Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Сравнительный анализ изменений мышечной ткани и артерий локомоторной и дыхательной мускулатуры крыс при физической тренировке с использованием разных способов задания нагрузки

Диссертация: Сравнительный анализ изменений мышечной ткани и артерий локомоторной и дыхательной мускулатуры крыс при физической тренировке с использованием разных способов задания нагрузки
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Характеристики артерий, питающих две функционально разные мышцы, также различаются. Для артерий диафрагмы характерно более выраженное эндотелий-зависимое расслабление, поскольку в этих артериях эндотелий может быть адаптирован к хронически высокой скорости кровотока, а гладкая мышца обладает высокой чувствительностью к N0. Кроме того, для артерий диафрагмы характерна густая иннервация… Читать ещё >

Сравнительный анализ изменений мышечной ткани и артерий локомоторной и дыхательной мускулатуры крыс при физической тренировке с использованием разных способов задания нагрузки (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Локомоторные мышцы: метаболические характеристики и адаптация к физической нагрузке
      • 1. 1. 1. Характеристики локомоторных мышц и их кровоснабжения
        • 1. 1. 1. 1. Метаболические типы скелетных мышечных волокон и их встречаемость в различных локомоторных мышцах
        • 1. 1. 1. 2. Влияние физической нагрузки на скорость кровотока в локомоторных мышцах, состоящих из разных типов мышечных волокон
        • 1. 1. 1. 3. Регуляторные характеристики резистивных сосудов в локомоторных мышцах с разными метаболическими характеристиками
      • 1. 1. 2. Адаптивные изменения локомоторных мышц и их кровоснабжения при физической тренировке
        • 1. 1. 2. 1. Пластические изменения ткани локомоторных мышц при физической тренировке
        • 1. 1. 2. 2. Влияние тренировки на проявление рабочей гиперемии в локомоторных мышцах
        • 1. 1. 2. 3. Изменения сосудов локомоторных мышц при адаптации к физической нагрузке
    • 1. 2. Особенности строения, пластичности и кровоснабжения дыхательных мышц
      • 1. 2. 1. Общая характеристика дыхательной мускулатуры
      • 1. 2. 2. Отличия в строении и кровоснабжении локомоторных и дыхательных мышц
        • 1. 2. 2. 1. Особенности строения ткани дыхательных мышц
        • 1. 2. 2. 2. Кровоснабжение дыхательных мышц и его изменения при физической нагрузке
        • 1. 2. 2. 3. Особенности регуляции тонуса резистивных сосудов дыхательных мышц
      • 1. 2. 3. Особенности адаптации дыхательной мускулатуры к физической нагрузке.37 1.2.3.1 Пластические изменения ткани дыхательных мышц при физической тренировке
        • 1. 2. 3. 2. Влияние тренировки на кровоснабжение дыхательных мышц при физической нагрузке
  • 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
    • 2. 1. Общие методические подходы
    • 2. 2. Методики повышения функциональной нагрузки на мышечную ткань
      • 2. 2. 1. Беговая тренировка крыс в аэробном режиме
        • 2. 2. 1. 1. Тренировка с меньшей длительностью тренировочного занятия
        • 2. 2. 1. 2. Тренировка с большей длительностью тренировочного занятия
  • 2. тЬ271Протокол тренировки с постоянной скоростью бега
    • 2. 2. 1. 2. 2 Протокол тренировки в интервальном режиме
      • 2. 2. 1. 3. Количество животных, выполнивших тренировочные протоколы
      • 2. 2. 2. Модель повышения нагрузки на дыхательную мускулатуру путем хронического сужения дыхательных путей
    • 2. 3. Методики оценки аэробной работоспособности на системном уровне
      • 2. 3. 1. Измерение потребления кислорода во время нагрузки
        • 2. 3. 1. 1. Экспериментальная установка и принципы измерения
        • 2. 3. 1. 2. Протокол определения показателя МПК
        • 2. 3. 1. 3. Обработка результатов
      • 2. 3. 2. Измерение концентрации лактата в крови во время нагрузки
        • 2. 3. 2. 1. Методика измерения концентрации лактата в крови крыс
        • 2. 3. 2. 2. Измерение концентрации лактата в крови во время тренировочного занятия
        • 2. 3. 2. 3. Оценка эффективности тренировки по изменению кривой накопления лактата в крови
    • 2. 4. Исследования органов и тканей in vitro
      • 2. 4. 1. Взятие биоматериала для исследований
      • 2. 4. 2. Методики исследования параметров крови
        • 2. 4. 2. 1. Определение содержания гормонов в сыворотке крови
        • 2. 4. 2. 2. Определение гематокрита и концентрации гемоглобина в крови
      • 2. 4. 3. Методики исследования мышечной ткани
        • 2. 4. 3. 1. Определение активности цитратсинтазы в гомогенате мышечной ткани
        • 2. 4. 3. 1. 1 Принцип метода
        • 2. 4. 3. 1. 2 Описание методики
        • 2. 4. 3. 1. 3 Обработка результатов
        • 2. 4. 3. 2. Определение содержания белка в ткани скелетных мышц
        • 2. 4. 3. 3. Гистологические исследования мышечной ткани
        • 2. 4. 3. 3. 1 Приготовление препаратов
        • 2. 4. 3. 3. 2 Иммуногистохимическое окрашивание быстрых и медленных мышечных волокон
        • 2. 4. 3. 3. 3 Определение активности сукцинатдегидрогеназы в мышечных волокнах
        • 2. 4. 3. 3. 4 Микрофотосъемка препаратов и обработка изображений
      • 2. 4. 4. Методики исследования артериальных сосудов
        • 2. 4. 4. 1. Визуализация адренергических нервных волокон в стенке сосуда
        • 2. 4. 4. 2. Исследование вазомоторных реакций изолированных сосудов
        • 2. 4. 4. 2. 1 Подготовка к эксперименту
        • 2. 4. 4. 2. 2 Нормализация (определение оптимального растяжения сосуда)
        • 2. 4. 4. 2. 3 Активация препарата
        • 2. 4. 4. 2. 4 Протокол эксперимента
        • 2. 4. 4. 2. 5 Обработка результатов
    • 2. 5. Статистическая обработка результатов
  • 3. РЕЗУЛЬТАТЫ
    • 3. 1. Характеристики мышечной ткани медиальной головки икроножной мышцы и реберного отдела диафрагмы
    • 3. 2. Изменения мышечной ткани медиальной головки икроножной мышцы и реберного отдела диафрагмы в результате беговой тренировки с использованием разных способов нагрузки
      • 3. 2. 1. Беговая тренировка с меньшей длительностью тренировочного занятия
        • 3. 2. 1. 1. Влияние тренировки на массу тела и желудочков сердца
        • 3. 2. 1. 2. Изменение системных показателей аэробной работоспособности
        • 3. 2. 1. 3. Изменение мышечной ткани икроножной мышцы и диафрагмы
      • 3. 2. 2. Тренировка с большей длительностью тренировочного занятия
        • 3. 2. 2. 1. Изменение массы тела за время тренировочного цикла и влияние тренировки на массу желудочков сердца
        • 3. 2. 2. 2. Изменение содержания гормонов в крови крыс
        • 3. 2. 2. 3. Изменение системных показателей аэробной работоспособности
        • 3. 2. 2. 4. Изменение мышечной ткани икроножной мышцы и диафрагмы
      • 3. 2. 3. Хроническое сужение дыхательных путей
        • 3. 2. 3. 1. Изменение массы тела и параметров, характеризующих системную гипоксемию
        • 3. 2. 3. 2. Изменения мышечной ткани икроножной мышцы и диафрагмы
    • 3. 3. Функциональные характеристики артерий, приносящих кровь к медиальной головке икроножной мышцы и реберному отделу диафрагмы
      • 3. 3. 1. Вазоконстрикторные реакции артерий икроножной мышцы и диафрагмы
      • 3. 3. 2. Вазодилятаторные реакции артерий икроножной мышцы и диафрагмы
    • 3. 4. Изменения артерий, питающих медиальную головку икроножной мышцы и реберный отдел диафрагмы, при беговой тренировке с меньшей длительностью тренировочного занятия
      • 3. 4. 1. Изменение вазоконстрикторных реакций артерий икроножной мышцы и диафрагмы при беговой тренировке
      • 3. 4. 2. Изменение эндотелий-зависимого расслабления артерий икроножной мышцы и диафрагмы при беговой тренировке
    • 3. 5. Изменение артерий, питающих медиальную головку икроножной мышцы и реберный отдел диафрагмы, при хроническом сужении дыхательных путей
      • 3. 5. 1. Изменение вазоконстрикторных реакций артерий икроножной мышцы и диафрагмы при хроническом сужении дыхательных путей
      • 3. 5. 2. Изменение эндотелий-зависимого расслабления артерий икроножной мышцы и диафрагмы при хроническом сужении дыхательных путей
  • 4. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ

Физическая нагрузка приводит к повышению интенсивности метаболизма в скелетных мышцах, причем характер метаболических процессов зависит от вида выполняемой работы. При ритмической работе умеренной интенсивности скелетные мышцы получают энергию преимущественно за счет аэробного метаболизма [Коц, 1986; Astrand et al., 2003]. Такая мышечная работа сопряжена со значительным повышением потребления О2 организмом, в связи с чем наблюдаются выраженные изменения в работе дыхательной и сердечно-сосудистой систем: повышается легочная вентиляция, увеличиваются артериальное давление и минутный объем кровообращения, происходит перераспределение кровотока в пользу скелетных мышц [Armstrong, Laughlin, 1983; Armstrong, Laughlin, 1984; Musch et al., 1987].

При нагрузке аэробной направленности скорость кровотока в мышцах, состоящих из медленных оксидативных мышечных волокон, увеличивается более значительно, чем в мышцах, состоящих из быстрых гликолитических волокон [Armstrong, Laughlin, 1983; Armstrong, Laughlin, 1984; Armstrong, Laughlin, 1985; Sexton, Poole, 1995; Poole et al., 2000]. Такие особенности кровоснабжения мышц связаны с различными регуляторными характеристиками приносящих к ним кровь артерий. В артериях оксидативных мышц по сравнению с гликолитическими больше эндотелий-зависимое расслабление [Aaker, Laughlin, 2002аLaughlin et al., 2004; McAllister et al., 2005], но меньше плотность симпатической иннервации [Hilton et al., 1970]. Физическая тренировка аэробной направленности приводит к изменению метаболических характеристик и кровеносного русла скелетных мышц, причем выраженность таких изменений в оксидативных мышцах больше, чем в гликолитических [Sullivan et al., 1995; McAllister et al., 2005; Spier et al., 2004; Donato et al., 2007].

Дыхательные мышцы ритмически активны в течение всей жизни организма и поэтому обильно снабжаются кровью даже в отсутствие физической нагрузки [Armstrong, Laughlin, 1983; Armstrong, Laughlin, 1984; Sexton, Poole, 1995; Poole et al., 2000]. В связи с такой особенной функцией в организме дыхательные мышцы отличаются от локомоторных по строению и метаболическим характеристикам.

Они состоят из сравнительно мелких мышечных волокон с очень высокой активностью митохондриальных ферментов (т.е. высоким окислительным потенциалом) и имеют очень большую плотность капиллярной сети [Metzger et al., 1985; Delp, Duan, 1996; Gosselin et al., 19 926- Polla et al., 2004].

Механизмы адаптации к физической нагрузке также могут отличаться в локомоторной и дыхательной мускулатуре. Основным механизмом адаптации локомоторных мышц является повышение их окислительного потенциала [Luginbuhl et al., 1984; Sullivan et al., 1995], тогда как в дыхательных мышцах активность митохондриальных ферментов увеличивается не всегда или в меньшей степени, чем в локомоторных [Powers et al., 1994]. Вместе с тем, даже при умеренной тренировочной нагрузке адаптация диафрагмы может проявляться в виде уменьшения размеров мышечных волокон [Tamaki, 1987; Powers et al., 1992], нельзя также исключить возможность изменения миозинового фенотипа мышц, хотя этот вопрос изучен мало.

В целом вопрос о сходстве или различии изменений, развивающихся в локомоторных и дыхательных мышцах при физической тренировке аэробной направленности, требует дальнейшего изучения. Следует отметить, что поскольку эффекты физической тренировки сильно зависят от протокола нагрузки [Коц, 1986; Astrand et al., 2003], адекватное сопоставление эффектов тренировки на эти мышцы возможно лишь при их параллельном исследовании. Следует, однако, отметить, что таких работ очень мало [Powers et al., 1992; Uribe et al., 1992; Gosselin et al., 19 926]. Кроме того, недостаточно исследованы регуляторные характеристики артерий, приносящих кровь к дыхательным мышцам: на эту тему есть лишь единичные работы [Aaker, Laughlin, 2002аAaker, Laughlin, 20 026]. И, наконец, совсем не исследован вопрос об адаптивных изменениях артерий дыхательной мускулатуры в результате физической тренировки аэробной направленности.

Таким образом, целью данной работы было провести сравнительный анализ изменений, развивающихся в локомоторных и дыхательных мышцах, а также в питающих их кровью артериях, при разных способах повышения функциональной нагрузки.

В качестве дыхательной мышцы исследовали реберный отдел диафрагмы, который в основном обеспечивает ее дыхательную функцию [Poole et al., 2000], а в качестве локомоторной мышцы — медиальную головку икроножной мышцы, которая принимает активное участие в локомоции и состоит из разных типов мышечных волокон [Delp, Duan, 1996], что важно для изучения пластичности мышечной ткани. Артерии, приносящие кровь к этим мышцам, являются одним из участков регуляции мышечного кровотока: они не подвергаются дилятаторному действию тканевых метаболитов и в связи с этим при нагрузке служат мишенью симпатических нервных влияний [Мелькумянц, Балашов, 2005; Fleming et al., 1989; Delp, O’Leary, 2004; Thomas, Segal, 2004].

В работе были поставлены следующие задачи:

1. Исследовать изменения активности окислительных ферментов, размеров мышечных волокон и миозинового фенотипа в икроножной мышце и диафрагме при разных способах повышения функциональной нагрузки.

2. Охарактеризовать артерии, приносящие кровь к икроножной мышце и к диафрагме, по плотности иннервации, сократительным ответам на норадреналин и серотонин, а также по величине эндотелий-зависимого расслабления.

