Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Влияние природных и синтетических полимеров на биохимические свойства липаз из различных источников

Диссертация: Влияние природных и синтетических полимеров на биохимические свойства липаз из различных источников
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Разработан эффективный способ направленной регуляции активности липаз в супрамолекулярных наноразмерных системах с разнозаряженными полиэлектролитами. Установлено значительное увеличение ферментативной активности и стабильности липаз в полимерных системах при возрастании температуры, что имеет большую практическую ценность для новых биотехнологических и биохимических методов. Полученные параметры… Читать ещё >

Влияние природных и синтетических полимеров на биохимические свойства липаз из различных источников (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • УСЛОВНЫЕ ОБОЗНАЧЕНИЯ И СОКРАЩЕНИЯ
  • Глава 1. Обзор литературы
    • 1. Липолитические ферменты
      • 1. 1. Липаза из поджелудочной железы свиньи
      • 1. 2. Липаза из гриба рода Mucor
      • 1. 3. Липаза, выделенная из бактерий рода Pseudomonas
      • 1. 4. Кинетика липолиза
    • 2. Общие принципы иммобилизации ферментов
      • 2. 1. Носители для иммобилизации ферментов
      • 2. 2. Методы иммобилизации ферментов
    • 3. Особенности иммобилизации липаз
      • 3. 1. Адсорбция
      • 3. 2. Ковалентная иммобилизация липаз
      • 3. 3. Включение или микрокапсулирование
  • Глава 2. Материалы и методы
    • 1. Перечень используемых реактивов
    • 2. Методики приготовления растворов
      • 2. 1. Приготовление рабочего раствора субстрата
      • 2. 2. Приготовление растворов липаз
      • 2. 3. Приготовление растворов полиэлектролитов
    • 3. Методы и приборы
      • 3. 1. Методы и аппаратура для измерения активности липаз
      • 3. 2. Исследование липазы в комплексах с полиэлектролитами методом межфазной тензиометрии
    • 4. Статистическая обработка результатов
  • Глава 3. Результаты собственных исследований и их обсуждение
    • 1. Влияние белкового окружения на активность липаз из различных источников
    • 2. Влияние полиэлектролитного окружения на активность липаз из поджелудочной железы свиньи и гриба Ммсог javanicus
    • 3. Регуляция активности липаз путем направленного изменения условий среды
      • 3. 1. Влияние рН среды на активность липаз из поджелудочной железы свиньи и гриба Mucor javanicus
      • 3. 2. Влияние температуры на активность липаз из поджелудочной железы свиньи и гриба Mucor javanicus
      • 3. 3. Влияние температуры на активность липаз в комплексе с синтетическими полиэлектролитами
        • 3. 3. 1. Изменение активности липазы из поджелудочной железы свиньи в комплексе с полиэлектролитами при увеличении температуры
        • 3. 3. 2. Изменение активности липазы из гриба Mucor javanicus в комплексе с полиэлектролитами при увеличении температуры
    • 4. Изучение динамического поверхностного натяжения систем липазы из поджелудочной железы свиньи с природными и синтетическими полиэлектролитами
      • 4. 1. Измерение динамического поверхностного натяжения растворов липазы из поджелудочной железы свиньи в смеси с природным полимером — бычьим сывороточным альбумином
      • 4. 2. Измерение динамического поверхностного натяжения растворов липазы из поджелудочной железы свиньи в смеси с поли-L-глутаминовой кислотой
      • 4. 3. Измерение динамического поверхностного натяжения растворов липазы из поджелудочной железы свиньи в смеси с поли-L-лизином
      • 4. 4. Измерение динамического поверхностного натяжения растворов липазы из поджелудочной железы свиньи в трехкомпонентном комплексе с поли-Ь-лизином и поли-Lглутаминовой кислотой
      • 4. 5. Измерение динамического поверхностного натяжения растворов липазы из поджелудочной железы свиньи в смеси с полистиролсульфонатом натрия
      • 4. 6. Измерение динамического поверхностного натяжения растворов липазы из поджелудочной железы свиньи в смеси с полидиаллилдиметиламмоний хлоридом
      • 4. 7. Измерение динамического поверхностного натяжения растворов липазы из поджелудочной железы свиньи в трехкомпонентном комплексе с полистиролсульфонатом натрия и полидиаллидиметиламмоний хлоридом
    • 5. Модели ферментативных супрамолекулярных наноразмерных систем
  • ВЫВОДЫ

Актуальность темы

Исследования биокаталитических систем на основе липаз являются важными и актуальными как по фундаментальной, так и по прикладной направленности. Липазы — это сериновые гидролазы, катализирующие ряд ключевых биохимических реакций: гидролиз, этерификация, трансэтерификация, алкоголиз, ацидолиз [120, 88]. Липазы применяются в пищевой, фармакологической, агрохимической и кожевенной промышленности, в производстве моющих средств, поверхностно и оптически активных соединений, вкусовых и ароматических компонентов, для аналитических целей в медицине [8, 23, 114, 95, 101, 50, 128, 136, 161]. Свойство энантиоселективности липаз широко применяется в органическом синтезе биологически активных веществ и их синтетических аналогов, таких как простагландины, алкалоиды, терпеноиды, антибиотики, производные нуклеозидов и т. п. [118, 148].

