Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Роль метасимпатической нервной системы в регуляции иммунных процессов в эндометрии матки крыс

Диссертация: Роль метасимпатической нервной системы в регуляции иммунных процессов в эндометрии матки крыс
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В настоящее время иннервация матки довольно подробно изучена. С помощью электрофизиологических методов путем электрического раздражения подчревных нервов и ветвей поясничных нервов (Шаляпина В.Г. и др., 1988) и использованием денервации на различных уровнях (Brundin J., 1965; Kanerva L., 1972; Owman and Sjoberg N.O., 1977) показано участие поясничных вертебральных ганглиев, каудального… Читать ещё >

Роль метасимпатической нервной системы в регуляции иммунных процессов в эндометрии матки крыс (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • Список сокращений
  • 1. Организация нервного аппарата матки
    • 1. 1. Общие сведения об иннервации репродуктивной системы
    • 1. 2. Адренергическая иннервация матки
    • 1. 3. Холинергическая иннервация матки
    • 1. 4. Пептидергическая иннервация матки
    • 1. 5. Пространственная архитектоника элементов метасимпатической нервной системы в матке крыс
    • 1. 5. Л. Материалы и методы исследования
      • 1. 5. 2. Результаты и их обсуждение
    • 1. 6. Структура инициальных входов в метасимпатическую нервную систему матки крыс
      • 1. 6. 1. Материалы и методы исследования
      • 1. 6. 2. Результаты и их обсуждение
  • 2. Влияние симпатического и парасимпатического тонуса на иммунную систему матки крыс
    • 2. 1. Лимфоидная система матки
    • 2. 2. Взаимодействие нервной и иммунной систем
    • 2. 3. Влияние хронического повышения уровня ацетилхолина и норадреналина на динамику количества нейтрофилов и лимфоцитов в просвете рога матки крыс в течение полового цикла
      • 2. 3. 1. Материалы и методы исследования
      • 2. 3. 2. Результаты и их обсуждение
  • 3. Роль тучных клеток в передаче нервных влияний иммунной системе матки крыс
    • 3. 1. Функциональные и морфологические особенности тучных клеток
    • 3. 2. Влияние ацетилхолина и гистамина на количество лимфоцитов и нейтрофилов в отпечатках эндометрия матки крыс в различные фазы эстрального цикла
      • 3. 2. 1. Материалы и методы исследования
      • 3. 2. 2. Результаты и их обсуждение
  • 4. Регуляция сократительной активности матки метасимпатической нервной системой
    • 4. 1. Нервная и иммунная регуляция сократительной активности матки
    • 4. 2. Моторная активность рога матки крыс при стимуляции влагалищных рецепторов
      • 4. 2. 1. Материалы и методы исследования
      • 4. 2. 2. Результаты и их обсуждение
  • 5. Изменение количества нейтрофилов и лимфоцитов в отпечатках эндометрия рога матки крыс при раздражении влагалищных рецепторов
    • 5. 1. Материалы и методы исследования
    • 5. 2. Результаты и их обсуждение

Сложная структура отношений нервной и иммунной систем организма в настоящее время подтверждается множественностью возможных путей взаимодействия нервных структур и клеток иммунной природы (Nilsson G. et al., 1997). Известно, что нейромедиаторы, выделяющиеся из нервных окончаний, оказывают влияние на пролиферацию, дифференцировку, цитотоксическую и секреторную активность лимфоидных клеток (McGeown J.G., 1993; Nilsson G. et al, 1997). Предполагают также возможность непосредственного воздействия веществ иммунной природы на афферентные нейроны (Чалисова Н.И. и др., 1997). Следовательно, одни и те же вещества, в том числе, интерлейкин-1 (IL-1), Т-активин способны регулировать иммуногенез и функциональное состояние афферентов (Tabira Т. et al., 1995). Существуют также данные о непосредственном контакте между нервными окончаниями и клетками иммунной системы (Keith I.H. et al., 1995).

Сейчас хорошо известно, что базовый уровень иннервации полых висцеральных органов осуществляется нейронами метасимпатической нервной системы, структурная организация которой обеспечивает возможность оперативной оценки состояния органа, переработки полученной информации и форму специфической реакции, направленной на адаптацию органа к новым условиям (Ноздрачев А.Д., 1984, 1987; Ноздрачев А. Д. и др., 1993). При этом функции микроганглионарных элементов трактуются двояко: во-первых, как самостоятельные интегративные центры, включающие местные рефлекторные дуги и способные благодаря этому функционировать при полной децентрализации, и, во-вторых, как передатчики центральных влияний к тканям висцерального органа (Ноздрачев А.Д., 1975).

Роль функциональных структур мегасимпатической нервной системы в регуляции моторной, секреторной, экскреторной функций висцеральных органов, а также регуляции микроциркуляции, местных эндокринных и иммунных процессов не вызывает сомнений и широко исследована. Вместе с тем вопросы, касающиеся участия этого отдела автономной нервной системы в регуляции иммунных процессов остаются неисследованными либо имеют фрагментарный характер.

Основные направления изучения функции метасимпатической нервной системы как регулятора местных иммунных процессов требуют проведения экспериментальных исследований на наиболее иммунообеспеченном органе, каким является матка лабораторных животных.

Поскольку репродуктивная система самок млекопитающих — это динамичная система, претерпевающая значительные морфологические и функциональные изменения в ходе эстрального цикла, она представляется наиболее интересной и удобной моделью для изучения эффектов действия медиаторов на клетки иммунной системы в условиях циклически изменяющегося гормонального фона, тонуса автономной иннервации и, как следствие, физиологического состояния органа.

С учетом того, что репродуктивный процесс тесно связан с иммунологическими и нервными процессами, очевидно предположить в этом случае согласованность функций иммунных и нервных систем в матке, их взаимодействие. И хотя в литературе в данное время уделяется большое внимание вопросам нервно-иммунных взаимодействий, работ, посвященных нервно-иммунным взаимодействиям в матке, мы не обнаружили. В этом свете знание морфологических и функциональных связей метасимпатической нервной системы матки и клеток иммунной системы в составе органа имеет базовое значение. '.

В настоящее время иннервация матки довольно подробно изучена. С помощью электрофизиологических методов путем электрического раздражения подчревных нервов и ветвей поясничных нервов (Шаляпина В.Г. и др., 1988) и использованием денервации на различных уровнях (Brundin J., 1965; Kanerva L., 1972; Owman and Sjoberg N.O., 1977) показано участие поясничных вертебральных ганглиев, каудального брыжеечного ганглия, узлов тазового сплетения в иннервации гладкой мускулатуры влагалища, матки и яйцеводов. Путем применения флуоресцентного метода определения катехоламинов (Owman and Sjoberg N.O., 1977) установлено, что тела адренергических нервов, иннервирующих клетки миометрия, расположены в паравертебральных ганглиях. В каждом слое маточной стенки волокна формируют самостоятельные сплетения, между которыми отмечена тесная взаимосвязь. Показано, что в области шейки матки имеется особая группа ганглионарных сплетений (Kanerva L., 1972).

Однако, несмотря на многочисленные исследования иннервации матки, применявшиеся методы обладали рядом недостатков, что не дает возможности обстоятельного выявления структуры метасимпатической нервной системы органа и всего комплекса ее нервных связей с центральными образованиями автономной нервной системы.

