Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Синтез, исследование сорбционных свойств и аналитическое использование материалов с молекулярными отпечатками 2, 4-дихлорфеноксиуксусной кислоты

Диссертация: Синтез, исследование сорбционных свойств и аналитическое использование материалов с молекулярными отпечатками 2, 4-дихлорфеноксиуксусной кислоты
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Несмотря на интенсивные исследования в области твердофазной экстракции органических соединений с помощью ПМО, многие вопросы, определяющие селективность этих сорбентов и возможность их использования в анализе, до конца не решены и не раскрыты. Лишь в самое последнее время начали появляться работы, свидетельствующие об определяющем влиянии способа получения ПМО и рационального выбора необходимой… Читать ещё >

Синтез, исследование сорбционных свойств и аналитическое использование материалов с молекулярными отпечатками 2, 4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • СОКРАЩЕНИЯ И ОБОЗНАЧЕНИЯ ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР
  • Глава 1. Методы выделения, концентрирования и определения 2,4- 11 дихлорфеноксиуксусной кислоты
    • 1. 1. Общие замечания
    • 1. 2. Методы выделения и концентрирования 2,4- 13 дихлорфеноксиуксусной кислоты
      • 1. 2. 1. Экстракционные методы
      • 1. 2. 2. Сорбционные методы
    • 1. 3. Методы определения 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты 20 1.3.1.Определение методом газовой хроматографии
      • 1. 3. 2. Определение методом высокоэффективной жидкостной 21 хроматографии
      • 1. 3. 3. Электрофоретические методы
      • 1. 3. 4. Другие методы
  • Глава 2. Полимеры с молекулярными отпечатками 2,4- 26 дихлорфеноксиуксусной кислоты
    • 2. 1. Общие представления о полимерах с молекулярными отпечатками
    • 2. 2. Материалы с молекулярными отпечатками 2,4-Д. 34 ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТ
  • Глава 3. Объекты исследования, аппаратура и техника эксперимента
    • 3. 1. Исходные вещества и реагенты
    • 3. 2. Аппаратура и методика эксперимента
  • Глава 4. Синтез материалов с молекулярными отпечатками 2,4дихлорфеноксиуксусной кислоты
    • 4. 1. Синтез полимеров на основе акриламида с молекулярными 43 отпечатками 2,4-Д
      • 4. 1. 1. Метод термической полимеризации с использованием 44 ультразвука
      • 4. 1. 2. Метод термической полимеризации без использования 48 ультразвука
      • 4. 1. 3. Метод фотополимеризации
      • 4. 1. 4. Метод суспензионной полимеризации
      • 4. 1. 5. Удельная поверхность синтезированных полимеров
    • 4. 2. Синтез сорбента на основе силикагеля, модифицированного 58 сверхразветвленным полиметил (метилдихлорсилилпропил)пропилен-силаном, с отпечатками 2,4-Д
    • 4. 3. Резюме к главе
  • Глава 5. Исследование сорбционных свойств материалов с молекулярными отпечатками 2,4-Д
    • 5. 1. Полимеры с молекулярными отпечатками
      • 5. 1. 1. Влияние способа получения
      • 5. 1. 2. Влияние соотношения акриламид: 2,4-Д в реакционной смеси
      • 5. 1. 3. Влияние растворителя
      • 5. 1. 4. Влияние природы молекулы-темплата
      • 5. 1. 5. Факторы, влияющие па стадии сорбции 2,4-Д
    • 5. 2. Силикагель, модифицированный сверхразветвленным полиметил- 89 (метилдихлорсилилпропил)пропиленсиланом, с отпечатками 2,4-Д
      • 5. 2. 1. Факторы, влияющие на стадии сорбции
    • 5. 3. Оценка селективности материалов с отпечатками 92 2,4-Д, синтезированных с помощью различных подходов
    • 5. 4. Резюме к главе
  • Глава 6. Практическое использование сорбентов с отпечатками 2,4-Д
    • 6. 1. Динамическое сорбционное концентрирование 2,4-Д
    • 6. 2. Спектрофотометрическое определение 2,4-Д после 108 концентрирования на полимере с отпечатками
    • 6. 3. Определение 2,4-Д, дикамбы, 2-хлорфенола и 2,4-дихлорфенола 112 методом ВЭЖХ после концентрирования на полимере с отпечатками
  • ВЫВОДЫ

Актуальность работы. Определение микроколичеств 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты (2,4-Д) в водах, почвах и пищевых продуктах относится к числу важных задач в связи с токсичностью этого пестицида из класса хлорфеноксикарбоновых кислот. Как правило, 2,4-Д определяют после предварительного концентрирования, которое все чаще осуществляют методом твердофазной экстракции. Для сорбционного концентрирования 2,4-Д используют силикагели с привитыми октадецильными группами (С 18), активные угли, анионообменники и различные полимерные сорбенты, из которых наиболее эффективным оказался сверхсшитый полистирол. Все перечисленные выше сорбенты являются сорбентами группового действия и наряду с 2,4-Д сорбируют из растворов и другие органические соединения. Кроме того, при использовании некоторых сорбентов, например, активных углей, возникают проблемы с десорбцией. Поэтому в последнее десятилетие, для селективного сорбционного выделения 2,4-Д в нескольких работах предложено использовать полимеры с молекулярными отпечатками (ПМО) 2,4-Д на основе 4-винилпиридина и метакриловой кислоты.

Суть метода молекулярного импринтинга состоит в получении органических или неорганических материалов, способных распознавать молекулы, которые использовались в качестве молекулярных шаблонов (темплатных молекул) при их синтезе. Распознавание становится возможным благодаря присутствию в структуре таких матриц участков (так называемых молекулярных отпечатков), способных к специфическим (комплементарным) взаимодействиям с молекулами-шаблонами или близкими к ним по структуре соединениями. При выборе ПМО в качестве полимерных нано структурированных сорбентов для выделения и концентрирования органических соединений оказывается важным практически неограниченная возможность конструирования сорбентов, селективных к органическим соединениям различных классов, относительная легкость синтеза этих полимеров, их устойчивость.

Автор выражает искреннюю благодарность акад. Ю. А. Золотову за постоянное внимание и помощь в работе и обсуждении результатов.

Несмотря на интенсивные исследования в области твердофазной экстракции органических соединений с помощью ПМО, многие вопросы, определяющие селективность этих сорбентов и возможность их использования в анализе, до конца не решены и не раскрыты. Лишь в самое последнее время начали появляться работы, свидетельствующие об определяющем влиянии способа получения ПМО и рационального выбора необходимой комбинации компонентов, используемой на стадии синтеза этих полимеров, на их сорбционные свойства и, как следствие, на селективность. В связи с этим поиск новых подходов к синтезу ПМО и систематическое исследование их свойств, направленное на изучение действия указанных факторов, является весьма актуальной задачей.

Работа выполнена при поддержке Российского фонда фундаментальных исследований (грант № 05−03−32 639а) и федеральной целевой программы «Исследования и разработки по приоритетным направлениям развития научно-технологического комплекса России на 2007;2012 годы» в рамках блока «Генерация знаний» по приоритетному направлению «Индустрия наносистем и материалов» .

Цель работы состояла в разработке и синтезе новых сорбентов — материалов с молекулярными отпечатками 2,4-Дисследовании и сопоставлении свойств сорбентов, синтезированных с применением различных способовоценке возможности применения этих материалов для сорбционного концентрирования.

2,4-Д.

Достижение поставленной цели предусматривало решение следующих задач:

• оптимизацию методик синтеза нековалентно импринтинтированных ПМО на основе акриламида с отпечатками 2,4-Д методами: термической полимеризации с использованием и без использования ультразвукафотополимеризации и суспензионной полимеризации;

• разработку методики синтеза сорбента на основе силикагеля, модифицированного сверхразветленным полиметил (метилдихлорсилил-пропил)пропиленсиланом с отпечатками 2,4-Д;

• оценку удельной поверхности синтезированных ПМО и соответствующих полимеров сравнения (ПС);

• изучение особенностей сорбции 2,4-Д и некоторых структурно родственных соединений на полимерах с отпечатками этих соединений в зависимости от факторов, варьируемых как на стадии синтеза новых материалов, так и на этапе сорбции;

• оценку селективности и сравнение сорбционных свойств новых материалов, синтезированных с использованием различных подходов;

• разработку методик спектрофотометрического и хроматографического определения 2,4-Д в природных водах после динамического сорбционного концентрирования.

Научная новизна. Предложены способы получения новых сорбентовполимеров на основе акриламида с отпечатками 2,4-Д. Показано, что сверхразветвленные поликарбосиланы можно использовать в качестве полимерных модификаторов силикагелей с целью получения новых материалов, способных к молекулярному распознаванию. Предложена схема синтеза и получен новый сорбент на основе силикагеля, модифицированного сверхразветвленным полиметил (метилдихлорсилилпропил)пропиленсиланом с отпечатками 2,4-Д. На основании анализа изотерм сорбции показано, что синтезированные сорбенты обладают способностью к молекулярному распознаванию 2,4-Д. Обнаружено, что на сорбционные свойства полимеров с молекулярными отпечатками 2,4-Д и некоторых других хлорсодержащих пестицидов влияют способ получения сорбента, соотношение функциональный мономер: темплат в реакционной смеси, природа и количество растворителя, варьируемые на стадии синтеза, и природа молекулы-темплата. Установлено, что полимеры с молекулярными отпечатками сорбируют 2,4-Д в молекулярной форме.

