Внутривидовой генетический полиморфизм русского осетра (Acipenser gueldenstaedtii)
Диссертация
В связи с этим мероприятия по поддержанию численности вида должны учитывать сохранение его устойчивости, в значительной мере обусловливаемой его генетической гетерогенностью, и, соответственно, требуют знаний об эволюционно сформировавшейся популяционной структуре вида. Тем не менее, внутривидовая систематика русского осетра остается до сих пор предметом дискуссий. Являясь анадромным видом… Читать ещё >
Список литературы
- Алтухов ЮЛ. Динамика генофондов при антропогенных воздействиях // Вестник ВОГиС. — 2004. — Т. 8. № 2. — С. 40−60.
- Алтухов ЮЛ. Генетические процессы в популяциях. — М.: ИКЦ «Академкнига». 2003. -431с.
- Алтухов Ю.П., Салменкова Е. А. Полиморфизм ДНК в популяционной генетике // Генетика. 2002. — Т. 38, № 9. — С. 1173−1195.
- Алтухов Ю.П., Салменкова Е. А., Омельченко В. Т. Популяционная генетика лососевых рыб. -М.: Наука, 1997. 288 с.
- Артюхин Е.Н. Осетровые (экология, географическое распространение и филогения) СПб.: Изд-во С.-Петерб. ун-та, 2008. — 137 с.
- Артюхин Е.Н., Заркуа З. Г. К вопросу о таксономическом ранге осетра реки Риони (бассейн Черного моря) // Вопросы ихтиологии. — Т. 96. № 1. — С 6167.
- Бабурина Е.А. Развитие глаз и их функции у осетра и севрюги // Труды института морфологии животных. 1957. — Вып. 20. — С. 148−186.
- Беляев В.Н. Осетр {Acipenser gueldenstaedti Br.) // Бюллетень Всекаспийской науч. рыбохоз. экспедиции. № 5−6. Баку. — С. 66−77.
- Беляева В.Н., Ходоревская Р. П. Поведение осетровых на ранних этапах онтогенеза // Труды ЦНИОРХ. 1972. — Т. 4. — С. 40−51.
- Ю.Берг JT.C. Яровые и озимые расы у проходных рыб // Изв. АН СССР, отд. мат. и ест. наук. 1934. — С. 711−732.
- Берг JT.C. Рыбы пресных вод СССР и сопредельных стран. М.-Л.: Изд-во АН СССР. 1948.-Ч. 1.-467 с.
- Бойко Е.Г. Избранные труды — Ростов-на-Дону: Эверест. 2005. — 514 с.
- Водолаэ/сский Д.И., Конриенко И. В., Войнова Н. В. Гипервариабельность региона D-петли митохондриальной ДНК русского осетра Acipenser gueldenstaedtii (Acipenseriformes, Acipenseridae) // Вопросы ихтиологии -2008. Т. 48, № 2. — С. 266−275.
- Добровольский А.Д., Зологин Б. С. Моря СССР. М.: изд-во МГУ. — 1982. -192 с. 18 .Дюжиков А. Т., Серебрякова Е. В. Некоторые черты экологии и продолжительность полового цикла осетровых рыб Волги // Тр. ВНИРО. -1964. Т. LYI, сб.З. — С.105−115.
- Журавлева О.Л. Динамика биологических показателей нерестовой части волжской популяции русского осетра Acipenser gueldenstaedtii Brandt в условиях зарегулированного стока реки. Автореф. дисс.канд.биол.наук. -М.: ВНИРО. 2000.-28с.
- Коблицкая А.Ф. Определитель молоди пресноводных рыб. М.: «Легкая и пищевая промышленность». 1981. -208 с.
- Корниенко КВ., Воинова Н. В., Чистяков В. А. и др. Полиморфизм первичной последовательности сегмента гена цитохрома b митохондриальной ДНК азовской популяции Acipenser gueldenstaedtii II Вопросы ихтиологии. 2003. -Т. 43, № 1.-С. 73−77.
- Кузьмин Ю.В. Сравнительное исследование аллозимов мышечной малат дегидрогеназы в популяциях сибирского осетра Acipenser baeri р. Обь и стерляди A. ruthenus р. Дон и Камы // Вопросы ихтиологии. — 1991. — Т.31 -С. 139−144.