На основании анализа многочисленных экспериментальных данных показано влияние нейромедиаторов на клетки иммунной системы (Grbczewska Е. et al., 1981; Cook-Mills, 1991., 1995; Schedlowski M. et al., 1993, 1996; Sato C. et al., 1998).

Отражением иммунных процессов, происходящих в матке, является количество нейтрофилов и лимфоцитов, находящихся в полости органа. Поэтому для определения иммунологического состояния матки совершенно необходимо исследовать именно эти показатели.

Однако, необходимо указать еще и своеобразие иммунных процессов, происходящих в матке, отличия их от системных иммунных процессов. И хотя установлено, что половые стероиды оказывают существенное влияние на миграцию и функциональную активность клеток иммунной системы матки (Wira C.R., Sullivan D.A., 1981; Tibbetts T.A. et al., 1999), нельзя не предполагать важности изменяющегося симпатического и парасимпатического тонуса в матке на динамику количества форменных элементов белой крови в эндометрии в разные фазы полового цикла. Поскольку отражением состояния этих процессов органа является количество форменных элементов белой крови, очевидна необходимость изучения уровня основных медиаторов метасимпатической нервной системы и, соответственно, названных показателей форменных элементов белой крови в матке крыс.

С другой стороны, поскольку микроганглии метасимпатической нервной системы матки являются самостоятельными интегративными центрами, включающими местные рефлекторные дуги, активность и функции метасимпатической нервной системы матки, несомненно, могут определяться не только влиянием половых стероидов, но и информацией, поступающей по афферентным волокнам, в том числе и о механических и химических стимулах. Поэтому, для более полного представления о регуляции местных иммунных процессов в матке со стороны метасимпатической нервной системы необходимо выявить ее влияние на количество форменных элементов белой крови не только в связи с изменением тонуса автономной иннервации, но и в связи с раздражением рецепторов собственной метасимпатической нервной системы.

В условиях стимуляции рецепторов метасимпатической нервной системы матки также необходимо исследовать изменение такого важного показателя, как моторная активность органа. Этому вопросу посвящено множество исследований (Rexroad С.Е., 1981; Whaton L.C. et al., 1988). Однако до сих пор изменениям моторной активности матки приписывали лишь нервную природу и не принимали во внимание возможности влияния иммунной системы, тогда как при раздражении рецепторов метасимпатической нервной системы несомненно ее влияние на активность иммунной системы матки. Известно также, что многие биологически активные вещества, такие как простагландины, лейкотриены, брадикинины, гистамин могут оказывать влияние на гладкую мускулатуру (Чернышева М.П., 1995).

Существует предположение, что в реализации взаимодействия между нервной и иммунной системами могут участвовать тучные клетки. Подтверждением этому предположению служит не только наличие контактов между нервными окончаниями и тучными клетками (Keith I.H., 1995; Williams R.M., 1997), но и то, что активизация тучных клеток происходит под действием иммунных и нервных стимулов (Yong L.C., 1997), и приводит не только к сокращению, например, гладкой мускулатуры, гиперсекреции слизи, изменению транспорта ионов через мембрану клеток эпителия (Паркер Ч.В., 1981), но и может оказывать влияние на активность клеток иммунной системы, а также, модулировать выделение медиаторов из нервных окончаний (Dimitriadou У. et al., 1997; GothertM. et al., 1995).

Поэтому еще одной целью проводящихся сейчас исследований является изучение роли тучных клеток, а точнее, их основного медиатора гистамина, в опосредовании холинергических влияний на количество форменных элементов белой крови в эндометрии матки.

Учитывая важность и значимость указанных аспектов в плане понимания роли метасимпатической нервной системы в регуляции местных функциональных отправлений, основная цель настоящей работы состояла в итзучении существующих функциональных нервно-иммунных взаимодействий.

В работе ставились следующие задачи:

1. Выявить пространственную архитектонику элементов метасимпатической нервной системы в матке крыс.

2. Выявить структуру инициальных входов в метасимпатическую нервную системы матки крыс.

3. Изучить влияние длительного повышения уровня АСЬ и ЫА на динамику количества нейтрофилов и лимфоцитов в эндометрии рога матки крыс в течение полового цикла.

4. Определить роль основного медиатора тучных клеток гистамина в опосредовании холинергических влияний на количество клеток белой крови в эндометрии матки крыс.

5. Изучить влияние раздражения влагалищных рецепторов на количество клеток белой крови в эндометрии матки крыс.

6. Исследовать влияние стимуляции влагалищных рецепторов на моторную активность матки крыс.

Научная новизна работы. В развитие известных представлений о роли метасимпатической части автономной нервной системы в регуляции местных иммунных процессов в данной работе впервые обосновано положение о том, что изменение тонуса вегетативной нервной системы может определять иммунологическое состояние матки.

Впервые было проведено комплексное изучение взаимодействия элементов нервной системы и клеток белой крови в эндометрии матки. Были проведены морфологические исследования, дающие анатомическую.

Были проведены морфологические исследования, дающие анатомическую базу для понимания механизмов осуществления локальных нейро-иммунных взаимодействий, а также, исследование функционального влияния метасимпатической нервной системы на накопление клеток белой крови в эндометрии, что, как известно, является отражением состояния иммунных процессов в органе.

Хотя в литературе существует множество данных о влиянии АСЬ, ЫА и других нейромедиаторов на миграцию и функциональную активность лимфоцитов и нейтрофилов, нельзя забывать и о своеобразии иммунных процессов в эндометрии. В работе впервые показано влияние длительного повышения уровней АСЬ и ЫА на динамику изменения количества клеток белой крови в течение полового цикла. Исследована также роль тучных клеток в передаче холинергического влияния клеткам иммунной системы матки.

В исследовании впервые показано влияние раздражения влагалищных рецепторов на количество клеток белой крови в эндометрии и в целом на моторную активность матки. При этом, проведена теоретическая параллель между сократительной активностью органа и изменением функционального состояния местных иммунных процессов при возбуждении метасимптической нервной системы органа.

Теоретическая значимость работы. Представленные в работе экспериментальные материалы раскрывают механизмы регуляции местных иммунных процессов в эндометрии со стороны автономной нервной системы.

Практическая значимость работы. Показанные изменения количества форменных элементов белой крови в эндометрии, а также изменение моторной активности матки в условиях воздействия медиаторных веществ разной природы, раздражения механорецепторов.

ВЫВОДЫ.

1. В матке присутствуют все элементы метасимпатической нервной системы, обеспечивающие возможность ее автономного функционирования: нервные клетки, формирующие различные по численности скопления, толстые нервные пучки и отдельно идущие нервные отростки, часть из которых имеют варикозные расширения.

2. Матка получает прямую иннервацию со стороны экстрамуральных автономных ганглиев. По степени убывания числа клеток, посылающих аксоны в матку, ганглии можно расположить следующим образом: каудальный брыжеечный симпатический узел, пограничный симпатический ствол (крестцовая часть), почечное сплетение, узлы солнечного сплетения.

3. Длительное повышение уровня ацетилхолина и норадреналина оказывает модулирующее влияние на динамику количества нейтрофилов и лимфоцитов в эндометрии рога матки крыс в течение полового цикла. Ацетилхолин увеличивает количество нейтрофилов на протяжении всех стадий полового цикла и приводит к более значительному увеличению количества лимфоцитов в стадиях метэструса-диэструса. Норадреналин увеличивает число нейтрофилов в стадии диэструса и уменьшает в стадии эструса, а также уменьшает количества лимфоцитов в стадии диэструса.