Однако, дальнейшее применение липаз в промышленности сдерживается сложностями в создании оптимальной реакционной системы, высокой ценой ферментов, загрязненностью большинства ферментных препаратов, низкой термостабильностью, невысокими скоростями реакций и т. д. Решения большинства вышеперечисленных проблем лежат на пути использования иммобилизованных ферментов. Иммобилизация липаз способствует отделению фермента от продуктов реакции, позволяет экономить фермент, увеличивает термостабильность и активность липаз. В настоящее время накоплен обширный материал по иммобилизации липаз из различных источников методами адсорбции, ковалентного связывания, включения в полимерные гели и т. д. [28, 95, 157]. Однако систематизированных данных о влиянии полимеров на коллоидно-химические и каталитические свойства липаз из различных источников до начала наших работ в литературе было недостаточно. При исследовании новых биоматериалов и методов иммобилизации важно проводить фундаментальную работу по изучению физико-химических свойств иммобилизованных липаз.

Цель работы — изучение ферментативной активности и динамического поверхностного натяжения систем липаз из различных источников с природными и синтетическими полимерами.

Исходя из этой цели, были поставлены задачи:

1. Изучить влияние природного полимера — бычьего сывороточного альбумина на активность липаз из различных источников.

2. Изучить влияние синтетических разнозаряженных полиэлектролитовполистиролсульфоната натрия и полидиаллилдиметиламмоний хлорида на активность липаз из различных источников.

3. Изучить сочетанное влияние температуры и полимерного окружения на активность липаз из различных источников.

4. Провести сравнительное исследование параметров динамического поверхностного натяжения панкреатической липазы в системах с синтетическими и природными полимерами.

5. Предложить эффективный способ регуляции ферментативной активности липаз из различных источников и модели супрамолекулярных наноразмерных систем на основе липаз и полиэлектролитов.

Научная новизна работы. Предложены модели супрамолекулярных наноразмерных систем на основе липаз и полиэлектролитов. Выявлены молекулярные механизмы и впервые изучено влияние температуры на активность липаз из поджелудочной железы свиньи и гриба Mucor javanicus в системах с синтетическими полиэлектролитами: полистиролсульфонатом натрия и полидиаллилдиметиламмоний хлоридом. Впервые исследовано динамическое поверхностное натяжение систем липазы из поджелудочной железы свиньи с бычьим сывороточным альбумином, поли-Ь-глутаминовой кислотой, поли-Ь-лизином, полистиролсульфонатом натрия и полидиаллилдиметиламмоний хлоридом при различных молярных соотношениях липаза: полимер. Научная новизна работы подтверждена 3 патентами РФ № 2 301 830, № 2 301 831, № 2 308 486 (Зайцев С.Ю., Каштиго Т. В., Тульская Е. В., Царькова М. С., Коршикова А.В.).

Теоретическая и практическая значимость.

Разработан эффективный способ направленной регуляции активности липаз в супрамолекулярных наноразмерных системах с разнозаряженными полиэлектролитами. Установлено значительное увеличение ферментативной активности и стабильности липаз в полимерных системах при возрастании температуры, что имеет большую практическую ценность для новых биотехнологических и биохимических методов. Полученные параметры динамического поверхностного натяжения систем липазы с природными и синтетическими полимерами важны как для понимания механизмов основных биохимических процессов в организме животных, так и для применения в биомедицинской диагностике. Результаты диссертационной работы используются для обучения студентов 3, 4 и 5 курсов ветеринарно-биологического факультета ФГОУ ВПО МГАВМиБ по специальности «Биохимия». Основные положения практической значимости работы отражены в 3 патентах РФ № 2 301 830, № 2 301 831, № 2 308 486 (Зайцев С.Ю., Каштиго Т. В., Тульская Е. В., Царькова М. С., Коршикова А.В.).

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Данные по влиянию природного полимера — бычьего сывороточного альбумина — на активность липаз из различных источников.

2. Данные по влиянию синтетических полиэлектролитов полистиролсульфоната натрия и полидиаллилдиметиламмоний хлорида — на активность липаз из различных источников.

3. Данные по влиянию температуры на активность липаз из различных источников в системах с указанными синтетическими полиэлектролитами.

4. Параметры динамического поверхностного натяжения систем панкреатической липазы с синтетическими и природными полимерами.

5. Включение липазы в системы с полиэлектролитами в определенных соотношениях как эффективный способ регулирования каталитической активности липаз из различных источников. Модели супрамолекулярных наноразмерных систем, представляющих собой различные типы комплексов липазы, поликатиона, полианиона и эмульгированного триацилглицерола.

Выводы.

1. Показано, что природный полимер — бычий сывороточный альбумин может как увеличивать (в случае липазы из Pseudomonas fluorescens на 1447%), так и уменьшать (в случае липазы из Mucor javanicus на 4−28%) относительную активность фермента в зависимости от типа липаз.

2. Обнаружено, что активность липаз из различных источников зависит от природы синтетического полимера (полидиаллилдиметиламмоний хлорида или полистиролсульфоната натрия) и его содержания в смеси с ферментом при стандартных условиях. Относительная активность липазы из поджелудочной железы свиньи увеличивается на 17 и 15% в присутствии полистиролсульфоната натрия в соотношении 1:10 и 1:100, соответственно.

3. Установлено, что наибольшее увеличение активности липаз в присутствии полиэлектролитов при 60 °C наблюдается для системы липазы из поджелудочной железы свиньи с полистиролсульфонатом натрия (в 2,8 раза) и для «системы липазы из Mucor javanicus с полидиаллилдиметиламмоний хлоридом (в 3,9 раза) относительно активности этих липаз без полиэлектролитов при той же температуре.

4. Впервые показано влияние природы полимера при его взаимодействии с липазой на параметры динамической тензиометрии, характеризующие скорость адсорбции данных комплексов на поверхность раздела фаз. Величина изменения динамического поверхностного натяжения G4 для систем панкреатической липазы с полимерами с увеличением относительного содержания фермента от 1:100 до 100:1 уменьшается в ряду: полидиаллилдиметиламмоний хлорид > поли-Ь-лизин > полистиролсульфонат натрия > поли-Ь-глутаминовая кислота > бычий сывороточный альбумин.