- Левин А.В. Расселение и особенности поведения молоди русского осетра Acipenser gueldenstaedti Brandt (Acipenseridae) в Каспийском море // Вопросы ихтиологии, 1981.-Т. 21.-Вып. 3. — С 344−349.
- Левонтин Р.С. Генетические основы эволюции. -М.: Мир,'1978. 351 с.2&.Легеза М. И. Роль абиотических факторов среды при распределении осетровых (сем. Acipenseridae, Pisces) в Каспийском море // Вопросы ихтиологии. 1972. — Т.121. -Вып.1. — С.13−24.
- Ли Ч. Введение в популяционную генетику. -М.: «Мир». 1978. 555 с.
- Лудаииый Р.И., Хрисанфова Г. Г., Васильев В. А. и др. Генетическое разнообразие и дифференциация отечественных пород карпа (Cyprinus carpio L.), выявляемая с помощью RAPD-маркеров // Генетика. 2006. — Т. 42, № 8. — С 1121—1129ю
- ЪХ.Лукьяненко В. И., Гераскин 77.77., Баль Н. В. Гетерогенность и полиморфизм гемоглобина у двух видов рода Huso II Докл. АН СССР. 1977. — Т. 237. — № 4.-С. 994−997.
- Ъ2.Лукъяненко В. И., Дубинин В. И., Сухопарова А. Д. Влияние экстремальных условий приплотинной зоны реки на осетровых рыб. Рыбинск. — 1990. — 272 с.
- ЪЪ.Малецкий С. И. Введение в популяционную биологию и генетику растений -Новосибирск: ИЦИГ СО РАН НГАУ 1995. — 154с.
- ЪЪ.Малецкий С. И. Биномиальные распределения в генетических исследованиях на растениях Новосибирск: ИЦИГ СО РАН — 2000. — 126с.
- Марти В.Ю. Систематика и биология русского осетра кавказского побережья Черного моря // Зоологический журнал. 1940. -Т. 19. № 6. — С. 865−872.
- Микулин А.Е. Зоогеография рыб: Учебное пособие М.: изд-во ВНИРО, 2003. 210 с.
- Миллер Р. Четвертичные пресноводные рыбы Северной Америки. Четвертичный период в США. М.: МИР 1969. — 384 с
- Митрофанов В.П., Дукравец Г. М., Песериди Н. Е. и др. Рыбы Казахстана. Миноговые, Осетровые, Сельдевые, Лососевые, Щуковые.— Алма-Ата: Наука. 1986. -Т.1.-272 с.
- Мовчан Ю.В. Осетр русский северо-западной части Черного моря и р. Кубани // Вестник зоологии. 1967. — № 6. — С. 26−32.
- Мусатова Г. Н. Осетровые рыбы реки Кубани и их воспроизводство — Краснодар: Краснодарское книжное изд-во. 1973. 111 с.
- Мюге Н.С., Барминцева А. Е., Расторгуев С. М. и др. Полиморфизм контрольного региона митохондриальной ДНК восьми видов осетровых и разработка системы ДНК-идентификации видов // Генетика. 2008. — Т.44. -№ 7.-С. 1−7.
- Паавер Т. Биохимическая генетика карпа Cyprinus carpio L. — Таллин: «Валгус». 1983. 122 с.
- Подушка С.Б. Вариабельность числа жучек у русского осетра (Acipenser gueldenstaedti Brandt) реки Дона // Биологические науки. 1988. — № 4. — С. 52−57.
- Подушка С. Б. О систематическом положении азовского осетра // Научно-технический бюллетень лаборатории ихтиологии ИНЭНКО. С-Пб., 2003. -Вып.7. — С. 19−44.
- Реков Ю.И. Динамика численности и структура популяции азовского осетра в условиях изменяющегося режима моря: Дис. .канд.биол.наук. М.: АзНИИРХ, 2000.- 112с.
- Реков Ю.И., Корнеев А. А. Эффективность воспроизводства и пополнение промысловых стад азовских осетровых / Воспроизводство запасов осетровых рыб в Каспийском и Азово-Черноморском бассейнах. Сб. научн. тр. — М.: ВНИРО. 1987. — С. 94−101.
- Рябова Г. Д., Офицеров М. В., Шишанова Е. И. Исследование связи между аллозимной изменчивостью и некоторыми компонентами приспособленности у севрюги Acipenser stellatus (Pallas) // Генетика. — 1995. -Т.31, № 13.-С. 1679−1692.