4. В осуществлении холинергической регуляции количества клеток белой крови в эндометрии значительную роль играет гистамин: эффекты действия гистамина, опосредованные через Н2-рецепторы, выражаются в уменьшении числа лимфоцитов и нейтрофилов в отпечатках на всех стадиях полового циклаопосредованное через Н1-рецепторы действие гистамина приводит к увеличению количества нейтрофилов.

5. Раздражение влагалищных механорецепторов приводит к значительным изменениям в количестве нейтрофилов и лимфоцитов в отпечатке эндометрия матки: увеличению числа лимфоцитов в стадию эструса, уменьшению их числа в стадию диэструса и уменьшению количества нейтрофилов во всех стадиях полового цикла. Стимуляция указанных рецепторов на фоне предварительного введения прозерина оказывает менее выраженный эффект снижения количества нейтрофилов и возрастания числа лимфоцитов в стадию эструса. Предварительное введение эфедрина приводит к ослаблению эффекта действия стимуляции влагалищных механорецепторов, проявляющемуся в уменьшении количества нейтрофилов в отпечатке эндометрия.

6. Раздражение влагалищных механорецепторов в стадию эструса в контрольной группе и в стадии эструса и диэструса на фоне действия прозерина приводит к усилению моторной активности рога матки в цервикальном направлении, раздражение влагалищных рецепторов в стадию диэструса усиливает сократительную активность в овариальном направлении настолько, что изменяет знак направления движения содержимого просвета рога матки на противоположный.

Автор выражает глубокую благодарность любимому учителю заведующему кафедрой общей физиологии Санкт-Петербургского Государственного Университета академику Александру Даниловичу Ноздрачеву за его чуткое внимание и неоценимую помощь в проведении как экспериментальных, так и теоретических исследований, и без которых данная работа оказалась бы невозможной.

ОБЩЕЕ ЗАКЛЮЧЕНИЕ.

Применением ряда методов в настоящей работе показано наличие и функционирование метасимпатичекой нервной системы в матке крыс. Нами выявлена структурная организация нервного сплетения матки. Она представляет собой многоярусную сеть нервных клеток и волокон различных диаметров и формы. Нейроны не объединены в ганглионарные структуры, окруженные соединительнотканной капсулой, а формируют различные по численности скопления клеток. При этом общее количество выявленных морфологически нейронов в различных областях матки неравномерно. Подслизистое сплетение матки наиболее богато нервными элементами в области маточно-влагалищной связки, в теле органа плотность нервных элементов падает, однако, возрастает в области соединения рогов матки и повторно снижается в последних по направлению к яичникам. Одиночные диффузно расположенные клетки или скопления из 2−3 клеток образуют контакты с элементами эндометрия. Подсерозное сплетение менее богато нервными элементами, чем подслизистое. Наблюдаются лишь различные по численности скопления, наиболее крупные из которых находятся в области разветвления рогов тела матки. Обнаружена прямая иннервация органа со стороны вегетативных автономных ганглиев, которые можно расположить по убыванию количества нейронов, иннервирующих орган, в следующем порядке: каудальный брыжеечный симпатический узел, симпатический ствол, почечное сплетение, солнечное сплетение.

Исследования, показавшие структуру метасимпатической нервной системы матки, сделали возможным изучение функциональных особенностей взаимодействия нервных структур с клетками иммунной системы матки. В работе приведены доказательства влияния основных медиаторов — ИА и АСЬ — на количество клеток белой крови в эндометрии. Показано, что оказывая модулирующее влияние на количество нейтрофилов и лимфоцитов в просвете рога матки, указанные нейротрансмиттеры не изменяют общей схемы динамики количества этих клеток в течение полового цикла. Воздействие ацетилхолина и адреналина ограничивается лишь усилением или ослаблением изменений в количестве этих клеток в разные фазы эстрального цикла, которые определяются, вероятно, в первую очередь, половыми стероидами,.

Для выяснения возможного механизма передачи медиаторных влияний клеткам иммунной системы в матке была исследована роль тучных клеток в этом процессе. Из литературных источников известно, что активизация тучных клеток происходит под действием иммунных, а также, нервных стимулов (Уогщ Ь.С., 1997), и приводит не только к сокращению, например, гладкой мускулатуры, гиперсекреции слизи, изменению транспорта ионов через клетки эпителия (Паркер, Ч.В., 1989), но и может оказывать влияние на активность клеток иммунной системы (кроме гистамина в гранулах тучных клеток содержится много гепарина, АТБ, протеолитических ферментов, множество других ферментов, а также факторы хемотаксиса нейтрофилов и эозинофилов (Паркер, Ч.В., 1989)), а также, модулировать выделение медиаторов из нервных окончаний Шпкпаскш У. е1:.а1., 1997; воШей М. е1. а1., 1995). Исходя из сказанного, можно предположить участие тучных клеток в данном процессе.

Для исследования влияния тонуса метасимпатической нервной системы и роли местной рефлекторной дуги на иммунную систему матки было проведено исследование влияния раздражения влагалищных рецепторов на количество нейтрофилов и лимфоцитов в полости матки крыс. Раздражение влагалищных рецепторов приводило к уменьшению количества нейтрофилов в эндометрии в стадиях эструса и диэструса. Воздействие на лимфоциты зависело от стадии полового цикла: в стадии эструса количество лимфоидных клеток возрастало, а в стадии диэструсауменьшалось.

Стимуляция тех же рецепторов у животных, предварительно получавших инъекции прозерина, сопровождалась изменениями, сходными с результатами, полученными на интактных животных, но в стадии эструса уменьшение количества нейтрофилов и увеличение числа лимфоцитов было менее выражено. У животных, предварительно получавших инъекции эфедрина, эффект воздействия раздражения влагалищных рецепторов на количество нейтрофилов оказался слабее по сравнению с контрольными животными, особенно в стадии диэструса.