5. Предложен эффективный способ регулирования каталитической активности липаз из различных источников (из поджелудочной железы свиньи, гриба Mucor javanicus и бактерии Pseudomonas fluorescens) при включении липазы в системы с разнозаряжениыми полимерами. Предложены модели супрамолекулярных наноразмерных систем, представляющих собой различные типы комплексов липазы, поликатиона, полианиона и эмульгированного триглицерида.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , Н.Г. Включение белков в полиэлектролитные микрокапсулы из декстран-сульфата, протамина и меламинформальдегида / Балабушевич Н. Г., Сухоруков Г. В., Ларионова Н. И. // Вестник МГУ. Серия 2 Химия, — 2002ю № 43. — С. 370−376.
  2. , Л.П. Химия жиров / Л. П. Беззубов. М.: Пищевая промышленность, 1975. — 279 с.
  3. , И.В. Иммобилизованные ферменты. Современное состояние и перспективы: Учеб. пособие / И. В .Березин, В. К. Антонов, К. Мартинек, — М.: Изд-во Моск. Ун-та, 1976.- 296с.
  4. , И.В. Практический курс химической и ферментативной кинетики: Учеб. пособие / И. В. Березин, А. А. Клесов. М.: Изд-во МГУ, 1976.
  5. , И.В. Основы физической химии ферментативного катализа: Учеб. пособие / И. В. Березин, К. М. Мартинек. М: Высшая школа, 1977.
  6. , И.В. Иммобилизованные ферменты / И. В. Березин, Н. Л. Клячко, А. В. Левашов. М.: Высшая школа, 1987. — 159 с.
  7. , X. Липолитические ферменты / X. Брокерхоф, Р. Дженсен- Под ред. акад. А. Е. Браунштейна и Е. В. Горяченковой. М.: Мир, 1978. — 396 с.
  8. , О.О. Механизм ингибирующего эффекта полианионов и поликатионов / Бургелев О. О., Каплун А. П., Козлов Л. В., Лисакова С. В.,
  9. В.Л., Швец В. И. // Биоорганическая химия. 2003, — Т.29.- № 2 -С.139−142.
  10. Володькин, Д. В. Включение белков в полиэлектролитные микрочастицы путем послойной адсорбции полиэлектролитов на агрегатах белка / Володькин Д. В., Балабушевич Н. Г., Сухоруков Г. Б., Ларионова Н. И. // Биохимия. 2003. — Т. 68. — № 2. — С. 283−289.
  11. , И. В. Изучение взаимодействия и активации липазы из Pseudomonas fluorescens в монослоях и преципитатах ПАВ / Горохова И. В., Иванов А. Е., Зайцев С. Ю., Зубов В. П. // Известия Академии наук. Серия химическая. 2003. — № 4. — С. 38−47.
  12. , П. Система липаза-колипаза как модель липолитического биокатализа. Физико-химические проблемы ферментативного катализа / П. Денуэль. М. Наука, 1984. — 250 с.
  13. , М. Ферменты / М. Диксон, Э. Уэбб. пер. англ.- М.: Мир, 1982.-т. 1.-392 с.
  14. , С.Ю. Мембранные структуры на основе синтетических и природных полимеров: Монография. М.: ФГОУ ВПО МГАВМиБ, 2006. -189 с.
  15. В. А. Макромолекулярный обмен в растворах комплексов глобулярных белков с неприродными полиэлектролитами / Изумрудов В. А., Зезин А. Б., Кабанов В. А. // Докл. АН СССР. 1984. — Т. 275. -С. 1120−1123.
  16. , В.А. Равновесие интерполиэлектролитных реакций и явление молекулярного «узнавания» в растворах интерполиэлектролитных комплексов / Изумрудов В. А., Зезин А. Б., Кабанов В. А. // Успехи химии. -1991.-Т. 60.-С. 1570−1585.
  17. Иммобилизованные клетки и ферменты. Методы / Под ред. Дж. Вудворда. Пер. с англ. — М.:Мир, 1988. — 215с.
  18. Иммобилизованные ферменты / Березин И. В., Клячко H. JL, Левашов А. В. и др. М.: Высш. шк., 1987. — 159 с.
  19. В.А. Влияние ионной силы и рН среды на поведение комплекса БСА с поли-4-винил-К-этшширидинийбромидом в водных растворах / Кабанов В. А., Мустафаев В. И. // ВМС А. 1981. — Т. 23. — С. 255 260.
  20. , О.В. Ферменты в производстве пищи и кормов / О. В. Кислухина. -М.: ДеЛи принт, 2002. 179 с.
  21. , А.А. Ферментативный катализ: учеб. пособие / А. А. Клёсов, И. В. Березин.- М. Изд-во Моск. Ун-та, 1980. 264с.
  22. , Ф.Л. Гистохимия липолитических ферментов в норме и при патологии липидного обмена / Ф. Л. Лейтес. М.: Медицина, 1967.
  23. , М.И. Комплексы неприродных полиэлектролитов с белками: Дис.. докт. хим. наук / М.И. Мустафаев- Московский гос. ун-т. -Москва, 1981.-344 с.
  24. А.Д. Свойства иммобилизованной липазы из Rhizopus oryzae / Неклюдов А. Д., Средов Б. Д., Шибанов В.В.// Прикл. биохимия и микробиология. 1981. — № 17. — С. 510−517.
  25. , М.М. Субстратная специфичность иммобилизованных липаз / Рахимов М. М., Джанбаева Н. Р. // Доклады академии наук СССР. -Биохимия. 1976.Т. 229. — № 6. — С. 79.
  26. , В.М. Лечебные препараты крови / В. М. Русанов, И. С. Левин, — М.: ИД Медпрактика, 2004.- 284 с.
