Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Экспериментальное изучение фармакокинетики и биотрансформации нового дипептидного ноотропа ноопепта

ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Другая возможность реализации эффекта ноопепта, отсроченного от времени его циркуляции в организме, может осуществляться по принципу «появился и исчез». Предполагается, что определенное количество ноопепта достигая клетку-мишень «запускает» эндогенные процессы, влияющие на формирование механизмов памяти. С фармакокинетической точки зрения, возможность реализация такого эффекта будет зависеть… Читать ещё >

Экспериментальное изучение фармакокинетики и биотрансформации нового дипептидного ноотропа ноопепта (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Аналитические методы определения фармакологически активных пептидов в биологическом материале
      • 1. 1. 1. Хроматографические методы анализа пептидных соединений
        • 1. 1. 1. 1. Обращенно-фазный вариант метода ВЭЖХ в пептидном анализе
        • 1. 1. 1. 2. Эксклюзионная хроматография в пептидном анализе
      • 1. 1. 2. Электрофоретические методы анализа пептидов
      • 1. 1. 3. Методы хромато-масс-спектрометрии в пептидном анализе
      • 1. 1. 4. Иммунохимические методы анализа пептидных соединений
    • 1. 2. Фармакокинетика лекарственных веществ пептидной природы
      • 1. 2. 1. Фармакокинетика лекарственных веществ пептидной природы при внутривенном и подкожном путях введения
      • 1. 2. 2. Биологическая доступность пептидных препаратов, принимаемых через слизистые оболочки
        • 1. 2. 2. 1. Назальный путь введения
        • 1. 2. 2. 2. Букальный, сублингвальный пути введения
        • 1. 2. 2. 3. Окулярный путь введения пептидов
        • 1. 2. 2. 4. Через легкие
        • 1. 2. 2. 5. Оральный путь введения пептидов
        • 1. 2. 2. 5. 1. Анатомические барьеры желудочно-кишечного тракта
        • 1. 2. 2. 5. 2. Метаболические барьеры желудочно-кишечного тракта
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Материалы
  • 4. 2.2. Методы
    • 2. 2. 1. Способы введения ноопепта экспериментальным животным
    • 2. 2. 2. Метод количественного определения ноопепта и его метаболитов в биологическом материале
      • 2. 2. 2. 1. Подбор условий хроматографирования
      • 2. 2. 2. 2. Выбор детектирования
      • 2. 2. 3. Метод УФ-спектрос копии
      • 2. 2. 4. Хроматографический анализ ноопепта и его метаболитов
      • 2. 2. 5. Метрологические характеристики методик определения ноопепта и его метаболитов в биологическом материале
      • 2. 2. 6. Статистическая обработка результатов анализа
      • 2. 2. 7. Подготовка биологического материала к хроматографическому анализу
      • 2. 2. 7. 1. Экстракция из плазмы крови экспериментальных животных
      • 2. 2. 7. 2. Экстракция из ткани мозга
      • 2. 2. 8. Метод газо-жидкостной хроматографии циклопролилглицина
      • 2. 2. 9. Масс-спектрометрический анализ эндогенного циклопролилглицина
      • 2. 2. 10. Газ-хроматография-масс-спектрометрия
      • 2. 2. 11. Расчет основных фармакокинетических параметров ноопепта и его активных метаболитов и биологической доступности ноопепта
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. УФ-спектроскопия
    • 3. 2. Изучение биотрансформации и фармакокинетики ноопепта и его основных метаболитов
      • 3. 2. 1. Предполагаемый метаболизм ноопепта
      • 3. 2. 2. Изучение экскреции ноопепта и его основных метаболитов с мочой у крыс
      • 3. 2. 3. Фармакокинетика ноопепта и его метаболитов в плазме крови крыс после внутривенного введения ноопепта
      • 3. 2. 4. Фармакокинетика ноопепта у крыс после орального введения субстанции ноопепта
    • 3. 3. Фармакокинетика неизмененного ноопепта и его метаболитов в мозге крыс
    • 3. 4. Оценка абсолютной и относительной биологической доступности субстанции и таблеток ноопепта
      • 3. 4. 1. Фармакокинетика ноопепта в плазме крови кроликов х после внутривенного введения
      • 3. 4. 2. Фармакокинетика ноопепта у кроликов после орального введения субстанции ноопепта
      • 3. 4. 3. Фармакокинетика ноопепта у кроликов после введения таблеток

Разнообразие и часто уникальность фармакологических эффектов эндогенных пептидов и их синтетических аналогов в сочетании с высокой активностью делают эти соединения перспективными в качестве потенциальных фармакологических средств. Современные достижения в создании лекарственных форм пептидов, позволившие в значительной степени преодолеть такие негативные характеристики этих соединений, как низкую устойчивость к протеолитическим ферментам, плохую всасываемость и низкую проницаемость через различные барьеры организма, в соединении с улучшенными методами производства привели к возрождению интереса фармацевтической промышленности к пептидным соединениям [1].

На сегодняшний день фармацевтический рынок пептидов насчитывает свыше 40 препаратов различных фармакологических групп, вакцин и диагностических продуктов [1]. Среди наиболее коммерчески успешных препаратов пептидной структуры, выпускаемых за рубежом, следует отметить аналоги люлиберина леупролид (leuprolide (Lupron®)) и госерелин (goserelin (Zoladex®)), ингибитор ангиотензин-конвертирующего фермента лизиноприл (lisinopril (Zestril® и Prinivil®)). В нашей стране также был создан ряд препаратов пептидной структуры. Это созданный в ВКНЦ АМН СССР под руководством академика Е. И. Чазова структурный аналог Leu-энкефалина противоязвенный препарат даларгин, разработанный под руководством академика И. П. Ашмарина на основе фрагмента АКТГ4.10 ноотропный препарат семакс и созданный под руководством академика В. И. Покровского на основе тимопоэтина иммуномодулятор имунофан.