3. Исследовать регуляторные изменения артерий, приносящих кровь к икроножной мышце и диафрагме, при разных способах повышения функциональной нагрузки.

Научная новизна работы. Полученные результаты развивают современные представления об адаптации дыхательных мышц к физической тренировке аэробной направленности. Принципиальная новизна работы состоит в том, что в ней впервые проведен сравнительный анализ адаптивных изменений артерий локомоторной и дыхательной мускулатуры при аэробный тренировке.

Практическая значимость работы. Результаты данной работы позволяют выявить физиологические механизмы, определяющие физическую работоспособность организма в условиях, когда затруднена работа дыхательной системы. Многие заболевания (например, хроническая обструктивная болезнь легких, различные типы миопатий, эндокринные и метаболические нарушения и др.), а также пребывание в условиях гравитационной разгрузки сопровождаются снижением функциональных возможностей дыхательных мышц: уменьшением силы сокращения мышц, в том числе, в результате их утомления [Александрова и др., 1992; Александрова и др., 2005; 11е1с1, ОесЬтап, 1995]. Тренировка дыхательных мышц с применением аэробной физической нагрузки может предотвратить развитие этих нежелательных явлений, в том числе, путем положительного влияния на кровоснабжение мышечной ткани. В данной работе показано, что дыхательные и локомоторные мышцы по-разному адаптируются к физическим нагрузкам, что указывает на необходимость подбора тренировочной нагрузки с учетом функционального состояния каждого из этих типов мышц.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Адаптация локомоторных мышц к повышению функциональной нагрузки происходит в основном за счет увеличения активности окислительных ферментов мышечной ткани, а адаптация дыхательных мышц — за счет увеличения доли медленных мышечных волокон, что должно снижать утомляемость этих мышц.

2. Регуляторные характеристики артерий дыхательной и локомоторной мускулатуры существенно различаются. Эти артерии по-разному адаптируются к физической тренировке: при мышечной работе снижение сосудистого сопротивления в локомоторной мускулатуре происходит за счет усиления продукции N0 эндотелием, а в дыхательной мускулатуре — за счет снижения реактивности сосудов к симпатическим влияниям.

3. Различия механизмов адаптации мышечной ткани и резистивных сосудов диафрагмы к повышенной нагрузке связаны с особенностями функционирования диафрагмы как дыхательной мышцы.

Апробация материалов диссертации. Основные результаты диссертационной работы были представлены на Международной конференции студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов 2007» (Россия, Москва, 2007), IV Всероссийской с международным участием Школе-конференции по физиологии кровообращения (Россия, Москва, 2008), Конференции молодых ученых, специалистов и студентов, посвященной Дню космонавтики (Россия, Москва, 2008, 2009, 2010), Международном симпозиуме «Биологическая подвижность: достижения и перспективы» (Россия, Пущино, 2008), Ежегодной встрече Скандинавского физиологического общества «SPS 2008» (Финляндия, Оулу, 2008), XXXVII Европейской конференции по физиологии мышц «ЕМС 2008» (Великобритания, Оксфорд, 2008), V Всероссийской с международным участием Школе-конференции по физиологии мышц и мышечной деятельности (Россия, Москва, 2009), VII Всероссийской конференции с международным участием «Механизмы функционирования висцеральных систем» (Россия, Санкт-Петербург, 2009), Международной конференции «Нейрососудистые нарушения, вызванные условиями окружающей среды. Молекулярный, клеточный и функциональный подходы» (Франция, Анже, 2010), III Всероссийской с международным участием конференции по управлению движением (Россия, Великие Луки, 2010), Объединенном съезде Скандинавского и Германского физиологических обществ (Дания, Копенгаген, 2010), XXI Съезде Физиологического общества им. И. П. Павлова (Россия, Калуга, 2010), XXXIX Европейской конференции по физиологии мышц «ЕМС 2010» (Италия, Падуя,.

2010), X Международном симпозиуме по резистивным сосудам (Дания, Ребилд,.

2011), 16-ом ежегодном конгрессе Европейского колледжа спортивных наук «ECSS 2011» (Ливерпуль, Великобритания, 2011), Ежегодной встрече Скандинавского физиологического общества «SPS 2011» (Норвегия, Берген, 2011).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 3 статьи в журналах из Перечня периодических изданий, определенных ВАК РФ, и 21 тезисы докладов на конференциях.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Обзор литературы состоит из двух частей. В первой части будут рассмотрены метаболические характеристики локомоторных мышц и их адаптация к физической нагрузке, а также влияние тренировки на кровоснабжение локомоторных мышц с разными метаболическими характеристиками. Вторая часть обзора литературы посвящена рассмотрению дыхательной мускулатуры: особенностей её строения и адаптации к физической тренировке, а также описанию особенностей регуляции кровотока в дыхательных мышцах.

выводы.

1. Адаптация икроножной мышцы к беговой тренировке в аэробном режиме нагрузки выражается в повышении активности ферментов цикла Кребса в мышечных волокнах.

2. В отличие от икроножной мышцы, активность ферментов цикла Кребса в мышечной ткани диафрагмы не изменяется, однако при тренировке с использованием более интенсивной беговой нагрузки уменьшается площадь поперечного сечения мышечных волокон и увеличивается доля мышечных волокон I типа.

3. При локальном повышении нагрузки на диафрагму путем хронического сужения дыхательных путей доля мышечных волокон I типа также увеличивается, активность ферментов цикла Кребса в мышечной ткани не изменяется.

4. Артерии диафрагмы по сравнению с артериями икроножной мышцы более выражено расслабляются при действии ацетилхолина, гуще иннервированы симпатическими волокнами и обладают более высокой чувствительностью к норадреналину.

5. Адаптация артерий локомоторных мышц к аэробной тренировке выражается в увеличении эндотелий-зависимого расслабления, а артерий диафрагмы — в уменьшении чувствительности к норадреналину, хотя при локальной нагрузке на дыхательные мышцы адреночувствительность артерий диафрагмы не изменяется.

6. Различия механизмов изменения мышечной ткани и резистивных сосудов диафрагмы при беговой аэробной тренировке связаны с особенностями функционирования диафрагмы как дыхательной мышцы.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Результаты данной работы свидетельствуют о том, что как мышечная ткань, так и система кровоснабжения локомоторных и дыхательных мышц по-разному адаптируются к физической нагрузки аэробной направленности.

Икроножная мышцы и диафрагма — это две функционально разные мышцы. Диафрагма — постоянно работающая мышца, поэтому ее мышечная ткань характеризуется высоким окислительным потенциалом и состоит из мелких мышечных волокон. Плотность капиллярной сети в диафрагме намного выше, чем в локомоторных мышцах [Green et al., 1989; Gosselin et al., 1992].