  27. В.Г. Полимерные комплексы, включающие синтетические полиэлектролиты и физиологически активные вещества / Самсонов В. Г. //ВМС А. 1979. — Т. 21. — № 4. — С. 725−733.
  28. , М. Иммобилизованные ферменты / М. Тривен,-М.:Мир, 1983. -213с.
  29. , О.Д. Исследование молекулярного механизма реакции ферментативного гидролиза триглицеридов: Автореф.дис.. канд.биол.наук: 3.00.02 / О.Д. Трофимова- Воронежский гос. ун-т. Воронеж, 2004. -16 с.
  30. , Я. Биокатализаторы в органическом синтезе / Я. Халгаш. -Пер, со словац. С. С. Злотского. М.:Мир, 1991. — 204 с.
  31. Adamczalc М. Enhanced activity of intracellular lipases from Rhizomucor miehei and Yarrowia lipolytica by immobilization on biomass support particles / Adamczalc M., Bednarski W. // Process Biochem. 2004. -Vol. 39. — P. 1347−1361.
  32. Ai H. Biomedical Applications of Electrostatic Layer-by-Layer Nano-Assembly of Polymers, Enzymes, and Nanoparticles / Ai H., Jones S.A., Lvov Y.M. // Cell Biochem. Biophys. 2003. — Vol. 39. — P. 23−43.
  33. Andrade J.D. Protein adsorption and materials biocompatibility: A tutorial review and suggested hypotheses / Andrade J.D., Hlady V. // Adv. Pol. Sci. -1986.-Vol. 79.-P. 1−63.
  34. Antipov A.A. Carbonate microparticles for hollow polyelectrolyte capsules fabrication / Antipov A.A., Shchukin D., Fedutik Y., Petrov A.I., Sukhorukov G.B., Mohwald H. // Colloid. Surf.: Physicochem. Eng. Aspects. -2003. Vol. 224. -P. 175−184.
  35. Antipov A.A. Polyelectrolyte multilayer capsule permeability control / Aiitipov A.A., Sukhorukov G.B., Leporatti S., Radtchenko I.L., Donath E., Mohwald H. // Colloid. Surf.: Physicochem. Eng. Aspects. 2002. — Vol. 198. — P. 535−541.
  36. Ariga A. Assembling alternate dye-polyion molecular films by electrostatic layer-by-layer adsorption / Ariga A., Lvov Y., Kunitake T. // J. Am. Chem. Soc. 1997. — Vol. 119. — P. 2224−2231.
  37. Arroyo M. Immobilization/stabilization on different hydroxilic supports of lipase from Candida rugosa / Arroyo M., Moreno J.M., Sinisterra J.V. // J. Mol. Catal.- 1993. -Vol. 83.-P. 261−271.
  38. Bai Z.W. A novel enzyme support derived from aminated silica gel and polysuccinimide: preparation and application for the immobilization of porcine pancreatic lipase / Bai Z.W., Zhou Y.K. // Reactive & Functional Polymers. -2004.-Vol. 59.-P. 93−98.
  39. Balcao V.M. Adsorption of protein from several commercial lipase preparations onto a hollow-fiber membrane module / Balcao V.M., Vieira M.C., Malcata F.X. // Biotechnol. Prog. 1996. — Vol. 12. — P. 164−172.
  40. Balcao V.M. Bioreactors with immobilized lipases: State of the art / Balcao V.M., Paiva A.L., Malcata F.X. // Enzyme Microb. Teclmol. 1996. — Vol. 18.-P. 392−416.
  41. Balcao V.M. On the Performance of a Hollow-Fiber Bioreactor for Acidolysis Catalyzed by Immobilized Lipase / Balcao V.M., Malcata F.X. // Biotechnol. Bioeng. 1998. — Vol. 60. — P. 114−123.
  42. Betigeri S.S. Immobilization of lipase using hydrophilic polymers in the form of hydrogel beads / Betigeri S.S., Neau S.H. // Biomaterials. 2002. — Vol. 23.-P. 3627−3636.
  43. Bomscheuer U.T. Optimizing lipases and related enzymes for efficient application / Bomscheuer U.T., Bessler C., Srivinas R., Krishna S.H. // Trends Biotechnol. 2002. — Vol. 20. — P. 433−437.
  44. Bouwer S.T. The performance of enzymemembrane reactors with immobilized lipase / Bouwer S.T., Cuperus F.P., Derksen J.T.P. // Enzyme Microb. Teclmol. 1997. — Vol. 21. — P. 291−296.
  45. Brockerhoff H. Action of pancreatic lipase on emulsions of water-soluble esters / Brockerhoff H. // Archives of Biochemistry and Biophysics. Vol. 134.-№ 2.-P. 366−371.
  46. Brockerhoff H. Substrate specificity of pancreatic lipase / Brockerhoff H. // Biochimica et Biophysica Acta (BBA) Enzymology. — 1968. — Vol. 159. -№ 2. — P. 296−303.
  47. Brockman H. Colipase-induced reorganization of interfaces as a regulator of lipolysis / Brockman H. // Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. -2002. -Vol. 26. № 1−2. — P. 102−111.
  48. Brockman H.L. Kinetic behavior of the pancreatic lipase-colipase-lipid system / Brockman H. L. // Biochimie. Vol. 82. — № 11. — p. 987−995.
  49. Brockman H.L. Triglyceride lipase from porcine pancreas: EC 3.1.1.3 Triacylglycerol acylhydrolase / Brockman H.L. // Methods in Enzymology. -1981.-Vol. 71.-P. 619−627.