Лекарственные средства пептидной природы интересны в качестве потенциальных ноотропов, поскольку в регуляции когнитивных функций основную роль играют нейропептиды [2]. В связи с большим количеством состояний, сопровождающихся нарушениями когнитивных функций таких как травма мозга, инсульты, хроническая церебро-васкулярная недостаточность и т. п., представляется необходимым разработка и внедрение в клиническую практику новых ноотропных препаратов пептидной структуры, поскольку в большинстве случаев пептидные препараты более эффективны, чем препараты из других химических групп [3].

Несмотря на значительный прогресс в создании лекарственных форм пептидных соединений, поиск пептидов, сохраняющих активность после приема внутрь, остается актуальным, поскольку именно этот путь введения предпочтителен при коррекции многих когнитивных нарушений, требующих проведения длительной терапии.

В ГУ НИИ фармакологии им. В. В. Закусова РАМН в результате целенаправленного создания лекарственных средств дипептидной природы на основе структуры известных непептидных препаратов [4], был создан оригинальный дипептид ноопепт, который имеет ноотропную активность, качественно и количественно превышающую активность классического ноотропа пирацетама [5], и при этом сохраняющий активность после приема внутрь [6].

Общеизвестно, что экспериментальное изучение фармакокинетики позволяет выявить закономерности концентрационных изменений лекарственного вещества в организме. Знание этих закономерностей способствует пониманию процессов всасывания, распределения и элиминации лекарственных средств, выяснению фармакокинетической составляющей биологической активности, идентификации и оценки основных метаболитов, выбору оптимальной лекарственной формы и пути введения. В конечном счете, изучение экспериментальной фармакокинетики направлено на решение главной задачи доклинических испытаний, заключающейся в обеспечении безопасного и эффективного использования лекарственных препаратов в клинике [7].

Актуальность темы

.

Актуальность исследования определяется тем, что доклиническое щ изучение фармакокинетики и путей биотрансформации ноопепта является необходимым этапом на пути внедрения этого оригинального препарата в клиническую практику.

Целью настоящего исследования является изучение фармакокинетики и биотрансформации ноопепта в эксперименте на двух видах животных. Задачи исследования.

1. Разработать методики качественного и количественного анализа ноопепта и его предполагаемых метаболитов в биологическом материале.

2. Изучить фармакокинетику ноопепта после внутривенного и орального введения у крыс и кроликов.

3. Установить пути биотрансформации ноопепта после его внутривенного введения у крыс.

4. Оценить способность ноопепта проникать через гематоэнцефалический барьер.

5. Изучить фармакокинетику и определить относительную биологическую доступность таблетированной лекарственной формы ноопепта у кроликов.

Основные положения выносимые на защиту.

1. Установлены два параллельных пути биотрансформации ноопепта: путь с расщеплением пептидной связи и путь с дезацилированием, в результате которых образуются: N-фенилацетилпролин, фенилуксусная кислота и циклопролилглицин.

2. Абсолютная биологическая доступность составляет у крыс около 7%, а у кроликов в среднем 10%.

3. Ноопепт проникает через гематоэнцефалический барьер и его концентрация в мозге выше, чем в плазме. Тканевая доступность ноопепта для мозга составила 161% .

4. Выявлены различия во времени всасывании ноопепта в системный кровоток после введения кроликам таблеток и вводимой внутрь субстанцией. Вспомогательные вещества, входящие в таблетированную лекарственную форму, не влияют на скорость и степень всасывания ноопепта. Относительная биологическая доступность таблеток ноопепта составила в среднем 99.7%.

Научная новизна работы.

В настоящем исследовании впервые изучено фармакокинетическое поведение и основные пути биотрансформации ноопепта у крыс и кроликов при разных путях введения субстанции и после введения таблеток ноопепта у кроликов. Показано, что при внутривенном пути введения неизмененный ноопепт регистрируется в плазме крови крыс в течение 25 мин и за это время происходит его биотрансформация с образованием трех метаболитов — N-фенилацетилпролина, фенилуксусной кислоты и циклопролилглицина. Выявлено, что процесс элиминации ноопепта у кроликов протекает менее интенсивно, что обуславливает его более длительную циркуляцию в плазме крови у этого вида животных. Показано, что ноопепт способен проникать через гематоэнцефалический барьер и его количественное содержание в мозге превышает его содержание в плазме крови. Установлено, что в мозге, помимо ноопепта, регистрируются два его метаболита — фенилуксусная кислота и циклопролилглицин. Эти метаболиты являются идентичными соответствующим эндогенным соединениям, причем идентификация циклопролилглицина в качестве эндогенного соединения проведена впервые. Показано на двух видах животных, что ноопепт после введения внутрь подвергается «эффекту первого прохождения». Впервые проведена оценка относительной биологической доступности таблеток ноопепта у кроликов.

Практическая значимость работы.

Данные о фармакокинетике и биотрансформации ноопепта вошли в материалы, представленные в Фармакологический комитет РФ для получения разрешения на клинические испытания таблеток ноопепта. Данные настоящего исследования могут быть полезными при разработке новых лекарственных форм ноопепта.

Связь темы диссертации с планом научно-исследовательских работ ГУ НИИ фармакологии РАМН.

Диссертация выполнена в соответствии с плановой темой НИР НИИ фармакологии РАМН «Изучение молекулярных и клеточных механизмов эндои экзогенной регуляции функций ЦНС, создание нейрохимических основ для разработки новых оригинальных нейротропных средств» и с подпрограммой «Создание лекарственных средств методами химического и биологического синтеза» ФЦНТП «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития науки и техники» .

Апробация работы.

Основные результаты работы доложены на VIII Российском национальном конгрессе «Человек и Лекарство», а также на 3-й Международной Конференции «Биологические основы индивидуальной чувствительности к психотропным средствам» .