Практическая значимость работы. Синтезированы новые сорбенты для сорбционного выделения 2,4-Д из водных растворов — материалы с отпечатками этого соединения. Продемонстрированы возможности использования этих сорбентов для динамического сорбционного концентрирования из водных растворов 2,4-Д. Выбраны условия концентрирования. Разработана спектрофотометрическая методика определения 2,4-Д по реакции с хромотроповой кислотой после селективного выделения кислоты на микроколонке, заполненной полимером на основе АА с молекулярными отпечатками определяемого соединения. Разработана методика хроматографического определения 2,4-Д, дикамбы, 2-хлори 2,4- дихлорфенолов в водах, включающая их сорбционное концентрирование, десорбцию метанолом и раздельное хроматографическое определение со спектрофотметрическим детектированием.

Положения, выносимые на защиту:

1. Методики синтеза материалов с отпечатками 2,4-Д.

2. Совокупность данных о влиянии различных факторов на удельную поверхность ПМО и соответствующих ПС.

3. Результаты исследования и изученные особенности сорбции 2,4-Д и некоторых других структурно родственных соединений на полимерах с отпечатками этих соединений и соответствующих полимерах сравнения. Данные о связи сорбционной способности ПМО с соотношением функциональный мономер: темплат в реакционной смеси, природой и количеством растворителя, природой молекулы-темплата.

4. Результаты сравнения свойств и селективности сорбентов, синтезированных различными способами.

5. Результаты использования ПМО для динамического сорбционного концентрирования 2,4-Д и последующего спектрофотометрического и хроматографического определения этого соединения.

Апробация работы. Основные результаты доложены на II Международном симпозиуме «Разделение и концентрирование в аналитической химии и радиохимии» (Краснодар, 2005), Международном конгрессе по аналитической химии (ICAS'2006, Москва), XVIII Менделеевском съезде по общей и прикладной химии (Москва, 2007), II Всероссийской конференции по аналитической химии с международным участием «Аналитика России 2007» (Краснодар, 2007).

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 4 статьи и 6 тезисов докладов.

Основное содержание диссертации изложено в следующих работах:

1. Попов С. А., Ирха В. В., Дмитриенко С. Г., Золотов Ю. А., Гетманова Е. В., Музафаров A.M. Синтез и исследование свойств сорбента на основе силикагеля, модифицированного сверхразветвленным поли (метилдихлорсилилпропил)карбосиланом с молекулярными отпечатками 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты. // Вестн. Моск. ун-та. Серия 2. Химия. 2008. Т. 49. №. 1. С. 45−52.

2. Попов С. А., Дмитриенко С. Г., Чумичкина Ю. А., Золотов Ю. А. Сорбционные свойства полимеров с молекулярными отпечатками хлорсодержащих пестицидов. // Журн. физической химии. 2009. Т.83. №. 4. С. 649 — 654.

3. Попов С. А., Дмитриенко С. Г., Золотов Ю. А. Спектрофотометрическое определение 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты после сорбционного концентрирования на полимере с молекулярными отпечатками. // Заводская лаборатория. 2009. Т.75. №. 3. С. 11 — 13.

4. Медянцева Э. П., Варламова P.M., Плотникова О. Г., Будников Г. К., Дмитриенко С. Г., Попов С. А. Аналитические возможности иммобилизованных в нитроцеллюлозную матрицу полимеров с молекулярными отпечатками дихлорфеноксиуксусной кислоты. // Ученые записки Казанск. гос. ун-та. Естественные науки. 2007. Т. 149. № 1. С. 41 — 50.

5. Ирха В. В., Попов С. А., Дмитриенко С. Г., Еремин С. А., Хатунцева Л. Н., Золотов Ю. А. Выделение и концентрирование 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты с отпечатками этого соединения. / Тез. докл. II Международного симпозиума «Разделение и концентрирование в аналитической химии и радиохимии». Краснодар. 25.09 -30.09.2005. С. 176.

6. Попов СА., Дмитриенко С. Г., Ирха В. В., Золотов Ю. А., Гетманова Е. В., Музафаров A.M. Синтез и исследование сорбционных свойств сорбента с молекулярными отпечатками 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты на основе силикагеля, модифицированного сверхразветвленным дихлоркарбосилановым полимером. / Тез. докладов X Международной конференции «Теоретические проблемы химии поверхности, адсорбции и хроматографии», Москва, 24−28 апреля 2006 г. С. А-198.

7. Popov S.A., Dmitrienko S.G., Irkha V.V., Zolotov Yu.A. Influence of different solvents on molecular recognition ability of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid-imprinted polymers. / Proceed, of the International Congress on Analytical Science (ICAS'2006). Moscow. June 25 — 30, 2006. V. 2. P. 680.

8. Дмитриенко С. Г., Попов C.A., Кудринская B.A., Золотов Ю. А. Синтез и исследование сорбционных свойств полимеров с молекулярными отпечатками органических соединений. / Тез. докладов XVIII Менделеевского съезда по общей и прикладной химии. Москва, 23.09−28.09. 2007. С. 130.

9. Медянцева Э. П., Варламова P.M., Плотникова О. Г., Будников Г. К., Попов С. А., Дмитриенко С. Г. Иммобилизованные полимеры с молекулярными отпечатками для определения дихлорфеноксиуксусной кислоты с амперометрическим детектированием. / Тез. докл. II Всероссийской конференции по аналитической химии с международным участием «Аналитика России 2007». Краснодар, 7.10−12.10. 2007. С. 90.

10. Попов С. А., Дмитриенко С. Г., Золотов Ю. А., Гетманова Е. В., Музафаров A.M. Новый подход к получению сорбентов с молекулярными отпечатками 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты. / Тез. докл. II Всероссийской конференции по аналитической химии с международным участием «Аналитика России 2007». Краснодар, 7.10 — 12.10. 2007. С. 232.

ЛИТЕРАТУРНЫЙ ОБЗОР.

выводы.

1. Методами термической полимеризации с использованием и без использования ультразвука, фотополимеризации и суспензионной полимеризации синтезированы новые материалы — нековалентно импринтинтированные ПМО на основе акриламида с отпечатками 2,4-Д. Методом термической полимеризации с использованием ультразвука синтезированы ПМО на основе акриламида с отпечатками дикамбы и (К8)-1-п-хлорфенил-4,4-диметил-3-(1Н-1,2,4-триазол-1-илметил)пентан-3-ола. Оптимизированы условия синтеза полимеров путем варьирования соотношения функциональный мономер: темплат в реакционной смеси, природы и количества растворителя, природы целевой молекулы-темплата.

2. Разработана методика и осуществлен синтез ковалентно импринтированного материала с отпечатками 2,4-Д на основе силикагеля, модифицированного сверхразветвлённым полиметил (метилдихлорсилилпропил)пропиленсиланом.

3. Проведена оценка удельной поверхности синтезированных материалов. Установлено, что удельная поверхность ПМО и ПС зависит от их способа получения. Показано, что ПМО имеют более развитую поверхность по сравнению с соответствующими ПС. Установлено, что наряду с растворителем, 2,4-Д выступает в качестве порообразователя. Показано, что, варьируя условия синтеза ПМО, можно получать сорбенты с различной величиной удельной поверхности.

4. Проведена сравнительная оценка сорбционных свойств синтезированных материалов. Обнаружено, что лучшей способностью к повторному связыванию 2,4-Д обладают ПМО, синтезированные методом термической полимеризации с использованием ультразвука и методом суспензионной полимеризации. Высказано и экспериментально подтверждено предположение о важной роли между соотношением АА:2,4-Д в реакционной смеси и сорбционными свойствами ПМО.

Показано, что на сорбционные свойства синтезированных ПМО влияет природа и количество растворителя, используемого на стадии синтеза, и природа молекулы-темплата.

5. На примере структурно родственных соединений проведена оценка селективности материалов с отпечатками 2,4-Д и показано, что способ синтеза материалов оказывает решающее влияние не только на эффективность сорбентов и способность к повторному связыванию 2,4-Д, но и их селективность.

6. Разработана методика динамического сорбционного концентрирования 2,4-Д на микроколонке, заполненной ПМО, с последующим ее определением в элюате спектрофотометрическим методом по реакции с хромотроповой кислотой с пределом обнаружения на уровне 0,17 ПДК для питьевых вод и 0,005 ПДК для природных вод.

7. Оптимизированы условия разделения 2,4-Д, дикамбы и 2,4-дихлорфенола и 2-хлорфенола и их определения в элюате методом ВЭЖХ со спектрофотометрическим детектором после предварительного сорбционного выделения этих соединений на микроколонке, заполненной ПМО.

Автор выражает искреннюю благодарность к.х.н., с.н.с. Е. В. Гетмановой и д.х.н., член-корр. РАН A.M. Музафарову за помощь в синтезе сорбента на основе силикагеля, модифицированного сверхразветвленным полиметил (метилдихлорсилилпропил)пропиленсиланом с отпечатками 2,4-Д, Е. Н. Шаповаловой за консультации при выполнении хроматографической части работы, В. В. Ирхе и Ю. А. Чумичкиной за сотрудничество в работе и помощь в обсуждении результатов.