После тренировки аэробной направленности в икроножной мышце наблюдается увеличение окислительного потенциала мышечной ткани. Мышечная ткань диафрагмы характеризуется исходно высоким окислительным потенциалом, поэтому в диафрагме адаптивные изменения наблюдаются при более интенсивной тренировочной нагрузке и осуществляются с привлечением иных механизмов. Во-первых, происходит уменьшение площади поперечного сечения мышечных волокон, что должно улучшать снабжение мышцы кислородом и субстратами аэробного метаболизма. В локомоторных мышцах при тренировке аэробной направленности происходит увеличение плотности капиллярного русла за счет появления новых капилляров [Gute et al., 1994; Poole, Mathieu-Costello, 1996]. Примечательно, что количество капилляров, приходящихся на одно мышечное волокно, в диафрагме при тренировке не изменяется [Tamaki et al., 1987; Green et al., 1989]. Это говорит в пользу того, что лучшее кровоснабжение ткани диафрагмы в результате тренировки обеспечивается именно за счет уменьшения ППС мышечных волокон.

Вторым типом изменений мышечной ткани диафрагмы при аэробной тренировке является сдвиг миозинового фенотипа в медленную сторону. Такие адаптивные изменения мышечной ткани должны приводить к уменьшению утомления диафрагмы при выполнении мышечной работы [Vrabas et al., 1999].

Характеристики артерий, питающих две функционально разные мышцы, также различаются. Для артерий диафрагмы характерно более выраженное эндотелий-зависимое расслабление, поскольку в этих артериях эндотелий может быть адаптирован к хронически высокой скорости кровотока, а гладкая мышца обладает высокой чувствительностью к N0. Кроме того, для артерий диафрагмы характерна густая иннервация симпатическими волокнами. Наряду с высокой чувствительностью к медиатору симпатических нервов — норадреналину при спокойном дыхании это обеспечивает сужение артерий и защиту микроциркуляторного русла диафрагмы от высокого давления крови (артерия диафрагмы отходит непосредственно от аорты, где давление крови высокое). Кроме того, исходное сужение артерий создает резерв увеличения кровотока во время физической нагрузки.

В данной работе впервые показано, что адаптация артериального русла дыхательных и локомоторных мышц к физической нагрузке аэробной направленности может происходить за счет разных регуляторных механизмов. В икроножной мышце одновременно с повышением окислительного потенциала мышечной ткани наблюдается увеличение эндотелий-зависимого расслабления артерий в результате повышения способности эндотелия к продукции N0. В артериях диафрагмы, где эндотелий-зависимое расслабление исходно высокое, наблюдается другой тип изменений: уменьшается чувствительность гладкой мышцы к норадреналину, что также должно приводить к улучшению кровоснабжения этой мышцы во время нагрузки.

