Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Определение химических форм мышьяка и ртути в объектах окружающей среды

Диссертация: Определение химических форм мышьяка и ртути в объектах окружающей среды
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Предложен комплекс методик определения химических форм мышьяка (арсенаг-, аресенит-, монометиларсонати диметиларсинит-ионов) в природных и техногенных водах с применением биосенсорной системы, ВЭЖХ-ЭТА-ААС и метода капиллярного электрофореза с химической дериватизацией in-situ. Разработанные методики могут быть рекомендованы к использованию в практике рутинного анализа в аналитической… Читать ещё >

Определение химических форм мышьяка и ртути в объектах окружающей среды (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • ГЛАВА 1. СОВРЕМЕННЫЕ МЕТОДЫ ОПРЕДЕЛЕНИЯ МАКРО — И МИКРОЭЛЕМЕНТНОГО СОСТАВА ОБЪЕКТОВ ОКРУЖАЮЩЕЙ СРЕДЫ
    • 1. 1. Особенности и проблемы элементного анализа объектов окружающей среды
    • 1. 2. Определение микроэлементов в объектах окружающей среды
    • 1. 3. Матричные и межэлементные эффекты

Актуальность темы

.

Интерес человечества к изучению окружающего его мира обусловлен с одной стороны стремлением к более глубокому познанию природных процессов, а с другой стороны — к сохранению природы в первозданном состоянии. Важность последней проблемы год от года возрастает в связи с ростом антропогенной нагрузки на планету в результате интенсивной, нередко необоснованной*и агрессивной деятельности человека. Планирование действий, направленных на восстановление нарушенного экологического равновесия на Земле, базируется на знаниях о химическом составе компонентов живой природы. Особая роль в формировании антропогенной составляющей химического состава объектов окружающей среды принадлежит микроэлементам, т.к. именно они интенсивно эмитируются в процессе хозяйственной деятельности человека, перераспределяясь и концентрируясь при этом в природных средах. В свою очередь задача получения достоверной информации о содержании микрокомпонентов в атмосфере, гидросфере, литосфере и*биосфере неразрывно связана с необходимостью развития имеющихся и создания новых методов элементного и вещественного анализа, обеспечивающих возможность изучения сложных процессов трансформации и транспорта вещества в природе.

Определение суммарного содержания элемента, безусловно, важно с точки зрения получения первичных сведений о химическом составе природных сред, однако более информативным и существенным является знание об их вещественном составе, т. е. о химической форме, в виде которой элемент присутствует в исследуемом объекте.

По этой причине разработка методик определения микроэлементов в объектах окружающей среды на уровне вещественного анализа представляется важной и актуальной задачей современной аналитической химии.

Целью исследования является разработка методик определения химических форм мышьяка и ртути в объектах окружающей среды для целей рутинного анализа на уровне их содержаний в природных и техногенных системах, пригодных также и для целей рутинного анализа. В рамках поставленной цели решались следующие задачи:

— разработка методик анализа объектов окружающей среды для оценки уровней общего содержания и распределения макрои микроэлементов, в природных и техногенных системахобоснование подхода к выбору инструментальных методов вещественного анализа, ориентированных на максимальное упрощение аналитической процедуры и возможность реализации в лаборатории экологического профиля;

— изучение химических процессов, лежащих в основе формирования аналитических сигналов с целью оптимизации условий для достижения минимальных пределов обнаружения химических форм мышьяка и ртути, а также учета или устранения влияния состава пробы на результат анализаразработка новых методик определения химических форм мышьяка в водах и ртути в твердых объектах окружающей среды.

Научная новизна.

Разработаны и оптимизированы схемы определения химических форм мышьяка и ртути в объектах окружающей среды с применением специфических приемов, обеспечивающих их селективность.

Предложен подход, основанный на переведении химических форм мышьяка в производные с целью их высокочувствительного и избирательного спектрофотомет-рического детектирования.

Исследовано и экспериментально подтверждено одновременное образование гетерополикомплексов арсенат-, арсенитмонометиларсонати димети-ларсинит-ионов в растворах с содержанием мышьяка <10 мг/л. Установлен стехио-метрический состав и спектрофотометрические характеристики молибдомышьяковых комплексов определяемых химических форм мышьяка.

Оптимизированы условия разделения и спектрофотометрического детектирования форм мышьяка с применением метода капиллярного электрофореза.

Показана возможность использования биосенсорной системы-на основе бактерии Escherichia coli (E.coli) для детектирования химических форм мышьяка в водах. Подтверждена ее пригодность для селективного определения ионов арсенита и суммы арсенита и арсената в зависимости от типа субстрата.

Предложен новый подход к определению химических форм ртути с применением термического анализа в сочетании с атомно-абсорбционным детектированием. Оптимизированы и унифицированы условия их разделения и детектирования. Впервые показана применимость данного подхода для количественного определения химических форм ртути в твердых пробах природного и техногенного происхождения.

Практическая значимость.

Разработаны методики определения ряда микроэлементов в природных водах, донных осадках, атмосферных аэрозолях и осадках, а также в биологических объектах с применением ДПТ-АЭС. Изучено распределение микроэлементов в компонентах природной среды (водах, донных осадках, атмосферных аэрозолях) в зонах действия антропогенных источников.

Предложен комплекс методик определения химических форм мышьяка (арсенаг-, аресенит-, монометиларсонати диметиларсинит-ионов) в природных и техногенных водах с применением биосенсорной системы, ВЭЖХ-ЭТА-ААС и метода капиллярного электрофореза с химической дериватизацией in-situ. Разработанные методики могут быть рекомендованы к использованию в практике рутинного анализа в аналитической лаборатории, обладающей стандартной базой оборудования, для оценки реальной экологической ситуации в системе.

Разработанные методики определения мышьяка и его химических форм в природных и техногенных водах были применены для изучения процессов трансформации мышьяка в зонах действия источников его антропогенной эмиссии.

Предложена методика определения неорганических соединений ртути (П), солей монометилртути и сульфида ртути в твердых природных образцах (донных осадках, почвах, биологических объектах) с применением метода термического анализа в сочетании с ЭТА-ААС-детектированием.

Унифицированный метод прямого определения, солей ртути (П), монометилртути и сульфида ртути в твердых природных и биологических объектах может служить основой для создания анализатора с программируемым режимом нагрева атомизатора, пригодного для целей рутинного анализа.

Предложенный в работе метод определения химических форм pi-ути на основе термического анализа с атомно-абсорбционным детектированием применен для изучения ее распределения по формам в твердом веществе зоны Урского хвостохрани-лища.

Основные положениявыносимые на защиту: результаты исследований процесса образования гетерополианионов химических форм мышьяка с изополимолибдатом, способ их одновременного получения для ар-сенит-, арсенат-, монометиларсонат-, диметиларсинит-ионов и данные по изучению стехиометрии;

— результаты по оптимизация условий разделения и спектрофотометрического детектирования образующихся гетерополианионов с применением метода капиллярного электрофореза, а также способы устранения и учета влияния со стороны мешающих компонентов пробы;

— способ определения химических форм мышьяка в природных и техногенных водах в диапазоне концентраций 0,005 — 0,020 мг/л с применением капиллярного электрофореза с in-situ дериватизацией в присутствии молибдата со спектрофотометриче-ским детектированием их гетерополисоединений;

— экспресс-метод определения арсенит-иона и суммы арссниг-и арсенатионов на* уровне содержаний 0,01 мг/л в водах и водных вытяжках из твердых природных объектов с применением биосенсорной системы на основе E.coli.

— методика определения химических форм мышьяка (арсенат-, арсенит-, мономе-тиларсонати диметиларсинитионов) в техногенных водах на уровне содержаний 0,05−0,07 мг/л с применением ВЭЖХ и ЭТА ААС в качестве детектора;

— результаты исследований по оптимизации. и унификации условий формирования аналитических сигналов химических форм, содержащих ртуть (Hg2+, CH3Hg+ и HgS), и способ их определения в твердых природных объектах с применением термического атомно-абсорционного анализа на уровне концентраций от 0,02 до 0,07 мкг/г;

— результаты использования комплекса разработанных методик определения микроэлементного и вещественного состава' объектов окружающей среды для изучения трансформации мышьяка и ртути в условиях техногенеза.

Апробация работы. Основные результаты работы докладывались на Всероссийских конференциях «Аналитика Сибири и Дальнего Востока» (Новосибирск, 2000, 2004, Томск, 2008), «Экоаналитика» (Краснодар, 1994, Самара, 2006), Научно-практической конференции по капиллярному электрофорезу (С-Петербург, 2006), Всероссийских научных чтениях с международным участием, посвященных 75-летию со дня рождения члеиа-корреспондента АН СССР М. В. Мохосоева (Улан-Удэ, 2007), Всероссийской конференции «Геохимия биосферы» к 90-летию А.И. Пе-рельмана (Москва, 2006), Международных конференциях Asianalysis (Фукуока, 1997, Токио, 2001), Geoenvironment-97 (Стамбул, 1997), Гольдшмидтовской конференции (Тулуза, 1998), Российско-Германо-Украинском Симпозиуме по аналитической химии ARGUS (Одесса, 1999, Гамбург, 2003, Киев, 2005, Саратов, 2007) Международном симпозиуме по металломиксам ISM (Нагойя, 2007), Международной конференции «Экоаналитика Центральной Азии» (Алма-Ата, 2007).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано в соавторстве 64 работы, включая 28 статей, 3 аналитических обзора, 6 статей в материалах международных конференций и 27 тезисов докладов.

Личный вклад автора состоит в обосновании применяемых для решения поставленных задач подходов, их экспериментальном и практическом воплощении, участии во всех исследованиях, связанных с разработкой и практическим применением разработанных методик для изучения распределения микроэлементов в природных средах, а также трансформации и транспорта мышьяка и ртути в зонах действия антропогенных источников их эмиссии.

Работа выполнялась при финансовой поддержке проекта «Экологическая Безопасность России» (Определение химических форм мышьяка, селена и теллура в природных водах, 1995;1997), интеграционных проектов СО РАН «Геология и геофизика окружающей среды Сибири» (1997;2000), «Изучение современного техногенного загрязнения Байкальского региона и медико-генетическая оценка отдаленных последствий радиационных воздействий на его коренное население» (2003;2005), проектов РФФИ (2005;2008).

Структура и объем диссертации

Работа состоит из введения, 8 глав, заключения, выводов, списка литературы (420 наименований) и приложения. Объем работы 312 страниц, включая 35 таблиц и 80 рисунков.

выводы.

1. Предложен и обоснован подход для разработки методик определения химических форм мышьяка в водах и ртути — в твердых природных образцах, ориентированный на использование молекулярной и атомной спектрометрии, как способа детектирования в режимах on-line и off-line.

2. Экспериментально подтверждено одновременное образование гетерополикомплек-сов арсенат-, арсенитмонометиларсонати диметиларсинит-ионов в растворах с содержанием мышьяка <10 мг/л в присутствии мол ибдат-иона. Установлен стехиомет-рический состави спектрофотометрические характеристики молибдомышьяковых комплексов определяемых химических форм мышьяка, показана возможность их аналитического применения в интервале концентраций аналитов 0,005−5,0 мг/л. Впервые обнаружено образование гетерополикомплекса мышьяка (Ш) с молибдатом, отвечающего стехиометрии ASM04.