Показать весь текст

Список литературы

  1. М.И. Пестициды и охрана агрофитоценозов. М.: Колос. 1992. 269 с.
  2. И. Поведение химических загрязнителей в окружающей среде./ Пер. с англ. М.: Мир. 1992. 281с.
  3. Л.М., Белова Р. С. Производные хлорфеноксиуксусных кислот и охрана окружающей среды. Саратов: СГУ. 1983. 124 с.
  4. Прогнозирование поведения пестицидов в окружающей среде. Тр. Сов.-амер. симпоз. Ереван, октябрь 1981. Л.: Гидрометеоиздат. 1984. 306 с.
  5. Cserha’ti Т., Forga’cs Е. Phenoxyacetic acids: separation and quantitative determination. // J. Chromatogr. B. 1998. V. 717. P. 157−178.
  6. Ю.С., Родин А. А. Пробоподготовка в экологическом анализе. М.: Lab-Press. 2005. 695 с. .
  7. Khan S.U. Electron capture gas-liquid chromatographic method for the simultaneous analysis of 2,4-D, dicamba, and mecoprop residues in soil, wheat, and barley. // J. Assoc. Off. Anal. Chem. 1975. V. 58. № 5. p. Ю27−1031.
  8. Woodham D. W., Mitchell W. G., Loftis C. D., Collier C.W. An improved gas chromatographic method for the analysis of 2,4-D free acid in soil. // J. Agric. Food Chem. 1971. V. 19. № 1. P. 186−188.
  9. Leather G.R., Forrence L.E. Residues of 4-(2,4-Dichlorophenoxy)butyric Acid in Winter Wheat. // J. Environ. Anal. 1982. V. 11. P. 345−346.
  10. Smith A.E. Gas chromatographic method for analysis of 2,4-D in wheat: interlaboratory study. // J. Assoc. Off. Anal. Chem. 1984. V. 67 P. 794−800.
  11. Chiang L., James B.D., Magee R.J. Chromatographic determination of chlorinated phenoxyacetic acids by simultaneous extraction-methylation and application to soil analysis. // Anal. Chim. Acta. 1991. V. 255. P. 187−196.
  12. D.P., Whitney E.W. (1974). Monitoring 2,4-D residues at Loxahatchee National Wildlife Refuge. //Pestic. Monit. J. 1974. V. 7. P. 146−152.
  13. Wojtalik T.A. Hall T.F., Hill L.O. Monitoring ecological conditions associated with wide-scale applications of DMA 2,4-D to aquatic environments. // Pestic. Monit. J. 1971. V.4.P. 184−203.
  14. Waliszewski S.M., Pardo Sedas V.T. The use of silar 10 CP for the packed column gas chromatographic determination of chlorophenoxyacetic acid herbicides in water and sediments. // Int. J. Environ. Anal. Chem. 1992. V. 49 P.231−238.
  15. Durand G., Bouvot V., Barcelo D. Determination of trace levels of herbicides in estuarine waters by gas and liquid chromatographic techniques. // J. Chromatogr. V. 607. P.319−327.
  16. Suzuki Т., Watanabe S. Screening method for phenoxy acid herbicides in ground water by high-performance liquid chromatography of 9-anthryldiazomethane derivatives and fluorescence detection. // J. Chromatogr. 1991. V. 541. P. 359−364.
  17. Suzuki Т., Watanabe S. Liquid chromatographic screening method for fluorescent derivatives of chlorophenoxy acid herbicides in water. // J. Assoc. Off. Anal. Chem. 1992. V. 75. P. 720−724.
  18. Cessna A.J. The determination of residues of 2,4-D in post-emergence-treated triticale//Pestic. Sci. 1992. V. 30. P. 141−147.
  19. Sanchez-Brunete C., Garcia-Valcarcel A.I., Tadeo J.L. Determination of residues of phenoxy acid herbicides in soil and cereals by gas chromatography-ion trap detection. // J. Chromatogr. A. V. 675. P. 213−218.
  20. Hopper M.L., McMahon В., Griffitt K.R., Cline K., Fleming-Jones M.E., Kendall D.C. Analysis of fatty and nonfat foods for chlorophenoxy alkyl acids and pentachlorophenol. // J. AOAC Int. V. 75. P. 707−713.
  21. Hawthorne S.B., Miller D.J., Nivens D.E., White D.C. Supercritical fluid extraction of polar analytes using in situ chemical derivatization. // Anal. Chem. 1992 V. 64. P. 405−412.
  22. E. A., Harsh J. В., Hill H. H. Supercritical Fluid Extraction of 2,4-D from Soils Using Derivatization and Ionic Modifiers // Jr. Talanta. 1993. V. 40. № 2. P. 147−155.
  23. Renberg L. Ion exchange technique for the determination of chlorinated phenol and phenoxy acids in organic tissue, soil and water. // Anal. Chem. 1974. V. 46. P. 459 461.
  24. Schultz D.P., Whitney E.W. Monitoring 2,4-D residues at Loxahatchee National Wildlife Refuge. // Pestic. Monit. J. 1974. V. 7. P. 146−152.
  25. Yip G. Improved method for determination of chlorophenoxy acid residues in total diet samples. // J. Assoc. Off Anal Chem. 1971. V. 54. P. 966−969.
  26. Bjerke E.L., Herman J.L., Miller P.W., Wetters J.H. Residue study of phenoxy herbicides in milk and cream. // J. agr. Food. Chem. 1972. V. 20. P. 963−967.
  27. Munro H.E. Determination of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and 2,4,5-trichlorophenoxyacetic acid in tomato plants and other commercial crops by microcoulometric gas chromatography. // Pestic. Sci. 1972. V. 3. V. 371−377.
  28. Tucker D.P.H., Phillips R.L. Movement and degradation of herbicides in Florida Citrus Soils. // Proc. Fl. State Hortic. Soc. 1969. V. 81. P. 72−75.
  29. Bristol D.W., Nelson D.C., Cook L.W. Residues and dissipation of 2,4-D and 2,4-DCP in potato tubers.//Am. Potato J. 1981. V. 58. № 3. P. 143−151.
  30. Lokke H. Analysis of free and bound chlorophenoxy-acids in cereals. // Bull, environ. Contam. Toxicol. 1974. V. 13. P. 730−736.
  31. Woodham D.W., Mitchell W.G., Loftis C.D., Collier C.W. An improved gas chromatographic method for the analysis of 2,4-D free acid in soil. // J. agr. Food Chem. 1971. V. 19. P. 186−188.
  32. Bogus E.R.- Watschke T.L.- Mumma R.O. Utilization of solid-phase extraction and reversed-phase and ion-pair chromatography in the analysis of seven agrochemicals in water. // J. Agric. Food Chem. 1990. V. 38. P.142−144.
  33. Hoke S.H., Brueggemann E.E., Baxter L.J., Trybus T. Determination of phenoxy acid herbicides using solid-phase extraction and high-performance liquid chromatography. // J. Chromatogr. 1986. V. 357. P. 429−432.
  34. Sherma J. Determination of triazine and chlorophenoxy acid herbicides in natural water samples by solid phase extraction and quantitative thin layer chromatography. // J. Liq. Chromatogr. 1986. V.9. P. 3433.
  35. Wells M.J.M., Lan Z. Yu. Establishing the feasibility of coupled solid-phase extraction-solid-phase derivatization for acidic herbicides. // J. Chromatogr. A. 2007. V. 1143. P. 16−25.
  36. Wells M.J.M., Michael J.L. Reversed-phase solid-phase extraction for aqueous environmental sample preparation in herbicide residue analysis. // J. Chromatogr. Sci. 1987. V. 25. P. 345−350.
  37. Wells M.J.M., Michael J.L. Recovery of picloram and 2,4-dichlorophenoxyacetic acid from aqueous samples by reversed-phase solid-phase extraction. // Anal. Chem. 1987. V. 59. P. 1739−1742.
  38. Swineford D.M., Belisle A.A. Analysis of trifluralin, methyl paraoxon, methyl parathion, fenvallerate and 2,4-D dimethylamine in pond water using solid-phase extraction. // Environ. Toxicol. Chem. 1989. V. 8. P. 465−468.
  39. Wells M.J.M. The effect of silanol masking on the recovery of picloram and other solutes from a hydrocarbonaceous pre-analysis extraction column. // J. Liq. Chromatogr. 1982. V. 5. P. 2293−2309.
  40. Wells M.J.M., Michael J.L., Neary D.G. Determination of picloram in soil and water by reversed-phase liquid chromatography. // Arch. Environ. Contam. Toxicol. 1984. V. 13. P. 231−235.
  41. Johnson W.G., Lavy T.L., Senseman S.A. Stability of selected pesticides on solid-phase extraction disks. // J. Environ. Qual. 1994. V. 23. P. 1027−1031.
  42. Monohan K., Tinsley I.J., Shepherd S.F., Field J.A. Quantitative determination of the acidic metabolites of dacthal in ground water by strong anion exchange solid-phase extraction. // J. Agric. Food Chem. 1995. V. 43. P. 2418−2423.
  43. Crescenzi C., Di Corcia A., Passariello G., Samperi R., Carou M.I.T. Evaluation of two new examples of graphitized carbon blacks for use in solid-phase extraction cartridges. // J. Chromatogr. 1996. A. V. 733. P. 44−55.
  44. Lagana A., Fago G., Marino A. Determination of aryloxyphenoxypropionic acid herbicides in water using different solid-phase extraction procedures and liquid chromatography-diode array detection. // J. Chromatogr. A. 1998. V. 796. P. 309−318.
  45. Nouri В., Fouillet В., Toussaint G., Chambon P., Chambon R. High-performance liquid chromatography with diode-array detection for the determination of pesticides in water using automated solid-phase extraction. // Analyst. 1995. V. 120. P. 1133−1136.
