Помощь в написании студенческих работ
Антистрессовый сервис

Совершенствование генетической структуры стада крупного рогатого скота по локусу BoLA DRB 3 как фактор оздоровления от лейкоза

Диссертация: Совершенствование генетической структуры стада крупного рогатого скота по локусу BoLA DRB 3 как фактор оздоровления от лейкоза
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Типирование вируса лейкоза, выделенного у животных хозяйства показало, что в изученном нами стаде циркулирует две генетические разновидности вируса лейкоза, относящиеся по международной классификации к вирусам «австралийской» и «бельгийской» подгрупп. Цель и задачи исследований. Целью настоящей работы явилось изучение роли и результативности применения молекулярно — биологических методов… Читать ещё >

Совершенствование генетической структуры стада крупного рогатого скота по локусу BoLA DRB 3 как фактор оздоровления от лейкоза (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Содержание

  • 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. 1. Состояние структуры поголовья коров молочного направления продуктивности в Краснодарском крае
    • 1. 2. Полиморфизм локуса ВоЬА ЭКВ 3, методы его выявления и возможность использования в селекции молочного скота
    • 1. 3. Лейкоз крупного рогатого скота, этиология и методы диагностики
  • 2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА ПРОВЕДЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ
    • 2. 1. Выделение ДНК
    • 2. 2. Проведение полимеразной цепной реакции (ПЦР)
    • 2. 3. Анализ полиморфизма длин фрагментов рестрикции (ПДРФ)
    • 2. 4. Электрофорез
  • 3. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 3. 1. Анализ работы отрасли молочного скотоводства в ОАО «Племзавод «Дружба» Калининского района
    • 3. 2. Изучение генетической структуры стада по локусу ВоЬА ЭИВ
    • 3. 3. Характеристика быков — производителей, использовавшихся в хозяйстве
    • 3. 4. Подбор быков — производителей с использованием информации по локусу ВоЬА ОЯВ
    • 3. 5. Диагностика лейкоза крупного рогатого скота с использованием полимеразной цепной реакции
    • 3. 6. Генеографические исследования вируса лейкоза крупного рогатого скота
    • 3. 7. Экономический эффект использования молекулярно-биологических методов в молочном скотоводстве

Актуальность темы

Проблема лейкоза крупного рогатого скота является приоритетной для молочного скотоводства России (Гулюкин М.И., Симонян Г. А., Шишкин A.B., 2004). Существует как минимум два альтернативных подхода для повышения эффективности традиционных противолейкозных мероприятий: разработка методов эффективной ранней диагностики (Макаров В.В., Гринишин Д. П., 2005) и использование в селекционной практике признака устойчивости к персистентному лимфоцитозу (Сулимова Г. Е., Удина И. Г., Шайхаев Г. О., Захаров И. А., 1995).

Известно, что разные аллели гена BoLA DRB 3 играют не одинаковую роль в формировании устойчивости животных к персистентному лимфоцитозу, вызываемому вирусом лейкоза крупного рогатого скота (Levin H.A., Wu М.С., Steward J.А., 1988; Van Eijk M.J.T., Stewart — Haynes J.A., Beever J.E., 1992; Xu A., Van Eijk M.J.T., Park Ch., 1993; Mirsky M.L., Lewin H.A., 1998). Доказано, что животные, несущие аллели *11, *23, *28 — устойчивые (У), не склонны к переходу лейкоза в стадию персистентного лимфоцитоза, а животные, несущие в своем генотипе аллели *8, *16, *22, *24 -чувствительные (Ч), напротив, чаще других оказываются в выборке больных. Нейтральные (Н) аллели не ассоциируются ни с устойчивостью, ни с чувствительностью к персистентному лимфоцитозу.

Внедрение новых подходов в практику требует проведения широкого спектра исследований, направленных на оценку их прикладной значимости.

Цель и задачи исследований. Целью настоящей работы явилось изучение роли и результативности применения молекулярно — биологических методов в селекционной работе, для повышения резистентности крупного рогатого скота, и в ранней диагностике лейкоза.

Для достижения цели были поставлены и решены следующие задачи: — проанализировать генетическую структуру стада айрширской породы по локусу ВоЬА ОКВ 3 и определить частоту встречаемости аллелей, ассоциированных с устойчивостью к развитию лейкоза;

— путём соответствующего подбора быков — производителей, создать ВоЬА БИВ 3 генетическую структуру стада крупного рогатого скота айрширской породы с усиленной генетической составляющей устойчивости к персистентному лимфоцитозу;

— разработать схему эффективной ранней диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота (ВЛКРС) на основе использования ДНК — анализа;

— определить экономическую эффективность использования молекулярнобиологических методов.