Объем и структура диссертации.

Материалы диссертации изложены на 136 страницах и иллюстрированы 20 таблицами и 14 рисунками. Диссертация состоит из введения, обзора литературы, описания материалов и методов исследования, результатов исследования, заключения и выводов. Библиография представлена 25 отечественными и 130 зарубежными работами.

ВЫВОДЫ.

1. Разработана методика количественного определения ноопепта и его основных метаболитов в биологическом материале с использованием ВЭЖХ.

2. Установлены два параллельных пути биотрансформации ноопепта в плазме крови: первый — расщепление пептидной связи с образованием N-фенилацетилпролина, второй — дезацилирование с образованием фенилуксусной кислоты и циклопролилглицина, совпадающих с соответствующими эндогенными соединениями. В мозге обнаружены метаболиты, образующиеся только по второму пути.

3. Период полувыведения ноопепта после его внутривенного введения в 2−3 раза продолжительнее периода полувыведения незамещенных дии трипептидов.

4. После введения ноопепта внутрь препарат быстро всасывается и поступает в системный кровотокпри этом его абсолютная биодоступность составляет более 7%.

5. Ноопепт проникает через гематоэнцефалический барьер и его концентрация в мозге крыс, начиная с 10-минутного интервала после внутривенного введения значительно превышает его уровень в плазме.

6. Разработанная в ГУ НИИ фармакологии им. В. В. Закусова РАМН таблетированная лекарственная форма ноопепта обладает высокой относительной биодоступностью и рекомендована для клинических исследований.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Известно, что интенсивность фармакологического эффекта зависит от фармакодинамических и фармакокинетических характеристик лекарственного средства. Другими словами, фармакокинетические свойства лекарственного средства, характеризующие процессы его всасывания, распределения и элиминации являются необходимыми факторами биологической активности. С этой точки зрения представляется важным, во-первых, выяснение взаимосвязи концентрации лекарственного средства, регистрируемого в изучаемом биоматериале, с выраженностью фармакологического эффекта, и, во-вторых, выявления таких фармакокинетических характеристик лекарственного средства, которые являлись бы определяющими в реализации активности.

Принимая во внимание выраженную зависимость эффекта ноопепта от дозы [5, 6, 147], можно предположить, что определяющим фармакокинетическим фактором, обусловливающим реализацию эффекта этого ноотропа будет площадь под фармакокинетической кривой или значение максимальной концентрации. Вместе с тем, интенсивная элиминация ноопепта предопределяет его низкий концентрационный уровень в плазме крови, следствием чего явилась необходимость использовать в фармакокинетическом исследовании дозы, значительно превышающие эффективные. В связи с этим представляется затруднительным оценка минимально эффективной площади под фармакокинетической кривой, то есть такой величины AUC, которая была бы способна реализовать фармакологический эффект.

Во многих случаях, интенсивный метаболизм лекарственного средства приводит к снижению фармакологической активности или к её видоизменению. Для ноопепта следствием быстрого исчезновения из организма является расхождение во времени детектирования его в плазме крови или ткани мозга со временем регистрации ноотропной активности, то есть оцениваемые ноотропные эффекты ноопепта наблюдались уже после окончания циркуляции данного дипептида в организме. Несопоставимость во времени проявления эффекта, и профиля концентрационной кривой лекарственного средства в организме обычно подразумевает отсутствие корреляционной зависимости между эффектом и концентрацией. В этом случае, наиболее вероятными механизмами реализации эффекта представляется либо действие, опосредованное активными метаболитами, либо «запуск» ноопептом эндогенных механизмов, формирующих эффект. Если ноопепт является пролекарством, то предполагаемый активный метаболит должен, во-первых, проникать через гематоэнцефалический барьер после его введения, во-вторых, биологическая активность этого метаболита должны быть полностью сопоставима с фармакологическими эффектами исходного соединения.

Следовательно, для ответа на вышепоставленный вопрос необходимо сравнить биологическую активность метаболитов, способных к проникновению через гематоэнцефалический барьер, с фармакологическим эффектом исходного соединения.

В настоящем исследовании было установлено, что после внутривенного введения ноопепта в мозге определяются два метаболита — фенилуксусная кислота и циклопролилглицин.

По литературным данным, фенилуксусная кислота присутствует в организме человека и животных в мозге [146], в цереброспинальной жидкости [148], в плазме крови [149] и в моче [150]. Согласно результатам исследований последних лет, фенилуксусная кислота имеет высокую степень проникновения через гематоэнцефалический барьер, причем ее концентрация в мозге крыс регулируется не только за счет образования конъюгатов, но также и за счет транспорта из мозга [146]. В плазме крови крыс 90% от всего содержания фенилуксусной кислоты находится в связанном состоянии в виде конъюгата с глютатионом, и только 10% определяется в свободном виде [146].

Большое количество зарубежных публикаций, посвященных биологической активности фенилуксусной кислоты обусловлено её способностью подавлять рост опухолевых клеток различного происхождения без проявления общей токсичности [151]. Цитотоксическое действие фенилуксусной кислоты связано с подавлением генной экспрессии злокачественных клеток, причем независимо от фазы их клеточного цикла [152]. К настоящему времени, в США проходят клинические испытания этой кислоты в качестве противоопухолевого средства, используемого для лечения рака мозга и предстательной железы. Сообщалось [153] об изучении фармакокинетики фенилуксусной кислоты после внутривенного введения онкологическим пациентам. Было установлено, что фармакокинетика фенилуксусной кислоты имеет нелинейный характер, и что интенсивная элиминация является результатом быстрого образования конъюгата фенилуксусной кислоты, в виде которого она экскретируется с мочой в количестве 99% от введенной дозы.

Вместе с тем, в доступной автору литературе, посвященной и эндогенной, и изучаемой после введения в условиях эксперимента и клиники фенилуксусной кислоты, отсутствуют сведения о ноотропной активности этого соединения.