  46. Hodgeson J., Collins J., Bashe W. Determination of acid herbicides in aqueous samples by liquid-solid disk extraction and capillary gas chromatography. // J. Chromatogr. A. 1994. V.659. P. 395−401.
  47. Masque N., Galia M., Marce R. M, Borrul F. Solid-phase extraction of phenols and pesticides in water with a modified polimeric resin. // Analyst. 1997. V. 122. P. 425−428.
  48. Masque N., Marce R. M, Borrul F. Comparision of different sorbents for on-line solid-phase extraction of pesticides and phenolic compounds from natural water followed by liquid chromatography. // J. Chromatogr. A. 1998. V. 793. P. 257−263.
  49. Masque N., Galia M., Marce R. M, Borrul F. New chemically modified polimeric resin for solid-phase extraction of pesticides and phenolic compounds from water. // J. Chromatogr. A. 1998. V. 803. P. 147−155.
  50. Masque N., Marce R. M, Borrul F. New polimeric and other types of sorbents for solid-phase extraction of polar organic micropollutants from environmental water. // Trends Anal. Chem. 1998. V. 17. P. 384−394.
  51. Loconto P. R. Isolation and recovery from water of selected chlorophenoxy acid herbicides and similar weak acid herbicides by solid-phase extraction HPLC and photodiode array detection. //J. Liq. Chromatogr. 1991. V.14. P. 1297−1314.
  52. Di Corcia A., Marchetti M. Multiresidue method for pesticides in drinking water using a graphitized carbon black cartridge extraction and liquid chromatographic analysis. //Anal. Chem. 1991. V. 63. P. 580−585.
  53. Devine J.M., Zweig G. Note on the determination of some chlorophenoxy herbicides and their esters in water. // J. Assoc. Offic. Anal. Chem. 1969. V. 52. P. 187 189.
  54. Yip G., Meys R.E. Analysis of 2,4-D residues in milk and forage grasses. // Weeds. 1966. V. 14. P. 167−170.
  55. Crosby D.G., Bowers J.B. Determination of 2,4-D residues in animal products. // Bull. Environ. Contam. Toxicol. 1966. V. 1. P. 104−107.
  56. Hagin R.D., Linscott D.L. Determination of 4(2,4-dichlorophenoxybutyric acid (2,4-DB) and 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) in forage plants. // J. Agr. Food Chem. 1965. V. 13. P. 123−125.
  57. Gutenmann W.H., List D.J. Rapid determination of 4(2,4-DB) and a metabolite, 2,4-D, in treated forage by electron affinity spectroscopy. // J. Agr. Food Chem. 1963. V.ll. P. 304−306.
  58. Meaghen W.R. Determination of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and 2(2,4,5-trichlorophenoxy) propionic acid in citrus by electron capture gas chromatography. // J. Agr. Food Chem. 1966. V. 14. P. 374−377.
  59. Erickson L.C., Hield H.Z. Determination of some 2,4-dichlorophenoxyacetic acid in citrus fruit. // J. Agr. Food Chem. 1962. V. 10. P. 204−207.
  60. Hendrickson R., Meagher W.R. Spray residues of 2,4-D and 2,4,5-TP in «pineapple» orange peel. // J. Agr. Food Chem. 1969. V. 17. P. 601−603.
  61. Butz S., Heberer Th., Stan H.J. Determination of phenoxyalkanoic acids and other acidic herbicides at the low ppt level in water applying solid-phase extraction with RP-C18 material. // J. Chromatogr. A. 1994. V. 677. P. 63−74.
  62. Swineford D.M., Belisle A.A. Analysis of trifluralin, methyl paraoxon, methyl parathion, fenvalerate and 2,4-D dimethylamine in pond water using solid-phase extraction. //Environ. Toxicol. Chem. 1989. V. 8. P. 465−468.
  63. Wells M.J.M., Yu L.Z. Solid-phase extraction of acidic herbicides. // J. Chromatogr. A. 2000. V. 885. P. 237−250.
  64. Di Corcia A., Marchetti M. Method development for monitoring pesticides in environmental waters: liquid-solid extraction followed by liquid chromatography. // Environ. Sci. Technol. 1992. V. 26. P. 66−74.
  65. Gokmen V.- Acar J. A. study on the possibility of using HPLC for the determination of 2,4-D in tomatoes. // J. of liq. chromatogr and rel. technol.1996. V. 19. P. 1917−1926.
  66. Flanagan R.J., Ruprah M. HPLC measurement of chlorophenoxy herbicides, bromoxynil, and ioxynil, in biological specimens to aid diagnosis of acute poisoning. // Clin Chem. 1989. V. 35. № 7. p. 1342−1347.
  67. Aprea C., Sciarra G., Bozzi N., Lunghini L. Analysis of 2,4-Dichlorophenoxyacetic Acid and 2-Methyl-4-Chloro-Phenoxyacetic Acid in Human Urine. //Methods in Biotechnology. 2005. V. 19. P. 91−103.
  68. Miller K.D., Milne P. Determination of low-level pesticide residues in soft drinks and sports drinks by liquid chromatography with tandem mass spectrometry: collaborative study. //J. AOAC Int. 2008. V. 91. № 1. P. 181−201.
  69. Dickow L.M., Gerken D.F., Sams R.A., Ashcraft S.M. Simultaneous determination of 2,4-D and MCPA in canine plasma and urine by HPLC with fluorescence detection using 9-anthryldiazomethane (ADAM). // J. Anal. Toxicol. 2001. V. 25. №.1. P. 35−39.
  70. Hamann R., Meier M., Kettrup A. Determination of phenoxy acid herbicides by high-performance liquid chromatography and on-line enrichment. // Fr. J. Anal. Chem. 1989. V.334. №.3. P. 1432−1130.
  71. Marchese S., Gentili A., Perret D., D’Ascenzo G., Faberi A. Determination of phenoxyacid herbicides and their phenolic metabolites in surface and drinking water. // Rapid Commun. Mass Spectrom. 2001. V. 16. P. 134−141.
  72. Baggiani С., Giovannoli С., Anfossi L., Tozzi C. Molecularly imprinted solid-phase extraction sorbent for the clean-up of chlorinated phenoxyacids from aqueous samples. // J. Chromatogr. A. 2001. V. 938. P. 35−44.
  73. Huen J.M., Gillard R., Mayer A.G., Baltensperger В., Kern H. Automatic measurement of pesticides in drinking water using on-line solid-phase extraction, HPLC and chemometry. // Fresenius' J. Anal. Chem. 1994. V. 348 P. 606−614.
  74. Balinova A. Ion-pairing mechanism in the solid-phase extraction and reversed-phase high-performance liquid chromatographic determination of acidic herbicides in water. // J. Chromatogr. A. 1996. V. 728. P. 319−324.
  75. Larson R.D., Houglum J.E. Liquid chromatography of pesticide formulations containing dicamba, 2,4-D, and MCPP. // J. Assoc. Off. Anal. Chem. 1991. V. 74. P.679−681.
  76. Frebortova J., Tatarkovicova V. Trace enrichment of chlorinated phenols from drinking water on chemically bonded phases for high-performance liquid chromatography. Analyst. 1994. V. 119. P. 1519−1523.
  77. DiCorcia A., Marchetti M., Samperi R. Extraction and isolation of phenoxy acid herbicides in environmental waters using two adsorbents in one mini cartridge. // Anal. Chem. 1989. V. 61. P. 1363−1367.
  78. H.B., Карцова JI.А. Оптимизация условий разделения гербицидов класса хлорфеноксикарбоновых кислот в природных и питьевых водах методом капиллярного электрофореза. // Журн. аналит. химии, 2002. Т. 57. № 7. С. 766−772.
  79. Penmetsa K.V.- Leidy R.B.- Shea D. Herbicide analysis by micellar electrokinetic capillary chromatography. // J. Chromatogr. A. 1996. V. 745. P. 201−208.
  80. Yu Y., Richard B.C. Micellar electrokinetic capillary chromatography method for direct determination of herbicides in lake Pontchartrain, Louisiana, Sediments. // Environ. Sci. Technol. 1997. V. 31. P. 3251−3257.
  81. Susse H., Muller H. Pesticide analysis by micellar electrokinetic capillary chromatography. // J. Chromatogr. A. 1996. V. 730. P. 337−343.
  82. Y.S., Мак J.L. Determination of pesticides in drinking water by micellar electrokinetic capillary chromatography. // Electrophoresis. 2001. V.22. P. 2260−2269.
  83. B.C., Левашова А. И., Еремин C.A. Определение пестицидов методом иммуноферментного анализа. // Журн. аналит. химии. 2005. Т. 60. № 3. С. 230−246.
  84. Matveeva E.G., Popova V.A., Eremin S.A. Detection of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid in reverse micelles AOT/n-octane by polarization and quenching fluoroimmunoassays. // J. Fluorescence. 1997. V.7. № 4. P. 251−256.
  85. Еремин C. A, Ефимова Ю. А., Лаасис Б., Арон Ж. Ж. Определение 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты и гербицидов класса хлорфеноксикислот методом фотоиндуцированной флуоресценции. // Агрохимия. 1996. № 2. С. 102−106.
