quality of ram spermatozoa recovered post-mortem. // Theriogenology 2003 60:1249−1259.
  106. Karatzas, G., Karagiannidis, A., Varsakeli, S., Brikas, Fertility of fresh and frozen-thawed goat semen during the nonbreeding season. // Theriogenology 1997 48, 1049−1059.
  107. Kato S., Iritani A, Nishikawa Y. Effects of C02 on motility of spermatozoa of farm animals. Jnp J Zootech Sei 1977- 48:573−575.
  108. Kilian I., Lubbe K, Bartels P, Friedmann Y, Denniston RS: Evaluating epididymal sperm of African wild ruminants: Longevity when stored at 40C and viability following cryopreservation. // Theriogenology. 2000- 53(1): 336−342.
  109. Kundu, C. N., J. Chakraborty, P. Dutta, D. Bhattacharyya, A. Ghosh, and G. C. Majumder. Development of a simple sperm cryopreservation model using a chemically defined medium and goat cauda epididymal spermatozoa. // Cryobiology 2000- 40:117−125.
  110. Kundu, C.N., Das, K., Majumder, G.C., Effect of amino acids on goat cauda epididymal sperm cryopreservation using a chemically defined model system. // Cryobiology 2001 41, 21−27.
  111. Kusunoki H., Sakaue M, Kato S, Kanda S. Induction of acrosome reaction in ejaculated goat spermatozoa by preincubation in chemically defined medium. // J Exp Zool 1989- 249:322−328.
  112. Lardy, H. A. and D. Ghosh. Comparative metabolic behavior of epididymal and ejaculated mammalian spermatozoa. // Ann. N. Y. Acad. Sei. 1952- 55:594−596.
  113. Lasley, J. F. and R. Bogart. A comparative study of epididymal and ejaculated spermatozoa of the boar. // J. Anim. Sei. 1944- 3:360 370.
  114. Leboeuf B., E. Manfredib, P. Bouec, A. Piacered, G. Bricee, G. Barilf, C. Broquae, P. Humblotg and M. Terqui Artificial insemination of dairy goats in France // Livestock Production Science, 1998, V. 55 (3), 193−203.
  115. Leboeuf, B., Restall, B., Salamon, S.,. Production and storage of goat semen for artificial insemination. // Anim. Reprod. Sci. 2000- 62,113−141.
  116. Levine, N. and Marsh D.J. Micropuncture studies of the electrochemical aspects of the fluid and electrolyte transport of individual siminiferous tubules, the epididymis and vas deferens of the rat // The Journal Of Physiology 1971 213:557−570
  117. Ligia Souza, Lima Silveira da Mota and Rosana Silva Centric fusion in goats (Capra hircus): Identification of a 6/15 translocation by high resolution chromosome banding // Ap. Bicudo da Genet. Mol. Biol. 1998. V. 21. № 1
  118. Liu Y., Baker H. Sperm nuclear chromatin normality: relationship with sperm morphology, sperm-zona pellucida binding, and fertilization rates in vitro. // Fertil Steril 1992- 58: 1178−1184.
  119. Lubbe K., Bartels P, Kilian I, Friedmann Y, Godke RA: Comparing motility and morphology of horse, zebra and rhinoceros epididymal spermatozoa when cryopreserved with two different cryodiluents or stored at 40C. // Theriogenology. 2000- 53(1): 338 365.
  120. Lux E., Perez M., Volobouev V.T. G- and C-banded karyotype of the markhor capra falconeri heptneri, and comparison of its banding patterns with the Alpine Ibex Capra Ibex and Cattle Bos Taurus //Acta Theriologica. 2004. V. 49. № 1. P. 131−137.
  121. Mack, S. R. and L. J. Zaneveld. Acrosomal enzymes and ultrastructure of unfrozen and cryotreated human spermatozoa. // Gamete Res. 1987- 18:375−383.
  122. Manceau V., Despres P., Bouvet J., Taberlet P. Systematics of the genus Capra inferred from mitochondrial DNA sequence data. // Molecular Phylogenetics and Evolution. 1999. V.13. P.504−510.
  123. Martinez-Pastor, F., C. Guerra, M. Kaabi, A. R. Diaz, E. Anel, P. Herraez, P. de Paz, and L. Anel. Decay of sperm obtained from epididymes of wild ruminants depending on postmortem time. // Theriogenology 2005a. 63:24−40.
  124. Martinez-Pastor, F., L. Anel, C. Guerra, M. Alvarez, A. J. Soler, J. J. Garde, C. Chamorro, and P. de Paz. Seminal plasma improves cryopreservation of Iberian red deer epididymal sperm. // Theriogenology 2006a. 66:1847−1856.
  125. Martinez-Pastor, F., V. Garcia-Macias, M. Alvarez, C. Chamorro, P. Herraez, P. de Paz, and L. Anel. Comparison of two methods for obtaining spermatozoa from the cauda epididymis of Iberian Red deer. // Theriogenology 2006c. 65, 471−485. (Abstract).