  50. Carta G. Enzymatic synthesis of esters using an immobilized lipase / Carta G., Gainer J.L., Benton A.H. // Biotechnol. Bioeng. 1991. — Vol. 37. — P. 1004−1009.
  51. Caruso F. Assembly of beta-glucosidase multilayers on spherical colloidal particles and their use as active catalysts / Caruso F., Fiedler H., Haage K. // Colloid. Surf.: Physicochem. Eng. Aspects. 2000. — Vol. 169. — № 1−3. — P. 287−293.
  52. Caruso F. Enzyme Encapsulation in Layer-by-Layer Engineered Polymer Multilayer Capsules / Caruso F., Trau D., Mohwald H., Renneberg R. // Langmuir.- 2000. -Vol. 16.-P. 1485−1488.
  53. Caruso F. Protein multilayer formation on colloids through a stepwise self-assembly technique / Caruso F., Mohwald H. // J. Amer. Chem: Soc. 1999. -Vol. 121. -№ 25. — P. 6039−6046.
  54. Chapus C. Minireview on pancreatic lipase and colipase / Chapus C., Rovery M., Sarda L., Verger R. // Biochimie. 1988. — Vol. 70. — № 9. — P. 12 231 233.
  55. Chapus C. Role of colipase in the interfacial adsorption of pancreatic lipase at hydrophilic interfaces / Chapus C., Sari H., M. Semeriva M., Desnuelle P. //FEBS Letters. 1975. — Vol. 58. — № 1−2. — P. 155−158.
  56. Cheung J. Molecular-level processing of conjugated polymers. Layer-by-layer manipulation of via electrostatic interactions / Cheung J., Stockton W., Rubner M. // Macromolecules. 1997. — Vol. 30. — P. 2712−2716.
  57. Chiou S.H. Immobilization of Candida rugosa lipase on chitosan with activation of the hydroxyl groups / Chiou S.H., Wu W.T. // Biomaterials. 2004. -Vol. 25.-P. 197−204.
  58. Dautzenberg H. Immobilization of trypsin in polycation-polyanion complexes / Dautzenberg H., Karibyants N., Zaitsev S.Yu. // Macromol. Rapid Commun. 1997. — Vol. 18. — P. 175−182.
  59. Deujgnat C. pH-Responsive Properties of Hollow Polyelectrolyte Microcapsules Templated on Various Cores / Deujgnat C., Sukhorukov G. B // Langmuir. 2004. — Vol. 20. — P.7265.
  60. Donath E. Novel hollow polymer shells via colloid templated assembly of polyelektrolytes / Donath E., Sukhorukov G. В., Caruso F. et al. // Angew. Chem. 1998. — Vol. 110. — P. 2323−2327.
  61. Dumitriu S. Polyionic hydrogels as support for immobilization of lipase / Dumitriu S., Chornet E., Vidal P.F., Moresoli C. // Biotechnology Techniques. -1995.-Vol. 9.-P. 833−836.
  62. Duri B.A. Lipase immobilization: An equilibrium study of lipases immobilized on hydrophobic and hydrophilic/hydrophobic supports / Duri B.A., Yong Y.P. // Biochem. Engineering Journal. 2000. — Vol. 4. — P. 207−215.
  63. Fang M. Magnetic Bio/Nanoreactor with Multilayer Shells of -Glucose Oxidase and Inorganic Nanoparticles / Fang M., Grant P., McShane M., Sukhorukov G., Golub V., Lvov Y. // Langmuir. 2002. — Vol.18. — P.6338−6344.
  64. Fernandez-Lafuente R. Immobilization of lipases by selective adsorption on hydrophobic supports / Fernandez-Lafuente R., Armisen P., Sabuquillo P., Fernandez-Lorente G, Guisan J.M. // Chemistry and Physics of Lipids. 1998. -Vol. 93.-P. 185−197.
  65. Gao С. Swelling and Shrinking of Poly electrolyte Microcapsules in Response to Changes in Temperature and Ionic Strength / Gao C., Leporatti S., Moya S., Donath E., Mohwald H. // Chem. Europ. J. 2003. — Vol. 9. — № 4. — P. 915−920.
  66. Gandhi N. Applications of lipase / Gandhi N. / JAOCS. 1997. — Vol. 74. -№ 4.-P. 621−634.
  67. Gargouri Y. Gastric lipases: Biochemical and physiological studies / Gargouri Y., Moreau H., Verger R. // Biochimica et Biophysica Acta: Lipids and Lipid Metabolism. Vol. 1042. — № 3. — P. 421.
  68. Gilbert S.J. Pseudomonas lipases: Biochemical properties and molecular cloning / Gilbert J. // Enzyme and Microbial Technology. 1993. — Vol. 15. -№ 8. -P. 634−645.
  69. Giorno L. Biocatalytic membrane reactors: applications and perspectives / Giorno L" Drioli E. // TIBTECH. 2000. — Vol. 18. — P. 339−349.
  70. Giorno L. Hydrolysis and regioselective transesterification catalyzed by immobilized lipases in membrane bioreactors / Giorno L., Molinari R., Natoli M., Drioli E.//J. Membr. Sci.- 1997.-Vol. 125.-P. 177−187.
  71. Hammond P. Formation of polymer microstructures by selective deposition of polyion multilayers using patterned monolayers as a template / Hammond P., Whitesides G. // Macromolecules. 1995. — Vol. 28. — P. 75 697 571.
  72. Hermoso J. Nuetron crystallographic evidence of lipase-colipase complex activation by a micelle / Hermoso J., Pignol D., Penel S. // The EMBO J. 1997. — Vol.16. — P. 5531−5536.