Показать весь текст

Список литературы

  1. В.В. Интеграция иммунной и нервной систем. Новосибирск: Наука. 1991. 168 с.
  2. C.B., Яхница А. Г., Решетилов В. И. Лимфоидные образования эндометрия женщин в онтогенезе // Арх. Анатомии. 1990. т. 99. Xsl2. С. 48−53.
  3. Р.Х. Участие нейронов миентерального сплетения в организации ритмики сокращения гладкой мышцы тонкой кишки // Физиол. журнал им. И. М. Сеченова. 1979. т. 65. № 1. с. 96−103.
  4. A.B. Нейрофизиологическое исследование ганглиев миентерального сплетения толстой кишки. Дис. канд. биол. наук // Институт физиологии им. И. П. Павлова. Л. 1976. с. 183.
  5. П.Ф. Иммунологические механизмы повышения радиорезистентности под влиянием холиномиметиков // Бюл. Экспер. Биол. Мед., 1996. № 2. с. 541−543.
  6. Ю.П. Нейрофизиологический анализ функциональной организации каудального брыжеечного симпатического ганглия. Дис. канд. биол. наук // Институт физиологии им. И. П. Павлова. Л. 1973. с. 147.
  7. Д. Практическая микротехника и гистохимия. «Академия Наук Венгрии», Будапешт. 1962. 399 с.
  8. П.К. Пептиды и пищеварительная система. JL: Наука. 1983. 271с.
  9. М.Д. Лекарственные средства. «Медицина», М.1984. т.1. 542 с.
  10. B.C., Циган В. Н., Суворов Н. Б., Стрельников A.A. Механизмы нарушения центральной регуляции в условиях полевого радиоактивного облучения // Журн. Воен. Мед. 1999. т. 320. № 12. с. 46−53.
  11. А.Д. Нервный контроль висцеральных функций. Л.: Наука. 1975. с. 100- 123.
  12. А.Д. Функциональная организация ганглиев миентерального сплетения // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1977. т. 63. № 6. с. 268 276.
  13. А.Д. Вегетативная рефлекторная дуга. Л.: Наука. 1978. 232 с.
  14. А.Д. О структурно-функциональной организации вегетативной (автономной) нервной системы // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1980. т. 66. № 7. с. 937 961.
  15. А.Д. Нейрофизиология ганглиев интрамуральных сплетений пищеварительного тракта / Под ред. В. Н. Черниговского. Л.: Наука. 1981. с. 152−186.
  16. А.Д. Исследование нейронов энтеральной части нервной системы при культивировании в диффузионных камерах // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1983а. т. 69. № 12. с. 1581−1588.
  17. А.Д. Адренергические, холинергические, серотонинергические, пуринергические и пептидергические нейроны метасимпатической нервной системы // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1984а. т.70. № 5. с. 649−662.
  18. А.Д. Взаимоотношения между симпатическими и парасимпатическими входами в ганглии метасимпатической нервной системы // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 19 846. т. 70. № 10. с. 14 021 415.
  19. А.Д. Внешние «входы» метасимпатических ганглиев толстой кишки и мочевого пузыря // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1985. т. 71. № 4. с.401−412.
  20. А.Д. Некоторые элементы построения теории метасиматической нервной системы. // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1987. т. 72. № 2. с. 190 201.
  21. А.Д., Бутягина Н. В., Гнетов A.B. Метасимпатическая нервная система. Некоторые структурно-функциональные аспекты // Тез. докл. III съезда физиологов Узбекистана, Ташкент, 1983. Ташкент. 1983. с. 174.
  22. А.Д., Отеллин В. А., Ряховская JI.B., Адамацкий А. И. Структура инициальной части симпатических входов в ганглии ободочной кишки и мочевого пузыря. // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1988. т.74. № 5. с.661−669.
  23. А.Д., Рябухина Е. В., Скопичев В. Г. // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1993. т.79. № 4. с. 53 60.
  24. А.Д., Скопичев В. Г., Балашев И. В. Структурно-функциональная архитектоника энтеральной части метасимпатической нервной системы у представителей низших позвоночных костистых рыб.// Физиол. журн. им. И. М. Сеченова 1992. т.78. № 7. с. 43 — 50.
  25. А.Д., Янцев A.B. Автономная передача. Издательство С-Петербургского университета, С-Пб. 1995. 283 с.
  26. Ч.В. в «Иммунология» /под ред. У. Пола. М., «Мир»., 1989. т.З. с.170−247.
  27. Ю.П. Медиаторные механизмы синаптической передачи в вегетативной нервной системе // Физиология вегетативной нервной системы / под ред. В. Н. Черниговского. Л.: Наука. 1981. с. 249−279.
  28. Ф.И., Ракицкая В. В. Об источниках адренергической иннервации матки крыс. // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова 1996. т. 76. № 9. с. 1245 1249.
  29. В.В., Проймина Ф. И., Чудинов Ю. В. Адренергическая иннервация матки крыс в разные фазы астрального цикла. // Физиол. журн. Им. И. М. Сеченова. 1986. т.72. № 7. с. 987 991.
  30. Г. А., Скопичев В. Г., Ракицкая В. В. Денервация узла опухоли как один из элементов патогенеза миомы матки. // Акуш. и гинекол. 1986. № 2. с. 24−26.
  31. О.Н., Проймина Ф. И., Арутюнян H.A., Ракицкая В. В., Секретарева Е. В. Влияние местной химической десимпатизации матки крыс на ее чувствительность к половым гормонам. // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1996. т. 82. № 4. с. 115 123.
  32. Г. Ю. Нейрональная активность подслизистого сплетения пилорического и миоцекального сфинктеров // Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1978. т.64. № 5. с. 828−834.
  33. М.Р., Этинген JI.E. Иммунная система человека. М., «Медицина»., 1996.
  34. И.А. Структурные основы периферической регулировки мотонейронов желудка и желчевыводящих путей.: Автореф. докл. дис. Л., 1982. с. 19.
  35. Узелко-Строганова К. П. Нормальная и патологическая анатомия и гистология женских половых органов. М., «Медгиз». 1939.
  36. В.М., Гриневич В. Г., Фокина A.A. Тучные клетки как механизм трофического влияния вегетативной нервной системы на гастродуоденальную слизистую оболочку.// Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1980. т.66. № 7. с.1075−1081.
  37. Н.К., Гиниатуллин P.A. Влияние гистамина на проведение одиночной или ритмичной серии импульсов через нервный синапс.// Физиол. журн. им. И. М. Сеченова. 1997. т.83. № 7. с.77−84.
  38. М.П. Гормоны животных. «Глаголь». С-Пб. 1995. 291 с.
  39. И1аляпина В.Г., Ракицкая В. В., Абрамченко В. В. Адренергическая иннервация матки. Л.: Наука. 1988. 141 с. 47.1Птылик A.B. Морфологические и функциональные нейроиммунные взаимодействия в пейеровой бляшке тонкой кишки крыс: Афтореф.докл. дис. С-Пб., 1999.
  40. Ado A.D., Gol’dshten M.M., Dontsov V.I. Acetilcholine-induced lymphocyte mobility in intact and sensitized mice. // Biull. Eksp. Biol. Med. 1983. v.95.№ 4. p.66−67.