Таким образом, механизмы адаптации мышечной ткани и кровеносного русла диафрагмы к физической нагрузке аэробной направленности иные, чем в локомоторных мышцах, что связано с принадлежностью диафрагмы к дыхательной мускулатуре и выполнением ею особой функции в организме.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н.П., Баранов В. М., Тихонов М. А., Колесников В. И., Котов А. Н., Кочанов B.C. Влияние антиортостатической гипокинезии на функциональное состояние диафрагмы у крыс // Рос. физиол. Журн им. И. М. Сеченова. 2005. -Т.91 — № 11. — С. 1312−1319.
  2. Н.П., Исаев Г. Г. Проблема утомления дыхательных мышц // Рос. физиол. Журн им. И. М. Сеченова. 1992. — Т.78 — № 10. — С. 1 — 14.
  3. А.А., Андреюк Г. М., Киселева С. И., Кисель М. А., Киселев П. А., Дальнова Т. С., Колб В.Г, Светлицкая С. Г. Определение гемоглобина крови с использованием додецилсульфата натрия // Лаб. Дело 1989. — № 5. — С. 13−15.
  4. И.С., Исаев Г. Г. Физиология дыхания // СПб., Наука. 1994. -С. 180 -184.
  5. Коц Я. М. Спортивная физиология. Учебник для институтов физической культуры // Москва, Физкультура и спорт. 1986. — 240с.
  6. Мак-Комас А. Дж. Скелетные мышцы (строение и функции) // Киев 1998. -С. 193 -223.
  7. A.M., Балашов С. А. Механочувствительность артериального эндотелия // Изд. «Триада», Тверь 2005 — С. 93- 100.
  8. Е.Л., Веселова Е. С., Хаютин В. М. Две фазы рабочей гиперемии в скелетной мышце // Бюлл. экспер. биол. мед. 1976 — Т.8 — С. 920 — 923.
  9. Aaker A., Laughlin М.Н. Diaphragm arterioles are less responsive to ar adrenergic constriction than gastrocnemius arterioles // J Appl Physiol. 2002a. — V. 92. -P. 1808- 1816.
  10. Aaker A., Laughlin M.H. Differential adenosine sensitivity of. diaphragm and skeletal muscle arterioles // J Appl Physiol. 20 026. — V. 93. — P. 848 — 856.
  11. Abdelmalki A., Fimbel S., Mayet-Sornay M.H., Sempore В., Favier R. Aerobic capacity and skeletal muscle properties of normoxic and hypoxic rats in response to training // Pflugers Arch. 1996. — V. 431- № 5. — P. 671−679.
  12. Allen D. L., Sartorius C.A., Sycuro L.K., Leinwand L.A. Different pathways regulate expression of the skeletal myosin heavy chain genes // J Biol Chem. 2001. — V. 276- № 47. — P. 43 524 — 43 533.
  13. Altamirano F., Oyarce C., Silva P., Toyos M., Wilson C., Lavandera S., Uhlen P., Estrada M. Testosterone induces cardiomyocyte hypertrophy through mammalian target of rapamycin complex 1 pathway // J Endocrinol. 2009. — V. 202- № 2. — P. 299 -307.
  14. Ariano M.A., Armstrong R.B., Edgerton V.R. Hindlimb muscle fiber populations of five mammals//J Histochem Cytochem. 1973. — V. 21- № 1.-P. 51−55.
  15. Armstrong R.B., Laughlin M.H. Blood flows within and among rat muscles as a function of time during high speed treadmill exercise // J. Physiol. 1983. — V. 344. — P. 189−208.
  16. Armstrong R.B., Laughlin M.H. Exercise blood flow patterns within and among rat muscles after training // Am. J. Physiol. 1984. — V. 246. — P. H59 — H68.
  17. Armstrong R.B., Phelps R.O. Muscle fiber type composition of the rat hindlimb // Am J Anat.- 1984.-V. 171- № 3.-P. 259−272.
  18. Armstrong RB, Laughlin MH. Metabolic indicators of fibre recruitment in mammalian muscles during locomotion // J Exp Biol. 1985. — V. 115. — P. 201 — 213.
  19. Astrand P.O., Rodahl K., Dahl H.A., Stromme S.B. Textbook of Work Physiology: Physiologic Bases of Exercise // Champaign, Human Kinetics. 2003. — 650 P
  20. Baldwin K.M., Cooke D.A., Cheadle W.G. Time course adaptations in cardiac and skeletal muscle to different running programs // J Appl Physiol. 1977. — V. 42- № 2. — P. 267−272.
  21. Bar A., Pette D. Three fast myosin heavy chains in adult rat skeletal muscle // FEBS Lett. 1988. — V. 235- № 1−2. — P. 153 — 155.
  22. Barnard R.J., Edgerton V.R., Furukawa T., Peter J.B. Histochemical, biochemical, and contractile properties of red, white, and intermediate fibers // Am J Physiol. 1971. -V. 220- № 2. -P. 410−414.
  23. Bedford T.G., Tipton C.M., Wilson N.C., Oppliger R.A., Gisolfi C.V. Maximum oxygen consumption of rats and its changes with various experimental procedures // J Appl Physiol. 1979. — V. 47- № 6. — P. 1278 — 1283.
  24. Bjorklund A., Lindvall O., Svensson L.A. Mechanisms of fluorophore formation in the histochemical glyoxylic acid method for monoamines // Histochemie 1972. — V. 32- № 2. — P. 113 — 131.
  25. Boczkowski J., Vicaut E., Danialou G., Aubier M. Role of nitric oxide and prostaglandins in the regulation of diaphragmatic arteriolar tone in the rat // J Appl Physiol. 1994. — V. 77- № 2. — P. 590 — 596.
  26. Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding // Anal Biochem. V. 72, — 1976.-P. 248−54.
  27. Brooke M.H., Kaiser K.K. Three «myosin adenosine triphosphatase» systems: the nature of their pH lability and sulfhydryl dependence // J Histochem Cytochem. 1970. -V. 18- № 9.-P. 670−672.
  28. Bruckdorfer R. The basics about nitric oxide // Mol Aspects Med. 2005. — V. 26- № 1 — 2. — P. 3 — 31.
  29. Buuck R.J., Tharp G.D. Effect of chronic exercise on adrenocortical function and structure in the rat // J Appl Physiol. 1971. — V. 31- № 6. — P. 880 — 883.
  30. Buus C.L., Pourageaud F., Fazzi G.E., Janssen G., Mulvany M. J, De Mey .JG. Smooth muscle cell changes during flow-related remodeling of rat mesenteric resistance arteries // Circ Res. 2001. — V. 89- № 2. — P. 180 — 186.
  31. Copp S.W., Hirai D.M., Schwagerl P.J., Musch T.I., Poole D.C. Effects of neuronal nitric oxide synthase inhibition on resting and exercising hindlimb muscle blood flow in the rat//J Physiol.-2010.-V. 15- № 588. -P. 1321 1331.
  32. De Troyer A., Sampson M., Sigrist S., Macklem P.T. Action of costal and crural parts of the diaphragm on the rib cage in dog // J. Appl. Physiol.: Respirat. Environ. Exercise Physiol. 1982,-V. 53- № 1,-P. 30−39.
  33. Delp M.D., Duan C. Composition and size of type I, IIA, IID/X, and IIB fibers and citrate synthase activity of rat muscle // J Appl Physiol. 1996 — V. 80- № 1. -P. 261 -270.
  34. Delp M.D., Laughlin M.H. Regulation of skeletal muscle perfusion during exercise // Acta Physiol Scand. 1998. — V. 162- № 3. — P. 411 — 419.
  35. Delp M.D., O’Leary D.S. Integrative control of the skeletal muscle microcirculation in the maintenance of arterial pressure during exercise // Appl Physiol. -2004. V. 97- № 3. — P. 1112 — 1118.
  36. Delp MD. Myogenic and vasoconstrictor responsiveness of skeletal muscle arterioles is diminished by hindlimb unloading // J. Appl. Physiol. 1999. — V. 86- № 4. -P. 1178- 1184.
  37. Demirel H.A., Powers S.K., Naito H., Hughes M., Coombes J.S. Exercise-induced alterations in skeletal muscle myosin heavy chain phenotype: dose-response relationship // J. Appl. Physiol. 1999. — V. 86- № 3. — P. 1002 — 1008.
  38. Donato A.J., Lesniewski L.A., Delp M.D. Ageing and exercise training alter adrenergic vasomotor responses of rat skeletal muscle arterioles // J Physiol. 2007. — V. 579 (Pt 1).-P. 115−25.