- Свиточ А.А., Селиванова А. О., Янина Т. А. Новейшая история трёх морей // Природа, 1999. № 12. — С. 17−25.
- Субботкин М.Ф. Сравнительный иммунохимический анализ межвидовых и внутривидовых особенностей сывороточных белков трех видов осетровых рода Acipenser // Вопросы ихтиологии, 1987. Т.27. — № 5. — С. 794−800.
- Чихачев A.C., Цветненко Ю. Б. Оценка влияния искусственного воспроизводства и интродукции на генетическую структуру популяции азовских осетровых / Воспроизводство рыбных запасов Каспийского и Азовского морей. М.: ВНИРО. — 1984. — С. 114−125.
- Чугунов Н.Л., Чугунова НИ. Сравнительная промыслово-биологическая характеристика осетровых Азовского моря // Труды ВНИРО. Т.52. — Вып. 1.-С. 87−182.
- Цветненко Ю.Б. Оценка влияния искусственного воспроизводства и интродукции на генетическую структуру популяцию азовских осетровых // Тр. ВНИРО-1984.-С. 114−125.
- Цветненко Ю.Б. Эффективность и генетические последствия интродукции севрюги Acipenser stellatus из Каспийского в Азовский бассейн // Вопросы ихтиологии. 1993. — Т. ЗЗ, № 3. — С. 382−387.
- Федоров П.В. Плейстоцен Понто-Каспия // Тр. ГИН АН СССР. 1978. — Вып. 310. — 164 с.
- Шляхов В.А. Оценка численности днепровского стада осетра в северозападной части Чёрного моря // Труды ЮгНИРО. 1994. — Керчь. — Т.40. -С. 50−55.61 .Яблонская Е. А. Кормовая база осетровых южных морей // Тр. ВНИРО. -1964.-Т.54.-С. 81−112.
- Aljanabi S.M., Martinez I. Universal and rapid salt-extraction of high quality genomic DNA for PCR-based techniques // Nucleic Acids Res. 1999. — V.25. -N22.-P. 4692−4693.
- Allendorf F. W., Danzmann R.G. Secondary tetrasomic segregation of MDH-B and preferential pairing of homeologs in Rainbow trout // Genetics. 1997. — V. 145. -P. 1083−1092.
- Allendorf F. W., Thorgaard G.H. Tetraploidy and the evolution of Salmonid fishes / Evolutionaty genetics of fishes // Ed. В J. Turner. N.Y.: Plenum press, 1984. -P. 1−53.
- Barmintsev V. A.- Chudinov O. S.- Abramova A. B. Molecular and biological methods of identification and certification of sturgeons and their products. // Fish Farm. Fish.-2001.- V. l.-P. 70−71.
- Birstein V.J., Poletav A.I., Goncharov B.F. The DNA content in Eurasian sturgeon species determined by flow cytometry // Cytometry. 1993. — V. 14. — P. 377 383.
- Comincini S., Lanfredi M, Rossi R., Fontana F. Use of RAPD markers to determine the genetic relationships among sturgeons (Acipenseridae, Pisces) // Fish. Sci. 1998.-V. 64.-P. 35−38.
- Cornuet J.M. and Lidkart G. Description and power analysis of two tests for detecting recent population bottlenecks from allele frequency data // Genetics. -1996. V. 144. — P. 2001−2014.
- Diaz-Jaimes P. and Uribe-Alcocer M. Allozyme and RAPD variation in the eastern Pacific yellowfin tuna (Thunnus albacares) // Fish. Bull. 2003. — V. 101, N4.-P. 769−777.
- M.Excoffier L., Laval G. and Schneider S. Arlequin ver. 3.0: An integrated software package for population genetics data analysis // Evolutionary Bioinformatics Online. 2005. — V. 1. P. 47−50.
- Fontana F., Lanfredi M., Rossi R., Bronzi P., Arlati G. Established cell lines from three sturgeon species // Sturg. Quart. 1995. — V. 3, N4. — P. 6−7.
- Fontana F., Tagliavini J., Congiu L. Sturgeon genetics and cytogenetics: recent advancements and perspectives // Genetica. 2001. — V. 111. — P. 359−373.