3. Обоснованы и оптимизированы параметры разделения и спектрофотометрического детектирования гетерополисоединений химических форм мышьяка, образующихся непосредственно в капилляре в процессе разделения аналитов с применением метода капиллярного электрофореза. Исследованы и реализованы способы учета и устранения влияний матрицы пробы, за счет снижения электропроводности пробы при введении добавки-органического растворителя и использования эффекта изотахофоретиче-ского концентрирования аналитов.

4. Изучена возможность применения биосенсорной системы на основе E. coli для детектирования I химических форм мышьяка в водах. Показано, что подобная система применима для селективного определения арсенит-иопа и суммы арсенити арсенат-ионов в зависимости от типа субстрата. На основе данной системы предложен способ изготовления экспресс-теста (биосенсора) для полуколичественного определения неорганических соединений мышьяка в водах.,.

5. Разработан и апробирован для практического применения комплекс методик определения химических форм мышьяка в природных и техногенных водах, основанный на применении спектрофотометрического детектирования в атомном и молекулярном вариантах в сочетании^ разделением методами ВЭЖХ и КЭ, а также без разделения — с использованием цельноклеточной биосенсорной системы.

6. Обоснована, исследована и экспериментально подтверждена перспективность использования термического анализа для разделения солей Hg2+, CH3Hg+ и HgS в сочетании с атомно-абсорбционным детектированием. Изучено влияние основных параметров процесса (скорости потока газа-носителя и скорости нагрева образца) на эффективность разделения аналитов и величины их сигналовпредложен способ унификации аналитической процедуры с целью устранения влияния матрицы пробы на результат анализа. Показана применимость данного подхода для количественного определения химических форм ртути в твердых пробах природного и техногенного происхождения.

7. Разработана и апробирована на реальных техногенных объектах методика определения солей ртути (II), монометилртути и сульфида ртути в твердых природных и биологических образцах методом термического анализа с атомно-абсорбционным детектированием на уровне концентраций 0,02−0,07 мкг/г с относительной погрешностью 0,14−0,25.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В настоящей работе изучены закономерности формирования аналитических сигналов химических форм мышьяка и ртути при реализации гибридных и комбинированных схем определения химических форм мышьяка и ртути, представляющих собой сочетание эффективных приемов разделения аналитов и элемент-селективных и неселективных методов детектирования.

В результате были предложены подходы, в основе которых лежат различные способы, позволяющие обеспечить селективное определение аналитов даже при использовании неселективных детекторов.