  73. Hoq M.M. Continuous hydrolysis of olive oil by lipase in microporous hydrophobic hollow fiber bioreactor / Hoq M.M., Koike M., Yamane Т., Shimizu S. //Agric. Biol. Chem. 1985. — Vol. 49. — P. 3171−3178.
  74. Hsu A. Transesterification activity of lipase immobilized in a phylosilicate sole-gel matrix / Hsu A., Jones K., Marmer W. // J. Kluwer. 2004. -Vol. 11.-P. 917−921.
  75. Her R. J. Multilayers of colloidal particles / Iler R. J. // Colloid & Interface Sci. 1966. — Vol. 21. — P. 569−594.
  76. Ivanov A. E. Methods for the immobilization of lipases and their use for ester synthesis / Ivanov A. E., Schneider M. P. // J. Mol. Catal. В.: Enzymatic. -1997. -№ 3.- P. 303−309.
  77. Jaeger K.E. Lipases for biotechnology / Jaeger K.E., Eggert T. // Curr. Opin. Biotechnol. 2002. — Vol. 13. — P. 390−397.
  78. Jensen R.G. Lipolytic enzymes / Jensen R.G. // Progr. Chem. Fats Other Lipids. 1971. — Vol. 11. — P. 347.
  79. Keller S. Layer-by-layer assembly of intercalation compounds and superlattices on surfaces: Towards molecular «beaker» epitaxy / Keller S., Kim H., MalloukT. //J. Am. Chem. Soc. 1994. — Vol. 116. — P. 8817−8818.
  80. Klieadr E.E. Impact of liposome-encapsulated enzyme cocktails on cheddar cheese ripening / Kheadr E.E., Vuillemard J.C., Deeb S.A. // Food Research International. 2003. — Vol. 36. — P. 241−252.
  81. Kimura Y. Application of immobilized lipase to hydrolysis of triacylglyceride / Kimura Y., Tanaka A., Sonomoto K., Nihira Т., Fukui S. // Applied. Microbiol. Technol. 1983. — Vol. 17. — P. 107−112.
  82. Knezevic Z. Alginate-immobilized lipase by electrostatic extrusion for the purpose of palm oil hydrolysis in lecithin/isooctane system / Knezevic Z.,
  83. S., Obradovic В., Mojovic L., Bugarski B. // Process Biochem. 2002. -Vol. 38.-№ 3.-P. 313−318. •
  84. Knezevic Z. Immobilization of lipase on a hydrophobic zeolite type Y / Knezevic Z., Mojovic L., Adnadevic B. // J. Serb. Chem.Soc. 1998. — Vol. 63. -P. 257−264.
  85. Knezevic Z. Kinetics of lipase-catalyzed hydrolysis of pahn oil in lecithin/isooctane reversed micelles / Knezevic Z., Siler-Marinkovic S., Mojovic L. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1998. — Vol. 49. — P. 267−271.
  86. Knezevic Z. Operating regime of a biphasic oil/aqueous hollow-fibre reactor with immobilized lipase for oil hydrolysis / Knezevic Z., Kukic G., Vukovic M., Bugarski В., Obradovic B. // Process Biochem.- 2004. Vol. 39. — P. 1377−1385.
  87. Knezevic Z. Palm oil hydrolysis by lipase from Candida cylindracea immobilized on zeolite type Y / Knezevic Z., Mojovic L., Adnadjevic В. 11 Enzyme Microb. Technol. 1998. — Vol. 22. — P. 275−280.
  88. Lawrens R.C. Method for the Quantitative Estimation of Microbial Lipases / Lawrens R.C., Fiyer T.F., Reiter B. // Nature. 1967. — Vol. 213. — P. 1264.
  89. Lee J. Thin-film light emitting devices from an electroluminescent ruthenium complex / Lee J., Yoo D.- Handy E., Rubner M. // Appl. Phys. Lett. -1996. Vol. 69. — P. 1425−1426.
  90. Lortie R. Enzyme catalyzed esterification / Lortie R. // Biotechnology Advances. 1997. — Vol. 15. — P. 1−15.
  91. Lvov Y. Assembly, structural characterization and thermal behavior of layer-by-layer deposited ultrathin films of polyvinylsulfate and polyallylamine / Lvov Y., Decher G, Mohwald H. // Langmuir. 1993. — Vol. 9. — P.481−486.
  92. Lvov Y. Assembly of polyelectrolyte molecular films onto plasma treated glass / Lvov Y., Haas H., Decher G., Mohwald H. // J. Phys. Chemistry. -1993.-Vol. 97.-P. 12 835−12 841.
  93. Lvov Y. Direct electrochemistry of myoglobin and cytochrome P450 in alternate layer-by-layer films with polyions / Lvov Y., Schenkman J., Rusling J // J. Am. Chem. Soc. 1998. — Vol. 120. — P. 4073−4080.
  94. Lvov Y. Urease Encapsulation in Nano/organized Microshells / Lvov Y., Antipov A., Mamedov A., Mohwald H., Sukhorukov G. // Nano Letters. -2001,-Vol. l.-P. 125−128.
  95. Malcata F.H. Immobilized lipase reactors for modification of fats and oils / Malcata F.H., Reyes H.R., Garcia H.S., Hill C.G., Amimdson C.H. // JAOCS. 1990. — Vol. 67. — P. 890−909.
  96. Malcata F.H. Kinetics and mechanisms of reactions catalysed by immobilized lipases / Malcata F.H., Reyes H.R., Garcia H.S., Hill C.G., Amundson C.H. //Enzyme Microb.Teclmol. 1992. — Vol. 14. — P. 426−446.