  41. Aim P., Alumets J., Hakanson R., Owman O., Sjoberg N-O., Sundler F., Walles B. Origin and distribution of VlP-nerves in the genito-urinary tract.// Cell tissue Res. 1980. v.205. № 3. p.337−347.
  42. Aim P., Lundberg L.M. Co-existence and origin of peptidergic and adrenergic nerves in the guinea pig uterus. // Cell Tissue Res. 1988. v.254. № 3. p. 517−530.
  43. Anderson P.N., Mitchell J., Mayor P. The uptate horse radish peroxidase by danaged autonomic nerves in vitro .// J. of Anatomy. 1979. v. 128. № 2. p.401 406.
  44. Ansel J.C., Brown J.R., Payan D.G., Brown M.A. Substance P selectively activate TNF-gene expression in murine mast cells. // J. Immuniligy. 1993. v.150. p.4478−4485.
  45. Bek T., Ottesen B., Fahrenkrug J. The effect of galanin? CGRP and ATP onspontaneous smooth muscle activity of rat uterus.// Peptides. 1988. v.9. № 3. p.497−500.
  46. Bell C., Malcolm S.J. Neurochemistry of the sympathetic innervation to the uterus. // Clin. Exp. Pharmacol. Phisiol. 1988. Sep. 15. № 9. p. 667−674.
  47. Berkley K.J., Robbins A., Sato Y. Functional differences between afferent fibers in the hypogastric and pelvic nerves innervating female reproductive organs in the rat. // J. Neurophisiol. 1993. v.69. № 2. p.533−544.
  48. Berkley K.J., Hubscher C.H., Wall P.D. Neuronal responses to stimulation of the cervix, uterus, colon, and skin in the rat spinal cord. // J.. Neurophisiol. 1993. v.69. № 2. p.545−550.
  49. Berkley K.J., Guilbaut G., Benoisy J-M., Cauton M. Responses of neurons in and near thalamic ventrobasal complex of the rat to stimulation of uterus, cervix, vagina, colon, and skin. // J. Neurophisiol. 1993. v.69. № 2. p.557−568.
  50. Bhardwaj R., Moore P.K. Endothelium-derived relaxing factor and the effects of acetylcholine and histamine on resistance blood vessels. // Br. J. Pharmacol. 1988. v.95. № 3. p.835−843.
  51. Brown C.G., Poyser N.L. Further studies on prostaglandin and thromboxane production by the rat uterus during the oestrous cycle. // J. Reprod. Fertil. 1985. v.73. p.3391−399.
  52. Brundin J. Distribution and funktion of adranergic nerves in the rabbit fallopian tube.// Acta phisiol. cand. 1965. v.66. p.5 57.
  53. Buchanan G.D., Garfield R.E. Myometrial ultrastructure and innervation in myotis lucifugus, the little brown bat. // Anat Rec. 1984. v.210. p.463−475.
  54. Bulat R., Kannan M.S., Garfield R.E. Stadies of the innervation of rabbit myometrium and cervix. // Can. J. Phisiol. Pharmacol. 1989. Y.67. p.837−844.
  55. Burnstock G. Purinergic neurons II Pharmacol. Rev. 1972. v. 34. p.509−581.
  56. Burnstock G. Purinergic tramsmission // Handbook of Psychopharmacology / Ed. L.L. Iverson, S.H.Shyder., New York: Plenum Publ. Corp. 1975. v.5. p. 131−194.
  57. Burnstock G. Neurotransmitters and trophic factors in the autonomic system //J.Physiol. 1981. v. 313. p. 1−35.
  58. Bury T.B., Corhay J.L., Radermecker M.F. Histamine-induced inhibition of neutrophij chemotaxis and T-lymphocyte proliferation in man. // Allergy. 1992. v.47. № 6. p. 624−629.
  59. Chataigneau T., Feletou M., Huang P.L., Fishman M.C., Duhault J., Vanhoutte P.M. Acetylcholine-induced relaxation in blood vessels from endothelial nitric oxide synthase knockout mice. // Br. J. Pharmacol. 1999. v. 126. № l.p.219−226.
  60. Chernigovskiy V.N. Interoceptors. 1967. Washington, DC: Am. Psycol. Assoc.
  61. Coffey R.G., Hadden J.W. Neutotransmitters, hormons, cyclic nucleotides in lymphocyte regulation. // Fed. Proc. 1985. V. 44. P. 112.-Cook-Mills J.M. et.al., 1995.
  62. Collins J.J., Lin C.E., Berthoud H.R., Papka R.E. Vagal afferents from the uterus and cervix provide direct connections to the brainstem. // Cell Tissue Res. 1999. v.295. № 1. p.43−54.
  63. Cooke R., Burnstock G. The ultrastructure of Auerbach’s plexus in the guinea pig. I. Neuronal elements // J. Neurocytol. 1976. v.5. p.171−194.
  64. Cooke H.J.Neuroimmune signaling in regulation of intestinal ion transport // Amer. J/Phisiol. 1994. v.266. № 2.pt.l. p. G167-G178.
  65. Cook-Mills J.M., Cohen R.L., Perlman R.L. Chambers D.A. Inhibition of lymphocyte activation by catecholamines: evidence for a non-classicalmechanism of catecholamine action. // Immunology. 1995. v.85. № 4. p.544−549.
  66. Cooper M.D., Foote R.H. Effects of oxytocin, prostaglandin F2 aipha and reproductivetract manipulations on uterine contactility in Holstein cows on days 0 and 7 of the estrous cycle. // J. Anim. Sci. 1986. v.63. № 1. p. 151 161.
  67. Crane L.M., Martin L. Postcopulatory myometrial activity in the rat as seen by video-laparoscopy. // Reprod. Fertil. Dev. 1991. v. 3. p. 685−698.
  68. Croker K.P., Shelton J.N. Influence of stege of cycle. Progestagen treatment and dose of oestrogen on uterine motility in the ewe. // J. Reprod. Fertil. 1973. v. 32. p.521.
  69. Crosby E., Hampbrey T., Lauer E. Correlative anatomy of the nervous system. New York: Marcmillam. 1962.
  70. Cruz M.A., Rudolph M.I. Adrenergic mechanisms in the control of myomertial activity in mice Changes on estrous cycle. // Life Sci. 1986. v.38. № 22. p.2043−2051.
  71. Dalsgaard C. J., Lundberg J.M. Evidenc for a spinel afferent innervation of the guinea-pig lover respiratory tract as studied by the horseradish peroxidase technique // Neuroscience Leters. 1984. v. 45. № 1. p. l 17 122.
  72. De M., Wood G.W. Influense if oestrogen and progesterone on macrophage distribution in the mouse uterus. // J. Endocrinol. 1990. Sep.126. № 3. p. 417 424.
  73. Doss D.N., Machail N.A., Ehladdios E.Y. The localization of cholecystokinin immunoreactivity in the rat ovary and uterine tube.//
  74. Neuropeptides. 1991. v.18. № 2. p.87−91.
  75. Feher E., Burnstock G., Varndell I.M., Polak J.M. Calcitinin-gen-related peptide-immunoreactive nreve fibres in the small intestine of the guinea-pig: electron-microscopic immunohistochemistry // Cell Tissue Res. 1986. v.245. № 2. p.353−358.
  76. Fernandez A.I., Garcia de Boto M.J., Gutierrez M., Cantabrana B., Hidalgo A. Influence of hormonal status in relaxant effects of diethylstilbestrol and nifedipine on isolated rat uterus contraction. // Gen.pharmacol. 1995. v.26. № 6. p.1281−1287.