Другим метаболитом, обнаруживаемым в ткани мозга крыс после введения ноопепта, является циклопролилглицин. Как и в случае с фенилуксусной кислотой, данный метаболит детектировался в биологических образцах опытных и контрольных животных. Это обстоятельство послужило основанием для предположения об эндогенной природе данного циклодипептида, что впоследствии и было подтверждено различными инструментальными методами. Всесторонний фармакологический анализ циклопролилглицина, выполненный в лаборатории психофармакологии ГУ НИИ фармакологии им. В. В. Закусова РАМН свидетельствует, во-первых, что циклопролилглицин имеет выраженную антиамнестическую активность, регистрируемую после внутрибрюшинного введения в дозах, сопоставимых с активными дозами ноопепта (0.1 — 1.0 мг/кг) — во-вторых, что он обладает и значительной мнестической активностью [154]. Таким образом, циклопролилглицин, как и исходное соединение, обладает выраженным ноотропным эффектом. Однако при дальнейшем [147] изучении фармакологии циклопролилглицина, были отмечены различия во влияниях этого эндогенного циклодипептида и ноопепта на фазы памяти. В отличие от ноопепта, который способен облегчать все фазы памяти, включающие ввод информации, её консолидацию и извлечение, циклопролилглицин оказывает влияние только на начальные фазы. При этом, в отличие от ноопепта, влияние циклопролилглицина на извлечение информации напротив имеет тенденцию к торможению воспроизведения памятного следа [147].

Из приведенных данных следует, что ноотропный эффект ноопепта качественно отличается от сопоставляемого эффекта циклопролилглицина, и, следовательно, можно утверждать, что ноопепт не является пролекарством, хотя и возможен вклад этого метаболита в ноотропную активность ноопепта.

Другая возможность реализации эффекта ноопепта, отсроченного от времени его циркуляции в организме, может осуществляться по принципу «появился и исчез». Предполагается, что определенное количество ноопепта достигая клетку-мишень «запускает» эндогенные процессы, влияющие на формирование механизмов памяти. С фармакокинетической точки зрения, возможность реализация такого эффекта будет зависеть от минимального значения параметров Со или Стах (в зависимости от способа введения), которое бы обеспечило нахождение ноопепта в месте непосредственного приложения в количестве, достаточным для такого «запуска». Не рассматривая проблемы механизмов клеточного действия ноопепта на формирование памяти, можно предположить, что такой процесс, связанный с функциональными изменениями, будет продолжителен по времени и, следовательно, нахождение ноопепта в плазме крови и его действие будут разобщены во времени.

С предположениями, высказанными выше, согласуются данные о сохранении активности ноопепта после орального введения [6]. Во-первых, обычно пролекарство характеризуется изменением фармакологической активности после орального введения, что не наблюдалось у ноопепта, во-вторых, низкое значение биодоступности ноопепта при условии зависимости концентрации от эффекта предполагала бы отсутствие последнего.

В настоящее время предлагается [155] биофармацевтическая классификация лекарственных средств согласно их растворимости в воде и способности к проницаемости через биологические мембраны. Предполагается, что лекарственные средства, сгруппированные в один из 4 возможных классов по принципу отношения к вышеуказанным признакам, будут иметь сходное поведение при оценки биодоступности. Согласно этой классификации, ноопепт относится к группе И, в которую выделены лекарственные средства по таким признакам как низкая растворимость в воде и высокая проницаемость через биологические мембраны. Считается, что для этой группы фактором, ограничивающим биодоступность может выступать растворимость лекарственного средства в условиях in vivo, в связи с чем рекомендуется проводить тщательное изучение растворимости при физиологических значениях рН, в различных средах и по разным методикам.

По-видимому, растворимость ноопепта в условиях in vivo, не является причиной его низкой биодоступности (см. 3.4.4.). Можно утверждать, что низкая биодоступность ноопепта является результатом незначительной степени его всасывания в системный кровоток из-за интенсивной пресистемной биотрансформации, протекающей в кишечнике. А это означает возможность увеличения биодоступности с помощью биофармацевтических подходов без химической модификации исходного соединения.

Одной из задач настоящего исследования являлась оценка относительной биодоступности разработанной в опытно-технологическом отделе ГУ НИИ фармакологии им. В. В. Закусова РАМН лекарственной формы ноопепта — таблеток. В результате фармакокинетического изучения установлено, что таблетированная лекарственная форма ноопепта соответствуют по скорости всасывания из ЖКТ, и по степени достижения системного кровотока вводимому внутрь водному раствору ноопепта. Из этого следует, что вспомогательные вещества, входящие в таблетированную лекарственную форму, индифферентны в фармакокинетическом отношении.

Можно отметить, что с помощью использования вспомогательных веществ, возможно значительно снизить потери лекарственного вещества в желудочно-кишечном тракте. Поскольку, как указывалось выше, низкая биодоступность ноопепта является следствием именно биотрансформации, то в роли таких вспомогательных веществ должны выступать ингибиторы ферментов. В биофармацевтической практике в этом качестве, например, рассматривают: бестатин (bestatin) — пепстатин (pepstatin) — арфанамин (arphanamine) и ряд других специфических ингибиторов [10].

Возможно использование и других биофармацевтических подходов, реализуемых в настоящее время при создании препаратов на основе пептидов. Эти подходы позволяют преодолевать такие негативные характеристики этих соединений, как низкую устойчивость к протеолитическим ферментам, плохую всасываемость и их низкую проницаемость через различные барьеры организма включая слизистые оболочки. Наиболее успешной лекарственных формой для пептидов следует признать терапевтические системы с длительным высвобождением действующего начала, в частности, такой подход был реализован при создании нафарелина (nafarelin) и золадекса (zoladex) [1].