  39. Dudley G.A., Abraham W.M., Terjung R.L. Influence of exercise intensity and duration on biochemical adaptations in skeletal muscle // J Appl Physiol. 1982. — V. 53- № 4. — P. 844 — 850.
  40. Ellis E.S., Byrne C., Murphy O.E., Tilford N.S., Baxter G.S. Mediation by 5-hydroxytryptamine2B receptors of endothelium-dependent relaxation in rat jugular vein // Br J Pharmacol. 1995. — V. 114- № 2. — P. 400 — 404.
  41. Ennion S., Sant’ana Pereira J., Sargeant A.J., Young A., Goldspink G. Characterization of human skeletal muscle fibres according to the myosin heavy chains they express // J Muscle Res Cell Motil. 1995. — V. 16- № 1. — P. 35 — 43.
  42. Faber J.E. In situ analysis of alpha- adrenoceptors on arteriolar and venular smooth muscle in rat skeletal muscle microcirculation // Circ Res. 1988. — V. 62- № 1. -P. 37−50.
  43. Fleming B.P., Gibbins I.L., Morris J.L., Gannon B.J. Noradrenergic and peptidergic innervation of the extrinsic vessels and microcirculation of the rat cremaster muscle // Microvasc Res. 1989. V. 38- № 3. — P. 255 — 268.
  44. Fregosi R.F., Sanjak M., Paulson D.J. Endurance training does not affect diaphragm mitochondrial respiration // Respir Physiol. 1987. — V. 67- № 2. — P. 225 -237.
  45. Furness J.B., Costa M. The use of glyoxylic acid for the fluorescence histochemical demonstration of peripheral stores of noradrenaline and 5-hydroxytryptamine in whole mounts // Histochemistry. 1975. — V. 41- № 4. — P.335 -352.
  46. Garland C.J., Plane F., Kemp B.K., Cocks T.M. Endothelium-dependent hyperpolarization: a role in the control of vascular tone // Trends Pharmacol Sci. 1995. -V. 16- № 1.-P. 23 -30.
  47. Glusa E., Pertz H.H. Further evidence that 5-HT-induced relaxation of pig pulmonary artery is mediated by endothelial 5-HT (2B) receptors // Br J Pharmacol. -2000. V. 130- № 3. — P. 692 — 698.
  48. Gosselin L.E., Betlach M., Vailas A.C., Greaser M.L., Thomas D.P. Myosin heavy chain composition in the rat diaphragm: effect of age and exercise training // J Appl Physiol. 1992a. -V. 73- № 4. — P. 1282 — 1286.
  49. Gosselin L.E., Betlach M., Vailas A.C., Thomas D.P. Training-induced alterations in young and senescent rat diaphragm muscle // J Appl Physiol. 19 926. — V. 72- № 4. -P. 1506- 1511.
  50. Green H.J., Plyley M.J., Smith D.M., Kile J.G. Extreme endurance training and fiber type adaptation in rat diaphragm // J Appl Physiol. 1989. — V. 66- № 4. — P. 1914 -1920.
  51. Greenberg H.E., Rao R.S., Sica A.L., Scharf S.M. Effect of chronic resistive loading on hypoxic ventilatory responsiveness // J Appl Physiol. 1997. — V. 82- № 2. -P. 500 — 507.
  52. Greene E.C. Anatomy of the rat. // Hafner Publishing Company, New York and London. 1968. — P. 320.
  53. Guidry G., Landis S.C. Absence of cholinergic sympathetic innervation from limb muscle vasculature in rats and mice // Auton Neurosci. 2000. — V. 14- № 82. — P. 97 -108.
  54. Gute D., Fraga C., Laughlin M.H., Amann J.F. Regional changes in capillary supply in skeletal muscle of high-intensity endurance-trained rats // J Appl Physiol. -1996.-V. 81- № 2.-P. 619−626.
  55. Gute D., Laughlin M.H., Amann J.F. Regional changes in capillary supply in skeletal muscle of interval-sprint and low-intensity, endurance-trained rats // Microcirculation. 1994. — V. l- № 3. — P. 183 — 193.
  56. Hamalainen N., Pette D. The histochemical profiles of fast fiber types IIB, IID, and IIA in skeletal muscles of mouse, rat, and rabbit // J Histochem Cytochem. 1993. -V. 41- № 5. — P. 733 -743.
  57. Hamdi M.M., Mutungi G. Dihydrotestosterone stimulates amino acid uptake and the expression of LAT2 in mouse skeletal muscle fibres through an ERKl/2-dependent mechanism // J Physiol. 2011. — V. 589- № 14. — P. 3623 — 3640.
  58. Heindl S., Lehnert M., Criee C.P., Hasenfuss G., Andreas S. Marked sympathetic activation in patients with chronic respiratory failure // Am J Respir Crit Care Med. -2001.-V. 164- № 4.-P. 597−601.
  59. Henriksson J., Svedenhag J., Richter E.A., Christensen N. J, Galbo H. Skeletal muscle and hormonal adaptation to physical training in the rat: role of the sympathoadrenal system. // Acta Physiol Scand. 1985. — V. 123- № 2. — P. 127 — 138.
  60. Hilton S.M., Jeffries M.G., Vrbova G. Functional specializations of the vascular bed of soleus // J Physiol. 1970. — V. 206- № 3. — P. 543 — 562.
  61. Honig C.R., Odoroff C.L., Frierson J.L. Capillary recruitment in exercise: rate, extent, uniformity, and relation to blood flow // Am J Physiol. 1980. — V. 238- № 1. — P. H31 -H42.
  62. Jasperse J.L., Laughlin M.H. Endothelial function and exercise training: evidence from studies using animal models // Med Sci Sports Exerc. 2006. — V. 38- № 3. — P. 445−454.
  63. Jasperse J.L., Laughlin M.H. Vasomotor responses of soleus feed arteries from sedentary and exercise-trained rats // J. Appl. Physiol. 1999. — V. 86- № 2. — P. 441— 449.
  64. Kadi F. Cellular and molecular mechanisms responsible for the action of testosterone on human skeletal muscle. A basis for illegal performance enhancement. // Br J Pharmacol.-2008.-V. 154- № 3,-P. 522−528.
  65. Keens T.G., Chen V., Patel P., Brien P., Levison H., Ianuzzo C.D. Cellular adaptations of the ventilatory muscles to a chronic increased respiratory load // J. Appl. Physiol.: Respirat. Environ. Exercise Physiol. 1978. — V. 44- № 6. — P. 905 — 908.
  66. D.G., Thomas G.D. {alpha}-adrenoceptor constrictor responses and their modulation in slow-twitch and fast-twitch mouse skeletal muscle // J Physiol. 2005. -V. 563- № 3,-P. 821 -829.
  67. Laughlin M.H., Armstrong R.B. Adrenoreceptor effects on rat muscle blood flow during treadmill exercise // J Appl Physiol. 1987. — V. 62- № 4. — P. 1465 — 1472.
  68. Laughlin M.H., Korzick D.H. Vascular smooth muscle: integrator of vasoactive signals during exercise hyperemia // Med Sci Sports Exerc. 2001. — V.33- № 1. — P. 81 -91.
  69. Laughlin M.H., Roseguini B. Mechanisms for exercise training-induced increases in skeletal muscle blood flow capacity: differences with interval sprint training versus aerobic endurance training // J Physiol Pharmacol. 2008. — V. 59- № 7. — P. 71 — 88.
  70. Laughlin M.H., Woodman C.R., Schrage W.G., Gute D., Price E.M. Interval sprint training enhances endothelial function and eNOS content in some arteries that perfuse white gastrocnemius muscle // J Appl Physiol. 2004. — V. 96. — P. 233 -244.
  71. Lauschke J., Maisch B. Athlete’s heart or hypertrophic cardiomyopathy? // Clin Res Cardiol. 2009. — V.98- № 2. — P. 80 — 88.
  72. Lenasi H., Strucl M. Effect of regular physical training on cutaneous microvascular reactivity // Med Sei Sports Exerc. 2004. — V. 36- № 4. — P. 606 — 612.
  73. Lojda Z. Remarks on histochemical demonstration of dehydrogenases. II. Intracellular localization // Folia Morphol (Praha). 1965. — V. 13. — P. 84 — 96.
  74. Luginbuhl A.J., Dudley G.A., Staron R.S. Fiber type changes in rat skeletal muscle after intense interval training // Histochemistry. 1984. — V. 81- № 1. — P. 55 -58.