Научная новизна исследований состоит в том, что создана новая ВоЬА БИВ 3 генетическая структура стада крупного рогатого скота айрширской породы с повышенной частотой встречаемости аллелей, ассоциированных с устойчивостью к развитию лейкоза.

Разработана и апробирована диагностическая схема с использованием ДНК — анализа, эффективно позволяющая оздоравливать хозяйство от лейкоза крупного рогатого скота.

Практическая значимость и реализация результатов исследований. На основании генотипирования по гену ВоЬА ОЯВ 3 разработан способ подбора быков — производителей, направленный на повышение в стаде доли животных, с высоким уровнем устойчивости к персистентному лимфоцитозу. С использованием диагностической схемы, разработанной в ходе выполнения диссертационной работы, показана результативность выявления в раннем возрасте телят — носителей ВЛКРС.

Основные положения диссертации, выносимые на защиту:

— создание новой ВоЬА ОЯВ 3 генетической структуры стада крупного рогатого скота айрширской породы с повышенной устойчивостью к персистентному лимфоцитозу;

— схема оздоровления стада от лейкоза, основанная на использовании технологии ДНК — анализа.

ВЫВОДЫ.

1. В стаде крупного рогатого скота айрширской породы ОАО «ПЗ «Дружба» преобладают аллели BoLA DRB 3 *7, *24, *27, а частота встречаемости аллелей, детерминирующих устойчивость к персистентному лимфоцитозу, низка (в сумме BoLA DRB 3 *11, *23, *28 аллели встречаются с частотой всего 7%).

2. Разработанная схема закрепления быков — производителей, позволила выровнять аллельный BoLA DRB 3 — профиль стада, увеличить количество животных — носителей аллелей устойчивости к персистентному лимфоцитозу на (15%), увеличить количество животных с гетерозиготными генотипами (на 12%).

3. Реализована схема закрепления быков — производителей способствовала значительному (на 19%) снижению расхода спермы на одно плодотворное осеменение.

4. Экспериментальными исследованиями установлено, что;

— ПЦР позволяет выявлять вирусоносительство на ранних сроках жизни животного (в возрасте около 1 месяца);

— ПЦР позволяет предотвратить перезаражение животных при условии изоляции вирусоносителей.

5. В потомстве, закреплённых нами быков — производителей, произошло снижение количества телят — вирусоносителей в 7 раз.

6. Комплекс генетических и диагностических исследований, проведённых в хозяйстве, способствовал снижению количества вирусоносителей в общей сложности с 20 до 1%.

7. Типирование вируса лейкоза, выделенного у животных хозяйства показало, что в изученном нами стаде циркулирует две генетические разновидности вируса лейкоза, относящиеся по международной классификации к вирусам «австралийской» и «бельгийской» подгрупп.

8. Ожидаемый общий экономический эффект от внедрения предложенного метода в хозяйстве составит в год 113 630,6 рублей.

ПРЕДЛОЖЕНИЯ ПРОИЗВОДСТВУ.

Сельхозпредприятиям по разведению крупного рогатого скота молочного направления продуктивности рекомендуется:

— проводить подбор родительских пар с учетом генотипа по локусу ВоЬА 011 В 3, для повышения резистентности коров к персистентному лимфоцитозу, снижения количества телят — вирусоносителей и сокращения расхода семени на плодотворное осеменение;