В заключение можно отметить, что современные достижения в области создания и производства пептидов обеспечили бурный рост количества препаратов этой группы в последние пять лет, и, возможно с началом использования проекта «геном человека» в терапии, пептидные соединения станут наиболее жизнеспособными кандидатам в фармакологические вещества.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Verlander М. Striking progress in the development of peptides as drugs, in: Proc. 26 European Pept. Symp./ Eds. J. Martinez, J.-A. Fehrentz. Paris: EDK, 2001.-p. 103−105.
  2. T.A. Роль синаптической передачи в процессах памяти, нейродегенерации и механизме действия нейротропных препаратов// Экспер. и клин, фармакол. 2003. — Т. 66, № 2. — с. 10−14.
  3. Loffet A. Peptides as drugs: is there a market?// J. Pept.Sci. 2002. — V. 8, № l.-p. 1−7.
  4. Р.У., Гудашева Т. А., Воронина Т. А., Трофимов С. С., Бойко С. С., Жердев В. П., Середенин С. Б. ГВС-111 новый замещенный ацилпролил-дипептид с ноотропными свойствами// В сб. «Лекарства -Человеку», — М., 1997. — т. 4. — с. 295−304.
  5. В.А. Оптимизация фармакокинетических исследований новых лекарственных средств: дис. докт. биол. наук. М., 1987. — 300 с.
  6. Dutta A.S. Small peptides: chemistry, biology, clinical studies. Amsterdam etc.: Elsevier, 1993. — 616 p.
  7. Underberg W.J.M., Hoitink M.A., Reubsaet J.L.E., Waterval J.C.M. Separation and detection techniques for peptides and proteins in stability research and bioanalysis// J. Chromatogr. B. 2000. — V. 742, № 2 — p. 401 409.
  8. Handbook of HPLC for тне separation of amino acid, peptides and proteins/ Ed. W.S. Hancock, Ph.D. Florida USA: CRC Press. — 1984, V. I. — 489 p.
  9. Yoshida T. Calculation of peptide retention coefficients in normal-phase liquid chromatography// J. Chromatogr. A. 1998. — V. 808, № 1−2. — p. 105 112.
  10. Nilsson C.L., Brodin E., Ekman R. J. Substance P and related peptides in porcine cortex: whole tissue and nuclear localization// J. Chromatogr. A. — 1998.-V. 800,№ 1. — p. 21−27.
  11. Проблема белка. Том 1: химическое строение белка/ Е. М Попов, П. Д. Решетов и др.- под ред. В. М Липкина. М.: Наука, 1995. — 496 с.
  12. Д.М., Сибилев А. В., Дейгин В. И., Прокофьева В. И. Применение метода ВЭЖХ в фармацевтическом анализе лекарственных средств пептидной природы// Хим.- фарм. журн. 2000. -Т. 34, № 3.-с. 45−47.
  13. ., Фрайд Б., Хегнауер Г. Препаративная жидкостная хроматография. — М.: Мир, 1990.- 360 с.
  14. Boppana V.K., Miller-Stein C. High-performance liquid chromatographic determination of peptide drugs in biological fluids by means of pre- andpost-column fluorescence derivatization techniques// Anal. Chim. Acta. -1997. V. 352, № 1.3. — p. 61−69.
  15. Kai M., Miura Т., Ishida J., Ohkura Y. High-performance liquid chromatographic method for monitoring leupeptin in mouse serum and muscle by pre-column fluorescence derivatization with benzoin// J. Chromatogr. B. -1985. V. 345. — p. 259−265.
  16. Nishikawa Т., Hayashi Y., Suzuki S., Kubo H., Ohtani H. Cis-trans isomerization of proline dipeptides during liquid chromatography: kinetic analysis of the elution profile// Anal. sci. 1996. — V. 12. — p. 561−564.
  17. Porath J., Flodin P. Gel filtation: a method for desalting and group separation//Nature. 1959. — V. 183, № 4676. — p. 1657−1659.
  18. Saelsen L., Andersen H.B., Bratholm P., Christensen N.J. Radioimmunoassay of plasma neuropeptide Y using HPLC for separation of related peptides and fragments// Scand. J. Clin. Lab. Invest. 1994. — V. 54, № 3. — p. 207−214.
  19. Stromqvist M. Peptide mapping using combinations of size-exclusion chromatography, reversed-phase chromatography and capillary electrophoresis//J. Chromatogr. B. 1995. — V. 667, № 2. — p. 304−310.
  20. Michalski W.P., Shiell B.J. Strategies for analysis of electrophoretically separated proteins and peptides// Anal. Chim. Acta. — 1999. V. 383, № 1−2.-p. 27−46.
  21. Hideyuki Kajiwara. Affinity capillary electrophoresis of proteins and peptides// Anal. Chim. Acta. 1999. — V. 383, № 1−2. — p. 61−66.
  22. Jorgenson J.W., Lukacs K.D. Zone electrophoresis in open-tubular glass capillaries// Anal. Chem. 1981. — V. 53, № 8. — p. 1298−1302.
  23. Kelly J.F., Ramaley L., Thibault P. Capillaiy zone electrophoresis-electrospray mass spectrometry at submicroliter flow rates: practical considerations and analytical// Anal. Chem. — 1997. V. 69, № 1. — p. 5160.
  24. Ф., Клемент P. Введение в хромато-масс-спектрометрию. — М.: Мир, 1993.-236 с.
  25. Caprioli R.M., Seifert W.E., Sutherland D.E. Polypeptide sequencing: use of dipeptidylaminopeptidase I and gas chromatography-mass spectrometry// Biochem. Biophys. Res. Commun. -1973.-V. 55, № l.-p. 67−75.