  86. Eremin S. A., Matveeva Е. G., Gomez-Hens A., Perez-Bendito D. Kinetic determination of 2,4-Dichlorophenoxyacetic acid by stopped-flow fluorescence polarization immunoassay. // Intern. J. Environ. Anal. Chem. 1998. V. 67. P. 1−10.
  87. Еремин C. A, Крикунова B.C., Краснова А. И., Попова B.A., Оннерферд П. Разработка метода экспрессного опредделения пестицида 2,4,5-Т, предшественника диоксинов. //Агрохимия. 1998. Т. 6. С. 80−85.
  88. Wittmann С., Bier F.F., Eremin S.A., Schmid R.D. Quantitative analysis of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid in water samples by two immunosensing methods. // J. Agric. Food Chem. 1996. V. 44. P. 343−350.
  89. Wan Q.H., Chris X. Le. Fluorescence polarization studies of affinity interactions in capillary electrophoresis. // Anal. Chem. 1999. V. 19. №. 7. P. 4183−4189.
  90. Marquardt R.P., Luce E.N. Determination of small amounts of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid in milk. // Anal. Chem. 1951. V. 23. P. 1484−1486.
  91. Marquardt R.P., Luce E.N. Determination of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) in grain and seed. // J. Agr. Food Chem. 1955. V. 3. P. 51−53.
  92. Erickson L.C., Brannaman B.L. Chromatropic acid method for determining 2,4-D residues. // Hilgardia. 1954. V. 23. P. 175−184.
  93. Aly O.M., Faust S.D. Determination of phenoxyacetic acids with J and phenyl acids. // J. Anal.Chem. 1964. V. 36. P. 2200−2201.108.. Коренман И. М. Фотометрический анализ. Методы определения органических соединений. М.: Химия. 1970. 343 с.
  94. Marquardt R.P., Luce E.N. A new procedure for determining phenoxyacid herbicides in agricultural products. // J. Agr. Food Chem. 1961. V. 9. P. 266−270.
  95. Warshowsky В., Schantz E. Determination of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid in soil. // J. Anal. Chem. 1950. V. 22. P. 460−463.
  96. Aly O.M., Faust S.D. Determination of 2,4-dichloro-phenoxyacetic acid in surface water. // J.Amer. Waterworks Assoc. 1963. V. 55. P. 639−646.
  97. Gordon N., Beroza M. Spectrophotometric determination of small quantities of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid and 2,4,5-trichlorophenoxyacetic acid. // Anal. Chem. 1952. V. 24. P. 1968−1971.
  98. Kuznetsov Y.J., Gagarina M.I. Photometric determination of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) with butyl rhodamine. // Zhur. Anal. Khim. 1962. V. 17. P. 235−237.
  99. Salo Т., Makinen R.Z. Thin-layer chromatography of substances used for treatment of citrus fruit peel: -biphenyl, o-phenyl phenol and 2,4-D. // Z. Lebensm. u. Forsch. 1964. V. 125. P. 170−171.
  100. Abbott D.C., Egan H., Hammond E.W., Thomson J. The chromatographic detection and determination of organo-chlorine herbicides in soil and water. // Analyst. 1964. V. 89. P. 480−488.
  101. Guilbault G.G., Sadar M.H. Fluorometric determination of pesticides. // Anal. Chem. 1969. V.41. P. 366−368.
  102. Molecularly imprinted polymers. Man-made mimics of antibodies and their application in analytical chemistry. / Ed. Sellergren B. Elsevier. 2001. 582 p.
  103. Andersson L.I. Molecular imprinting: developments and applications in the analytical chemistry field. // J. Chromatogr. B. 2000. V. 745. P. 3−13.
  104. Haupt K. Molecularly imprinted polymers in analytical chemistry. // Analyst. 2001. V. 126. P. 747−756.
  105. Andersson L.I. Molecular imprinting for drug bioanalysis. A review on the application of imprinted polymers to solid-phase extraction and binding assay. // J. Chromatogr. B. 2000. V. 739. P. 163−173.
  106. Masque N., Marce R.M., Borrul F. Molecularly imprinted polymers: new tailor-made materials for selective solid-phase extraction. // Trends Anal. Chem. 2001. V. 20. P. 477−486.
  107. Kempe M., Mosbach K. Molecular imprinting used for chiral separations. // J. Chromatogr. A. 1995. V. 694. P. 3−13.
  108. Takeuchi Т., Haginaka J. Separation and sensing based on molecular recognition using molecularly imprinted polymers. // J. Chromatogr. B. 1999. V. 728. P. 1−20.
  109. Haupt K., Mosbach K. Molecularly imprinted polymers and their use in biomimetic sensors // Chem. Rew. 2000. V. 100. P. 2495−2504.
  110. Stevenson D. Immuno-affinity solid-phase extraction. // J. Chromatogr. B. 2000. V. 745. P. 39−48.
  111. О.Д., Жердев A.B., Дзантиев Б. Б. Молекулярно-импринтированные полимеры и их применение в биохимическом анализе // Успехи биологической химии. 2006. Т. 46. С. 149 192.
  112. Wulff G., Vesper W. Preparation of chromatographic sorbents with chiral cavities for racemic resolution. // J. Chromatogr. A. 1978. V. 167. P. 171−178.
  113. Wulff G. The role of binding-site interactions in the molecular imprinting of polymers. // Trends Biotechnol. 1993. V. 11. № 3. P. 85−87.
  114. Wulff G. Molecular imprinting in cross-linked materials with the aid of molecular templates a way towards artificial antibodies. // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 1995. V. 34. P. 1812−1832.
  115. Arshady R., Mosbach K. Synthesis of substrate-selective polymers by host-guest polymerization. //Macromol. Chem. 1981. V. 182. P. 687−691.
  116. Sellergren B. Noncovalent molecular imprinting: antibody-like molecular recognition in polymeric network materials. // Trends Anal. Chem. 1997. V. 16. № 6. P. 310−320.
  117. Norrlow O., Glad M., Mosbach K. Acrylic polymer preparations containing recognition sites obtained by imprinting with substrates. // J. Chromatogr. A. 1984. V. 299. P. 29−41.
  118. Glad M., Norrlow O., Sellergren В., Siegbahn N., Mosbach K. Use of silane monomers for molecular imprinting and enzyme entrapment in polysiloxane-coated porous silica. // J. Chromatogr. A. 1985. V. 347. P. 11−23.
  119. Takeuchi Т., Haginaka J. Separation and sensing based on molecular recognition using molecularly imprinted polymers. // J. Chromatogr. B. 1999. V. 728. P. 1−20.
  120. Szabelski P., Kaczmrski K., Cavazzini A., Chen Y.B., Sellergren В., Guochon G., Energetic heterogeneity of the surface of a molecularly imprinted polymer studied by high performance liquid chromatography. // J. Chromatogr. A. 2002. V. 964. P. 99 111.
  121. Minouraa N., Rachkov A., Higuchi M., Shimizu Т., Study of the factors influencing peak asymmetry on chromatography using a molecularly imprinted polymer prepared by the epitope approach. // Bioseparation. 2002. V. 10. P. 399−407.
  122. Kempe M., Mosbach K. Binding studies on substrate- and enantio-selective molecularly imprinted polymers. //Anal. Lett. 1991. V. 24. P. 1137−1145.
  123. Andersson L.I., Mosbach K. Enantiomeric resolution on molecularly imprinted polymers prepared with only non-covalent and non-ionic interactions. // J. Chromatogr. 1990. V. 516. P. 313−322.
  124. Yano K., Tanabe K., Takeuchi Т., Matsui J., Ikebukuro K., Karube I. Molecularly imprinted polymers which mimic multiple hydrogen bonds between nucleotide bases. // Anal. Chim. Acta. 1998. V. 363. P. 111−117.
  125. Berglund J., Lindbladh C., Nicholls I.A., Mosbach K. Selection of phage display combinatorial library peptides with affinity for a yohimbine imprinted methcrylate polymer. //Anal. Commun. 1998. V. 35. P. 3−7.
  126. Tsunemori H., Araki K., Uezu K., Goto M., Furusaki S. Surface imprinting polymers for the recognition of nucleotides. // Bioseparation. 2002. V. 10. P. 315−321.
  127. Andersson L.I. Molecular imprinting for drug bioanalysis. A review on the application of imprinted polymers to solid-phase extraction and binding assay. // J. Chromatogr. B. 2000. V. 739. P. 163−173.
  128. Саго E., Marce R.M., Cormack P.A.G., Sherrington D.C., Borrull F. Synthesis and application of an oxytetracycline imprinted polymer for the solid phase extraction of tetracycline antibiotics. //Anal. Chim. Acta. 2005. V. 552. P. 81−86.
  129. Fischer L., Muller R., Erberg В., Mosbach K. Direct enantioseparation of adrenergic blockers using a chiral stationary phase prepared by molecular imprinting. // J. Am. Chem. Soc. 1991. V. 113. P. 9358−9360.
  130. Vlatakis G., Andersson L.I., Muller R., Mosbach K. Drug assay using antibody mimics made by molecular imprinting. // Nature. 1993. V. 361. P. 645−647.
  131. Hagginaka J., Sakai Y., Narimatsu S. Uniform-size molecularly imprinted polymer material for propranolol. Recognition of propranolol and its metabolites. // Anal. Sci. 1998. V. 14. № 4. P. 823−826.