  77. Ferrante R., Ricci A., Felici L., Cavallotti C., Amenta F. Suggestive evidence for a functional between mast cells and sympathetic nerve in meningeal membranes. // Acta. Histochem.Cytochem.1990. v.23. p.637−647
  78. Fisher S.J., Gimenes T., Henricks D.M. Immunosuppressive activity associated with early pregnancy in the bovine. // Biol. Reprod. 1985. v.32. № 4. p.892−906.
  79. Foster A.P., Cunnigham F.M. Histamine-induced adherens and migration of equine eosinophils. // Am. J. Vet. Res. 1998. Sep. 59. № 9. p. 1153−1159.
  80. Franchi A.M., Chaud M., Borda E.S., Gimeno M.F., Lazzari M.A., Gimeno A.L. Spontaneous motility and prostaglandin generation in rat uterine horns isolated during the estrous cycle. // Prostaglandins. 1981. v.22.. № 4. p.637−642.
  81. Fried G., Hokfelt T., Terenius L., Goldstein M. Neuropeptide Y (NPY) like immunoreactivity in guinea pig uterus is redused during pregnancy in parallel with noradrenergic nerves. // Histochemistry. 1985.V.83. № 5. p.437−442.
  82. Furness J.B., Costa M. Types of nerves in the enteric nervous system // Neuroscience. 1980. v. 5. p. 1−20.
  83. Garfield R.E. Structural studies of innervation on nonpregnant rat uterus. // Am. J. Phisiol. 1986. v.251. № 1. pat.2. p. C41-C54.
  84. Garris D.K., McConnaughey M.M., Dar M.S. Estrogen modulation if uterine adrenergic-cholinergic intraction: effects on vasoactivity and adrenergic receptors in the guinea pig. // J. Pharmacol. Exp. Ther. 1986. v.239. № 1. p.270−278.
  85. Gershen M.D., Erde S.M. The nervous system of the gut // Gustroenterology. 1981. v.80. p.1571−1594.
  86. Grbczewska E., Maliski W., Ry&zring-ewski J. Cholinergic stimulation if RNA synthesis in rat lymphocytes. // Arch. Immunil. Ther. Exp (Warsz). 1981. v.29. № 6. p.789−793.
  87. Haase E.B., Buchman J., Tietz A.E., Schramm L.P. Pregnancy-induced uterine neuronal degeneration in the rat. // Cell Tissue Res. 1997. v.288. № 2. p.293−306.
  88. Hahn D.W., McGuire J.L., Carraher R.P., Demers L.M. Influence of ovarian steroids on prostaglandin- and leukotriene-induced uterine contractions. //Am. J. Obstet. Gynecol. 1985. Sep. 1. v.153. № l.p. 87−91.
  89. Hansen P.J. Regulation of uterine immune function by progesterone-lessons from the sheep. // J. Reprod. Immunol. 1998. v.40. № 1. p. 63−79.
  90. Happola O., Lacomy M., Majewski M., Yanaihara N. Distribution of somatostatin- and neuropeptide Y-immunoreactive nerve fibers in the porcine female reproductive system. // Neurosci. Lett. 1991. v. 122. № 2. P.273−276.
  91. Happola O., Lacomy M., Yanaihara N. Met5 -enkephalin- and Met56 7 8enkephalin-Arg -Gly -Leu -immunoreactive fibers in the pig female reproductive system //Neurosci. Lett. 1989. V.101. № 2. P.156−162.
  92. Happola O., Lacomy M., Yanaihara N. Immunohistochemical localization of Met5 -enkephalin-Arg6-Gly7-Leu8 in the female genital organs and in the paracervical ganglion of the pig // Histochemistry. 1990.V.93. № 5. P.479−484.
  93. Hartmann K., Henz B.M., Kruger-Krasagakes S., Kohl J., Burger R., Guhl S., Haase I., Lippert U., Zuberbier T. C3a and C5a stimulate chemotaxis of human mast cells. // Blood. 1997. V.89. № 8. P. 2863−2870.
  94. Hervonen A., Kanerva L., Liettzen R. Histochemically demonstrable catecholamines and cholinesterases of the rat uterus during estrus cycle, pregnancy and after estrogen treatment. // Acta Phisiol. Scand. 1973. V.87. p. 283−288.
  95. Higuchi T., Uchide K., Honda K., Negoro N. Pelvic neuractomy abolishes the fetus-expulsin reflex and induces dusticia in the rat. // Exp. Neurol. 1987. 96:2 443−455.
  96. Houdeau E., Boyer P.A., Rousseau A., Rousseau J.P. Coexpression of neuropeptide Y and vasoactive intestinal polipeptide in plexus innervating the uterus and cervix in the rat. // Cell Tissue Res. 1997. V.288. № 2. P.285−292.
  97. Jacobson H.N., Nieves O. Intrinsic nerve fibers of the primate endometrium // Exptl. Neurol. 1961. Vol. 4.p.l80 187.
  98. Jonson D.L., Ashmore R.C., Gordon M.A. Effects of b-adrenergic agents on the murine lymphocyte response to mitogen stimulation. // J. Immunopharmacol. 1981. Y.3. p.205
  99. Kanerva J. Light and electron microscopic observations on the postnatal development of the rat paraservical ganglion. // Z.Anat. Entwicklungsgeech 136:33 50. 1972.
  100. Kappel M., Poulsen T.D., Galbo H., Pedersen B.K. Effects of elevated plasma noradrenaline on the immune system in humans. // Eur. J. Appl. Physiol. 1998. V.79. № l. p.93−98.
  101. Kawatani M., Tareshige G., de Groat W.C. Central distribution of afferent pathways from the uterus of the cat. // J. Cimp. Neurol. 1990. V.301. № 2. p. 294−304.
  102. Keith I.H., Jin J., Saban R. Nerve mast cell interaction in nirmal guinea pig bladder. // J. Comp. Neurol. 1995.V.363. № 1. P. 28 — 36.
  103. Kioni K., Abell K., McGillis J.P., Carlson S.L. Catecholamines inhibite lymfhocyte binding to endothelial cells.// Society for neuroscience. Abstracts. V.19. pt.2. 23 RD. Annual meeting. Washington, DC. Nov. 72.1993 p.946
  104. Klein J.R., Kagnoff M.F. Non-specific recruitment of citotoxic effector cells in the intestinal mucosa of antigen-primed mice.// J.Exp. Med. 1984. V.160. p.1931−1936
  105. Koff W.C., DuneganM.A. Modulation if macrophage-mediated tumoricidal activity by neuropeptides and neurohormones. // J. Immunol. 1985. V.135. № 2. P.350−354.
  106. Kornyei J.L., Vertes Z., Oszter A., Kovacs K.A., Rao C.V., Vertes M. Opioid peptides inhibit the action of oestradiol on human myometrial cells in culture // Mol. Hum. Reprod. 1999. V.5. № 6. P. 565−572.
  107. Kreis M.E., Kirkup A.J., Becker H.D., Crundy D. Sensitivity of mesenteric afferents supplying the rat jejunum to the mast cell mediator histamine. Gasroenterology. 1997. V. l 12. p. A766.
  108. Lakomy M., Kaleczyc J., Majewski M., Sienkiewicz W. Peptidergic innervation of thr bovine vagina and uterus. // Acta Histochem. 1995. V.97. № 1. P.53−66.
  109. Lakomy M., Kaleczyc J., Majewski M., Sienkiewicz W. Immunohistochemical localization of galanin in bovine reproductive organs. // Anat. Hostol. Embriol. 1995. V.24. № 4. P.251−156.
  110. Lamanna C., Assisi L., Costagliola A., Vottoria A. s Botte V., Cocio A. Galanin in the lizard ovidict: its distribution and relationships with estrogen, YIP and oviposition. // Life Sci. 1999. V.65. № 1. P.91−101.
  111. Langley J.M. Connexions of the enteric nerve cells. // J. Physiol. 1982., vol.55, p. 39.