  26. Liberato D.J., Heimer E.P., Fududa E.K., Ahmad M., Garland W.A. in: Proceedings of Am. Soc. Mass Spectrometry, San Francisco CA, June 5−10. -1988.-p. 433.
  27. Cobb K.A., Novotny M.V. Peptide mapping of complex proteins at the low-picomole level with capillary electrophoretic separation// Anal. Chem.-1992. V. 64, № s. — p. 879−886.
  28. Mehlis В., Kertscher U. Liquid chromatography/mass spectrometry of peptides of biological samples// Anal. Chim. Acta — 1997. — V. 352, № 1−3. -p. 71−83.
  29. Kim H.Y., Pilosof D., Dyckes D.F., Vestal M.L. On-line peptide sequencing by enzymic hydrolysis, high performance liquid chromatography, and thermospray mass spectrometry// J. Am. Chem. Soc. — 1984. — V. 106, № 24.-p. 7304−7309.
  30. Nilsson C.L., Brodin E., Ekman R. J. Substance P and related peptides in porcine cortex: whole tissue and nuclear localization// J. Chromatogr. A. -1998. V. 800, № 1. — p. 21−27.
  31. Emson P.C., Arregui A., Clement-Jones V., Sandberg B.E., Rossor M. Regional distribution of methionine-enkephalin and substance P-like immunoreactivity in normal human brain and in Huntington’s disease// Brain Res. 1980. — V. 199, № 1. — p. 147−160.
  32. Csernus V.J., Szende В., Groot K., Redding T. W, Schally A.V. Development of radioimmunoassay for a potent luteinizing hormone-releasing hormone// Drug Res. 1990. — V. 40. — p. l 11−118.
  33. Schwahn M., Romeis P., Peter G., Derendorf H., Herbst M. Absolute bioavailability and dose proportionality of CET, a novel LH-RH antagonist, in male and female rats// Arch. Pharmacol. 1997. — V. 355, № 4: R8.
  34. Ueno H., Matsuo S. High-performance liquid chromatography followed by radioimmunoassay for the determination of luteinizing hormon-releasinghormone analogue, leuprorelin, and its metabolite// J. Chromatogr. B. — 1991.-V. 566, № 1. — p.57−66.
  35. Butt W.R. The iodination of follicle-stimulating and other hormones for the radioimmunoassay// J. Endocrinol. 1972. — V. 55, № 2. — p. 453−454.
  36. Behre H.M., Sandow J., Nieschlag E. Pharmacokinetics of the gonadotropin-releasing hormone agonist buserelin after injection of a slow-release preparation in normal men// Arzneimittelforschung. 1992. — V. 42, № 1. — p. 80−84.
  37. Rao S., Ritschel W.A. Colonic drug delivery of small peptides// S.T.P. pharma sci. 1995. — V. 5, № 1. — p. 19−29.
  38. Schafgen W., Grebe S.F., Schatz H. Pernasal versus intravenous administration of TRH: effects on thyrotropin, prolactin, triiodothyronine, thyroxine and thyroglobulin in healthy subjects// Horm. Metab. Res. 1983. -V. 15, № l.-p. 52−53.
  39. Fink G., Gennser G., Liedholm P., Thorell J., Mulder J. Comparison of plasma levels of luteinizing hormone releasing hormone in men after intravenous or intranasal administration// J. Endocrinol. 1974. -V. 63,№ 2. -p.351−360.
  40. Aungst B.J., Rogers N.J., and Shelter E. Comparison of nasal, rectal, buccal, sublingual and intramuscular insulin efficacy and the effects of a bile salt absorption promoter// J. Pharmacol. Exp. Ther. 1988. — V. 244, № 1. — p. 23 -27.
  41. Potaman V.N., Antonova L.V., Dubynin V.A., Zaitzev D.A., Kamensky A.A., Myasoedov N.F., Nezavibatko V.N. Entry of the synthetic ACTH (410) analogue into the rat brain following intravenous injection// Neurosci. LETTER. 1991.-V. 127. — p.133−136.
  42. Pihoker C., Kearns G.L., French D., Bowers C.Y. Pharmacokinetics and pharmacodynamics of growth hormone-releasing peptide-2: a phase I studyin children// J. Clin. Endocrinol. Metab. 1998. — V. 83, № 4. — p. 11 681 172.
  43. De Groot A.N.J., Vree T. B, Hekster Y.A., Pesman G.J., Sweep F.C.G., Van Dongen P.J.W., Van Roosmalen J. Bioavalability and pharmacokinetics of sublingual oxytocin in male volunteers// J. Pharm. Pharmacol. 1995. — V. 47.-p. 571−575.
  44. Frystyk J., Hussain M., Skjaerbaek C, Porksen N, Froesch ER, Orskov H. The pharmacokinetics of free inslin-like growth factor-I in healthy subjects// Growth Horm. IGF Res. 1999. — V. 9, № 2. — p. 150−156.
  45. Greco D.S., Behrend E.N., Browns S.A., Rosychuk R.A., Groman R.P. Pharmacokinetics of exogenous corticotropin in normal dogs, hospitalized dogs with non adrenal illness and adrenopathic dogs// J. Vet. Pharmacol. Ther. 1998. — V. 21, № 5. — p. 369−374.
  46. B.E. Пептиды — регуляторы функций мозга. Рига: Зинатне, 1984.
  47. Witkowska Е., Orlowska A., Sagan В., Smoluch М., Izdebski J. Trypsin hydrolysis of GH-RH analogues, in: Proc. 26 European Pept. Symp./ Eds. J. Martinez, Fehrentz J.-A.- Paris: EDK, 2001. p. 777−778.
  48. RH antagonist, and testosteron in rats and dogs// Pharm. Res. 2000. — V. 17, № 3.- p. 328−335.