  132. Allender C.J., Richardson C., Woodhouse В., Heard C.M., Brain K.R. Pharmaceutical applications for molecularly imprinted polymers // Int. J. Pharm. 2000. V. 195. P. 3913.
  133. Sun B.W., Li Y.Z., Chang W.B. Molecularly imprinted polymer for pyrazinamide. // Anal. Lett. 2003. V. 36. № 8. P. 1501−1509.
  134. Molecularly imprinted polymers. Man-made mimics of antibodies and their application in analytical chemistry. / Ed. Sellergren B. Amsterdam: Elsevier., 2001. 5821. P
  135. Kempe M., Mosbach K. Molecular imprinting used for chiral separations. // J. Chromatogr. A. 1995. V. 694. P. 3−13.
  136. Takeuchi Т., Ugata S., Masuda S., Matsui J., Takase M. Atrazine transformation using synthetic enzymes prepared by molecular imprinting. // Org. Biomol. Chem. 2004. V. 2. P. 2563−2566.
  137. Sellergren В., Andersson L.I. Molecular recognition in macroporous polymers prepared by a substrate analogue imprinting strategy. // J. Org. Chem. 1990. V. 55. P. 3381−3383.
  138. Mosbach K., Ramstrom O. The Emerging Technique of Molecular Imprinting and Its Future Impact on Biotechnology.//Bio/Technology. 1996. V. 14. P. 163−170.
  139. Ansell R.J., Ramstrom О., Mosbach К. Towards artificial antibodies prepared by molecular imprinting. // Clin. Chem. 1996. V. 42. P. 1506−1512.
  140. Baggiani C., Anfossi L., Giovannoli C., Tozzi C. Binding properties of 2,4,5-trichlorophenoxyacetic acid-imprinted polymers prepared with different molar ratios between template and functional monomer. // Talanta. 2004. V. 62. № 5. P. 1029−1034.
  141. Yilmaz E., Mosbach K., Haupt K. Influence of functional and cross linking monomers and the amount of template on the pergormance of molecularly imprinted polymers in binding assays. // Anal. Commun. 1999. V. 36. P. 167−170
  142. Cormack P.A.G., Elorza A.Z. Molecularly imprinted polymers: synthesis and characterisation. // J. Chromatogr. B. 2004. V. 804. P. 173−182.
  143. Masque N., Marce R.M., Borrul F. Molecularly imprinted polymers: new tailor-made materials for selective solid-phase extraction. // Trends Anal. Chem. 2001. V. 20. № 9. P. 477−486.
  144. Briiggemann O., Haupt K., Ye L., Yilmaz E., Mosbach K. New configurations and applications of molecularly imprinted polymers. // J. Chromatogr. A. 2000. V. 889. P. 15−24.
  145. Sellergren В., Shea K.J. Influence of polymer morphology on the ability of imprinted network polymers to resolve enantiomers. // J. Chromatogr. 1993. V. 635. P. 31−49.
  146. Sellergren В., Ekberg В., Mosbach K. Molecular imprinting of amino acid derivatives in macroporous polymers. Demonstration of racemic mixtures of amino acid derivatives. //J. Chromatogr., 1985. V. 347. P. 1−10.
  147. Kris D., Ramstrom O., Svensson A., Mosbach K. Introducing biomimetic sensors based on molecularly imprinted polymers as recognition elements. // Anal. Chem. V. 67. P. 2142−2144.
  148. Svenson J., Nicholls I.A. On the thermal and chemical sta- bility of molecularly imprinted polymers. // Anal. Chim. Acta. 2001. V. 435, P. 19−24.
  149. Muller R., Andersson L.I., Mosbaeh K. Molecularly imprinted polymers facilitating a beta-elimination reaction. 11 Makromol. Chem. Rapid Commun. 1993. V. 14. P. 637−641.
  150. Andersson L.I., O’Shannessy D.J., Mosbaeh K. Molecular recognition in synthetic polymers. Preparation of chiral stationary phases by molecular imprinting of ammo acid amides. // J. Chromatogr. 1990. V. 516. P.167−179.
  151. Shea К J., Spivak D.A., Sellergren B. Polymer complements to nucleotide bases. Selective binding of adenine derivatives to imprinted polymers. J. Am. Chem. Soc. 1993. V.115. P. 3368−3369.
  152. Andersson L.I., Paprica A., Arvidsson T. A highly selective solid phase extractionsorbent for pre-concentration of sameridine made by molecular imprinting. // Chromatographia. 1997. V. 46. P. 57−62.
  153. Rashid В., Briggs R.J., Hay J.N., Stewenson D. Preliminary evaluation of a molecular imprinted polymer for solid-phase extraction of tamoxifen. // Anal.'-Commiin. 1997. V. 34. P. 303−305.
  154. Ye L., Connack P.A.G., Mosbaeh K. Molecularly imprinted monodisperse microspheres for competitive radioassay. // Anal. Commun. 1999. V. 36. P. 35−38.
  155. Schweitz L., Spegel P., Nilsson S. Molecularly imprinted microparticles for capillary electrochromatographic enantiomer separation of propranolol. // Analyst. 2000. V. 125. P. 1899−1901.
  156. Matsui J., Okada M., Tsuruoka M., Takeuchi T. Solid-phase extraction of a triazine herbicide using a molecularly imprinted synthetic receptor. // Anal. Commun. 1997. V. 34. P. 85−87.
  157. Matsui J., Fujiwara K., Ugata S., Takeuchi T. Solid-phase extraction with a dibutylmelamine-imprinted polymer as triazine herbicide-selective sorbent. // J. Chromatogr. A. 2000. V. 889. P. 25−31.
  158. Sellergren B. Imprinted dispersion polymers: a new class of easily accessible affinity stationary phases. // J. Chromatogr. A. 1994. V. 673. P. 133−141.
  159. Matsui J., Kato Т., Takeuchi Т., Suzuki M., Yokoyama K., Tamia E., Karube I. Molecular recognition in continuous polymer rods prepared by a molecular imprinting technique. //Anal. Chem. 1993. V. 65. P. 2223−2224.
  160. Tamayo F.G., Casillas J.L., Martin-Esteban A. Evaluatio of new selective molecularly imprinted polymers prepared by precipitation polymerisation for the extraction of phenylurea herbicides. // J. Chromatogr. A. 2005. V. 1069. P. 173−181.
  161. Ye L., Mosbach K. Molecularly imprinted microspheres as antibody binding mimics. //Reactive & Functional Polymers. 2001. V. 48. P. 149−157.
  162. Surugiu I., Danielsson В., Ye L., Mosbach K., Haupt K. Chemiluminescence imaging ELISA using an imprinted polymer as the recognition element instead of an antibody. //Anal. Chem. 2001. V. 73. P. 487−491.
  163. Surugiu I., Ye L., Yilmaz E., Dzgoev A., Danielsson В., Mosbach K., Haupt K. An enzyme linked molecularly imprinted sorbent assay. // Analyst. 2000. V. 125. P. 13−16.
  164. Turiel E., Tadeo J.L., Cormack P.A.G., Martin-Esteban A. HPLC imprinted-stationary phase prepared by precipitation polymerisation for the determination of tiabendazole in fruit. //Analyst. 2005. V. 130. P. 1601−1607.
  165. Mayes A.G., Mosbach K. Molecularly imprinted polymer beads: suspension polymerization using a liquid perfluorocarbon as the dispersing phase. // Anal. Chem. 1996. V. 68. P. 3769−3774.
  166. Cacho C., Turiel E., Martin-Esteban A., Perez-Conde C., Camara C. Characterisation and quality assessment of binding sites on a propazine-imprintedpolymer prepared by precipitation polymerisation. // J. Chromatogr. B. 2004. V. 804. P. 347−353.
  167. Synthesis of molecularly imprinted polymer particles by suspension polymerization in silicon oil. // Chinese Chem. Letters. 2006. V. 17. №. 9. P. 1243−1246.
  168. Lai J.P., He X.W., Jiang Y., Chen F. Preparative separation and determination of matrine from the Chinese medicinal plant Sophora flavescens Ait by molecularly imprinted solid-phase extraction. // Anal. Bioanal. Chem. 2003. V. 375. P. 264−269.
  169. Ye L., Surugiu I., Haupt K. Scintillation proximity assay using molecularly imprinted microspheres. //Anal. Chem. 2002. V. 74. P. 959−964.
  170. Haginaka J., Sanbe H. Uniformly size molecularly imprinted polymer for (s)-naproxen retention and molecular recognition properties in aqueous mobile phase. // J. Cromatogr. A. 2001. V. 913. P. 141−146.
  171. Yoshida M., Uezu K., Goto M., Furusaki S. Required properties for functional monomers to produce a metal template effect by a surface molecular imprinting technique. //Macromolecules. 1999. V. 32. № 4. P. 1237−1243.
  172. Perez N., Whitcombe M.J., Vulfson E.N. Surface imprinting of cholesterol on submicrometer core-shell emulsion particles. // Macromolecules. 2001. V. 34. P. 830 836.
  173. Araki K., Goto M., Furusaki S. Enantioselective polymer prepared by surface imprinting technique using a bifunctional molecule. // Anal. Chim. Acta. 2002. V. 469. P. 173−181.
  174. Hosoya K., Yoshizako K., Sasaki H., Kimata K., Tanaka N. Molecular recognition towards coplanar polychlorinated biphenyls based on the porogen imprinting effect of xylenes. // J. Cromatogr. A. 1998. V. 828. P. 91−94.