— разделять телят с 1 месячного возраста на здоровых и вирусоносителей с изоляцией последних на основании результатов ДНК — анализа по предложенной нами схеме для оздоровления стад от лейкоза.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , В.М. Проблемы оздоровления крупного рогатого скота от лейкоза / В. М. Авилов, В. М. Нахмансон // Ветеринария. -1995. -№ 11. С. 3−6.
  2. , Б. Молекулярная биология клетки / Б. Альберте, Д. Брей, Дж. Льюис. М.: Мир, 1987. 1050 с.
  3. , А.Д. Подходы к созданию генно инженерной вакцины против лейкоза на основе вируса осповакцины / А. Д. Алыптеин // Тез. докл. II международной научн. конф.: Биотехнология в животноводстве и ветеринарии. -М., 2000.-С. 149−151.
  4. , В.А. Лейкоз крупного рогатого скота / В. А. Апалькин, М. И. Гулюкин, Н. И. Петров // Петролазер. Санкт Петербург. 2005. -106 с.
  5. , А.Д. О патогенезе лейкозов крупного рогатого скота / А. Д. Белов, Г. В. Рогожина // Ветеринария. -1997. № 12. — С. 16- 19.
  6. , А.Г. Опыт ускоренного оздоровления племенного хозяйства от лейкоза /А.Г. Берзяк, B.C. Ковалючко, B.C. Гротевич, Л. И. Киричук // Ветеринария -№ 12. 1990. — С. 13−15.
  7. , Л. Г. Лейкозы и злокачественные опухоли животных / Л. Г. Бурба, А. Ф. Вахилов, В. А. Горбатов // М.: Агропромиздат, 1988. 399 с.
  8. , В.А. ПЦР диагностика ВЛКРС / В. А. Бусол, О. Ю. Лиманская, А. П. Лиманский // Ветеринарная медицина. — 1998. — В. 74. — С. 35−44.
  9. , А.Ф. Лейкозы и злокачественные опухоли животных / Валихов А. Ф // Под ред. В. П. Шишкова, Л. Г. Бурбы. М., 1988. — С. 173−194.
  10. И.В. Сравнительная оценка результативности РИД и ДНК-диагностики вируса лейкоза крупного рогатого скота/ И. В. Виноградова,
  11. Е.А. Гладырь, Н. А. Зиновьева // Проблемы биологии продуктивных животных. -2011.-Т. 1. С. 15−16.
  12. , Р. А. Молекулярно генетическая диагностика гепатита «В» /Р. А. Волкова // Генодиагностика в современной медицине: Тез. докл. III Всероссийской научн.-практ. конф.: — М., 2000. -С. 45−47.
  13. , Р. Ф. Вирус лейкоза КРС (культуральные, инфекционные и иммунологические свойства) / Р. Ф. Галлеев. Уфа: Ветеринарная медицина, 1999. — 147 с.
  14. , В.И. Полиморфизм молекулярно генетических маркеров у домашней лошади и лошади Пржевальского / Глазко В. И. и др. // Тез. докл. II международной научн. конф.: Биотехнология в животноводстве и ветеринарии. -М., 2000.-С. 151−152.
  15. , В.И. Ведение в ДНК технологии / В. И. Глазко, И. М. Дунин, Г. В. Глазко, JI.A. Калашникова//М.: ФГНУ «Росинформагротех», 2001.- 436 с.
  16. , Л. Дойное стадо юга страны. /Л. Горковенко, В. Шостак, Н. Ковалюк // Животноводство России. 2005. — № 9. — С. 40−42.
  17. , М.И. О распространении лейкоза крупного рогатого скота / М. И. Гулюкин, Г. А. Симонян, A.B. Шишкин // Ветеринарный консультант. № 18. -2004.-С. 4−5.
  18. , М.И. Особенности противолейкозных мероприятий, обеспечивающих высокую молочную продуктивность / М. И. Гулюкин, Г. А. Симонян, А. К. Мироменко //Сборник научных трудов. Екатеринбург, -2005. С.28−34.
  19. , М.И. Разработка эффективных мероприятий против лейкоза крупного рогатого скота / М. И. Гулюкин // Ветеринария. 2002. — № 12.- С. 3−8.
  20. , М.И. Основные тенденции в организации и проведении противолейкозных мероприятий / М. И. Гулюкин, Н. В. Замараева, В. А. Седов и др. // Труды ВИЭВ. М. — 1999. — Т. 72. — С. 16 — 22.
  21. , М.И. Разработка эффективных мероприятий против лейкоза крупного рогатого скота / Гулюкин М. И. и др. // Ветеринария. 2002. — № 12.- С. 3 8.
  22. , М.И. Экспериментальное заражение кроликов вирусом лейкоза крупного рогатого скота /М.И. Гулюкин, J1.A. Иванова, Е. А. Шишкина, A.B. Шишкин, Л. Б. Прохватилова // Ветеринария. 2008. — № 11. — С. 23−27.