  112. Levi-Schaffer F. Shalit M. Differential release of histamine and prostaglandin D2 in rat peritoneal mast cells activated with peptides. // Int. Arch. Allergy Appl. Immunology. 1989. V.90. p.352−357.
  113. Lichtman J.W. The reorgnization of synaptic connections in the rat submandibular ganglion during postnatal development. // J. Phisiol. 1977. V.273. p.155−177.
  114. Lundberg L.M., Aim P., Thorbert G. Local mechanical effects and humoral factors evoke degeneration of guinea pig uterine innervation.// Acta Obstet. Ginecol. Scand. 1989. V.68. № 6. P.487−496.
  115. Magraner J., Pinto F.M., Anselmi E., Hernandez M., Perez-Afonso R., Martin J.D., Advenier C., Candenas M.L. Characterization if tachykinin receptors in the uterus of the oestrogen-primed rat. // Br. J. Pharmacol. 1998. V.123. № 2. P.259−268.
  116. Marsh M.N. Studies of intestinal lymophoid tissue. V. Functional and structural aspects of the epithelial lymphocyte, with implications for coeliac disease and tropical sprue.// Scand. J. Gastroenterology. 1985. V.20. Suppl. 114. P. 55−75.
  117. Marshall J.M. Effects of ovarian steroids and pregnancy on adrenergic nerves of uterus and ovidict. // Am. J. Phosiol. 1981. Y.240. p. C165-C174.
  118. Masini E., Blandina P., Fantozzi R., Brunelleschi S., Mannaioni P.F. Correlation between cholinergic histamine release and quinuclidinyl-bensilate (3H.-QNB)binding in mast cell membranes. // Agents Actions. 1981. v. 11. № 1−2. P.55−59.
  119. Masini E., Fantozzi R. Conti A. Blandina P., Branelleschi S. Mannaioni P.F. Immunological modulation of cholinergic histamine release in isolated rat mast cells.//Agents Actions. 1985. V. 11. № 1−2. P.55−59.
  120. McGeown J.G. Splanchnic nerve stimulation increases the lymphocyte output in mesenteric efferent lymph. // Pflugers Arch. 1993.V.422. № 6. P. 558 563.
  121. Melo R.C., Machado C.R. Noradrenergic and acetylcholinesterase-positive nerve fibers of the uterus in secsually immatute and cycling rats. // Histochem. 1993. V.25. № 3. P.213−218.
  122. Mitchell B.C., Ahmed E. An immunohistochemical stude of the catecholamine synthesizing enzymes and neuropeptides in the female guinea-pig uterus and vagina. // Histochem J. 1992. V.24. № 6. P.361−367.
  123. Moodley N., Lau W.A., Pennefather J.N. Story M.E., Fisher L. NK2 receptors mediate tachicinin-induced contractions of rat uterus during the oestrous cycle. //Eur. J. Pharmacol. 1999. V.376. № 1−2. P.53−60.
  124. Morris J.L. Co-transmission from autonomic vasodilator neurons supplying the guinea pig uterine artery. // J. Auton. Nerv. Syst. 1993. V.42. № 1. P. l 121.
  125. Moscarini M., Contagalli A. rn Cavallotti C., de Luca C., Amenta F. Cholinergic nerves in mouse uterus // J. Neural. Transmission. 1982. V.55. p.139−148.
  126. Papka R E., Traurig H.H. Galanin-IR nerves in the female rat paracervical ganglion and uterine cervix: distribution and reaction to capsaicin. // Cell Tissue Res. 1989. V.257. № 1. P. 41−51.
  127. Papka R.E. Some nerve endings in the rat pelvic paracervical autonomic ganglia and varicosities in the uterus contain calcitonin gene-related peptide and originate from dorsal root ganglia. // Neuroscience. 1990. V.39. № 2. P. 459−470.
  128. Papka R E., McNeill D.L., Thompson D., Schmidt T.H. Nitric oxide nerves in the uterus are parasympathetic, sensory and contain neuropeptides. // Cell Tissue Res. 1995. V.279. № 2. P. 339−349.
  129. Parkington H.C., Lipton A. Sustained effects on synthetic ovarian steroids of rat myometrial contractility. // J. Endocrinol. 1976. V.70.. № 2. P. 223
  130. Petrovska M., Dimitrov D.G., Michael S.D. Quantitative chenges in macrophage distribution in normal mouse ovary over the course of the estrous cycle examined with an image analysis system. // Am. J. Reprod. Immunol. 1996. Sep. 36. № 3. P.175−183.
  131. Pitzalis C., Pipitone N. Bajocchi G. Corticosteroids inhibit lymphocyte binding to endothelium and intercellular adhesion: an additional mechanism fo their antiinflammatory and immunosuppressive effect. // J. Immunol. 1997. V.158. № 10. P. 5007−5016.
  132. Purcell W.M., Atterwill C.K., Mast ceiis in neuroimmune function: neurotoxicological and neuropharmacologicalperspectives. //Neurochem. Res. l995.V.20. № 5. P.521−532.
  133. Reis A.M., Jankowski M., Mukaddam-Daher S., Trembly J. Regulation of the natriuretic peptid system in rat uterus during the estrous cycle. // J. Endocrinology. 1997. V.153. № 3. P.345−355.
  134. Rexroad C.E. Estradiol regulation of the frequency and site of origin of uterine contractions in ewes. // J. Anim. Sci. 1980. V.31. p. l 139.
  135. Rexroad C.E. Estrogen and progestogen binding in the myometrium of the ewe. I. Duting the estrous cycle. // J. Anim. Sci.1981. v.53. № 4. P. 1057−1069
  136. Ribbing S.L., Hoversland R.S., Beaman K.D. T-cell suppressor factors play an integral role in preventing fetal rejection. // J. Reprod. Immun. 1988. Y. 18. p.83.
  137. Rinner I., Kawashima K., Schauenstein K. Rat lymphocytes produce and secrete acetylcholine independent correction of in dependence. of differentiation and activation. //J. Neuroimmunol. 1998. V.81. № 1−2. P.31
  138. Robbins A., Berkley K.J., Sato Y. Estrous cucle variation of afferent fibers supplying reproductive organs in the female rat. // Brain Res. 1992. V.596. № 1−2. P.353−356.
  139. Robertson S.A., Mayrhofer G., Seamark R.F. Ovarian steroid hormones regulate granulocyte-macrophage colony- stimulating factor synthesis by uterine epithelial cells in the mouse. // Biol. Reprod. 1996. V.54. № 1. P. 183−196.
  140. Rossman I. Uterine contraction and the transport of sperm in the rat. // Anat. Res. 1937. Y.69. p. 133−149.
  141. Samuelson U.E., Dalsgaard C.J., Lundberg J.M., Hokfeld T. Calcitonin gene-related peptide inhibits spontaneous contractions in human uterus and fallopian tube. // Neuroscience Lett. 1985. № 62. P.225−230.
  142. Sato E., Koyama S., Okubo Y., Kubo K., Sekiguchi M. Acetylcholine stimulates alveolar macrophages to release inflammatory cell chemotactic activity. //Am J.Phisiol. 1998. V.274. № 6. Pt. 1. p. L970-L979.
  143. Sawicki W., Choroszewska A., Bern W., Strojny P. Lymphocyte namber and distribution in the ray uterine epithelium during estrous cycle and early pregnancy. // Cell Tissue Res. 1988. V.253. № 1. p.241−244.