  175. Vaihinger D., Landfester K., Krauter I., Brunner H., Tovar G. E. M. Molecularly imprinted polymer nanospheres as synthetic affinity receptors obtained by miniemulsion polymerisation. // Macromol. Chem. Phys. 2002. V. 203. P. 1965−1973.
  176. Yang K., Liu Z., Mao M., Zhang X., Nishi N. Molecularly imprinted polyethersulfone microspheres for the binding and recognition of bisphenol A. // Anal. Chim. Acta. 2005. V. 546. P. 30−36.
  177. Kriz D., Kriz C.B., Andersson L.I., Mosbach K. Thin-layer chromatography based on molecular imprinting technique. // Anal. Chem. 1994. V. 66. P. 2636−2640.
  178. Kochkodan V., Weigel W., Ulbricht M. Thin layer molecularly imprinted microfiltration membranes by photofunctionalization using a coated a-cleavage photoinitiator. //Analyst. 2001. V. 126. P. 803−809.
  179. Zayats M., Lahav M., Kharitonov A.B., Willner I. Imprinting of specific molecular recognition sites in inorganic and organic thin layer membranes associated with ion sensitive field — effect transistors. // Tetrahedron. 2002. V. 58. P. 815−824.
  180. Guo H., He X., Liang H. Study of the binding characteristics and transportation properties of a 4-aminopyridine imprinted polymer membrane. // Fr. J. Anal. Chem. 2000. V. 368. P. 763−767.
  181. Sergeyeva T.A., Piletsky S.A., Brovko A.A., Slinchenko E.A., Sergeeva L.M., Panasyuk T.L., El’skaya A.V. Conductimetric sesor for atrazine detection based on molecularly imprinted polymer membranes. // Analyst. 1999. V. 124. P. 331−334.
  182. Tong A., Dong H., Li L. Molecular imprinting based fluorescent chemosensor for histamine using zinc (II) — protoporphyrin as a functional monomer. // Anal. Chim. Acta. 2002. V. 466. P. 31−37.
  183. Piletsky S.A., Piletska E.V., Bossi A., Karim K., Lowe P., Turner A.P.F. Substitution of antibodies and receptors with molecularly imprinted polymers in enzyme linked and fluorescent assays. // Biosensors and Bioelectronics. 2001. V. 16 P. 701— 707.
  184. Yan M., Kapua A. Fabrication of molecularly imprinted polymers microstructures. //Anal. Chim. Acta. 2001. V. 435. P. 163−167.
  185. Levi R., McNiven S., Piletsky S.A., Cheong S.-H., Yano K., Karube I. Optical detection of chloramphenicol using molecularly imprinted polymers. // Anal. Chem. 1997. V. 69. P. 2017−2021.
  186. Tan Y., Nie L., Yao S. A piezoelectric biomimetic sensor for aminopyrine with a molecularly imprinted polymer coating. //Analyst. 2001. V. 126. P. 664−668.
  187. Jenkins A.L., Yin R., Jensen J.L. Molecularly imprinted polymer sensors for pesticide and insecticide detection in water. // Analyst. 2001. V. 126. P. 798−802.
  188. Dickert F.L., Tortschanoff M., Bulst W.E., Fischerauer G. Molecularly imprinted sensor layers for the detection of polycyclic aromatic hydrocarbons in water. // Anal. Chem. 1999. V. 71. P. 4559−4563.
  189. Reddy P. S., Kobayashi Т., Abe M., Fujii N. Molecular imprinted Nylon-6 as a recognition material of aminoacids. // European Polymer Journal. 2002. V. 38. P. 521 529.
  190. Al-Kindy S., Badia R., Suarez-Rodriguez J.L., Diaz-Garcia M.E. Molecularly imprinted polymers and optical sensing application. // Crit. Rev. in Anal. Chem. 2000. V. 30. № 4. P. 291−309.
  191. Matsui J., Akamatsu К., Hara N., Miyoshi D., Nawafune H., Tamaki K., Sugimoto N. SPR sensor chip for detection of small molecules using molecularly imprinted polymer with embedded gold nanoparticles. // Anal. Chem. 2005. V. 77. P. 4282−4285.
  192. Zhang Z., Li H., Liao H., Nie L., Yao S. Effect of the extraction method on the MIP sensor. // Anal. Lett. 2005. V. 38. P. 203−217.
  193. Yang L., Wei W., Xia J., Tao H. Artificial receptor layer for herbicide detection based on electrosynthesized molecular imprinting technique and capacitive transduction. //Anal. Lett. 2004. V. 37. № 11. P. 2303−2319.
  194. McNiven S., Kato M., Levi R., Yano K., Karube I. Chloramphenicol sensor based on an in situ imprinted polymer. // Anal. Chim. Acta. 1998. V. 365. P. 69−74.
  195. Liang C., Peng H., Nie L., Yao S. Bulk acoustic wave sensor for herbicide assay based on molecularly imprinted polymer. // Fr. J. Anal. Chem. 2000. V. 367. P. 551−555.
  196. Zhou Y., Yu В., Shiu E., Levon K. Potentiometric sensing of chemikal warfare agents: surface imprinted polymer integrated with an indium tin oxide electrode. // Anal. Chem. 2004. V. 76. P. 2689−2693.
  197. Bianco-Lopes M.C., Lobo-Castanon M.J., Miranda-Ordieres A.J., Tunon-Blanco P. Voltammetric sensor for vanillylmandelic acid based on molecularly imprinted polymer modified electrodes. // Biosensors and Bioelectronics. 2003. V. 18. P. 353 362.
  198. Shoji R., Takeuchi Т., Kubo I. Atrazine sensor based on molecularly imprinted polymer modified gold electrode. // Anal. Chem. 2003. V. 75. P. 4882−4886.
  199. Sreenivasan K. On the feasibility of using molecularly imprinted poly (Hema) as a sensor component. // Talanta. 1997. V. 44. P. 1137−1140.
  200. Kirsch N., Hart J.P., Bird D.J., Luxton R.W., McCalley D.V. Towards the development of molecularly imprinted polymer based screen printed sensors for metabolites ofPAHs. //Analyst. 2001. V. 126. P. 1936−1941.
  201. Chow C.F., Lam M.H.W., Leung M.K.P. Fluorescent sensing of homocysteine by molecular imprinting. // Anal. Chim. Acta. 2002. V. 466. P. 17−30.
  202. Luo С., Liu M., Mo Y., Qu J., Feng Y. Thickness-shear mode acoustic sensor for atrazine using molecularly imprinted polymer as recognition element. // Anal. Chim. Acta. 2001. V. 428. P. 143−148.
  203. Panasyuk-Delaney Т., Mirsky V.M., Ulbricht M., Wolfbeis O.S. Impedometric herbicide chemosensors based on molecularly imprinted polymers. // Anal. Chim. Acta. 2001. V. 435. P. 157−162.
  204. Dickert F.L., Forth P., Lieberzeit P., Tortschanoff M. Molecular imprinting in chemical sensing detection of aromatic and halogenated hydrocarbons as well as polar vapors. // Fr. J. Anal. Chem. 1998. V. 360. P. 759−762.
  205. Dickert F.L., Achatz P., Halikias K. Double molecular imprinting a new sensor concept for improving selectivity in the detection of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) in water. // Fr. J. Anal. Chem. 2001. V. 371. P. 11−15.
  206. Matsui J., Tachibana Y., Takeuchi T. Molecularly imprinted receptor having methalloporphyrin-based signaling binding site. // Anal. Commun. 1998. V. 35. P. 225 227.
  207. Piletska E.V. Romero-Guerra M., Chianella I., Karim K., Turner A.R., Piletsky S.A. Towards the development of multisensor for drugs of abuse based on molecular imprinted polymers. // Anal. Chim. Acta. 2005. V. 542. P. 111−117.
  208. Piletsky S.A., Piletskaya E.V., El’skaya A.V., Levi R., Yano K., Karube I. Optical detection system for triazine based on molecular-imprinted polymers. // Anal. Lett. 1997. V. 30. P. 445155.
  209. Yamazaki Т., Ohta S., Yanai Y., Sode K. Molecular imprinting catalyst based artificial enzyme sensor for fructosylamines. // Anal. Lett. 2003. V. 36. № 1. P. 75−89.
  210. Surugiu I., Svitel J., Ye L., Haupt K., Danielsson B. Development of a flow injection capillary chemiluminescent ELISA using an imprinted polymer instead of the antibody. //Anal. Chem. 2001. V. 73. P. 4388−4392.
  211. Liu Z.S., Xu Y.L., Wang H., Yan C., Gao R.Y. Chiral separation of binaphthol enantiomers on molecularly imprinted polymer monolith by capillary electrochromatography. // Anal. Sci. 2004. V. 20. P. 673−679.
  212. Kim H., Guiochon G. Comparison of the thermodynamic properties of particulate and monolithic columns of molecularly imprinted copolymers. // Anal. Chem. 2005. V. 77. P. 93−102.
  213. Matsui J., Nicholls L.A., Takeuchi T. Molecular recognition in cinchona alkaloid molecular imprinted polymer rods. // Anal. Chim. Acta. 1998. V. 365. P. 89−93.
  214. Matsui J., Takeuchi T. A molecularly imprinted polymer rod as nicotine selective affinity media prepared with 2-(trifluoromethyl)acrylic acid. // Anal. Commun. 1997. V. 34. P. 199−200.
  215. Matsui J., Miyooshi Y., Matsui R., Takeuchi T. Rod-type affinity media for liquid chromatography prepared by in-situ-molecular imprinting. // Anal. Sci. 1995. V. 11. № 6. P. 1017−1019.