  49. Berger H., Heinrich N., Scha"fer H., Baeger I., Mehlis B. Gonadotropin-releasing hormone (GnRH) pharmacokinetics: peptide hormone pharmacokinetics needs clarification// Life Sci. -1988. V. 42. — p. 985−991.
  50. Chu N.I., Chan R.L., Hama K.M., Chaplin M.D. Disposition of Narfarelin acetate, a potent luteinizing hormone-releasing hormonИ Drug Metab. Dispos. 1985. — V. 13, № 5. — p. 560−565.
  51. Berger H., Heinrich N., Albrecht E., Kertscher U., Oehlke J. Gonadotropin -releasing hormone (GnRH) analogs: relationship between their structure, proteolytic inactivation and pharmacokinetics in rats// Regul. Pept. 1991. -V. 33.-p. 299−311.
  52. Haviv F., Bush E.N., Knittle J., Greer J. LHRH Antagonists, in: Integration of pharmaceutical discovery and development, Borchard (eds.), New York: Plenum Press, 1998.
  53. Schwahn M., Romeis P., Peter G., Derendorf H., Herbst M. Absolute bioavailability and dose proportionality of CET, LH-RH antagonist, in male and female rats//Arch. Pharmacol. 1997. — V. 355, № 4: R8.
  54. Chan R.L., Ho W., Webb A.S., LaFargue J.A., Nerenberg C.A. Disposition of detirelix, a potent luteinising hormon-releasing hormone antagonist, in rats and monkeys// Pharm. Res. 1988. — V. 5, № 14. — p. 335−340.
  55. М.Г., Дмитриева О. Ф., Беспалова Ж. Д., Зайцев С. В., Сравнительное изучение радиорецепторным методом фармакокинетики опиатных лигандов морфина и даларгина// Бюлл. ВКНЦ АМН СССР. -1986.- вып. 2. с. 81−83.
  56. Е.И., Дмитриева О. Ф., Коробов Н. В. Жуковский С.В., Тищенко В. А. Виноградов В.А. Фармакокинетика даларгина// Бюлл. экспер. биол. мед. 1987. — Т. 103, № 1. — с. 75−83.
  57. А.В. Пептидогидролазы ткани мозга. Ереван: Айастан, 1989 с. 207.
  58. Т.Я., Потапова А. А., Руднева В. В., Лобанова И. В. Применение препарата семакс в раннем восстановительном периоде ишемического инсульта// Кремлевская медицина. Клин, вестник. 2001.- № 2.-е. 1−3.
  59. Mordenti J., Chen S.A., Moore J.A., Ferraiolo B.L., Green J.D. Interspecies scaling of clearance and volume of distribution data for five therapeutic proteins// Pharm. Res. 1991. — V. 8, № 11. — p. 1351−1359.
  60. Muller S., Dunker R., Hochhaus G. Interspecies comparison of in vitro plasma degradation of dynorphin A 1−13// Pharmazie. 1996. — V. 51, № 8. -p. 581−585.
  61. Venturelli F., Roscetti G., Possenti R., Vita F., Roda L.G. Peripheral enkephalin hydrolysis in different animal species: a comparative study// Neurochem. Res. 1985. — V. 10, № 3. — c. 333−342.
  62. Sayani A.P. Chien Y.W. Systemic delivery of peptides and proteins across absorptive mucosae// Crit. Rev. Ther. Drug Carrier Syst. 1996. — V. 13, № 1−2.-p. 85−184.
  63. Aungst В J., Wilmington D.E., Phenrg S. Metabolism of a neurotensin (813) analog by intestinal and nasal enzymes, and approaches to stabilize this peptide at these absorption on sites// Int. J. Pharm. 1995. — V. 117. — p. 95 100.
  64. Su K.S., Campanale K.M., Mendelsohn L.G., Kerchner G.A., Gries C.L. Nasal delivery of polypeptides I: nasal absorption of enkephalins in rats// J. Pharm. Sci. 1985. — V. 74, № 4. — p. 394−398.
  65. Adjei A., Garren J. Pulmonary Delivery of Peptide Drugs: Effect of Particle Size on Bioavailability of Leuprolide Acetate in Healthy Male Volunteers// Pharm. Res. 1990. — V. 7, № 6. — p. 565 — 569.
  66. Anik S.T., McRae G., Nerenberg C., Worden A., Foreman J., Hwang J.Y., Kushinsky S., Jones R.E., Vickery B. Nasal absorption of nafarelin acetate, the decapeptide D-Nal (2)6).LHRH, in rhesus monkeys// J. Pharm. Sci. -1984. V. 73, № 5. — p. 684−685.
  67. Chien Y.W. Biopharmaceutics basis for transmucosal delivery// S.T.P. pharma sci. 1995. — V. 5, № 4. — p. 257−275.
  68. Smith E.L., Hill R.L., Borman A. Activity of insulin degraded by leucine aminopeptidase// Biochim. biophys. Acta. 1958. — V. 29. — p. 207.
  69. Xu H., Huang K., Zhu Y., Gao Q., Wu Q., Tian W., Sheng X., Chen Z ., Gao Z. Hypoglycaemic effect of a novel insulin buccal formulation on rabbits// Pharmacol. Res. 2002. — V. 46, № 5. — p. 459−467.
  70. Chung V.B., Han K., Nishiura. Ocular absorption of Pz-Peptide and its effect on the ocular and systematic pharmacokinetics of topically applied drugs in the rabbit// Pharm. Res. 1998. — V. 15. — p. 1882 — 1887.
  71. Beding-Barnekow В., Leander S., Ohlin M., Ninn-Pedersen K., Alkner U., Hakanson R. Systemic and intraocular uptake of spantide, a tachykinin antagonist, following topical application to the rabbit eye// Exp. Eye Res. -1990.-V. 50, № 1.- p. 21−26.
  72. Diaz-Llopis M., Menezo J.l. Penetration of 2% cyclosporin eye drops into human aqueous humour// Br. J. Ophthalmol. 1989. — V. 73, № 8. — p. 600 603.