Разработанные с применением данных подходов методики определения химических форм мышьяка и ртути в объектах окружающей среды были использованы для изучения их трансформации в реальных системах, подвергающихся техногенному воздействию.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Г. С., Ческис А. Б. Вода. Контроль химической, бактериальной и радиационной безопасности по международным стандартам. Справочник. М, 1992. 89с.
  2. ИСО 5667- 5: 1991. Качество воды. Отбор проб. Часть 5. Руководство по отбору проб питьевой воды и воды, предназначенной для производства пищевых продуктов и напитков.
  3. ПМС 5667- 10. Качество воды. Отбор проб. Часть 10. Руководство по отбору сточных вод.
  4. Sansoni В. Multi-element analysis for environmental characterization// Pure and Appl. Chem. 1987. V.59. P.579 610.
  5. P.A. Морская химия. M: Мир. 1972. 398с.
  6. Florence Т.М., Battley G.E. Determination of the chemical forms of trace metals in natural waters with special reference to copper, lead, cadmium and zinc// Talanta. 1977. V.24. P. 157- 158.
  7. Э.А., Волкова B.H. Инверсионная вольтамперометрия с УФ- облучением. Механизм дезактивации растворенного кислорода// Журн. аналит. химии. 1985. Т.39, №.4. С.536−541.
  8. Dorten W., Valenta P., Nurnberg H.W. A new photodigestion device to decompose or-ganics in water // Fresenius Z. Anal. Chem. 1984. V.317. №.3. P.264−272.
  9. Sturgeon R.E., Willie S.N., Zheng J., Kudo A., Gregoire D.C. Determination of ultratrace level of heavy metals in arctic snow by electrothermal vaporization inductively coupled plasma mass spectrometry // J.Anal.At.Spectrom. 1993. V.8, № 8. P.1053−1058.
  10. A.A., Танеев A.A., Немец B.M. Перспективы аналитической атомной спектрометрии //Успехи химии. 2006. Т.75, № 4. С.322- 338.
  11. Balaram V. Characterization of trace elements in environmental samples by ICP-MS // Atomic Spectrosc. 1993. V.14, №.6. P. 174−179.
  12. Broekaert J.A.C. Use of ICP atomic spectrometry for for water analysis // Tech.Mess. 1992. V.59. P.147.
  13. Salomon S., Jenne V., Hoenig M. Practical aspects of routine trace element environmental analysis by inductively coupled plasma-mass spectrometry // Talanta. 2002. V.57. P.157−168.
  14. Jickells Т., Kane M.M. Application of inductively coupled plasma techniques and pre-concentration to the analysis of atmospheric precipitation // Anal. Proc. 1992. V.29. P.288−296.
  15. Yamasaki S." Tsumura A. Lanthanoids and actinoids in terrestrial water in Japan as determined by high-resolution ICP-MS with an ultrasonic nebulizer// Anal. Sci. 1991.1. V. 7. P. 1135−1138.
  16. Tsumura A., Yamasaki S. Direct determination of rare earth elements and actinoids in fresh water by double-focusing and high resolution ICP-MS // Radioisotopes. 1992. V. 41. P. 185- 190.
  17. FeldmanL, Jakubowski N., Thomas C., Stuewer D. Application of a hexapole collision and reaction cell in ICP-MS Part II: Analytical figures of merit and first applications // Fre-senius J. Anah Chem. 1999. V.365. P. 422−428.
  18. Hoffmann E., Ludke C., Stephanowitz H. Application of Laser-ICP-MS in environmental analysis // Fresenius J'. Anal. Chem. 1996. V.355. P.900−903.
  19. Betti M., de las Heras E.A. Glow disarge discharge spectrometry for the characterization of nuclear and radioactively contaminated environmentabsamples // Spectrochim. Acta, Part B. .2004. V.59. P.1359−1376.
  20. Grotti M., Magi E., Leardi R. Selection of internal standards in inductively coupled plasma- atomic emission spectrometry by principal component analysis // J. Anal. At. Spectrom. 2003. V.18, № 3. P. 274−281.
  21. Hislop J. E., Hornbeck J. W. Coping with Effects of High Dissolved Salt Samples on the Inductively Coupled Plasma Spectromete r// Commun. Soil Sci. Plant Anal. 2002. V.33. P. 3377−3388.
  22. Isoyama H., Uchida Т., Nagashima Т., Ohira O. Modified Babington Nebulizer for Inductively Coupled Plasma Atomic Emission Spectrometry // Anal. Sci. 2003. V. 19, № 4. P. 593−597.
  23. Mikolas J., Musil P, Stuchlikova V., Novotny K., Otruba V., Kanicky V. Infrared laser ablation study of pressed soil pellets with inductively coupled plasma atomic emission spectrometry // Anal. Bioanal. Chem. 2002. V. 374,№ 2. P. 244−250.
  24. Suyanto H., Kurniawan H., Lie Т. J., Tjia M.O., Kagawa K. Application of laser plasma confinement and bending effect for direct analysis of powder sample // Spectro-him. Acta, Part B. 2002. V. 57, № 8. P. 1325.-1332.
  25. Rosenkranz В., Bettmer J. Microwave-induced plasma-optical emission spectrometry -fundamental aspects and applications in metal speciation analysis // Tr. AC, Trends Anal. Chem. 2000 V.19. P. 138−156.
  26. Yang W.J., Zhang H.Q., Yu A.M., Jin Q.H. Microwave plasma torch analytical atomic spectrometry // Microchem. J. 2000 V.66. P. 147 170.
  27. Falk H. FANES- New decision in AES // Spectrochim. Acta. 1977. V.32B. P.437.
  28. Geiss S., Einax J., Mohr J., Danzer K. FANES- Test of applicability fo the etermination of heavy metals in river waters//Fresenius J.Anal.Chem. 1990. V.338. P.602−605.
  29. А.И., Чумакова II.JI. Определение микроэлементов в незагрязненных природных водах байкальского региона методом атомно-эмиссионной спектрометрии //Журн. аналит. химии. 1995. Т.50, № 10. С. 1090−1095.
  30. Mitchell P.G., Sneddon J. Direct determination of metals in milligram masses and microliter volumes by direct current argon plasma emission spectrometry with sample introduction by electrothermal vaporisation // Talanta. 1987. V.43. P.849−853.
  31. B.H., Арсентьев H.C., Николаев А. Г. Об изменении напряженности электрического поля в столбе дугового разряда // Журн. прикл. спектроск. 1973. Т. 18. С.723−726.
  32. А.И. Основы атомного спектрального анализа. СПб.: Изд-во СПбУ, 2000. 199 с.
  33. Н.П., Шелпакова И. Р., Герасимов В. А. Атомно-эмиссионное определение микроэлементов в порошковых пробах разной природы с возбуждением спектров в двухструйном дуговом плазмотроне // Журн. аналит. химии. 2003. Т.58. С. 254 -261.
  34. А.С., Полякова Г. Е. Атомно-эмиссионное спектрографическое определение валового содержания таллия в почвах с дуговым аргоновым двухструнным плазматроном // Журн. аналит. химии. 2005. Т.60. С. 165 170.
  35. B.JI. Спектральный анализ с горячим полым катодом: Автореф. дис. канд. хим. наук. Новосибирск, 1980. 32с.
  36. Shi-Kit Chan, Hsiaoming Tan, Montaser A. Tandem helium plasma spectrometry with a capacitively coupled discharge formed above a helium ICP // Appl.Spectroscopy. 1989. V.43, № 1. P.92−95.
  37. Н.Ф. Инверсионно-вольтамперометрические методы определения ртути и ряда тяжелых металлов в природных объектах.// Аналитический обзор: Поведение ртути и других тяжелых металлов в экосистемах. Новосибирск. ГПНТБ- ИВЭП СО РАН. 1989: С.74- 112.
  38. А.А., Пикула Н. П., Хустенко Л. А. Анализ природных и сточных вод электрохимическими методами // Методы анализа объектов окружающей среды. Новосибирск: Наука. 1988. С.87- 142.
  39. Sivakumar V., Ernyei L., Obenauf R. H. Matrix effects in ICP-AES analysis // Atomic spectroscopy. 2007. Advertising supplement. The application notebook. September 2007.
  40. Pan F.M., Tyson J.F. Real and composite emission lines as internal standards in the determination of As, Se and Sb by inductively coupled plasma optical emission spectrometry // J. Anal. Atomic Spectr. 2007. V.22. P. 377−385.
  41. Linge K.L. Recent development in trace element determination by ICP-AES and ICP-MS with particular reference to geological and environmental samples// Geostandards Geoanal. Res. 2005. V.29. P.7−22.
  42. Linge K.L. Trace element determination by ICP-AES and ICP-MS: developments and applications reported during 2004 and 2005 // Geostandards Geoanal. Res. 2006. V.30. P.157−174.
  43. Linge K.L. Trace element determination by ICP-AES and ICP-MS: developments and applications reported during 2006 and 2007// Geostandards Geoanal. Res. 2008. V.32. № 4. P.453−468:
  44. A.K. Основы количественного спектрального анализа руд и минералов. М.:Недра, 1978. 400с.
  45. А. А., Пушкарева Е. А. Корреляционный спектральный анализ веществ. Анализ конденсированной фазы. Санкт-Петербург: Химия. 1993. 344с.
  46. JI.H. В кн.: Новые методы спектрального анализа. Новосибирск: Наука. 1983. С.86−88
  47. А.Г., Калмаков А. А., Царев В. И. // Журн прикл. спектроск. 1977. Т.26, № 5. С.809−814.
  48. Environmental Inorganic Chemistry. Ed. Irgolic К. J., Martell A.E. Florida: VCH Publisher. IDB. 1985. 380p.
  49. Quevauviller Q-, Morabito R. Evaluation of extraction recoveries for organometallic determinations in environmental matrices// TrAC-Trends Anal-. Chem. 2000. V. 19. P. 86−96.
  50. В.И: Белеванцев В. И, ПещевицкийБ.И. Исследование сложных равновесий в растворе. Новосибирск: Наука. 1978. 354с.
  51. Ebdon L., Hill S., Ward R.W. Directly coupled chromatography- atomic spectroscopy. Part 2. Directly colupled liquid chromatography- atomic spectroscopy. A review // Analyst. 1987. V.112,№.l.P.l- 16.
  52. Gong Z., Lu X., Ma M., Watt C., Le X.C. Arsenic speciation analysis // Talanta. 2002. V. 58, № l.P. 77−96.
  53. Bowell R.J., Morley N.H., Din V.K. Arsenic speciation in soil porewaters from the Ashanti Mine, Ghana//Appl. Geochem. 1994. V. 9, № 1. P. 15−22.
  54. Van Elteren J.T., Stibilj V., Slejkovec Z. Speciation of inorganic arsenic in some bottled Slovene mineral waters using HPLC-HGAFS and selective coprecipitation combined with FI-HGAFS // Water Res. 2002. V. 36, № 12. P. 2967−2974.
  55. Landner Ed. L. Chemicals in the aquatic environment. Berlin: Springer-Verlag. 1989. 350 p.
  56. Wei X., Brockhoff-Schwegel'C.A., Creed J.T. A comparison of urinary arsenic speciation via direct’nebulization and o-line photo-oxidation-hydride generation with 1С separation and ICP-MS detection // J. Anal. At. Spectrom. 2001. V. 16, № 1. P. 12−19.
  57. Herce-Pagliai C., Camean A., Repetto M. Toxicological interest in the speciation of arsenic // Rev. Toxicol. 1998. V. 15, № 1. P. 3−11.
  58. Tezuka M., Hanioka K., Yamanaka K., Okada S. Gene damage induced in human alveolar type II (L-132) cells by exposure to dimethylarsenic acid // Biochem. Biophys. Res. Comm: 1993. V 191. P. 1178−1183.
  59. Zhao C, Young M, Diwan B, Coogan T, Waalkes M. Association of arsenic-induced malignant transformation with DNA hypomethylation and aberrant gene expression // Proc. Nat-. Acad. Sci. 1997. V. 94. P. 10 907−10 912.
  60. Cullen W., McBride В., Reglinski J. The reduction of trimethylarsine oxide to trimethy-larsine by tiols: a mechanistic model for the biological reduction of arsenicals // J. Inorg. Biochem. 1984. V.21. P. 45−60, 179−194.