- Ford E. Polymorphism and taxonomy // The new systematics. Oxford: Clarendon press. 1940.-P. 493−513.
- Gharaei A., Pourkazemi M., Rezvani S., Mojazi Amiri B. Genetic differences- and resemblance between Acipenser persicus and Acipenser gueldenstaedtii by means of RAPD technique. // Iran. Sci. Fish. J. 2005. -V. 14. -P. 91−102.
- Gordon M. Speciation in fishes // Adv. Genet. 1947. — Vol. 1 — P. 95−132.
- Hansen M., Kenchington E., Nielsen E.E. Assigning individual fish to populations using microsatellite DNA markers // Fish and Fisheries/ 2001. — № 2. — P. 93−112.
- Henderson-Arzapalo A., King T.L. Novel microsatellite markers for Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus) population delineation and broodstock management // Mol.Ecol.Notes 2002. — V.2. — P. 437−439.
- Johnson K.R., Wright J.E., May B. Linkage relationships reflecting ancestral tetraploidy in salmonid fish // Genetics. 1987. -V. 116. — P. 579−591.
- Kasamatsu H. et al. A novel closed-circular mitochondrial DNA with properties of a replicating intermediate // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1971. — V. 68, N 9. — P. 2252−2257.
- Keyvanshokooh S., Pourkazemi M., Katbassi M.R. The RAPD technique failed to identify sex-specific sequences in beluga {Huso huso) // J. Appl. Ichthyol. -2007. -V. 23. -P. 1−2.
- King J.P., Kimmel M., Chakraborty R. A power analysis of microsatellite-based statistics for inferring past population growth // Mol. Biol, and Evol. 2000. -V. 17.-P. 1859−1868.
- King T.L., Lubinski B.A., Spidle A.P. Microsatellite DNA variation in Atlantic sturgeon (Acipenser oxyrinchus oxyrinchus) and cross-species amplification in the Acipenseridae // Cons. Gen. 2001. — V. 2. — P. 103−119.
- Krutovskii K.V., Vollmer S.S., Sorensen F.C. et al. RAPD genome map of Douglas-fir//F. Heredity. 1998. -V. 89, N 3. — P. 197−205.
- Landsteiner К, Wiener A.S. An agglutinable factor in human blood recognized by immune sera for rhesus blood // Proc.Soc. Exp. Biol. Med. 1940. -V. 43.-P. 223−224.
- Lansman R.A., Shade R.O., Shapiro J.F., Avise J.C. The use of restriction endonucleases to measure mitochondrial DNA sequence relatedness in natural populations III. Techniques and potential applications // J. Mol. Evol. 1981. — V. 17.-P. 214−226.
- Lewontin R.C. The apportionment of human diversity // Evol.Biol. 1972. -№ 6.-P. 381−398.
- Ludwig A., Belfiore N.M. et al. Genome duplication events and functionfl reduction of ploidy levels in sturgeon {Acipenser, Huso and Scaphirhynchus) II Genetics 2001. — V. 158. — N 3. — P. 1203−1215.
- Ludwig A., Debus L., Jenneckens I. A molecular approach for trading control of black caviar // Int. Rev. Hydrobiol. 2002. — V. 87. — P. 661−674.
- Ludwig A., Congiu L., Pitra C. et al. Nonconcordant evolutionary history of maternal and paternal lineages in Adriatic sturgeon // Mol. Ecol. 2003. — V. 12. P. 3253−3264.
- Luikart G., Allendorf F.W., Cornuet J.-M., Sherwin W.B. Distortion of allele frequency distributions provides a test for recent population bottlenecks // J. Heredity. 1998. -V. 89. № 3. — P. 238−247.
- May В., Krueger C.C., Kincaid H.L. Genetic variation at microsatellite loci in sturgeon: primer sequence homology in Acipenser and Scaphirhynchus // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1997. — V. 54. — P. 1542−1547.
- McQuown E., Krueger C.C., Kincaid H.L. et al. Genetic comparison of lake sturgeon populations: Differentiation based on allelic frequencies at seven microsatellite loce // F. Great. Lakis Res. 2003. — V. 29, N 1. — P. 3−13.
- McQuown E., Gall G.A.E., May B. Characterization and inheritance of six microsatellite loci in lake sturgeon (Acipenser fulvescens) II Trans. Am. Fish. Soc. 2002. — V. 131.-299−307.