  216. Schweitz L., Andersson L.I., Nilsson S. Capillary electrochromatography with imprint-based selectivity for enantiomer separation of local anaesthetics. // J. Chromatogr. A. 1997. V. 792. P. 401-^109.
  217. Schweitz L., Andersson L.I., Nilsson S. Molecularly imprinted CEC sorbents: investigations into polymer preparation and electrolyte composition. // Analyst. 2002. V. 127. P. 22−28.
  218. Huang X., Zou H., Chen X., Luo Q., Kong L. Molecularly imprinted monolithic stationary phases for liquid chromatographic separation of enantiomers and diastereomers. // J. Chromatogr. A. 2003. V. 984. P. 273−282.
  219. Dispersion Polymerization in Organic media. / Ed. Barrett K. London: John Wiley and Sons. 1975. 348 p.
  220. Ugelstad J., Mork P.C. Swelling of oligomer-polymer particles: new methods of preparation of emulsions and polymer dispersions. // Adv. Colloid Interfacial Sci. 1980. V. 13. P. 101−140.
  221. Haginaka J., Sanbe H. Uniform-sized molecularly imprinted polymers for beta-estradiol. // Chem. Lett. 1998. V. 27. P. 1089−1090.
  222. Hosoya K., Yoshikazo K., Tanaka N., Kimata K., Araki Т., Haginaka J. Uniform-size macroporous polymer-based stationary phase for HPLC prepared through molecular imprinting technique. // Chem. Lett. 1994. V. 23. P. 1437−1438.
  223. Yilmaz E., Haupt K., Mosbach K. The use of immobilized templates A new approach in molecular imprinting. // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 2000. V. 39. P. 2115— 2118.
  224. Piletsky S.A., Piletskaya E.V., Sergeeva T.A., Panasyuk T.L., Elskaya A.V. Molecularly imprinted self-assembled films with specificity to cholesterol. // Sens. Actuators B. 1999. V. 60. P. 216−220.
  225. Nicholls I.A., Rosengren J.P. Molecular im- printing of surfaces. // Bioseparation. 2002. V. 10. P. 301−305.
  226. Xia Y., Whitesides G.M. Soft lithography. // Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 1998. V. 37. P. 550−575.
  227. Malitesta C., Losito I., Zambonin P.G. Molecularly imprinted electrosynthesized polymers: new materials for biomimetic sensors. // Anal. Chem. 1999. V. 71. P. 13 661 370.
  228. Sulitsky C., Ruckert В., Hall A.J., Lanza F., Unger K. Grafting of molecularly imprinted polymer films on silica supports containing surface-bound free radical initiators. // Macromolecules. 2002. V. 35. P.79−91.
  229. Panasyuk-Delaney Т., Mirsky V.M., Ulbricht M., Wolfbeis O.S. Impedometric herbicide chemosensors based on molecularly imprinted polymers. // Anal. Chim. Acta. 2001. V. 435. P. 157−162.
  230. Perez-Moral N., Mayes A.G. Novel MIP formats. // Bioseparation. 2002. V. 10. P. 287−299.
  231. Г. В., Крутяков Ю. А. Материалы с молекулярными отпечатками: синтез, свойства, применение. // Усп. хим. 2006. Т. 75. С. 998−1017.
  232. Г. В., Новоторцев Р. Ю., Бернадюк С. З. Химически модифицированные оксидные поверхности, способные к молекулярному распознаванию. // Коллоид, журн. 2004. Т. 66. С. 437−450.
  233. Mitch К.-Р. L., Cheuk-Fai С., Michael H.-W. L. A sol-gel derived molecular imprinted luminescent PET sensing material for 2,4-dichlorophenoxyacetic acid. // J. Mater. Chem. 2001. V. 11. P. 2985−2991.
  234. Turiel E., Martin-Esteban A. Molecularly imprinted polymers: towards highly selective stationary phases in liquid chromatography and capillary electrophoreresis. // Anal. Bioanal. Chem. 2004. V. 378. P.1876−1884.
  235. Makote R., Collinson M.M. Dopamine recognition in templated silicate films. // Chem. Commun. 1998. V. 111. P. 425−426.
  236. Yilmaz E., Ramstrom O., Moller P., Sanchez D., Mosbach K. A Facile method for preparing molecularly imprinted polymer spheres using spherical silica templates. // J. Mater. Chem. 2002. V. 12. P. 1577−1581.
  237. Collinson M.M. Resent trends in analytical applications of organically modified silicate materials. // Trends in Anal. Chem. 2002. V. 21. A. 1. P. 30−38.
  238. Hishiya Т., Akiyama Т., Asanuma H., Komiyama M. Molecular impriting oF Cyclodextrins leading to synthetic antibodies. // J. of Inclusion Phenomena and Macrocyclic Chem. 2002. V. 44. P. 365−367.
  239. Akiyama Т., Hishiya Т., Asanuma H., Komiyama M. Molecular Imprinting of Cyclodextrin on Silica-Gel Support for the Stationary Phase of High-Performance-Liquid-Chromatography. // J. of Inclusion Phenomena and Macrocyclic Chem. 2001. V. 41. P. 149−153.
  240. The chemistry of organic silicon compounds. / Ed. Avnir D., Klein L.C., Levy D., Schubert U., Wojcik A. B: London: John Wiley and Sons. 1998. V. 2. 2317 p.
  241. Matsui J., Okada M., Tsuruoka M., Takeuchi T. Solid-phase extraction of a triazine herbicide using a molecularly imprinted synthetic receptor// Anal. Commun. 1997.V. 34. P.85−87.
  242. Muldoon M.T., Stanker L.H. Molecularly imprinted solid phase extraction of atrazine from beef liver extracts. //Anal. Chem. 1997. V. 69. P. 803−808.
  243. Bjarnason В., Chimuka L., Ramstrom O. On-line solid-phase extraction of triazine herbicides using a molecularly imprinted polymer for selective sample enrichment. //Anal. Chem. 1999. V.71. P. 2152−2156.
  244. Baggiani C., Trotta F., Giraudi G. A molecularly imprinted polymer for the pesticide bentazone. // Anal. Commun. 1999. V.36. P. 263−266.
  245. Ferrer I., Lanza F., Tolokan A. Selective trace enrichment of clorotriazine pesticides from natural waters and sediment samples using terbuthylazine molecularly imprinted polymers. // Anal. Chem. 2000. V. 72. P. 3934−3941.
  246. Maurice C., Schollhorn B. Competitive assay of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid using a polymer imprinted with an electrochemically active tracer closely related to the analyte. // Analyst. 2000. V. 125. P. 665−667.
  247. Haupt K., Dzgoev A., Mosbach K. Assay system for the herbicide 2,4-dichlorophenoxyacetic acid using a molecularly imprinted polymer as an" artificial recognition element. //Anal. Chem. 1998. V. 70. P. 628−631.
  248. Haupt K. Molecularly imprinted sorbent assays and the use of non-related probes. //Reactive & Functional Polymers 1999. V. 41. P. 125−131.
  249. B.B. Синтез и исследование сорбционных свойств полимеролв с молекулярными отпечатками органических соединений. Дисс.. канд. хим. наук. МГУ. Москва. 2006.
  250. С.Г., Ирха В. В., Дуйсебаева Т. Б., Михайлик Ю. В., Золотов Ю. А. Синтез и исследование сорбционных свойств полимеров с отпечатками 4-гидроксибензойной кислоты. // Журн. аналит. химии. 2006. Т. 61. № 1. С. 18−23.
  251. Dmitrienko S.G., Irkha V.V., Apyari V.V., Klokova E.V., Zolotov Yu.A. Recognition of hydroxybenzoic acids and their esters by molecularly imprinted polymers: a comparative study // Mendeleev Commun. 2008. V. 18. P. 315−317.
  252. Экспериментальные методы в адсорбции и молекулярной хроматографии. / Под ред. Ю. С. Никитина и Р. С. Петровой. М.: Изд-во МГУ, 1990. 318 с.
  253. Химия привитых поверхностных соединений. / Под ред. Г. В. Лисичкина. -М.: Физматлит, 2003. 592 с.
  254. К.И., Панина Л. И. Полимерные сорбенты для молекулярной хроматографии. М.: Наука, 1977. 168 с.
  255. A.M., Клименко Н. А., Левченко Т. М., Рода И. Г. Адсорбция органических веществ из воды. Л.: Химия, 1990. 256 с.
  256. О.А., Тихомирова Т. Н., Цизин Г. И., Золотов Ю. А. Динамическое концентрирование органических веществ на неполярных сорбентах. // Журн. аналит. химии. 2003. Т. 58. № 5. с. 454179.
  257. A.M., Горбацевич О. Б., Ребров Е. А. и др. Кремнийорганичекие дендримеры. Объёмнорастущие полиаллилкарбоксиланы. // Высокомолек. соед. 1993. Т. 35А. № 11. С. 1867−1872.
  258. М.А. Основы звукохимии. М.: Химия, 1984. 260 с.
  259. Dauwe С., Sellergren В. Influence of template basicity and hydrophobicity on the molecular recognition properties of molecularly imprinted polymers. // J. Cromatogr. A. 1996. V.753.P. 191−200.
  260. Kugimiya A., Takeuchi T. Molecular recognition by indoleacetic acid-imprinted polymers effects of 2-hydroxyethyl methacrylate content. // Anal. Bioanal. Chem. 2002. V. 372. P. 305−307.
  261. Н.Л., Шаповалова E.H., Шпигун O.A. Закономерности разделения пестицидов различных классов методом обращено-фазовой высокоэффективной хроматографии. // Журн. аналит. химии. 2006. Т. 61. № 4. С. 375−382.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!