  61. Lin S, Cullen W, Thomas D, Methylarsenicals and arsinothiols are potent inhibitors of mouse liver thioredoxinireductase// Chem. Res. Toxicol. 1999. V. 12. P. 924−930.
  62. Le С, Ma M, Lu X, Cullen W, Aposhian V, Zheng B. Determination of monomethylarsonous acid, a kea arsenic methylation intermediate, in human urine // Env. Health. Pers. 2000. V. 108- № 11. РЛ015−1018.
  63. Koellensperger G., Nurmi-J., Hann S., Stingeder G., Fitz W.J., Wenzel W.W. CE-ICP-SFMS and HPLC-ICP-SFMS for arsenic speciation in-soil solutionand soil’water extracts // J. Anal. At. Spectrom. 2002. V. 17, № 9. P. 1042−1047.
  64. Herce-Paglial C., Camean A., Repetto M. Toxicological interest in the speciation of arsenic//Rev. Toxicol. 1998. V.15, № 1. P.3−11.
  65. Vahter, M., Marafante, E., Dencker, L. Metabolism of arsenobetaine in mice, rats and rabbits // Sci. Total Environ. 1983. V.266, №> 30. P. 197−211.
  66. Mandal B.K., Ogra Y., Suzuki K.T. Speciation of arsenic in human nail and hair from arsenic-affected area by HPLC-inductively coupled argon plasma mass spectrometry // Toxicol. Appl. Pharmacol. 2003. V. 189, № 2. P. 73−83.
  67. Mandal B.K., Suzuki K.T. Arsenic round the world: a review // Talanta. 2002. V. 58, № 1. P. 201−235.
  68. ГН 2.1.5.1315−03. Предельно допустимые концентрации химических веществ в воде хоз-питьевого и культурно- бытового водопользования.
  69. Turpeinen R., Pantsar-Kallio М., Kairesalo Т. Role of microbes in controlling the speciation of arsenic and production of arsines in contaminated soils// Sci. Total Environ. 2002. V. 285 P.133−145.
  70. Villa-Lojo M.C., Beceiro-Gonzalez E., Alonso-Rodriguez E., Prada-Rodriguez D: Arsenic speciation in marine sediments. Effects of redox potential and reducing conditions // Int. J. Environ. Anal. Chem. 1998. V. 68- № 3. P. 377−389.'
  71. Chowdhury U. K., Biswas В. K, Chowdhury T. R. et al. Groundwater" Arsenic Contamination in* Bangladesh and West Bengal, India // Environ. Health Perspect. 2000. V. 108. P. 393−397.
  72. Mattigod S. V. Chemical equilibrium and reaction models: applications and future trends. In: Chemical equilibrium and reaction models. Eds. Loeppert R. H. et al. SSSA Spec. Publ. Madison. WI.Mattigod. 1995. Vol.42. P. l-4.
  73. Harris W. R. Equilibrium-model for speciation of aluminum in serum// Clin. Chem. 1998. V. 38. P. 1809−1811.
  74. Qian J. H., Xue B. Sigg L., Albrecht A. Complexation of cobalt by natural ligands in freshwater//Environ. Sci. Techn. 1992. V. 32. P. 2043−2050.
  75. Lindemann Т., Prange A., Dannecker W., Neidhart B. Stability studies of arsenic, selenium, antimony and tellurium species in water, urine, fish and soil extracts using HPLC/ICP-MS // Fresenius' J. Anal. Chem. 2000. V. 368, № 2−3. P. 214−220.
  76. Jokai Z., Hegoczki J., Fodor P. Stability and optimization of extraction of four arsenic species//Microchem. J. 1998. V 59, 3 l.P. 117−124.
  77. Le X. Ch., Yalcin S., Ma M. Speciation of submicrogram per liter levels of arsenic in water: on-site species separation integrated with sample collection// Environ. Sci. Technol. 2000. V.34, № 11. P. 2342−2347.
  78. Huang H., Dasgupta P.K. A field-deployable instrument for the measurement and speciation of arsenic in potable water// Anal. Chim. Acta. 1999. V.380, № 1, P.27 37.
  79. Feeney R., Kounaves. S.P. On-site analysis of arsenic in groundwater using a microfab-ricated gold ultramicroelectrode array // Anal. Chem. 2000. V. 72, № 10. P. 2222−2228.
  80. Amankwah S., Fasching J. Separation and determination of arsenic (V) and arsenic (III) in sea water by solvent extraction and atomic absorption spectrophotometry by the hydride generation technique // Talanta. 1985. V.32, №.2. P. l 11- 114.
  81. Shraim A., Chriswell В., Olszowy H. Speciation of arsenic by hydride generation-atomic absorption spectrometry (HG-AAS) in hydrochloric acid reaction medium // Talanta.1999. V. 50, № 5. P. 1109−1127.
  82. Shraim A., Chriswell BF., Olszowy H. Use of perchloric acid as a reaction medium for speciation of arsenic by hydride generation-atomic absorption spectrometry // Analyst.2000. V. 125, № 5. P! 949−953.
  83. Howard A.G., Salou C. Arsenic speciation by cryogenic trap hydride generation atomic absorption spectroscopy: performance enhancement by pre-derivatization // J. Anal. At. Spectrom. 1998. V. 13, № 7. P. 683−686.
  84. TalmhY., Norvell V.E. Determination of arsenic and antimony in environmental samples using gas chromatography with a microwave emission spectrometric system // Anal. Chem. 1975. V. 47, № 9. P. 1510−1516.
  85. Claussen F.A. Arsenic speciation of aqueous environmental samples by derivatization with thioglycolic acid methylester and capillary gas-liquid chromatography-mass spectrometry // J. Chromatogr. Sci. 1997. V. 35, № 12. P. 568−572.
  86. Le X.C., Ma M. Speciation of arsenic compounds by using ion-pair chromatography with atomic spectrometry and mass spectrometry detection // J. Chromatogr. A. 1997.1. V. 764, № l.p. 55−64.
  87. Morin P., Amran M.B., Favier S., Heimburger R., Leroy M. Speciation of arsenical species by anion-exchange and ion-pair reversed-phase liquid chromatography // Fresenius" J. Anal. Chem. 1991. V. 339. P.504−509.
  88. Londesborough S., Mattusch J., Wennrich R. Separation of organic and inorganic arsenic species by HPLC-ICP-MS // Fresenius J. Anal. Chem. 1999. V. 363. P. 577 581.
  89. Falk K., Emons H. Speciation of arsenic compounds by ion-exchange HPLC-ICP-MS with different nebulizers// J. Anal. At. Spectrom. 2000. V. 15, № 6. P.643 649 .
  90. Day J.A., Montes-Bayon M., Vonderheide A.P., Caruso J.A. A study of method robustness for arsenic speciation in drinking water samples by anion exchange HPLC-ICP-MS // Anal. Bioanal. Chem. 20 021 V. 373, № 7. P. 664−668.
  91. Vilano M., Padro A., Rubio R. Coupled techniques based on liquid chromatography and atomic fluorescence detection for arsenic speciation // Anal. Chim. Acta. 2000. V.411,№> 1−2. P. 71−79.
  92. Не В., Jiang G., Xu Xiao-bai. Arsenic speciation based on ion exchange high-performance liquid chromatography hyphenated with hydride generation atomic fluorescence and on-line UV photo oxidation // Fresenius" J. Anal. Chem. 2000. V368,8 P. 803 808.
  93. McSheehy S., Szpunar J. Speciation of arsenic in edible algae by bi-dimentional size-exclusion anion exchange HPLC with dual ICP-MS and electrospray MS/MS detection // J. Anal. At. Spectrom. 2000. V. 15, № 1. P. 79−87.
  94. Yehl P.M., Tyson J.F. Towards speciation of arsenic in a standard reference river sediment by high-performance ion chromatography coupled with plasma source mass spectrometry // Anal. Commun. 1997. V. 34, № 2. P. 49−51.
  95. Jackson B.P., Bertsch P.M. Determination of arsenic speciation in poultry wastes by IC-ICP-MS ion chromatography-inductively coupled plasma mass spectrometry. // Environ. Sci. Techn. 2001. V. 35, № 24. P. 4868−4873.
  96. Fitzpatrick S., Ebdon L., Foulkes M.E. Separation and detection of arsenic and selenium species im environmental samples by HPLC-ICP-MS // Int. J. Environ. Anal. Chem. 2002. V. 82, № 11−12. P. 835−841.
  97. Lintschinger J., ScharmeluP., Hatalak-Rauscher A., Wendler I., Michalke B. A new method for the analysis of arsenic species in urine by using HPLC-ICP-MS // Fresenius’J. Anal. Chem. 1998. V. 362, № 3. P. 313−318.
  98. Chausseau M., Roussel C., Gilton N., Mermet J.M. Optimization of HPLC-ICP-AES for the determination of arsenic species // Fresenius" J. Anal. Chem. 2000. V. 366, № 5 P. 476−480.
  99. Brisbin J.A., Hymer C., Caruso J.A. A gradient anion exchange chromatographic method for the speciation of arsenic in lobster tissue extracts // Talanta. 2002. V. 58, № 1. P. 133−145.
  100. Chatterjee A., Shibata Y., Yoshinaga J., Morita M. Application of a nitrogen microwave-induced plasma mass spectrometer as an element-specific detector for arsenic speciation analysis//J. Anal. At. Spectrom. 1999. V. 14, № 12. P. 1853 1859.
  101. Suzuki K.T., Mandal B.K., Ogra Y. Speciation of arsenic in body fluids // Talanta. 2002. V. 58, № l.P. 111−119.
  102. McSheehy S., Pohl P., Lobinski R., Szpunar J. Investigation of arsenic speciation in oyster test reference material by multidimensional HPLC-ICP-MS and electrospray tandem mass spectrometry (ES-MS-MS) // Analyst. 2001. V. 126, № 7. P. 1055−1062.
  103. Sur R., Begerow J., Dunemann L. Determination*of arsenic species in human urine using HPLC with online photooxidation or microwave-assisted oxidation combined with flow-injection HG-AAS // Fresenius' J. Anal. Chem. 1999. V. 363, № 5−6. P. 526−530.
  104. Dagnac Т., Padro A., Rubio R., Rauret G. Spesiation of arsenic in mussels by the coupled system liquid chromatography-UV irradiation-hydride generation-inductively coupled plasma mass spectrometry // Talanta. 1999. V. 48, № 4 P. 763−772.
  105. Sakai Т., Date Y., Inoue Y. Simultaneous speciation of arsenic species in environmental and biological samples using cation exchange chromatography-ICP-MS with acidic mobile phase. Kogyo Yosui. 1999.' V. 493, № 9. P. 14.
  106. Feldmann J., John K., Pengprecha P. Arsenic metabolism in seaweed-eating sheep from Northern Scotland // Fresenius" J. Anal. Chem. 2000. V. 368, № 1. P. 116 121.
  107. Moldovan M., Gomez M.M., Palacios M.A., Camara C. Arsenic speciation, in water and human urine by HPLC-ICP-MS and HPLC-MO-HG-AAS // Microchem. J. 1998. V. 59, № 1. P. 89−99.
  108. Руководство по капиллярному электрофорезу. Перевод: Вартапетян Р. Ш., Ред. Волощук A.M., рецензент Назимов И. В. Москва. 1996. 23 I.e.
  109. Baker Dale R. Capillary electrophoresis. John Wiley & Sons. 1995. P. 19 50.
  110. Gil E. Pinilla, Ostapczuk P., Emons H. Determination of arsenic species by field amplified injection capillary electrophoresis after modification of the sample solution with methanol // Anal. Ghim. Acta. 1999.- V.389, № 1 3. P. 9 — 19.
  111. Timerbaev A. R. Inorganic biological analysis by capillary electrophoresis // Analyst. 2001. V. 126. P. 964−981.
  112. Van den Broeck K., Vandecasteele C. Capillary electrophoresis for the speciation of arsenic// Mikrochim. Acta. 1998. V. 128, № 1 2. P. 79 — 85.
  113. Van Holderbeke M." Zhao Y., Vanhaecke F., Moens L., Dams R., Sandra P. Speciation. of six arsenic compounds using capillary electrophoresis-inductively coupled plasma mass spectrometry // J. Anal. At. Spectrom. 1999. V.14, № 2. P.229 234.
  114. Albert’M., Debusschere L., Demesmay C., Rocca J. L. Large-volume stacking for quantitative analysis of anions in capillary electrophoresis. I. Large-volume stacking with polarity switching // J. Chromatogr. A. 1997. V. 757. P. 281 289.