- Modica-Napolitano J.S., Kulawiec M., Singh K.K. Mitochondria and human cancer // Cur. Mol. Med. -2007. -V. 7. P. 121−131.
- Moody M.E., Mueller L.D., Soltis D.E. Genetic variation and random drift in autotetraploid populations // Genetics 1995. — V. 134. — P. 649−657.
- Mueller U.G., Wolfenbarger L.L. AFLP genotyping and fingerprinting // Trends Ecol. Evol. 1999. — V. 14. — P. 389−394.
- Mullis KB. The unusual origin of the polymerase chain reaction // Sci. Am. 1990. -V. 262.-P. 64−65.
- Muyzer G., Smalla К Application of denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) and temperature gradient gel electrophoresis (TGGE) in microbial ecology // Antonie Van Leeweenhoek. 1998. — V.73. — P. 127−141.
- Navodaru I., Stara§ M, Banks R. Management of sturgeon stocks of the lower Danube River system // Conference Proceedings «The Delta’s: State-of-art protection and management» Tulcea, Romania, 26−31 July 1999. — P. 229−237.
- Nei M. Genetic distance between populations // Am.Naturalist. 1972. — № 106.-P. 283−292.
- Nei M, Tadjima F. DNA polymorphism detectable by restriction endonucleases // Genetics. 1981. — V. 105. — P. 207−217.
- Ocho S., Stenius C., Faisst E., Zenzes M.T. Post-zygotic chromosomal rearrangements in rainbow trout (Salmo irideus Gibbons) // Cytogenetics. 1965. -V. 4.-P. 117−129.
- O’Connell M. and Wright J. M. Microsatellite DNA in Fishes // Reviews in Fish Biology and Fisheries. 1997. — V. 7. — P. 331−363.
- O’Reilly P. and Wright J.M. The evolving technology of DNA fingerprinting and its application to Fisheries and aquaculture // J. Fish Biol. -1995. V. 47, Suppl. A — P. 29−55.
- Pogson G.H., Mesa K.A., Boutilier R. G. Genetic population structure and gene flow in Atlantic cod, Gadus morhua: a comparison of allozyme and RFLP loci // Genetics. 1995. — V. 139. — P. 375−3 85.
- Pyatskowit J.D., Krueger C.C., Kincaid H.L., May B. Inheritance of microsatellite loci in the polyploid derivative lake sturgeon (Acipenser fulvescens) И Genome. 2001. -V. 44. — P. 185−191.
- Rastorguev S., Mugue N., Volkov A., Barmintsev V. Complete mitochondrial DNA sequence analysis of Ponto-Caspian sturgeon species // J. Appl. Ichthyol. 2008. -V. 24, Suppl. 1. -P.46−49.
- Raymakers С. CITES, the Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora: its role in the conservation of Acipenseriformes // J. Appl. Ichthyol. -2006. V. 22, Suppl. 1. — P. 53−65.
- Richer W.E. Hereditary and environmental factors affecting certain salmonid populations / The stock concept of Pacific salmon. Vancouver: Univ. Brit. Columbia. 1972. — P. 19−160.
- Rodzen J. A., Famula T.R., May B. Estimation of parentage and relatedness in the polyploid white sturgeon (Acipenser transmontanus) using a dominant marker approach for duplicated microsatellite loci // Aquaculture — 2004. — V. 232.-P. 165−182.
- Roe B.A., Ma D.P., Wilson R.K., Wong J.F. The complete nucleotide sequence of the Xenopus laevis mitochondrial genome // J. Biol. Chem. 1985. -V. 260, N 17. — P. 9759−9774.
- Royle N.J., Clarkson R.E., Wong Z., Jeffreys A.J. Clustering of hypervariable minisatellites in the preterminal regions of human autosomes // Genomics. 1988. -V. 3. — P. 352−360.
- Saccone C., Pesole G., Sbisa E. The main regulatory region of mammalian mitochondrial DNA: structure-function model and evolutionary pattern // J. Mol. Evol. 1991. — V. 33, N 1. — P. 83−91.
- Shaw P. W., Turan C., Wright J.M. et al. Microsatellite DNA analysis of population structure in atlantic herring {Clupea harengus), with direct comparison to allozyme and mtDNA RFLP analysis // Heredity. 1999. — V. 83. — P. 490 499.