  75. McAllister R.M., Jaspere J.L., Laughlin M.H. Nonunifom effects of endurance exercise training on vasodilation in rat skeletal muscle // J Appl Physiol. 2005. — V. 98. -P. 753 -761.
  76. McAllister R.M., Newcomer S.C., Laughlin M.H. Vascular nitric oxide: effects of exercise training in animals // Appl Physiol Nutr Metab. 2008. — V. 33- № 1. — P. 173 — 178.
  77. Metzger J.M., Fitts R.H. Contractile and biochemical properties of diaphragm: effects of exercise training and fatigue // J. Appl. Physiol. 1986. — V. 60- № 5. — P. 1752 — 1758.
  78. Metzger J.M., Scheidt K.B., Fitts R.H. Histochemical and physiological characteristics of the rat diaphragm // J Appl Physiol. 1985. — V. 58- № 4. — P. 1085 -1091.
  79. Miki K., Kosho A., Hayashida Y. Method for continuous measurements of renal sympathetic nerve activity and cardiovascular function during exercise in rats // Exp Physiol. 2002. — V. 87- № 1. — P. 33 — 39.
  80. Miller V.M., Vanhoutte P.M. Endothelial alpha 2-adrenoceptors in canine pulmonary and systemic blood vessels // Eur J Pharmacol. 1985. — V. 26- № 118. -P. 123 — 129.
  81. Moore A.W., Jackson W.F., Segal S.S. Regional heterogeneity of a-adrenoreceptor subtypes in arteriolar networks of mouse skeletal muscle // J Physiol. -2010.-V. 588- № 21.-P. 4261 -4274.
  82. Moore R.L., Gollnick P.D. Response of ventilatory muscles of the rat to endurance training // Pfliigers Arch. 1982. — V. 392. — P. 268−271.
  83. Muller-Delp J.M., Spier S.A., Ramsey M.W., Delp M.D. Aging impairs endothelium-dependent vasodilation in rat skeletal muscle arterioles // Am J Physiol Heart Circ Physiol. 20 026. — V. 283. — P. H1662 — H1672.
  84. Mulvany M.J., Halpern W. Contractile properties of small arterial resistance vessels in spontaneously hypertensive and normotensive rats // Circ Res. 1977. — V. 41- № 1. — P.19 — 26.
  85. Musch T.I., Haidet G.C., Ordway G.A., Longhurst J.C., Mitchell J.H. Training effects on regional blood flow response to maximal exercise in foxhounds // J Appl Physiol. 1987. — V. 62- № 4. — P. 1724 — 1732.
  86. Musch T.I., Terrell J.A., Hilty M.R. Effects of high-intensity sprint training on skeletal muscle blood flow in rats // J Appl Physiol. 1991. — V. 71- № 4. — P. 1387 -1395.
  87. Mylecharane E.J. Mechanisms involved in serotonin-induced vasodilatation // Blood Vessels. 1990. — V. 27- № 2−5. — P. 116 — 126.
  88. Nilsson H. Adrenergic nervous control of resistance and capacitance vessels. Studies on isolated blood vessels from the rat // Acta Physiol Scand Suppl. 1985. — V. 541.-P.1 -34.
  89. Nilsson H., Sjoblom N. Distension-dependent changes in noradrenaline sensitivity in small arteries from the rat // Acta Physiol Scand. 1985. — V. 125- № 3. — P.429 — 435.
  90. Nishikawa Y., Stepp D.W., Chilian W.M. In vivo location and mechanism of EDHF-mediated vasodilation in canine coronary microcirculation // Am J Physiol. 1999. — V. 277- № 3. — P. H1252 — H1259.
  91. Ohyanagi M., Faber J.E., Nishigaki K. Differential activation of alpha 1- and alpha 2-adrenoceptors on microvascular smooth muscle during sympathetic nerve stimulation // Circ Res. 1991. — V. 68- № 1. — P. 232 — 244.
  92. Okumoto T., Imoto T., Katsuta S., Wada M. Severe endurance training fails to change myosin heavy-chain distribution of diaphragm // Respir Physiol. 1996. -V. 104- № 1. — P. 39−43.
  93. O’Leary D.S., Robinson E.D., Butler J.L. Is active skeletal muscle functionally vasoconstricted during dynamic exercise in conscious dogs? // Am J Physiol. 1997. -V. 272- № 1. — P. R386 — R391.
  94. Pansarasa O., D’Antona G., Gualea M.R., Marzani B., Pellegrino M.A., Marzatico F. «Oxidative stress»: effects of mild endurance training and testosterone treatment on rat gastrocnemius muscle // Eur J Appl Physiol. 2002. — V. 87- № 6. — P. 550 — 555.
  95. Peter J.B., Barnard R.J., Edgerton V.R., Gillespie C.A., Stempel K.E. Metabolic profiles of three fiber types of skeletal muscle in guinea pigs and rabbits // Biochemistry. 1972. — V. 11- № 14.-P. 2627 — 2633.
  96. Peterson D.F., Armstrong R.B., Laughlin M.H. Sympathetic neural influences on muscle blood flow in rats during submaximal exercise // J Appl Physiol. -1988.-V. 65- № 1,-P. 434−440.
  97. Pickering M., Jones J.F.X. Comparison of the motor discharge to the crural and costal diaphragm in the rat // Respir. Physiol. Neurobiol. 2007. — V. 159. — P. 21 — 27.
  98. Pitta F., Troosters T., Spruit M.A., Probst V.S., Decramer M., Gosselink R. Characteristics of physical activities in daily life in chronic obstructive pulmonary disease // Am J Respir Crit Care Med. 2005. — V. 171- № 9. — P. 972 — 977.
  99. Polla B., D’Antona G., Bottinelli R., Reggiani C. Respiratory muscle fibres: specialisation and plasticity // Thorax. 2004. — V.59. — P. 808 — 817.
  100. Pollard M.J., Mergirian D., Sherrey J.H. Unity of costal and crural diaphragmatic activity in respiration // Exp. Neurol. 1985. — V. 90- № 1. — P. 187 — 193.
  101. Poole D.C., Mathieu-Costello O. Relationship between fiber capillarization and mitochondrial volume density in control and trained rat soleus and plantaris muscles // Microcirculation. 1996. — V.3- № 2. — P. 175 — 186.
  102. Poole D.C., Sexton W.L., Behnke B.J., Ferguson C.S., Hageman K.S., Musch T.I. Respiratory muscle blood flows during physiological and chemical hyperpnea in the rat. //J Appl Physiol. 2000. — V. 88- № 1,-P. 186- 194.
  103. Powers S.K., Criswell D., Lawler J., Martin D., Ji L.L., Herb R.A., Dudley G. Regional training-induced alterations in diaphragmatic oxidative and antioxidant enzymes // Respir Physiol. 1994. — V. 95- № 2. — P. 227−237.
  104. Powers S.K., Criswell D., Lieu Fu-Kong, Dodd S., Silverman H. Exercise-induced cellular alterations in the diaphragm // Am. J. Physiol. 1992. — V. 263. — P. R1093-R1098.
  105. Powers S.K., Lawler J., Criswell D., Dodd S., Grinton S., Bagby G., Silverman H. Endurance-training-induced cellular adaptations in respiratory muscles // J Appl Physiol. 1990a. — V. 68- № 5. — P. 2114 — 2118.
  106. Powers S.K., Lawler J., Criswell D., Silverman H., Forster H.V., Grinton S., Harkins D. Regional metabolic differences in the rat diaphragm. // J Appl Physiol. -19 906. V. 69- № 2. — P. 648 — 650.
  107. Prezant D.J., Karwa M.L., Kim H.H., Maggiore D., Chung V., Valentine D.E. Short- and long-term effects of testosterone on diaphragm in castrated and normal male rats // J Appl Physiol. 1997. — V. 82- № 1. — P. 134 — 143.
  108. Reid M.B. Role of nitric oxide in skeletal muscle: synthesis, distribution and functional importance // Acta Physiol Scand. 1998. — V. 162- № 3. — P. 401 — 409.
  109. Reid W.D., Dechman G. Considerations when testing and training the respiratory muscles // Phys Ther. 1995. — V. 75- № 11. — P. 971 — 982.
  110. Rowley K.L., Mantilla C.B., Sieck G.C. Respiratory muscle plasticity // Respir Physiol Neurobiol. 2005 -V. 147- № 2−3. — P. 235 -251.