  115. Krivankova L., Vrana A., Gebauer P., Bocek P. On-line isotachophoresis-capillary zone electrophoresis versus sample self stacking capillary zone electrophoresis. Analysis of hippurate in serum // J. Chromatogr. A. 1997. V.772. P.283 295.
  116. Tu Ch., Lee H. K. Determination of nitrate in seawater by capillary zone electrophoresis with chloride-induced sample selph-stacking // J. Chromatogr. A. 2002. V.966. P 205 -212.
  117. Vanifatova N. G., Spivakov B. Ya., Mattusch J., Wennrich R. Sensitive determination of arsenite by capillary zone electrophoresis with direct photometric detection // J. Capillary Electrophor. 1997, V. 4, № 2. P. 91 96.
  118. Del Carmen M., Millan-Gonzalez M., Castilla-Cortazar I. The feasibility of using speciation techniques for arsenic in water and soils // Agrochimica. 1996. V. 40, № 5 6. P. 241 -246.
  119. Torralba R., Bonilla M., Perez-Arribas L. V., Palacios M. A., Camara C. Comparison of three multivariate calibration methods as an approach to arsenic speciation by HG-AAS // Mikrochim. Acta. 1997. V. 126, № 3−4. P. 257 262.
  120. Guerin Т., Molenat N., Astruc A., Pinel R. Arsenic speciation in some environmental samples: a comparative study of HG-GC-QFAAS and HPLC-ICP-MS methods // Appl. Or-ganomet. Chem. 2000. V.14, № 8. P.401 404.
  121. Ipolyi Ildiko., Fodor Peter. Development of analytical systems for the simultaneous determination of the speciation of arsenic As (III), methylarsonic acid, dimethylarsinic acid,
  122. As (V). and selenium Se (IV), Se (VI)] // Anal. Chim. Acta. 2000. V. 413, № 1 2. P. 13 -23.
  123. Woller A., Mester Z., Fodor P. Determination of arsenic species by high-performance liquid chromatography ultrasonic nebulization atomic fluorescence spectrometry // J Anal Atom Spectrom. 1995. V. 10, № 9. P.609−613.
  124. Ebdon L., Fitzpatrick S., Foulkes M. E. The speciation of arsenic compounds // Che-mia Analityczna. 2002. V. 47, № 2. P. 179 1881
  125. Kasia Polec-Pawlak, Maciej Jarosz. Interfaces for capillary electrophoresis connected to inductively coupled plasma mass spectrometry detector development and applications// Chemia Analityczna. 2002. V. 47, № 6. P. 783 — 805.
  126. Beauchemin D., SiuK. W. M., McLaren J. W., Berman S. S. Determination of arsenic species by high-performance liquid chromatography-inductively coupled plasma mass spectrometry // J. Anal. Atom. Spectrom. 1989. V.4, № 3. P. 285 289.
  127. Pantsar-Kallio M., Manninen P. K. G. Optimizing ion chromatography-inductively coupled plasma mass spectrometry for speciation analysis of arsenic, chromium and bromine in water sample s// Int. J. Environ. Anal. Chem. 1999. V. 75, № 1−2 P. 43 55.
  128. Xie Q., Kerrich R., Irving E., Liber K., Abou-Shakra F. Determination of five arsenic species in aqueous samples by HPLC coupled with a hexapole collision cell ICP-MS // J. of Analyt. At. Spectrom. 2002. V.17 № 9. P. 1037 1041.
  129. Lamble Kathryn J., Hill Steve. Arsenic speciation in biological samples by online high performance liquid chromatography-microwave digestion-hydride generation-atomic absorption spectrometry //. Anal. Chim. Acta. 1996. V. 334, № 3. P. 261 270.
  130. Zhang X., Cornells R., de Kimpe J., Mees L. Speciation of toxicologically important arsenic species in human serum by liquid chromatography-hydride generation atomic absorption spectrometry // J. Anal. At. Spectrom. 1996. V. 11, № 11. P. 1075 1079.
  131. Howard A. G., Hunt L. E. Coupled photooxidation-hydride AAS detector for the HPLC of arsenic compounds // Anal. Chem. 1993 V. 65. P. 2995 2998.
  132. Ludke Ch., Hoffmann E., Skole J., Ullrich E. Solar blind photocell a simple element specific detector in Hg, As and. Se speciation // Fresenius" J. Anal. Chem.2000. V.366, № 2. P.204 — 208.
  133. Bohari Y., Astruc A., Astruc M., Cloud J. Improvements of hydride generation for the speciation of arsenic in natural freshwater samples by HPLC-HG-AFS // J. Anal. At. Spectrom. 2001. V. 16, № 7. P. 774−778.
  134. Muller J. Determination of inorganic arsenic (III) in ground water using hydride generation coupled to ICP-AES (HG-ICP-AES) under variable sodium boron hydride (NaBH4) concentrations // Fresenius J. Anal. Chem. 1999* V. 363. P. 572 576.
  135. Gomez-Ariza J.L., Sanchez-Rodas D., Giraldez I., Morales E. A comparison between ICP-MS and AFS detection for arsenic speciation in environmental samples // Talanta. 2000. V. 51, № 2. P. 257−268.
  136. Greschonig H., Schmid M.G., Guebitz G. Capillary electrophoretic separation of inorganic and organic arsenic compounds // Fresenius" J. Anal. Chem. 1998. V. 362, № 2. P. 218−223.
  137. Albert M., Demesmay C., Rocca J.L. Analysis of organic and non-organic arsenic or selenious compounds by capillary electrophoresis // Fresenius J. Anal. Chem. 1995.1. V. 351. P. 426−432.
  138. Zhang P., Xu G., Xiong J., Zheng Y., Yang Q., Wei F. Determination of arsenic species by capillary zone electrophoresis with large-volume field-amplified stacking injection // Electrophoresis. 2001. V. 22, № 16. P. 3567 3572.
  139. Naidu R., Smith J., Me Laren R.G. Stevens D.P. Sumner M.E. Jackson P.E. Application of capillary electrophoresis to anion speciation in soil water extracts: II. Arsenic // Soil Sci. Soc. Am. J. 2000. V. 64, № 1. P. 122 128.
  140. Yanifatova N. G., Spivakov B. Ya., Mattusch J., Wennrich R. Separation of arsenic and selenium species by capillary zone electrophoresis in a coated capillary // J. AOAC Int. 1999. Y.82.P. 1587−1593.
  141. Huang Yu-Min, Whang Chen-Wen. Capillary electrophoresis of arsenic compounds with indirect fluorescence detection // Electrophoresis. 1998. Y.19, № 12. P.2140 2144.
  142. Zhang P., Xu G., Xiong J., Zheng Y., Yang Q., Wei F. Capillary electrophoretic analysis of arsenic species with indirect laser induced fluorescence detection // J. Separ. Sci. 2002. V. 25, № 3. P.155 159:
  143. Hudson-Edwards K. F., Jamieson H. E., Charnock J. M., Macklin M. G. Arsenic speciation in waters and sediments of ephemeral floodplain pools, Rios Agrio-Guadiamar, Az-nalcollar, Spain //Chem. Geology. 2005. Y.219, № 1−4. p.175−192.
  144. Yin Xue-Bo, Yan Xiu-Ping, Jiang Yan, He Xi-Wen. On-line coupling of capillary electrophoresis to hydride generation atomic fluorescence spectrometry for arsenic speciation analysis // Anal. Chem. 2002. V. 74, №. 15. P. 3720 3725.
  145. Pal A., Jana N. R., Sau Т. K., Bandyopadhyay M., Pal T. Spectrofluorimetric determination of arsenic in water samples // Anal. Commun. 1996. V. 33, № 9,. P.315 317.
  146. H. M., Билоченко В. А. Хемилюминесцентные реакции для определения мышьяка (V) в виде гетерополисоединений // Журн. аналит. химии. 1977. Т.32., вып. 11. С. 2177−2181.
  147. Аналитическая химия элементов. Мышьяк. А. А. Немодрук, Москва 1976. с. 244.
  148. . Е., Цыганок JI. П., Стаценко В. П. Спектрометрическое исследование арсеновольфраматов в растворе // Журн. аналит. химии. 1971. Т. 26. № 8. с. 1576−1579
  149. Е. П., Кожанова Л. А., Шамовский Г. Г. Определение арсенаг-иона в водных растворах на хроматографе «Милихром» с постколоночным переводом в производные // Журн. аналит. химии. 1997. Т. 52, № 7. С. 741−745.
  150. R. L., Aldstadt J. Н. Quantitative trace-level speciation of arsenic and arsenate in drinking water by ion chromatography // Analyst. 2002. V. 127,№ 10. P.1305 1311.
  151. Sano Ken-Ichi, Himeno Sadayuki. Capillary electrophoretic determination of As (V) and As (III) based on the formation of a Keggin-type AsMo12O40. 3~ complex // J. of Separ. Sci. 2002. V. 25, № 7. P. 438 442.
  152. Perez-Ruiz Т., Martinez-Lozano C., Tomas V., Martin J. Flow-injection fluorimetric method for the determination of dimethylarsinic acid using on-line photo-oxidation // Anal. Chim. Acta. 2001. V.447, № 1 2. P. 229 — 235.
  153. Dauner, S., Barrett G., Feliciano J., Shetty R., Shrestha S. Genetically Engineered Whole-Cell Sensing Systems: Coupling biological Recognition with Reporter Genes // Chem. Rev. 2000. №. 100. P. 2705−2738.
  154. Т. В., Cor S., Hans K., Pim L., Henk V. Intra- and Inter lab oratory calibration of the DR CALUX Bioassay for the analysis of Dioxins and Dioxin-like chemicals in sediments // Environ. Toxicol, and Chem. 2004. V 23. P. 2781−2789.
  155. Ramanathan S., Shi W., Rosen B. P. and Daunert S. Bacteria-based chemilumines-cence sensing system using .beta.-galactosidase under the control of the ArsR regulatory protein of the ars operon // Anal. Chim. Acta. 1998. V. 369. P. 189−195.
  156. Lewis J. C., Feltus A., Ensor С. M., Ramanathan S., Daunert S. Applications of reporter genes // Anal. Chem. 1998. V. 70. P. 579A-585A.
  157. Bronstein I., Martin C. S., Fortin J. J., Olesen С. E., Voyta J. C. Chemiluminescence: sensitive detection technology for reporter gene assays // Clin. Chem. 1996. V. 42. P. 15 421 546.
  158. Wood К. V. Marker proteins for gene expression // Curr. Opin. Biotechnol. 1995. V.6. P.50−58.
  159. Xu C., Zhou Т., Kuroda M., Rosen B. P. Metalloid resistance mechanisms in pro-karyotes // J. Biochem (Tokyo). 1998. V.123, № 1. P. 16−23.
  160. Welsh S., Kay S. A. Reporter gene expression for monitoring gene transfer // Curr. Opin. Biotechnol. 1997. V. 8. P.617−622.
  161. Collard J. M., Corbisier P., Dielsl. et al. Plasmids for heavy metal resistance in Alcaligenes eutrophus CH34: mechanisms and applications // FEMS Microbiol. Rev. 1994. V.14. P.405−414.
  162. Naylor. I. H- Reporter gene technology: the future looks bright // Biochem. Pharmacol. 1999. V.58. P. 749−757.
  163. Silver S., Budd K., Leahy K. M et al. Inducible Plasmid-Determinated Resistance to Arsenate, Arsenite, and Antimony (III) in Escherichia coli and Staphylococcus aureus // J: Bacteriol. 1981. P. 983−996.
  164. Kobatke E., Niimi Т., Haruyama T. et al. Biosensing of benzene derivatives in the environment by luminescent Escherichia coli // Biosens. Bioelectron. 1995. V. 10. P. 601−605.
  165. Wu J., Rosen B. P. Metalloregulated expression of the ars operon // J. Biol. Chem. 1993. V. 268, № 1. P.52−58.
  166. Wu J., Tisa L. S, Rosen B. Membrane topology of the ArsB protein, the membrane subunit of an anion-translocating ATPase // J. Biol. Chem. 1992. V. 267, № 18. P.12 570−12 576.
  167. Chen Y., Rosen B. P. Metalloregulatory properties of the ArsD repressor // J. Biol. Chem. 1997. V.272,№ 22. P.14 257−14 262.
  168. Delnomdedieu M., Basti M.M., Otvos J.D., Thomas D.J. Transfer of arsenite from gluthione to dithiols: a model of interaction // Chem. Res. Toxicol. 1993. V.6.1. P. 598−602.
  169. Shi W., Dong J., Scott R.A., Ksenzenko M.Y., Rosen B.P. The role of arsenic-thiol interactions in metalloregulation of the ars operon // J. Biol. Chem. 1996. V.271. P.9291−9297.