  97. Malcata F.X. Use of a lipase immobilized in a membrane reactor to hydrolyze the glycerides of butteroil / Malcata F.X., Hill C.G., Amundson C.H. // Biotechnol. Bioeng. 1991. — Vol. 38. -P. 853−868.
  98. Matsumoto M. Immobilization of lipase in microcapsules prepared by organic and inorganic materials / Matsumoto M., Sumi N., Ohmori K, Kondo K. // Process Biochem. 1998. — Vol. 33. — P. 535−540.
  99. Mercon F. Lipase immobilized membrane reactor applied to babassu oil hydrolysis / Mercon F., Erbes V.L., Sanf Anna G.L. Jr., Nobrega R. // Braz. J. Chem. Eng. 1997. — Vol. 14. — № 1. — P. 1−11.
  100. Miled N. Discrimination between closed and open forms of lipases using electrophoretic techniques / Miled N., Riviere M., Cavalier J.F., Buono G.,
  101. , L., Verger R. // Analytical Biochemistry. 2005. — Vol. 338. — № 2. — P. 171−178.
  102. Miled N. Interfacial catalysis by lipases / Miled N., Beisson F., de Caro J., de Caro A., Arondel V., Verger R. // Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic.-2001.-Vol. 11.-№ 4−6.-P. 165−171.
  103. Mojovic L. Immobilization of lipase from Candida rugosa on a polymer support / Mojovic L., Knezevic Z., Popadic R., Jovanovic S. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 1998. — Vol. 50. — P. 676−681.
  104. Mojovic L. Rhizopus arrhizus lipase-catalyzed interesterification of the midfraction of palm oil to a cocoa butter equivalent fat / Mojovic L., Siler-Marinkovic S., Kukic G., Vunjak-Novakovic G. // Enzyme Microb. Technol. -1993,-Vol. 15.-P. 438−443.
  105. Moreno J.M. Immobilization of lipase from Candida cylindracea on inorganic supports / Moreno J.M., Sinisterra J.V. // J. Mol. Catal. 1994. — Vol. 93.-P. 357−369.
  106. Murakata T. Immobilization of lipases with polyion complex and its esterification activity in organic medium / Murakata Т., Makabe H., Yamakage Y. // J. of chemical engineering of Japan. 1997. — Vol.30. — № 2. — P. 195−201.
  107. Okumura S. Synthesis of various kinds of esters by four microbial lipases / Okumura S., Iwai M., TsujisakaY. // Biochim. Biophys.Acta. 1979. -Vol. 575.-P. 156−165.
  108. Pandey A. The realm of microbial lipases in biotechnology / Pandey A., Benjamin S., Soccol C.R., Nigam P., Krieger N., Soccol V.T. // Biotechnol. Appl. Biochem. 1999. — Vol. 29. — P. 119−131.
  109. Philipp B. Polyelectrolyte complexes — recent developments and open problems / Philipp В., Dautzenberg H., Linow K. J., Koetz J., Dawydoff W. // Progr. Polym. Sci. 1989. — Vol. 14. — P. 91.
  110. Pieroni G. Interactions of lipases with lipid monolayers: Facts and questions / Pieroni G., Gargouri Y., Sarda L., Verger R. // Advances in Colloid and Interface Science. 1990. — Vol. 32. — № 4. — P. 341−378.
  111. Pignol D. Critical role of micelles in pancreatic lipase activation revealed by small angle neutron scattering / Pignol D., Ayvazian L., Kerfelec B. // J. Biol Chem. 2000. — Vol. 275. — P. 4220−4224.
  112. Pignol D. The lipase/colipase complex is activated by a micelle: neutron crystallographic evidence / Pignol D., Hermoso J., Kerfelec В., Crenon I., Chapus C., Fontecilla-Camps J.C. // Chemistry and Physics of Lipids. 1998. -Vol. 93.-№ 1−2.-P. 123−129.
  113. Pronk W. The hydrolysis of triglycerides by immobilized lipase in a hydrophilic membrane reactor / Pronk W., Kerkhof P.J.A.M., van Helden C., vant RietK. //Biotechnol. Bioeng. 1988. — Vol. 32. — P. 512−518.
  114. Rasor J.P. Enzyme-catalyzed processes in pharmaceutical industry / Rasor J.P., Voss E. // Appl. Catalysis A: General. 2001. — Vol. 221. — P. 145 158.
  115. Riddihough G. Picture an enzyme at work / Riddihough G. // Nature -1993, — Vol. 362.-P.793.
  116. Schuler C. Preparation of enzyme multilayers on colloids for biocatalysis / Schuler C., Caruso F. // Macromol. Rapid Commun. 2000. — Vol. 21.-№ 11.-P. 750−753.
  117. Shi X. Encapsulation of Submicrometer-Sized 2-Methoxyestradiol Crystals into Polymer Multilayer Capsules for Biological Applications / Shi X., Wang S., Chen X., Meshinchi S., Baker J.R. // Molecular pharmaceutics. 2004. -Vol. 3. — № 2. — P. 144−151.
  118. Siler-Marinkovic S. Enzymatic production of monoacylglycerol in microemulsion / Siler-Marinkovic S., Mojovic L., Knezevic Z., Antonovic N. // J. Serb. Chem.Soc. 1995. — Vol. 60. — P. 567−574.