  126. Mayr B., Tesarik E., Auer H., Burger H. Nucleolus-organizer regions and heterochromatin in three species of Bovidae// Genetica. 1987. V.75. № 3. P. 207−212.
  127. Monesi V. Chromosome activities during meiosis and spermiogenesis. J Reprod Fertil (suppl.) 1971- 13: 1.
  128. Nadler C.F., Hoffmann R. S., Woolf A. G-band patterns, chromosomal homologies, and evolutionary relationships among wild sheep, goats, and aoudads (mammalia, artiodactyla) // Experientia. 1974, V.30. № 7. p.744−746.
  129. Nasar A., Rahman A., Bin Abdullah R. A Review of Reproductive Biotechnology and their application in goat // Biotechnology, 2008, 7 (2), 371−384.
  130. Neill J.M., Olds-Clarke P. A computer-assisted assay for mouse sperm hyperactivation demonstrates that bicarbonate but not bovine serum albumin is required. // Gamete Res 1987- 18:121−140.
  131. Nguyen Van Thuan, Sayaka Wakayama, Satoshi Kishigami, and Teruhiko Wakayama New Preservation Method for Mouse Spermatozoa Without Freezing // Biol Reprod February 2005 72 (2) 444−450
  132. Nunes, J., Etude des effets du plasma seminal sur la survie in vitro des spermatozoides de bouc. These de Doctorat, Universite Pierre et Marie Curie, Paris, 1982- 33 pp.
  133. Padeh B., Wysoki M., Soller M. Futher studies on a Robertsonian translocation in the Saanen goat // Cytogenetics. 1971. V.10. № 1. P. 61−69.
  134. PalomO M., D. Izquierdo, T. Mogas, M. Paramio Effect of semen preparation on IVF of prepubertal goat oocytes // Theriogenology, 1999. 51(5). 927−940
  135. Parrish J.J., Susko-Parish J.L., Leibfriend-Rutledge M.L., Critser E.S., Eyestone W.H., First N.L. Bovine in vitro fertilization with frozen. thawed semen. // Theriogenology 1986- 25:591−600.
  136. Parrish J.J., Susko-Parish J.L., Winer M.A., First N.L. Capacitation of bovine sperm by heparin. // Biol Reprod 1988- 38:1171−1180.
  137. Parrish J.J., Susko-Parrish J.L., Handrow R.R., Ax R.L., First N.L. Effect of sulfated glycoconjugates on capacitation and the acrosome reaction of bovine and hamster spermatozoa. // Gamete Res 1989- 24:403−413.
  138. Parrish J.J., Susko-Parrish J.L., Leibfried-Rutledge M.L., Critser E.S., Eyestone W.H., First N.L. Bovinein vitro fertilization with frozen-thawed semen. // Theriogenology, 1986- 25, 591−600.
  139. Pellicer-Rubio, M.T., Combarnous, Y., Deterioration of goat spermatozoa in skimmed milk-based extenders as a result of oleic acid released by the bulbourethral lipase BUSgp60. // J. Reprod. Fertil. 1998- 112,95−105.
  140. Perez-Sanchez, F., L. Tablado, C. H. Yeung, T. G. Cooper, and C. Soler. 1996. Changes in the motility patterns of spermatozoa from the rabbit epididymis as assessed by computer-aided sperm motion analysis. Molec. Reprod. Develop.45:364−371.
  141. Petac D. and Kosec, M., Some morphological characters of bull spermatozoa and their effect on fertility. // Bornik Biotehniske Fakultete Univerze Edvarda Kardelja v Ljubljani, Veterinarstvo 1989- 26, pp. 65−72.
  142. Probst, S. and D. Rath. Production of piglets using intracytoplasmic sperm injection (ICSI) with flowcytometrically sorted boar semen and artificially activated oocytes. // Theriogenology 2003 59:961−973.
  143. Pukazhenthi B., Pelican K, Wildt D, Howard J. Sensitivity of domestic cat (Fells catus) sperm from normospermic versus teratospermic donors to cold-induced acrosomal damage. Biol Reprod. 1999 Jul-61(l): 135−41.
  144. Ritar, A J. and Salamon, S., 1982. Effects of seminal plasma and its removal and of egg yolk in the diluent on the survival of fresh and frozen thawed spermatozoa of the Angora goat. Aust. J. Biol. Sci. 35, pp. 305−312.
  145. Ritar, A.J., Ball, P.D. and O’May, P.J.,. Examination of methods for the deep freezing of goat semen. Reprod. Fertil. Dev.- 2, pp. 27−34.
  146. Roy, A.,. Egg yolk coagulating enzyme in the semen and Cowper’s gland of-the goat. //Nature 1957 (London) 179, p. 318.
  147. Saacke R. G. Morphology of the sperm and its relationship to fertility. // Third Tech. Conf. Artif. Insem. Reprod., Natl. Assoc. Anita. Breeders, Columbia, MO. 1970 Pages 17−30 in Proc.