  170. Scot D. L., Ramanathan S., Shi W., Rosen B.P., Daunert S. Genetically Engineering bacteria: Electrochemical Sensing System for Antimonite and Arsenite // Anal. Chem. 1997, V.69. P.16−20.
  171. Wackwitz A., Harms H., Chatzinotas A., Breuer U., Vogne Ch., van der Meer J. R. Internal arsenite bioassay calibration using multiple bioreporter cell lines // Microbial. Biotechnol. 2008. V. l- № 2. P.149−157.
  172. Petanen Т., Lyytkainen M., Lappalainen J., Romantschuk M., Kukkonen J. V. K. Assessing sediment toxicity and arsenite concentration with bacterial and traditional methods //Environ. Pollut. 2003. V.122. P.407−415.
  173. Griffith K. L., Ir R. E. W. Measuring of /? -galactosidase activity in bacteria: cell growth, permeabilization and enzyme assays in 96-well arrays // Biochem. Biophys. Res. Comm. 2002. V.290. P.397−402.
  174. Т., Фрич Э., Сэмбрук Дж. Методы генной инженерии и молекулярного клонирования. Москва: Мир. 1984.
  175. Н., Wells М. С., van der Meer J. R. Whole-cell living biosensors are they ready for environmental application? // Appl. Microbiol. Biothecnol. 2006. V.70. P. 273 280.
  176. Henze G., Wagner W., Sander S. Speciation of arsenic (V) and arsenic (III) by cathodic stripping voltammetry in fresh water samples // Fresenius" J. Anal. Chem. 1997. V. 358, № 6. P. 741−744.
  177. В. П., Левицкая С. А., ЛФилиппова Л. М. Аналитическая химия ртути. Серия «Аналитическая химия элементов». Москва: Наука. 1974. с. 228.
  178. Метилртуть (гигиенические критерии состояния окружающей среды). Женева: ВОЗ. 1993. с. 124.
  179. Barkay Т., Turner R., Saouter Е. et. al. Mercury biotransformation and their potential for remediation of mercury contamination // Biodegradation. 1992. V.3. P.147−159.
  180. О. С., Савенко В. С. Потенциометрическое исследование физико-химического состояния ртути в морской воде//Геохимия. 1994, № 12. С.1445−1454.
  181. Bloom N. S., Watras: G.J.,. Hurley J. P. Impact of acidification on the methylmercury cycle in remote seepage lakes// Water Air Soil Pollut:. 1991. V.56. P:477−491.
  182. Gilmour С. C., Genry E. A. Mercury methylation in aquatic systemsaffected by acid deposition // Environ: Pollut. Bull., 1991. V. 71. РЛ31−169.
  183. В. В. M., Leermakers M., Baeyens W. Total mercury and methylmercury in sediments and in the polychaete Nereis diversicolor at Groot Buitenschoor (Scheld estuary, Belgium) // Water Air. Soil Pollut: 1997. V.94. P. 109−123.
  184. Ртуть.Критерии санитарно-гигиенического состояния окружающей- среды. Женева: ВОЗ. 1979. 150с.
  185. М., Ghau Т. К., Dutka В. J. et аГ. Toxocologyof organomercury compounds: Bioassay results as a basis for risk assessment // Analyst. 1995. V. 120, № 3. P.721−724.
  186. Обобщенный перечень предельно допустимых концентраций (ПДК) и ориентировочно безопасных уровнешвоздействия? (ОБУВ) вредных веществ для воды рыбо-хозяйственных водоемов. М: Главрыбвод. 1990: 44с.
  187. Предельно допустимые концентрации (ПДК) загрязняющих веществ в в атмосферном воздухе населенных мест. ГН 2.1.6.695−98.
  188. Предельно допустимые концентрации (ПДК) химических веществ в почве. № 2264−80 от 30.10.80.
  189. Florence Т. M: The speciation: of trace elements in waters // Talanta. 1982. V.29, № 5. P.345−364.
  190. Paudyn A., Van Loon J: C. Determination of organic forms of mercury and arsenic in waters and atmospheric samples by gas chromatography -atomic absorption // Fresenius Z. Anal. Chem. 1986. V.325, № 4. P.369−376.
  191. Goulden P. D., D.H.J. Anthony D. H. J. Chemical speciation of mercury in natural waters//Anal. Chim. Acta. 1980.V.120. P.129−139.
  192. Puk R., Weber J. H. Critical review of analytical methods for determination of inorganic mercury and methylmercury compounds // Appl. Organomet. Chem. 1994.1. V. 8. P. 293−392
  193. Quevauviller P., Draback I., Muntau H., Griepink B. Improvements in methylmercury determination prior to the certification of two tuna fish materials // Appl. Organomet. Chem. 1993. V.7. P.413−420.
  194. Wilken R. D. Mercury analysis: a special example of species analysis // Fresenius J. Anal. Chem. 1992. V.342. P.795−801.
  195. Lobinski R. Elemental Speciation and Coupled Techniques // Appl. Spectrosc. 1997. V.51. P.260A-278A.
  196. Sanchez Uria J. E., Sanz-Medel A. Inorganic and methylmercury speciation in environmental samples // Talanta. 1998. V.47. P. 509−524.
  197. Morita M., Yoshinaga J., Edmonds J. The determination of mercury species in environmental and biological samples// Pure & Appl. Chem. 1998. V. 70. P. 1585−1615.
  198. P. П., Линник П. H., Запорожец О. А. Методы исследования сосуществующих форм металлов в природных водах (Обзор) // Методы и объекты химического анализа. 2006. T. l,№h С.4−26.
  199. Ireland-Ripert J., Bermond Ducauze С. Determination of methylmercury in the presence of inorganic mercury by anodic stripping voltammetry // Anal. Chim. Acta. 1982. V.143. P.249−254.
  200. Florence Т. M. Electrochemical approaches to trace elements speciation in waters. A review//Analyst. 1986. V. lll, № 5. P. 489−505.
  201. Nurnberg H. W. Investigation on heavy metals speciation in natural waters by voltam-metric procedures//Fresenius Z. Anal. Chem. 1983. V.316, № 6. P.557−565.
  202. А. П., Ройтман Л. И, Ханина Р. М. и др. Инверсионные электрохимические методы, в контроле загрязнения вод // Химия и технология воды. 1985. Т.7, № 2. С.27−38.
  203. А. П, Нейман Е. Я., Слепушкин В. В. Инверсионные вольтамперо-метрические методы. М.: Химия. 1988. 240с.
  204. Inoue S., Hoshi S., Mathubara M. Reversed-phase particion high pressure liquid chromatography of trace amounts of inorganic and organic mercury with silver diethyldithiocar-bamate // Talanta. 1985.V.32. P.44−46.
  205. Medina I., Rubi E., Mejuto M. C. Cela R. Speciation of organomercurials in marine samples using capillary electrophoresis//Talanta. 1993. 40. 1631−1636.
  206. Carro-Diaz A. M., Lorenzo-Ferreira R. Cala-Torrijos R. Capillary electrophoresis of methylmercury with injection by sample stacking // J. Chromatogr. A. 1996. V.730. P. 345 -351.
  207. H. С., Виткун P. А.,.Зелюкова Ю. В. Определение миллиграммовых количеств ртути по атомному поглощению в газовой фазе // Журн. апалит. Химии. 1964. Т.19, вып.8. С. 937−942.
  208. Oda С. Е., Ingle J. D. Speciation of mercury by cold vapor atomic absorption spectrometry with selective reduction//Anal. Chem. 1981. V.53, № 14. P.2305−2309.
  209. Puk R., Weber J. H. Determination of mercury (II), monomethylmercury cation, di-methylmercury and diethylmercury by hydride generation, cryogenic trapping and atomic absorption spectrometric detection //Anal. Chim. Acta. 1994.Y. 292. P.175−183.
  210. Weber J. H, Puk R. Optimization of method for speciation of mercury (II), monomethylmercury cation, dimethylmercury and diethylmercury by hydride generation // Appl. Organometal. Chem. 1994. V.8. P.709−713.
  211. Goto M., Shibakawa Т., Arita T. et al. Continuous monitoring of total and inorganic mercury in wastewater and other waters // Anal. Chim. Acta. 1982. V.140. P. 179−185.
  212. W. Т., Ebbon L., Hill S. J. Effects of moisture on the cold vapor determination of mercury and its removal by use of membrane dryer tubes // Analyst. 1992. V. l 17, № 4. P.717−720.
  213. Dumarev R., Van Ryckeghem M., Dams R. Comparison of wet digestion methods for the determination of total mercury in plant samples by cold vapour atomic absorption spectrometry (CVAAS)//J. Trace Microprobe Techn. 1987. V.5, № 2 -3. P.229−242.
  214. Welz В., Melcher M., Sinemus H. W. et al. Picotrace determination of mercury using the amalgamation technique // Atom. Spectr. 1984. V.5, № 2. P.37−42.
  215. Welz В., Shubert-Jacobs M. Cold vapor atomic absorption spectrometric determination of mercury using sodium tetrahydroborate reduction an collection on gold // Fresenius Z. Anal. Chem. 1988. V.331, № 3−4. P.324−329.
  216. Goto M., Munaf E., Ishii D. Continuous micro flow monitoring method for total mercury at sub-ppb level in wasterwater and other waters using cold vapor atomic absorption spectrometry// Fresenius Z. Anal. Chem. 1988. V.332. P.745−749.
  217. Magos L. Selective atomic-absorption determination of inorganic mercury and me-thylmercury in indigested biological samples // Analyst. 1971. V.96, № 1149. P.847−853.
  218. Cossa D., SanjuanJ., Cloud J. et al. Automated mercury determination in waters // Water, Air and Soil Pollut. 1995. V.80. P.1279−1284.
  219. Hintelmann H., Wilken R. D. The analysis of organic mercury compounds using liquid chromatography with on-line atomic fluorescence spectrometric detection // Appl. Or-ganomet. Chem. 1993. V.7. P.173−180.
  220. P. В., Thompson К. C., Henson A. et al. Measuring mercury at ultratrace level hvthe environment // Intern. Environ. Safety News. 1989: V.7, № 2. P.8−9.
  221. Lancione R. L., Drew D. L. Evaluation of ICP atomic fluorescence for the determination of mercury // Spectrochim. Acta B. 1985. V. 40. P: 107−113.
  222. Bowles K. S., Apte S. C. Determination of methylmercury in natural water samples by steam distillation and gas chromatography-atomic fluorescence spectrometry // Anal. Chem. 1998. V.70, № 2. P.395−399.
  223. Saouter E., Blattmann-B. Analysis of organic and inorganic mercury by atomic fluorescence spectrometry using a semiautomatic analytical system // Anal. Chem. 1994. V.66, № 13. P.2031−2037.
  224. Ritsema R., Donard O. F. X. On-line speciation of mercury and methylmercury in aqueous samples by chromatography-atomic fluorescence spectrometry after hydride generation//Appl. Organomet. Chem. 1994. V.8, № 7−8. P.571−575.
  225. В. II., Макаревич В. И., Архутик С. С. и др. Определение мышьяка, ртути, селена методом атомно-эмиссионной спектрометрии с индуктивно связанной плазмой // Журн. аналит. химии. 1999. Т.54, № 3. С. 285−287.
  226. Н., Horvath Z., Barnes R. Н. Determination of Mercury in Drinking Water by Inductively Coupled Plasma Atomic Emission Spectrometry with Electrothermal Vaporization //Appl. Spectrosc. 1985. V. 39, № 3. P. 558−560.
  227. Chiba K., Yoshida K., Tanabe K. et al. Determination of alkylmercury in seawater at the nanogram per liter level by gas chromatography/atmospheric pressure helium microwave-induced plasma emission spectrometry // Anal. Chem. 1983 V. 55, № 3. P.450−453.
  228. Hintelmann H., Falter R., Ilgen G., Evans R. D. Determination of artifactual formation of monomethylmercury (CH, Hg+) in environmental samples using stable
  229. Hg isotopes with ICP MS detection: calculation1 of contents applying species specific isotope addition // Fresenius J. Anal. Chem. 1997. V. 358. P. 363−370.