  119. Skirtach A.G. Ultrasound stimulated release and catalysis using polyelectrolyte multilayer capsules / Skirtach A.G., De Geest B.G., Mamedov A., Antipov A.A., Kotove N.A., Sukhorukov G.B. // J. Mater. Chem. 2007. — Vol. 17.-P. 1050−1054.
  120. Stamatis H. Biocatalysis using microemulsion-based polymer gels containing lipase / Stamatis H., Xenaksis A. // J. Molecular Catalysis B: Enzymatic. 1999. — Vol. 6. — P. 399−406.
  121. Stroeve P. Gas transfer in supported films made by molecular self-assembly of ionic polymers / Stroeve P., Vasques V., Coelho M., Rabolt J. // Thin Solid Films.- 1996. Vol. 284. — P. 708−712.
  122. Sukhorukov G. B. Comparative Analysis of Hollow and Filled Polyelectrolyte Microcapsules Templated on Melamine Formaldehyde and Carbonate Cores / Sukhorukov G. В., Shchukin D.G., Dong. W. et al // Macromol. Chem. Phys. 2004. — Vol. 205. — P. 530.
  123. Sukhorukov G.B. Stepwise Polyelectrolyte Assembly on Particle Surfaces: a Novel Approach to Colloid Design / Sukhorukov G.B., Donath E., Davis S., Lichtenfeld H., Caruso F., Popov V.I., Mohwald H. // Polym. Adv. Teclmol. 1998. — Vol. 9. — P. 759−767.
  124. Svendsen A. Lipase protein engineering / Svendsen A. //Biochim Biophys Acta. 2000.- Vol. 1543. — № 2. — P. 223−238.
  125. Taqieddin E. Enzyme immoblization in novel alginate-chitosan coreshell microcapsules / Taqieddin E., Amiji M. // Biomaterials. 2004. — Vol. 25.-P. 1937−1945.
  126. Taylor R.F. Commercially available supports for protein immobilization, in protein immobilization: fundamentals and application / Taylor R.F.- Ed. R.F. Taylor. New York: Marcel Dekker Inc, 1991. — P. 139−160.
  127. Taylor R.F. Covalent and coordination immobilization of protein, in protein immobilization: fundamentals and application / Taylor R.F., Cabral J.M.S., Kennedy J.F.- Ed. R.F. Taylor. New York: Marcel Dekker Inc, 1991. — P. 73−138.
  128. Theil F. Lipase supported synthesis of biologically active compounds / Theil F. // Chem. Rev. 1995. — № 95. — P. 2203−2227.
  129. Tilbeurgh H. Colipase: structure and interaction with pancreatic lipase / Tilbeurgh H., Bezzine S., Cambillau C., Verger R., Carriere F. // Biochimica et Biophysica Acta: Molecular and Cell Biology of Lipids. 1999. — Vol. 1441. — № 2−3.-P. 173−184.
  130. Van der Padt A. Enzymatic acylglycerol synthesis in a membrane bioreactor / Van der Padt A., Edema M.J., Sewalt J.J.W., Van t Riet K. // J. Am. Oil. Chem. Soc. 1990. — Vol. 67. — P. 347−352.
  131. Verger R. The sulfhydryl groups of pancreatic lipase / Verger R., Sarda L., Desnuelle P. // Biochimica et Biophysica Acta: Protein Structure. 1970. -Vol. 207. -№ 2.-P. 377−379.
  132. Villeneuve P. Customizing lipases for biocatalysis: a survey of chemical, physical and molecular biological approaches / Villeneuve P., Muderhwa J.M., Graille J., Haas M.J. // J. Molecular Catalysis B: Enzymatic. -2000.-Vol. 9.-P. 113−148.
  133. Volodkin D.V. Matrix Polyelectrolyte Microcapsules: New System for Macromolecule Encapsulation / Volodkin D.V., Petrov A.I., Prevot M., Sukhorukov G.B. // Langmuir. 2004. — Vol. 20. — P. 3398−3406.
  134. Volodkin D.V. Protein Encapsulation via Porous СаСОз Microparticles Templating / Volodkin D.V., Larionova N.I., Sukhorukov G.B. // Biomacromolecules. 2004. — Vol. 5. — P. 1962−1972.
  135. Vulfson E.N. Industrial applications of lipases, in: Lipases: their structure, biochemistry and application / Vulfson E.N.- Eds. P. Woolley and S.B. Peterson. Cambridge: Cambridge University press, 1994. — P. 271−288.
  136. Xia J. Protein-Polyelectrolyte Complexes / Xia J., Dubin P.L. // Macromolecular Complexes in Chemistry and Biology- Ed. by P. L. Dubin, J. Bock, R. M. Davies, D. N. Schulz, C. Thies. Berlin: Springer Verlag, 1994. -Vol. 15.-P. 247−271.
  137. Yin L. Influence of polyglycerol esters of fatty acid on in vitro digestibility of lipid droplets by pancreatic lipase / Yin L., Wang Z., Kobayashi I., Nakajima M. // Chemistry and Physics of Lipids. -2008. Vol. 154. — № 1. — P. 3536.
  138. Zaitsev S.Yu. General approach for lipase immobilization in polyelectrolyte complexes / Zaitsev S.Yu., Gorokhova I.V., Kashtigo T.V., Zintchenko A., Dautzenberg H. // Colloids and Surfaces A: Physicochem. Eng. Aspects. 2003. — Vol. 221. — P. 209−220.
  139. Zaks A. Application of biocatalysts and biotransformations to the synthesis of pharmaceuticals / Zaks A., Dodds D.R. // DDT. 1997. — Vol. 2. — P. 513−531.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!