  111. Schiaffino S. Fibre types in skeletal muscle: a personal account // Acta Physiol (Oxf). 2010. — V. 199- № 4.-P. 451 -463.
  112. Schiaffino S., Ausoni S., Gorza L., Saggin L., Gundersen K., Lomo T. Myosin heavy chain isoforms and velocity of shortening of type 2 skeletal muscle fibres // Acta Physiol. Scand. 1988. — V. 134. — P. 575 — 576.
  113. Sexton W.L., Poole D.C. Costal diaphragm blood flow heterogeneity at rest and during exercise // Respir Physiol. 1995. — V. 101- № 2. — P. 171 — 182.
  114. Sexton W.L., Poole D.C. Effects of emphysema on diaphragm blood flow during exercise // J Appl Physiol. 1998. — V. 84- № 3. — P. 971−979.
  115. Shiota S., Okada T., Naitoh H., Ochi R., Fukuchi Y. Hypoxia and hypercapnia affect contractile and histological properties of rat diaphragm and hind limb muscles // Pathophysiology. 2004. — V. 11- № 1. — P. 23 — 30.
  116. Shipley R.D., Kim S.J., Muller- Delp J.M. Time course of flow-induced vasodilation in skeletal muscle: contributions of dilator and constrictor mechanisms // Am J Physiol Heart Circ Physiol. 2005. — V. 288- № 4. — P. H1499 — H1507.
  117. Shvalev V.N., Zhuchkova N.I. Method for identifying adrenergic nervous elements by the glyoxylic method using pontamine sky blue // Neurosci Behav Physiol. -1991. V. 21- № 2. — P.117 — 118.
  118. Sieck G.C., Cheung T.S., Blanco C.E. Diaphragm capillarity and oxidative capacity during postnatal development // J. Appl. Physiol. 1991. — V. 70- № 1. — P. 103 -111.
  119. Srere PA Citrate Synthase. In Methods in Enzymology (ed. Lowenstein JM) // New York: Academic Press. 1969. — P. 3 — 11.
  120. Staron R.S., Pette D. Correlation between myofibrillar ATPase activity and myosin heavy chain composition in rabbit muscle fibers // Histochemistry. 1986. — V. 86- № 1,-P. 19−23.
  121. Stassen F.R., Maas R.G., Schiffers P.M., Janssen G.M., De Mey J.G. A positive and reversible relationship between adrenergic nerves and alpha-1A adrenoceptors in rat arteries // J Pharmacol Exp Ther. 1998. — V. 284- № 1. — P. 399 — 405.
  122. Sullivan V.K., Powers S.K., Criswell D.S., Turner N., Larochelle J.S., Lowenthal D. Myosin heavy chain composition in young and old rat skeletal muscle: effects of endurance exercise // J Appl Physiol. 1995. — V. 78- № 6. — P. 2115 — 2120.
  123. Sun D., Huang A., Koller A., Kaley G. Short-term daily exercise activity enhances endothelial NO synthesis in skeletal muscle arterioles of rats. // J Appl Physiol. 1994. -V. 76- № 5.-P. 2241 -2247.
  124. Suzuki J. Microvascular remodelling after endurance training with Co2+ treatment in the rat diaphragm and hind-leg muscles // Jpn J Physiol. 2002. — V. 52- № 5.-P. 409−419.
  125. Suzuki J., Kobayashi T., Uruma T., Koyama T. Time-course changes in arteriolar and venular portions of capillary in young treadmill-trained rats // Acta Physiol Scand. -2001.-V. 171- № 1,-P. 77−86.
  126. Tamaki N. Effect of endurance training on muscle fiber type composition and capillary supply in rat diaphragm // Eur J Appl Physiol Occup Physiol. 1987. — V. 56- № 2.-P. 127−131.
  127. Tarasiuk A., Scharf S.M., Miller M.J. Effect of chronic resistive loading on inspiratory muscles in rats // J Appl Physiol. 1991. — V. 70- № 1. — P. 216 — 222.
  128. Tarasiuk A., Segev Y. Chronic resistive airway loading reduces weight due to low serum IGF-1 in rats // Respir Physiol Neurobiol. 2005. — V. 145- № 2−3. — P. 177 — 182.
  129. Tarasova O., Sjoblom-Widfeldt N., Nilsson H. Transmitter characteristics of cutaneous, renal and skeletal muscle small arteries in the rat // Acta Physiol Scand. -2003. V. 177- № 2. — P.157 — 166.
  130. Termin A., Staron R.S., Pette D. Myosin heavy chain isoforms in histochemically defined fiber types of rat muscle // Histochemistry. 1989. — V. 92- № 6. — P. 453 — 457.
  131. Thijssen D.H., Rongen G.A., Smits P., Hopman M.T. Physical (in)activity and endothelium-derived constricting factors: overlooked adaptations // J Physiol. 2008. -V. 586- № 2. -P. 319−324.
  132. Thomas G.D., Hansen J., Victor R.G. Inhibition of alpha 2-adrenergic vasoconstriction during contraction of glycolytic, not oxidative, rat hindlimb muscle // Am J Physiol. 1994, — V. 266 (Pt 2) — № 3. — P. H920-H929.
  133. Thomas G.D., Segal S.S. Neural control of muscle blood flow during exercise // J Appl Physiol. 2004. — V. 97- № 2. — P. 731 — 738.
  134. Toporsian M., Ward M.E. Hyporeactivity of rat diaphragmatic arterioles after explosure to hypoxia in vivo //Am J Respir Crit Care Med. 1997. — V. 156. — P. 1572 -1578.
  135. Uribe J.M., Stump C.S., Tipton C.M., Fregosi R.F. Influence of exercise training on the oxidative capacity of rat abdominal muscles // Respir Physiol. 1992. — V. 88- № 1−2.-P. 171 — 180.
  136. Vanhoutte P.M. Endothelial adrenoceptors // J Cardiovasc Pharmacol. 2001. — V38- № 5. — P. 796 — 808.
  137. VanTeeffelen J.W., Segal S.S. Interaction between sympathetic nerve activation and muscle fibre contraction in resistance vessels of hamster retractor muscle // J. Physiol. 2003. — V. 550. — P. 563 — 574.
  138. Victor R.G., Secher N.H., Lyson T., Mitchell J.H. Central command increases muscle sympathetic nerve activity during intense intermittent isometric exercise in humans//Circ. Res. 1995. — V.76. — P. 127−131.
  139. Vincent H.K., Shanely R.A., Stewart D.J., Demirel H.A., Hamilton K.L., Ray A.D., Michlin C., Farkas G.A., Powers S.K. Adaptation of upper airway muscles to chronic endurance exercise // Am J Respir Crit Care Med. 2002. — V. 166. — P. 287 -293.
  140. Vissing S.F., Scherrer U., Victor R.G. Differential control of sympathetic outflow to skin and skeletal muscle during static exercise Stimulation of skin sympathetic nerve discharge by central command // Circ. Res. 1991. — V.69. — P.228 — 238.
  141. Vrabas I.S., Dodd S.L., Powers S.K., Hughes M., Coombes J., Fletcher L., Demirel H., Reid M.B. Endurance training reduces the rate of diaphragm fatigue in vitro // Med Sci Sports Exerc. 1999. — V. 31- № 11. — P. 1605 — 1612.
  142. Ward M.E. Dilation of rat diaphragmatic arterioles by flow and hypoxia: roles of nitric oxide and prostaglandins // J Appl Physiol. 1999. — V. 86- № 5. — P. 1644 — 1650.
  143. Ward M.E. Effect of inhibition of nitric oxide synthesis on the diaphragmatic microvascular response to hypoxia // J Appl Physiol. 1996. — V. 81- № 4. — P. 1633 -1641.
  144. Weeks K.L., McMullen J.R. The athlete’s heart vs. the failing heart: can signaling explain the two distinct outcomes? // Physiology (Bethesda). 2011. — V. 26- № 2. — P. 97- 105.
  145. Wisloff U, Helgerud J, Kemi OJ, Ellingsen O. Intensity-controlled treadmill running in rats: V02max and cardiac hypertrophy // Am J Physiol Heart Circ Physiol. -2001.-V. 280- № 3. P. H1301 -H1310.
  146. Wiist R.C., Gibbings S.L., Degens H. Fiber capillary supply related to fiber size and oxidative capacity in human and rat skeletal muscle // Adv Exp Med Biol. 2009. -V. 645.-P. 75- 80.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!