  230. Passariello В., Barbara M., Quaresima S., Casciello A., Marabini A. Determination of Mercury by Inductively Coupled Plasma—Mass Spectrometry // Microchem. J. 1996. V.54. P.348−354.
  231. Kevin A. Francesconi and Doris Kuehnelt. Determination of arsenic species: A criticalreview of methods and applications, 2000−2003 // Analyst. 2004. V.129. P. 373−395.
  232. Goulden P. D., Anthony D. H. L. Chemical speciation of mercury in natural waters // Anal. Chim. Acta. 1980. V.120. P.129−139.
  233. Zelenko V., Kosta L. A new method for the isolation of methylmercury from biological tissues and its determination at the parts-per-milliard level by gas chromatography // Talanta. 1973. V.20.P. 115−123.
  234. Filippelli M. Methylmercury determination by Purge and Trap-GC-FTIR-AAS after NaBH4 derivatization of an environmental thiosulfate extract // Appl. Organomet. Chem. 1994. V. 8. P. 687−691.
  235. Craig P. J., Mennie D., Ostah N., Donard O. F. X., Martin F. Communication. Novel methods for derivatization of mercury (II) and methylmercury (II) compounds for analysis // Analys. 1992. V.117.P. 823−824.1.f
  236. Lasareva E.V., Shuvaeva O.V., Tsimbalist V.G. Arsenic speciation in the tailing impoundment of a gold recovery plant in Siberia// Geochemistry: Exploration, Environment, Analysis. 2002. V.2. P.263−268.
  237. Wesoo G. Determination of methylmercury compounds in foodstuffs. 1. Methylmercury compounds in fish, identification and determination // Acta Chem. Scand. 1966. V.20. P.2131−2137.
  238. Westoo G. Determination of methylmercury compounds in foodstuffs. II. Determination of methylmercury in fish, egg, meat, and liver // Acta Chem. Scand. 1967. V.21. P. 1790−800.
  239. Stary J., Havlok В., Prasilova J. et al. Determination of phenylmercury, methylmercury and’inorganic mercury in portable and surface waters // Int. J. Environ. Anal. Chem. 1978. V.5. P.89−94.
  240. Cappon C. J., JSmith J. C. Gas-chromatographic determination of inorganic and or-ganomercurials in biological materials //Anal. Chem. 1977. V.49, № 3. P.365−369.
  241. Wagemann R., Trebacz E., Hunt R! et al. Percent methylmercury and organic mercury in tissue of marine mammals and fish using different experimental and calculation methods // Environ. Toxicol. Chem. 1997. V.16, № 9. P.1859−1866.
  242. Horvat M., Liang L., Bloom N. S. Comparison of distillation with other current isolation methods for the determination of methylmercury compounds in low level environmental samples //Anal. Chim. Acta. 1993. V.282. P.153 168.
  243. Методика выполнения измерений массовой доли общей ртути в пробах почв и грунтов на анализаторе ртути РА-915+ с приставкой РП-91С, ПНД Ф 16.1:2.23−2000. С-Петербург.
  244. Filippelli M., Baldi F. Alkylation of ionic mercury to methylmercury and dimethyl-mercury by methylcobalamin: Simultaneous determination by purge-and-trap GC in line with FTIR//Appl. Organomet. Chem. 1993. V.7. P.487−493.
  245. Bloom N. S. Determination of picogram levels of methylmercury by aqueous phase ethylation followed by cryogenic gas chromatography with cold vapour atomic fluorescence detection // Can. J. Fish. Aquat. Sci. 1989. V.46, № 7. P. 1131−1140.
  246. E. H. & Caruso J. A. Determination of organometallic species by gas chromatography inductively coupled plasma mass spectrometry // J. Anal. Atom. Spectrom. 1993. Vol.8. P. 427−431.
  247. W. G., Ebdon L. & Rowland S. J. Development of a high-temperature gas chromatography—inductively coupled plasma mass spectrometry interface for the determination of metalloporphyrins // J. Chromatogr.A. 1993. V. 646. P. 369−375.
  248. J. & Hirner A. V. Occurrence of volatile metal and metalloid species in landfill and sewage gases // Int. J. Environ. Anal. Chem. 1995. V.60. P. 339−359.
  249. E. & Prange A. Organometallic species of the elements tin, mercury and lead in sediments of the longitudinal profile // Fresenius' Z. Anal. Chem. 1995. V.353.1. P. 28−33.
  250. Krupp E. M., Grtimping R., Furchtbar U. R. R.& Hirner A. V. Speciation of metals and metalloids in sediments with LTGC/ICP-MS // Fresenius' Z. Anal. Chem. 1996. Vol. 354. P.546−549.
  251. Langseth W. Determination of organic and inorganic mercury compounds by reverse-phase high performance liquid chromatography after extraction of the compounds as their dithizonates // Anal. Chim. Acta. 1986. V.185. P.249−258.
  252. S., Hoshi S. & M. Sakaki M. High performance reversed-phase liquid chromatography of trace amounts of inorganic and organic mercury as diethyldithiocarbamate chelates // Bunseki Kagaku. 1982. V. 31. E243- E246.
  253. King J. N.& Fritz J. S. Determination of cobalt, copper, mercury and nickel as bis-(2-hydroxyethyl)dithiocarbamate complexes by high performance liquid chromatofraphy // Anal. Chem. 1987. V. 59. P.703−708.
  254. Kollotzek D., Oechsle D, Kaiser G., Tschoepel P. and Toelg G. Application of a mixed-gas- microwave induced plasma as an on-line element-specific detector in high-performance liquid chromatography // Fresenius’Z. Anal. Chem. 1984. V. 318. P. 485−489.
  255. Bettmer J., Cammann K., Robecke M. Determination of organic ionic lead and mercury species with high-performance liquid chromatography using sulfur reagents // J. Chromatogr. 1993. V. 654. P. 177−182.
  256. Yau D., Zhang J.& Schwedt G. Ion-chromatographic trace analysis of mercury, cadmium and zinc by post-column derivatisation with a water-soluble porphyrin // Fresenius' Z. Anal. Chem. 1989. Vol. 334. P.507−510.
  257. Robinson J. W., Boothe E. D. Speciation of Mercury Compounds by T.L.C. and High Performance Liquidchromatography-Atomic Absorption Spectroscopy // Spectrosc. Lett. 1984. V. 17. P.673 -688.
  258. Fujita M.& Takabatake E. Continuous flow reducing vessel in determination of mercury compounds by liquid chromatography /cold vapour atomic absorption spectrometry // Anal. Chem. 1983. V.55, № 3. R. P. 454−57.
  259. Falter & Schoeler H. F. Interfacing high-performance liquid chromatography and cold-vapour atomic absorption spectrometry with on-line UV irradiation for the determination of organic mercury compounds // J: Chromatogr. A. 1994. V. 675. P. 253−256.
  260. Bushee D. S. Speciation of mercury using liquid chromatography with detection by inductively coupled plasma mass spectrometry // Analyst. 1988. V. 113. P. 1167−170.
  261. D. S., Moody J. R. & May J. C. Determination of thimerosal in biological products by liquid’chromatography with inductively coupled plasma mass spectrometric detection // J. Anal. Atom. Spectrom. 1989. Vol. 4. P. 773−775.
  262. Huang С. W.& Jiang S. U. Speciation of mercury by reversed phase liquid chromatography with inductively coupled’plasma mass-spectrometric detection // J. Anal. Atom. Spectrom. 1993. V. 8, № 5. P.681 -686.
  263. S. С. K., Neddersen R.& Houk R. S. Elemental speciation by liquid chromatog-raphy-inductively coupled plasma mass spectrometry with direct injection nebulization // Analys. 1992. V. 117. P. 577−582.
  264. BloxhanrM. J., Gachanja A., Hill S. J: & Worsfold P. J. Determination of mercury species in sea-water by liquid-chromatography with inductively coupled plasma mass specT trometric detection //J. Anal. Atom. Spectrom. 1996. V. 11. P. 145−148.
  265. Bauer C. F., Natusch D. F. S. Speciation at trace levels by helium microwave-induced plasma emission spectrometry // Anal. Chem. 1981. V. 53. P.2020−2027.
  266. R.S. Braman, D.L. Johnson. Selective Absorption Tubes and Emission’Technique for Determination of Ambient Forms of Mercury in Air//Environ. Sci. Technol. 8,996−1003. (1974).
  267. Schroeder W. H., Jackson R. An instrumental analytical technique for vapour-phase mercury species in air//Chemosphere. 1984. V. 13, № 9. P. 1041−1051.
  268. Schroeder W. H., Jackson R. Environmental measurements-with an atmospheric mercury monitor having speciation’capabilities // Chemosphere. 1987. V. 16. P. 183−199.
  269. Т. Г. Определение ртути в природных водах. 2000. Новосибирск: Наука. 216 с.
  270. Dogan S., Haerdi W. Preconcentration on silver wool of volatile organo-mercury compounds in natural waters and air and the determination of mercury by flameless atomic absorption spectrometry// Intern. J. Envoron. Anal. Chem. 1978. V.5. P.157−162.
  271. Collet D. L., Fleming D. E, Taylor G. E. Determination of alkylmercury in fish by steam distillation and cold-vapor-atomic absorption spectrophotometry // Analyst. 1980. V.105. P.897−901.
  272. Craig P. J., Morton S. F. Mercury in’Mersey estuary sediments,'and the analytical procedure for total mercury//Nature. 1976. V. 261. P. 125−126.
  273. Nagase H., Ose Y., Sato T., Ishikawa Т., Mitani K. Differential Determination of Alkylmercury and Inorganic Mercury in River Sediment // Intern. J. Environ. Anal. Chem. 1980. V. 7. P. 261−271.
  274. Baldi F., D’Amato M. L. Mercury pollution in marine sediment cores near cinnabar deposits and a chlor-alkali plant // Sci. Total Environ. 1986. V. 57. P. 111−120.
  275. Provini A., Premazzi G., Galassi S., Gaggino G. F. Distribution of nutrients, trace elements, PAHs and radionuclides in sediment cores from Lake Varese (N. Italy)// Hydrobi-ologia. 1989. V.176/177. P. 213−223.
  276. Kanno J., Akagi H., Takabatake E. A method for determination of methylmercury in environmental samples, particularly in sediment // Jap. J. Toxicol. Environ Health (Eisei ka-gaku). 1985. V.31. P.260−268.
  277. Sakamoto Hi, Tomiyasu Т., Yonehara N. Differential Determination of Organic Mercury, Mercury (II) Oxide and Mercury (ll) Sulfide in Sediments by Cold Vapor Atomic Absorption Spectrometry//Anal. Sci. 1992. V. 8. P. 35−39.
  278. Bamett M. O., Harris L. A., Turner R. R., Heuson T. J., Melton R. E., Stevenson
  279. R. J. Characterization of mercury species in contaminated floodplain soils // Water, Air and Soil Pollut. 1995. V. 80. P. 1105 -1108.
  280. Moelders H. H. Mercury determination by bioluminescence of transformed organisms // Patent Germany Offen. 1990. DE 3 902 982 Al. 12 p.
  281. Magos L., Clarkson T.W. Atomic absorption determination of total, inorganic, and organic mercury in blood // J. Assoc. Offic. Chem. 1972 V. 5. P.966−971
  282. L., Brown A. W., Sparrow S., Bailey E., Snowden R. Т., Skipp W. R. The comparative toxicology of ethyl- and methylmercury // Arch. Toxicol. 1985. V. 57. P.260−267.
  283. Lind В., Holmgren E., Friberg L., Vahter M. Demethylation of methylmercury during inorganic mercury determination by the magos cold vapor atomic absorption technique// Fresenius' Z. Anal. Chem. 1994. V. 348. P. 815−819.