  144. Schedlovski M., Falk A., Rohne A. Wagner T.O., Jacobs R., Tewes U., Schmidt R.E. Catecholamines induse alterations of distribution and activity of human natural killer (NK) cells. // J. Clin. Immunol. 1993. V.13. № 5. p.344−351.
  145. Schedlovski M., Hosch W., Oberbeck R., Benschop R.J., Jacobs R. Raab H.R., Schmidt R.E. Catecholamines modulate human NK cell circulation andfunction via spleen-independent beta 2-adrenergic mechanisms. // J. Immunol. 1996. V.156. № 2. P.93−99.
  146. Scott Y.M., Chafe L. The involvement of CGRP in acetylcholine-induced vascular relaxation. // Artery. 1994. V.21. № 1. P.38−50.
  147. Segerson E.C., Matterson P.M., Gunsett F.C. Endometrial T-lymphcyte subset infiltration during the ovine estrous cycle and early pregnancy. // J. Reprod. Immunol. 1991. Sep.20. № 3. 221−236.
  148. Segerson E.C., Gunsett F.C. Secretion of ovine lymphocyte suppressor factor from curetted uterine luminal cells. // J. Anim. Sci. 1992. V. 70. № 6. P.1895−1903.
  149. Selye H. The mast cells. London. Butterworths. 1965
  150. Senba E., Tohyama M. Calcitonin gene-related peptide contining autonomic efferent pathways to the pelvic ganglia of the rat. // Brain. Res. 1988. V.449. p. 386−390.
  151. Shew R.L., Papka R.E., McNeil D.L. Substanse P and calcitonin gene-related peptide immunoreactivity in nerves of the rat uterus: localization, colocalization and effects on uterine contractility. //.Peptides. 1991. V.12. № 3. P.593−600.
  152. Shew R.L., Papka R.E., McNeil D.L. Galanin and calcitonin generelated peptide immunoreactivity in nerves of the rat uterus: localization, colocalization and effects on uterine contractility. // Peptides. 1992. V.13. № 2. P. 273−279.
  153. Silverman J.D., Kruger L. Calcitonin gene-related peptide-immunoreactive innervation of the rat head with emphasis on specialized sensory structures. // J. Comp. Neurol. 1989. № 280. P.303−330.
  154. Sirianni M., Fais S., Annibale B. Gut neuropeptides and the immune system. // Adv. Neuroimmunology 1991. V.l. p. 173−179.
  155. Staaples L.D., Binns R.M., Heap R.B. Influense of certain steroids on lymphocyte transformtion in sheep and goats studied in vitro. // J. Endocrinol. 1983. V. 98. № 1. P. 55−69.
  156. Stephenson D.C., Hansen P.J. Induction by progesterone of immunosuppressive activity in uterine secretions of ovariectomized ewes. // Endocrinology. 1990. V.126. № 6. P. 3168−3178.
  157. Stites D.P. Siiteri P.K. Steroids as immunosuppressants in pregnancy.// Immunol. Rev. 1983. V.75. p. l 17−138.
  158. Stjernquist C., Ekblad E., Owman C., Sundler F. Immunocytochemical localization of galanin in the rat male and female genital tracts and motop effects in vitro. // Regul. Pept. 1988. V.20. № 4. P.335−343.
  159. Streilein J.V., Alard P., Niizehi H. Neural influences on induction of contact hypersensitivity. //Ann NY Acad. Sci. 1999. V.885. № 20. P. 196−208.
  160. Sundler F., Hakanson R., Ekblad E/. Uddman R., Wahlestedt C. Neuropeptide Y in the peripheral adrenergic and enteric nervous systems // Int. Rev. Of cytlolgy. 1986.V.102. p.243−269.
  161. Tabira T., Konishi Y., Gallyas Jr. Neurotrophic effect of hematopoetic cytokines on cholinergic and other neurons in vitro. // Int. J. Dev. Neurosci. 1995. V. 13. № 3−4. P.241−252.
  162. Tamura K., Kumasaka K., Kogo H. The expression of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) and its regulation by ovarian steroids in rat uterine stromal cells. // Jpn. J. Pharmacol. 1999. V.79. № 2. P.257−262.
  163. Tanaka S., Sohen S., Fukuda K. A role for Histamine receptors in rheumatoid artrits. // Semin. Arthritis. Rheum. 1997. V.26. № 6. P.824−833.
  164. Thorbert G., Aim P., Owman C., Sjoberg N-0. Regional distribution of autonomic nerves in guinea pig uterus. // Am. J. Phisiol. 1977. V.233. № 1. P. C25-C34.
  165. Tibbetts T.A., Conneely O.M., O’Malley B.W. Progesterone via its receptor antagonizes the pro-inflammatory activity of estrogen in the mous uterus. // Biol. Reprod. 1999. V.60. № 5. P.1158−1165.
  166. Toner J.P., Adler N.T. Influence of mating and vaginocervical stimulation on rat uterine activity. // J. Reprod. Fertil. 1986. V. 78. P.239−249.
  167. Welento J., Szalak M., Flieger S., Eustrchiewicz R., Boratyski Z. Experimental studies of the location of neural centers in the bovine uterus. // Pol. Arch. Weter. 1987. V.25. № 2. P.297−305.
  168. Williams R.M., Bienenstock J., Stead R.M. Mast cells: the neuroimmune connections // in Marone G.(ad): Human basophyls and mast cells: biologycal aspects. Basel.Karger. 1995. V.61. p.208−235
  169. Williams R.M. Berthoud H-R., Stead R.H. Vagal afferent nerve fibers contact mast cells in rat small intestinal mucosa.// Neuroinnunomodulation. 1997. V.4. № 5−6. P.266−270.
  170. Wira C.R., Sullivan DA. Effects of estradiol and progesterone on the secretory immune system in the genital tract. // Adv. Exp. Med. Biol. 1981. V.138. p. 99−111.
  171. Wira C.R., Rossol R.M. Antigen-presenting cells in the female reproductive tract: influence of the estrous cucle on antigen presentation by uterine epithelial and stromal cells. // Endocrinology. 1995. V.136. № 10. P. 4526−4534.167
  172. Wheaton L.G., Pijinovski G.J., Weston P.G., Burke T.G. Uterine motility During the estrous cycle: studies in hialthy bitches. // Am. J. Vet. Res. 1988. V.49. № 1. P.82−86
  173. Wood G.W., Sanford T., Choudhuri R. Macrophage colony stimulating factor controls macrophage recruitment to the cycling mouse uterus. // Dev. Biol. 1992. V. 152. № 2. P. 336−343.
  174. Yamaki K., Thorlacius H., Xie X., indbom L., Hedqvist P., Raud J. Characteristics of histamine-induced leukocyte rolling in the undisturbed micricirculation of the rat mesentery. // Br. J. Pharmacol. 1998. V. 123. № 3. P. 390−399.
  175. Yong L.C. The mast cell: origin, morfology, distribution, and function.// Exp. Toxicol. Pathol. 1997. V. 49. № 6. P.409−424.
  176. Zheng Y., Zhou Z.Z. Lyttle C.R., Teuscher C. Immunohistochemical characterization of the estrogen-stimulated leukocute influx in the immature rat uterus. // J. Leucos. Biol. 1988. V.44. № 1. P.27−32.
  177. Zoubina E.V., Fan Q., Smith P.G. Variations in uterine innervation during the estrous cycle in rat.// J. Comp. Neurol. 1998. V.397. № 4. P.561−571.
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!