  23. Диагностика лейкоза крупного рогатого скота. Методические указания. -М.: Агропромиздат, 1998. 29 с.
  24. , А.Н. Псевдоаллергические реакции на туберкулин при лейкозе КРС / А. Н. Деринов, Н. П. Овдиенко, А. Х. Найманов // Ветеринария. 2006. №-11. -С.20−23.
  25. , Н. В. Экспериментальные исследования по выявлению возможности передачи вируса лейкоза крупного рогатого скота через молоко лабораторным животным / Н. В. Замараева, М. И. Гулюкин, М. Н. Снежков // Бюлл. ВИЭВ. 1996. — № 77. — С. 66.
  26. , Н.В. Современные методы диагностики лейкоза крупного рогатого скота / Н. В. Ковалюк, В. Ф. Сацук, Е. В. Мачульская // Ветеринария Кубани. -2007. -№ 1. С. 18−20.
  27. , Н.В. Выявление возможных причин и последствий распространения отдельных аллельных вариантов локуса BoLA-DRB3 в группах голштинского и айрширского скота/ Н. В. Ковалюк, В. Ф. Сацук,
  28. A.B. Матвиец, Е. В. Мачульская // Генетика. 2010. Т.46. № 3. С.429−432.
  29. , Н.В. Использование генетического маркера BoLA -DRB3 для оптимизации селекционного процесса при скрещивании/ Н. В. Ковалюк,
  30. B.Ф.Сацук // Молочное и мясное скотоводство, — 2010. -№ 2. С. 10−12.
  31. , Г. Ф. Основы профилактики и ликвидации лейкоза крупного рогатого скота / Г. Ф. Коромыслов, В. П. Шишков // Ветеринария. -1993.-№ 4.-С. 15−18.
  32. , Г. Ф. Основные итоги и перспективы научных исследований по проблеме лейкозов сельскохозяйственных животных / Г. Ф. Коромыслов, М. И. Гулюкин, Г. А. Симонян //Тр. ВИЭВ. т. 72. — М.: 1999. -С.3−11.
  33. , Т.С. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии /Т.С. Костенко и др. М.: Агропромиздат. -1989. 272 с.
  34. , В.А. Лейкоз крупного рогатого скота и иммунологическая толерантность / В. А. Крикун // Ветеринария. 2002. -№ 6. С. 7−9.
  35. , А.П. Проблемы лейкоза сельскохозяйственных животных / А. П. Кузнецова, В. П. Смирнов // Ветеринария. № 3 1998 — С.32−33.
  36. , Н.В. Использование полимеразной цепной реакции для выявления инфицированных вирусом лейкоза крупного рогатого скота / Кузнецова Н. В. и др.// Ветеринария. 1997. — С. 12 — 13.
  37. , Т.Ф. Биометрия / Т. Ф. Лакин: М.: Высшая школа, 1980. 293 с
  38. , В.М. Лейкоз крупного рогатого скота / В. М. Лемеш и др.: Минск: «Ураджай», 1987. 220 с.
  39. , А.П. Молекулярно генетические методы — основа программ по искоренению лейкоза крупного рогатого скота / А. П. Лиманский, О. Ю. Лиманская // Биотехнология. — 2001. — № 3. — С. 40−50
  40. , A.B. Анализ генома. Методы. / A.B. Мазин, A.C. Краев, В. А. Потапов: М.: Мир, 1990. 176 с.
  41. , В.В. Эпизоотологические перспективы лейкоза крупного рогатого скота / В. В. Макаров, Д.П. Гринишин// Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 2005. — № 2. — С. 70−73.
  42. , В.В. Избранные вопросы общей эпизоотологии и инфектологии / В. В. Макаров. М., 1999. 224 с.
  43. , В.М. Эпизоотология лейкоза крупного рогатого скота и меры борьбы с ним / В. М. Нахмансон, Е. А. Дун // Итоги науки и техники. -1986.-С.146- 149
  44. , В.М. Лейкоз крупного рогатого скота. / В.М. Нахмансон// М.: Россельхоз-издат, 1986.
  45. , A.A. Генетическая экспертиза племенного материала / A.A. Новиков, H.H. Романенко // Зоотехния. 2001.-№ 7. — С. 14−17.
  46. , Р.В. Вирус бычьего лейкоза и диагностика инфицированных животных / Р. В. Облап, В. И. Глазко, A.A. Созинов // Аграр. Наука. 1998.4. С. 43−44.
  47. , Б.Г. Классификация и номенклатура РНК содержащих вирусов позвоночных /Б.Г. Орлянкин// Сельскохозяйственная биология. — 1996. — № 2. — С. 3−24.
  48. , Н.И. Оздоровление хозяйств от лейкоза крупного рогатого скота / Н. И. Петров // Ветеринария. -1997.- М9.-С. 10−12.
  49. , И.О. Исследование объектов судебно-биологической экспертизы полимеразной цепной реакцией / И. О. Перепечина, Т. В. Стегнова, М. Г. Пименов // Методические рекомендации: М., ЭКЦ МВД РФ, 1996. 24 с.