  284. Koeman J. H., Peeters W. H. M., Koudstaal-hol С. H. M., Tjioe P. S., De Goei J. J. M. Mercury-Selenium Correlations inMarine Mammals //Nature. 1973. V. 245. P. 385−386.
  285. Henry H. G., Stever K. R., Heady H. H. Determination- of Mercury in Low-Grade Ores//Appl. Spectrosc. 1972. V.26- № 2. P. 288−293.
  286. А. В., Бородин В. А., Бровчук И. Ф., Коротаев В. В. Формы нахождения ртути во флюорите и сопутствующих ему минералах из некоторых эндогенных месторождений//Геохимия. 1978. № 5. С.729−735.
  287. В. Л., Меньшиков В. И, Кондауров И. Г, Гелетий В. Ф. Первый опыт применения сфалерит-галенитного геотермометра, основанного на межфазном распределении ртути//Геохимия. 1989. № 12. С.1788- 1793.
  288. В. Л., Гелетий В. Ф., Меньшиков В. И. Уровни содержания, характер распределения и формы нахождения ртути как индикаторы источников ртутного за-грязнения'природной среды // Хим. в интер. уст. разв. 1995. Т.З. С. 151−159.
  289. Tauson V. L., Parkhomenko I. Yu., Babkin D. N., Men’shikov V. I., Lustenberg
  290. E. E. Cadmium and mercury uptake by galena crystals under hydrothermal growth: A spectroscopic and element thermo-release atomic absorption study // Eur. J. Mineral. 2005. V.17. P.599−610.
  291. А.А., Янин Е. П. Использование термического атомно-абсорбционного анализа для оценки техногенных аномалий ртути в реках // Прикладная геохимия. 2000. Вып.4. С. 279−288.
  292. K.Raposo К., K.K.Windmoller К. К, W.A.D.Junior W.A.D. Mercury speciation in fluorescent lamps by thermal release analysis // Waste management. 2003. V.23. P.879−886.
  293. Biester H., Nehrke G. Quantification of mercury in soils and sediments acid digestion versus pyrolysis//Fresenius J. Analyt. Chem. 1997. V.358. P. 446−452.
  294. Biester H., Glossar M., Muller G. Mercury speciation in tailing of the Idrija mercury mine//J. Geochem. Explor. 1999. V.65. P.195−204.
  295. Welz B. Speciation analysis: where is it going? An attempt at a forecast // Spectro-chim. Acta. Part B. 1998. V.53. P. 169−175.
  296. Welz. B. Speciation analysis. The future of atomic absorption spectrometry // J.Anal. At. Spectrom. 1998. V.13. P. 413−417.
  297. Lobinski R. Speciation targets, analytical solutions and markets // Spectrochim. Acta. PartB. 1998. V.53B. P.177−185
  298. S.B. Adeloju, H.S. Dhindsa, R.K. Tandon. Evaluation of some wet decomposition methods for mercury determination in biological and environmental materials by cold vapour atomic absorption spectroscopy // Anal. Chim. Acta. 1994. V.285. P.359−364.
  299. Cutler J. N., Jiang D.-T., Remple G. Chemical speciation of arsenic in uranium mine tailings by x-ray absorption spectroscopy // Canadian J. Anal. Sci. Spectrosc. 2001. V. 46, № 4. P. 130−135.
  300. Huggins F. E., Huffman G. P., Kolker A. Et al. Combined application of XAFS spectroscopy and Sequential Leaching for Determination of Arsenic Speciation in Coal // Energy & Fuels. 2002. V.16, № 5. P. l 167−1172.
  301. Paktunc D., Foster A, Heald S., Laflamme G. Speciation and characterization of arsenic in gold ores and cyanidation tailings using X-ray absorption spectroscopy // Geochimica et Cosmochimica Acta. 2004. V. 68, № 5. P. 969−983.
  302. Foster A. L., Brown G. E., Jr Т., Tracy N., Parks G. A. Quantitative arsenic speciation in mine tailings using x-ray absorption spectroscopy // Am. Mineral. 1998. V.83, № 5−6. P. 553−568.
  303. И.Р., Гаранин В. Г., Чанышева Т. А.// Аналитика и контроль. 1998. № 1(3). С. 33−40.
  304. И.Г., Буянова JI.M., Шелпакова И. Р. Химико-спектральный анализ веществ высокой чистоты. Новосибирск: Наука, 1980. 187с.
  305. Вейганд-Хильдетаг. Методы эксперимента в органической химии. Ред. проф. Суворова Н. Н., М., Химия, 1968.-944 е., с. 668.
  306. А. Г., Несмеянов A. IL. Методы элементоорганической химии. Ртуть. Москва: Наука. 1965. С. 210.
  307. К. Статистика в аналитической химии. М.: Мир, 1994. 267с.
  308. Спектральный анализ чистых веществ. Ред. Х. И. Зильберштейна. СПб.:Химия. 1994.415 с.
  309. А.И., Емелина О. И. Анализ вод и растворов атомно-эмиссионным методом на квантометре МФС-8 // Журн. аналит. химии. 1999. Т.54, № 12. С. 1300−1303.
  310. Н.С., Шуваева О. В. Определение микроэлементов в природных водах методом атомно-эмиссионной спектрометрии сухих остатков на торцах графитовых электродов // Журн. аналит, химии. 2007. Т.62, № 7. С. 719−724.
  311. Е.В., Шуваева О. В. Определение кальция, магния, железа, меди, цинка и фосфора в сыворотке крови методом дуговой атомно-эмиссионной спектрометрии // Журн. аналит. Химии. 2005. Т.10. С. 1054−1059.
  312. Количественный анализ хроматографическими методами. Ред. Э. Кэц, М: Мир, 1990.319 с.
  313. Xia He, Gong Guoquan, Zhao Hui and Li Hu-Lin. Fluorometric determination of arsenic (III) with fluorescein // Microchem. J.1997. V56, № 3. P. 327−331.
  314. Halasz A., Pungor E. Properties and analytical applications of the heteropolymolyb-dates of phosphorus, arsenic, silicon and germanium. II. Modifications of the heteropoly acids//Talanta. 1971. V. 18. P. 569 — 575.
  315. Michael Thor Pope. Heteropoly and Isopoly Oxometalates, Springer-Verlag, Berlin Heidelberg New York Tokyo, 1983.
  316. Kwak W., Rajkovic L. M., Stalick J. K., Pope M. P. et al. Synthesis and structure of hexamolybdobis (organoarsonates) // Inorg. Chem. 1976. V. 15, № 11. P. 2778 2783.
  317. V. 52, № 11. P. 3284−3291.
  318. Gmelins. Handbuch der Anorganishen Chemie. Berlin: Verlag Chemie. 1935. № 53 (Molybdan). P.312−393.
  319. РапутаВ.Ф., Шуваева O.B., Коковкин B.B., Шурухин С. Г., Воробьева О. А. Анализ аэрозольного загрязнения в районе Новосибирского оловокомбината // Химия в интересах устойчивого развития. 2002. Т.10, вып.5. С. 691−698:
  320. Souchay P., Contant R. Etude, en solution, du 3 molybdo-arseniate tetram6re // Bull. Soc. Chim. France. 1973. P. 3287 3291.
  321. Lyhamn L., Pettersson L. Investigations of isopolymolybdates, molybdophosphates and molybdoarsenates in aqueous solution using combined potentiometric-spectrophotometric titrations. // Chemica Scripta. 1980. V. 16, № 1 2. P. 52−61.
  322. Takahama H., Sasaki Y. Potentiometric study of heteropolyanion formation from di-methylarsinate and molybdate anions in acidic aqueous solution // Bull. Chem. Soc. Jpn. 1983. V. 56, № 3. P. 895 898.
  323. Hagasaki A., Takahama H., Sasaki Y. Potentiometric study of equilibria in H±Mo042'-RAs03H" (R=OH, C6H5) systems // Bull. Chem. Soc. Jpn. 1987. V. 60, № 11. P. 3925 -3930.
  324. М., Но R.K.C., Klemperer W.G., Shum W. 170 nuclear magnetic resonance spectroscopy of polyoxometalates. 1. Sensitivity and resolution // Inorg. Chem. 1979. V. 18, № 1. P.' 93−103.
  325. Shuvaeva O.V., Gustaytis M.A., Anoshin G.N. Mercury speciation in environmental solid samples using thermal release technique with atomic absorption detection // Anal. Chim. Acta. 2008. V.621. P. 148−154.
  326. He Q., Wang E., You W., Ни C. Hydrothermal synthesis and structure of AsmAs-vMovl9034.6″ ', a monocapped, trivacant Keggin species. // J. Molec. Structure. 1999. V. 508, № 1−3. P. 217−221.
  327. Khan M.I., Chen Q., Zubieta J. Hydrothermal synthesis and structure of H4Ashi2AsvMov8Movi404o." a bicapped, reduced Keggin species. // Inorg. Chem. 1993. V. 32, № 13. P. 2924 -2928.
  328. He Q., Wang E., Ни C., Xu L., Xing Y., Lin Y., Jia H. Hydrothermal synthesis and structural characterization of a mixed-valence molybdenum (IV, VI) arsenate (III):
  329. Ni (H2NCH2CH2NH2)3(MoIV06)MoVI60,8(As, 1,303)2.H20 // J. Molec. Structure. 1999. V. 484, № 1 -3.P. 139 143.
  330. Meyer R.J. Gmelins Handbuch der Anorganischen Chemie. Berlin: Verlag Chemie. 1935. V. 53 (Molybdan). P. 361.
  331. Mouder J.F., Stickle W.F., Sobol P.E., Bomben K.D. Handbook of X-ray photoelectro-spectroscopy. Perkin-Elmer. Eden Prairie. MN. 1992.
  332. Ueda Т., Wada K., Hojo M. Voltammetric and Raman’spectroscopic study on the formation of Keggin-type V (V) substituted molybdoarsenate complexes in aqueous and aqueous-organic solution // Polyhedron. 2001. V. 20. P. 83−89.
  333. O.C., Кузнецова Л. И., Шуваева О. В. Взаимодействие арсенит-ионов с молибдатом в водном растворе // Журн. неорган, химии. 2008. Т.53, № 4. С.705−710.
  334. Максимовская’Р.И, Федотов. М" А., Мастихин B.M., Кузнецова! Л.И., Ю Матвеев К. И. // Исследование состояния фосфорномолибдованадиевых гетерополикислот в водных растворах методом ЯМР: Докл. АН СССР. 1978. Т. 240. С. 117−120.
  335. Y. Р, Shen G.Q., Zhu М.Н. Research on heteropoly anions with chromatography. The retention behaviours of heteropoly anions in reversed-phase ion pair liquid chromatography // Acta Chim Sim 1993. V. 51, № 4. P- 386 392 (Chinese).
  336. Тихомирова>Т.И., Крохин O. B1, Дубовик Д. Б., Иванов A.B., Шпигун О. А. Хро-матографическое определение кремния и фосфора в виде молибденовых гетерополикислот с предварительным концентрированием. // Журн. аналит. химии. 2002. Т 57, № 1.С. 24−29.
  337. Е. М., Цигулев О. Н., Дорохова Е. Н. Механизм удерживания.ионных ассо-циатов-гетерополикислот с триоктиламином на нитрильной фазе. // Журн. аналит. химии. 1997. Т 52, № 10. С. 1077 1081.
  338. О.С., Шуваева О. В., Штадлер Д. В., Кузнецова Л. И. Применение гетеро-полиеоединений для определения химических фом мышьяка в природных водах// Хим. в интересах уст. разв. 2005. Т.13. С. 469 477.
  339. Menzel R. A microtiter plate-based system for the semi-automated growth and assay of bacterial cells for p-galactosidase activity// Anal. Biochem. 1989. V.181. P.40−50.
  340. Erickson B.E. Field Kits to Provide Accurate Measure of Arsenic in Groundwater // Environ. Sci. and Technol. 2003. V.37. P. 35A-38A.
  341. Giacomini A., Corich V., Ollero F.G., Squartini A. And Nuti M.P. // Experimental conditions may affect reproducibility of the P-galactosidase assay// FEMS Microbiol. Lett. 1992. V. 100. P. 87−90.
  342. Fiella M., Belzile N., Yu-Wei Chen. Antimony in the environment: a review focosed on natural waters II. Relevant solution chemistry//Earth-Science Reviews. 2002. V. 59. P. 265−258.
  343. Shuvaeva O.V., Ivanina A.V., Vasilenko E.S. The use of biosensors on the base ofth
  344. E.coli for arsenic detection in Environment // Proceeding of 11 Analytical Russian-German-Ukrainian Symposium (ARGUS). Saratov. 2007. P. 49−52.
  345. A.B., Шуваева O.B. Применение бактериальной биосенсорной системы для определения мышьяка в природных водах // Журн. аналит. химии. 2009. Т. 64. № 3. С.323−328.
  346. Shuvaeva O.V., Bortnikova S.B., Korda Т.М., Lazareva E.V. Arsenic speciation in a contaminated gold processing tailing dam // Geostandards Newsletter: The Journal of Geo-standards and Geoanalysis.2001. V.24, № 2. P. 247−252.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!