- Schldtterer C. Evolutionary dynamics of microsatellite DNA // Chromosoma. 2000. — V. 109. — P. 365−371.
- Smith C., Seeb L. Number of Alleles as a Predictor of the Relative Assignment Power of SNP and STR Baselines for Chum Salmon // SNP WORKSHOP II. Applications of SNP Genotypeng en Fesheries Management. Girdwood, Alaska. September 21−22. P. 25.
- Smith P., McVeagh M. Allozyme and microsatellite DNA markers of toothfish population structure in the Southern Ocean // J. Fish Biol. 2000. — V. 57.-P. 72−83.
- Smith C.T., Nelson R.J., Pollard S. et al. Population genetic analysis of white sturgeon {Acipenser transmontanus) in the Fraser River // J. Appl. Ichthyol. 2002. — V. 18. — P. 307−312.
- Soltis D.E., Soltis P. S. The dynamic nature of polyploidy genomes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1995. — V. 92. — P. 8089−8091.
- Taggart J.B., Ferguson A. Hypervariable minisatellite DNA single locus probes for the Atlantic salmon, Salmo salar L. // F. Fish. Biol. 1990. — V. 37. -P. 991−993.
- Tranah G., Campton D. E., May B. Genetic evidence for hybridization of pallid and shovelnose sturgeon // Heredity. -2004. V. 95. — P. 474−480.
- Urquhart A., Kimpton C.P., Downes T.J., Gill P. Variation in short tandem repeat sequences — a survey of twelve microsatellite loci for use as forensic identification markers // Int. J. Leg. Med. 1994. — V. 107. — P. 13−20.
- Van Eenennaam A.L., Murray J.D., Medrano J.F. Synaptonemal complex analysis in spermatocytes of white sturgeon, Acipenser transmontanus Richardson (Pisces, Acipenseridae), a fish with a very high chromosome number // Genome. -1998. -V. 41. -P. 51−61.
- Vecsei P., Charette R., Hochleithner M. et al. Guide to the Identification of Sturgeon and Paddlefish Species Controlled under the Convention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora. Ottava: CITES. — 2004. -P. 30−33.
- Vaisman A. and Raymakers C. The Status of Sturgeon resources in Russia // TRAFFIC Bulletin. 2001. — V. 19, № 1. — P. 33−44.
- Vignal A., Milan D., San Cristobal M., Eggen A. A review of SNP and other types of molecular markers and their use in animal genetics // Genet. Sel. Emol. -2002.-V. 34.-P. 275−305.
- Welsh A.B., Blumberg M., May B. Identification of microsatellite loci in lake sturgeon, Acipenser fulvescens, and their variability in green sturgeon, A. medirostrisll Mol.Ecol.Notes. 2003. — V.3. — P. 47−55.
- Welsh A. and May B. Development and standardization of disomic microsatellite markers for lake sturgeon genetic studies // J. Appl. Ichthyol. -2006. -V. 22.-P. 337−344.
- Walsh M.G., Bain M.B., Squiers Т., Waldman J.R., Wirgin I. Morphological and genetic variation among Shortnose Sturgeon Acipenser brevirostrum from Adjacent and Distant Rivers 11 Estuaries. 2001. — V. 24, N 1. — P. 41−48.
- Williams J.G.K., Hanafey M.K., Rafalski F.A., Tingey S.V. Genetic analysis using random amplified polymorphic DNA markers // Methods Enzymol. 1993. -V. 218.-P. 704−740.
- Williams J.G.K., Kubelik A.R., Livak K.J. et al. DNA polymorphisms amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers // Nuc. Acids Res. -1990.-V. 18, N22.-P. 6531−6535.
- Wright J.M. DNA fingerprinting in fishes / In Hochachka P.W. and Mommsen T. eds. Biochemistry and Molecular Biology of Fishes. 1993. — V. 2. Amsterdam: Elsevier. — P. 58−91.
- Zane L., Patarnello Т., Ludwig A. et al. Isolation and characterization of microsatellites in the Adriatic sturgeon {Acipenser naccarii) II Mol.Ecol.Notes. -2002. V.2. — P.586−588.
- Zhivotovsky L.A. Estimating population structure in diploids with multilocus dominant DNA markers // Molecular Ecology. 1999. — V. 8. — P. 907−913.