  73. Higaki K, Yamashita S., Amidon G.L. Time-dependent oral absorption models// J. of Pharmacokinetics and Pharmacodynamics. 2001. — V. 28, № 2.-p. 109−128.
  74. Fahr A. Cyclosporin clinical pharmacokinetics// Clin. Pharmacokinet. -1993.-V. 24.-p.472−495.
  75. Baraldo M., Pea F., Poz D., Furlanut M. Pharmacokinetics of two oral cyclosporin a formulations in clinically stable heart-transplant patients// Pharmacol. Res. 2001. — V. 43, № 6. — p. 547−551.
  76. Flicker G., Drewe J. Current concepts in intestinal peptide absorption// J. Peptide Science. 1996. — V. 2. — p. 195−211.
  77. Samanen J., Wilson G., Smith P.L., Lee C.P., Bondinell W., Ku Т., Rhodes G., Nichols A. Chemical Approaches to improve the oral bioavailability of peptidergic molecules// J. Pharm. Pharmacol. 1996. — V. 48. — p. 119−135.
  78. J., Мао В., Vidmar T.J., Conradi R.A., Burton P. S. Strategies toward predicting peptide cellular permeability from computed molecular descriptors// J. Peptide Res. 1999.- V. 53. — p. 355−369.
  79. Felt O., Buri P., Gurny R. Chitosan: a unique polysaccharide for drug delivery// Drug Dev. Ind. Pharm. 1998.- V. 24, № 11. — p. 979−993.
  80. Braun K., Kuhl P., Bernd M., Kutscher B. Stability of several LHRH antagonists against proteolytic enzymes and identification of degradation products by mass spectrometry// Pharmazie. 2001. — V. 56, № 1. — p. 45−49.
  81. Hideyuki Т., Yasuharu E., Eri H. Susceptibility of insulin to proteolysis in rat lung homogenate and its protection from proteolysis by various protease inhibitors//Biol. Pharm. Bull. 1995. — V. 18,№ 6.-p. 929−931.
  82. Reithmeier H.- Herrmann J.- Gopferich A. Development and characterization of lipid microparticles as a drug carrier for somatostatin// Int. J. Pharm. 2002. — V. 218, № 1−2. — p. 133−143.
  83. Periti P., Mazzei Т., Mini E. Clinical Pharmacokinetics of Depot Leuprorelin// Clin. Pharmacokin. 2002. — V. 41, №. 7. — p. 485−504.
  84. Rahavendran V.S., Karnes H.T. Visible diode laser-induced fluorescence detection of phenylacetic acid in plasma derivatized with nile blue and using precolumn phase transfer catalysis// Anal. Chem. 1997. — V. 69, № 15. — p. 3022−3027.
  85. Государственная фармакопея СССР: вып. 1. Общие методы анализа/ МЗ СССР. 11 изд.- М.: Медицина, 1987. — 336 с.
  86. А.А., Пиотровский В. К. Фармакокинетические методы в биофармации: оценка биодоступности и пресистемной элиминации лекарственных средств// Итоги науки и техники. ВИНИТИ. Фармакология. Химиотерапевтические средства 1984. — Т. 14.-е. 114 224.
  87. Л.П., Позднев В. П., Орехович В. Н. Цистил-аминопептидаза эритроцитов человека// Докл. АН СССР. 1987. — Т. 293, № 3.- с. 728−731.
  88. Reid J.L., Rubin Р.С., Whiting В. Lecture notes on Clinical Pharmacology. International Edition, 1996. — 422 p.
  89. Houston J.B. Drug metabolite kinetics, in: Pharmacokinetics: Theory and Methodology./ Eds. M. Rowland, G.T. Tucker. U.K.: Pergamon Press, 1986.-p. 131−161.
  90. Oliver R.E., Jones A.F., Rowland M. A Whole-body physiologically based pharmacokinetic model incorporating dispersion concepts: short and long time characteristics// J. Pharmacokin. Pharmacodyn. 2001. — V. 28, № 1. -p. 27−55.
  91. Dyck L.E., Durden D.A., Boulton A.A. Conjugation of phenylacetic acid and m- and p-hydroxyphemylacetic acids in the rat striatum// Life Sci. — 1993. V. 53, № 11. — p. 901−909.
  92. Gudasheva Т., Pearlman R., Voronina Т., Seredenin S. Neuropharmacological properties of main DVD-Ill metabolite, cycloprolylglycine coinciding with endogenous cyclopeptide// Pharmacologist.- 2001. V. 44, № 2 (suppl. 1). — p. A 44.
  93. Elsworth J.D., Redmond D.E. Jr., Ruthven C.R., Sandler M. Phenylacetic acid production in dominant and non-dominant vervet monkeys// Life Sci. -1985. V. 37, № 18. — p. 1727 — 1730.
  94. Harrison L.E., Wojciechowicz D.Z., Brennan M.F., Paty P.B. Phenylacetate inhibits isoprenoid biosynthesis and suppresses growth of human pancreatic carcinoma// Surgery. 1998. — V. 124, № 3. — p. 541−550.
  95. Samid D., Hudgins W.R., Shack S., Liu L. Phenylacetate and phenylbytirate as novel, nontoxic differentiation inducers// Adv. Exp. Med. Biol. 1997. -400 A.-p. 501−505.
  96. Venzon D.J., Sartor A.O. Phase I and pharmacokinetic study of intravenous phenylacetate in patients with cancer// Cancer Res. 1994. — V. 54. — p. 1690−1694.
  97. T.A., Сколдинов А. П. Стратегия создания дипептидных нейропсихотропных лекарственных препаратов// Экспер. и клин, фармакол. 2003. — Т. 66, № 2. — с. 15−19.
  98. Marzo A. Open questions on bioequivalence: some problems and some solutions// Pharmacol. Res. 1999. — V. 40, № 4. — p. 359−368.
Заполнить форму текущей работой