  148. Saacke, R. G., and J. M. White. Semen quality tests and their relationship to fertility. // Proc. Fourth Tech. Conf. Artif. 1972Pages 22−27
  149. Saacke, R.G., Nadir, S., Dalton, J.,. Assessing bull fertility. // Proceedings of the Society for Theriogenology, 1995- 73.
  150. Saitbekova N., Gaillard C., Obexer-Ruff G. Genetic diversity in swiss goat breeds on microsatellite analisis // Anim. Genet. 1999. Vol. 30. P. 36−41.
  151. Saowaros D., Raniym F. The formation of disulfide bonds in human protamines during sperm maturation. // Experientia 1979- 35: 131.
  152. Sawyer, D.E., Brown, D.B., The use on an in vitro sperm activation assay to detect chemically induced damage of human sperm nuclei. // Reprod. Toxicol. 1995- 9, 351−357.
  153. Singh, M.P., Sinha, A.K. and Singh, B.K., Effect of cryoprotectants on certain seminal plasma attributes and on the fertility of buck spermatozoa. // Theriogenology 1995- 43, pp. 10 471 053.
  154. Smith, A.H. and Polge, C., Survival of spermatozoa at low temperatures.//Nature (London) 1950. 166, pp. 668−671.
  155. Soler A.J., Perez-Guzman MO, Grade JJ: Storage of red deer epididymides for 4 days at 5 0C: Effects on motility, viability and morphological integrity. // J. Exp. Zool. Part A: Comparative Exp. Biol. 2003- 295A (2): 188−199.
  156. Song F., Iritani A. In vitro fertilization of goat follicular oocytes with epididymal spermatozoa capacitated in a chemically defined medium. Proc 3rd MAP Anim Sd Cong. Seoul, Korea- 1985- 1:463.
  157. Songsasen, N., J. Tong, and S. P. Leibo. Birth of live mice derived by in vitro fertilization with spermatozoa retrieved up to twenty-four hours after death. // J. Exp. Zool. 1998- 280:189−196.
  158. Spallanzani, L. Dissertations relative to the natural history of animals and vegetables. // J. Murray: London 1784- 2:195−199.
  159. Sponenberg D. P., Alexieva S., Adalsteinsson S. Inheritance of colour at goats// Genet Sei Evol. 1998. V. 30. № 4. P. 385−395.
  160. Stewart-Savage, J. Effect of bovine serum albumin concentration and source on sperm capacitation in the golden hamster//Biol. Reprod. 1993- 49, 74−81
  161. Suzuki, K. and T. Nagai. In vitro fertility and motility characteristics of frozenthawed boar epididymal spermatozoa separated by Percoll. // Theriogenology 2003- 60:1481−1494.
  162. Tautz D. Hypervariability of simple sequences as a general source for polymorphic DNA markers // Genetics. 1989. Vol. 17. P. 6463−6471.
  163. Therien, I., R. Moreau, and P. Manjunath. Bovine seminal plasma phospholipidbinding proteins stimulate phospholipid efflux from epididymal sperm. // Biol. Reprod. 1999- 61:590−598.
  164. Thundathil, J., Meyer, R., Palasz, A.T., Barth, A.D. and Mapletoft, R.J., 2000. Effect of theknobbed acrosome defect in bovine sperm on IVF and embryo production. // Theriogenology 54, 921−934.
  165. Toyoda Y, Naito K P/F in domestic animals. In: Bavister BD, CumminsJ, Roldan E (ed),// Fertilization in Mammals. Norwell, MA. Serono Symposia- 1990: 335−347.
  166. Tuli, R.K., Scmidt Baulain, R. and Holtz, W., Influence of thawing temperature on viability and release of glutamic oxaloacetic transaminase in frozen semen from Boer goats. // Anim. Reprod. Sci. 1991- 25, pp. 125−131.
  167. Upreti, G.C., Hall, E.L., Koppens, D., Oliver, J.E., Vishwanath, R., Studies on the measurement of phospholipase A2 (PLA2) and PLA2 inhibitor activities in ram semen. //Anim. Reprod. Sci. 1999- 56, 107−121.
  168. Ward C.R., Storey BT. Determination of the time course of capacitation in mouse spermatozoa using a chlortetracycline fluorescence assay.//Dev Biol 1984- 104:287−296.
  169. Wilson D. E. und Reeder D. M. Mammal Species of the World. // Johns Hopkins University Press. Baltimore. 2005. 2142 p.
  170. Wurster D. H., Benirschke K. Chromosome studies in the superfamily Bovoidea//Chromosoma. 1968. V. 25. N2. P. 152 171.
  171. Yusoff R.B.H. Cytogenetic studies on goats with inherited birth defects and reproductive problems // Dissertation Abstracts International. 1996. V.56. № 7. P. 3635.
  172. Zamboni L. The ultrastructural pathology of the spermatozoon as a cause of infertility: the role of electron microscopy in the evaluation of semen quality. Fertil Steril 1987- 48: 711−734.
  173. Zibrin M, Belak M, Mesaros P, Gamcik P, Tomajkova E. The ultrastructure of frozen-thawed ram spermatozoa. Z Mikrosk Anat Forsch 1987- 101: 904−912.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!