  50. , И.С. Биологический круговорот радионуклидов и динамика лейкозов в Оренбуржье/ И. С. Пономарева // Радиационная биология. Радиоэкология. 2008. Т.48. № 5. С.606−610.
  51. , Л.Б. Диагностика лейкоза КРС методом ПЦР /Л.Б. Прохватилова и др //Вестник Российской академии сельскохозяйственных наук. 1998. — № 5. — С. 65 — 68.
  52. , Jl.Б. Применение ПЦР для раннего обнаружения провируса лейкоза крупного рогатого скота у экспериментально инфицированных животных / Л. Б. Прохватилова и др. // Ветеринария. 2001. -№ 8. — С. 17−21.
  53. Рис, Э. Введение в молекулярную биологию/ Э. Рис, М.Стернберг. М.: Мир, 2002. 142 с.
  54. , В.Ф. Способ повышения гетерогенности по локусу BoLA DRB 3 в стадах крупного рогатого скота/ В. Ф. Сацук, Н. В. Ковалюк, А. Е. Волченко // Проблемы биологии продуктивных животных.- 2011, № 4. С. 126−129.
  55. , В.Ф. Влияние «скрытого» селекционного инбридинга на хозяйственно полезные признаки скота / В. Ф. Сацук, A.B. Матвиец, Н. В. Ковалюк // Молочное и мясное скотоводство.- 2010. -№ 7. — С. 10−12
  56. , Г. А. Ветеринарная гематология / Г. А. Симонян, Ф. Ф. Хисамугдинов: М.: Колос. -1995. 254 с.
  57. , Г. А. Разработка и совершенствование оздоровительных противолейкозных мероприятий / Г. А. Симонян // Ветеринария. 2007. -№ 7. -С. 3−7.
  58. , А.Р. Главный комплекс гистосовместимости сельскохозяйственных животных: иммуногенетические и популяционные аспекты / А.Р. Слепченко// Успехи современной генетики. 1994. — № 19. — С. 178−205
  59. , Н.И. Молоко лейкозных животных фактор эпизоотического процесса / Н. И. Снежков. Ученые-аграрники — с.-х. пр-ву. — Кострома. — 1995. -Т. 1.-С. 35.
  60. , П.Н. Практические аспекты лейкоза крупного рогатого скота / П. Н. Смирнов // Ветеринарная газета .-№ 13. -1998. 4с.
  61. , T.B. Исследование спермы при идентификации личности методом генотипоскопии / Т. В. Стегнова, И. О. Перепечина, М. Г. Пименов, Е. Ю. Сыроквашева // Методические рекомендации: М., ЭКЦ МВД РФ, 1993. -24
  62. , Г. Е. ДНК-полиморфизм гена BoLA-DRB 3 у крупного рогатого скота в связи с устойчивостью и восприимчивостью к лейкозу / Г. Е. Сулимова, И. Г. Удина, Г. О. Шайхаев, И. А. Захаров // Генетика. 1995. -№. 9.-С. 1294−1299
  63. , В.Н. Ветеринарная вирусология./ В. Н. Сюрин, Р. В. Белоусова, Н. В. Фомина. М.: Агропромиздат, 1991. 431с.
  64. , И.Н. Результаты совершенствования красной степной породы голштинскими красно-пёстрыми быками. / И. Н. Тузов, Х. А. Одабашян // Труды Кубанского аграрного университета. Краснодар, 2005. — Вып. 414 (442). — С. 24−27
  65. , И.Н. Взаимосвязь хозяйственно полезных признаков у голштинизированных коров. / И. Н. Тузов, С. А. Гнатышак // Труды Кубанского аграрного университета. — Краснодар, 2005. — Вып. 414 (442). — С. 15−19.
  66. , Л.И. Новое селекционное достижение в айрширской породе тип Смена / Л. И. Тучемский, Г. Г. Макарова, П. Н. Прохоренко, Ю. В. Бойков, Е. Н. Васильева, Н. Ю. Чекменёва // Зоотехния. — 2008. -№ 6. — С.2−4.
  67. , И.Г. Гены главного комплекса гистосовместимости человека и животных / И. Г. Удина // Успехи современной генетики. 1994. — № 19. -С. 133−177
  68. , Б. Методы практической биохимии / Б. Уильяме, К. Уилсон: М.: Мир, 1978.-272 с.
  69. , С. Молекулярная клиническая диагностика. Методы. С. Херингтон и др.: М.: Мир, 1999. 558 с.
  70. , А.Н. Тест-системы ПЦР при диагностике лейкоза КРС /А.Н. Шаров// Ветеринарный консультант. 2006.- № 5. — С. 5−9.
  71. , А.Г. Лейкоз крупного рогатого скота в краснодарском крае / А. Г. Шипицын, А. К. Схатум, Н. Ю. Басова, В. В. Пачина, А. В. Скориков, Т. Н. Чопик // Методические рекомендации. Краснодар, 2006 с. 1−28.
  72. Aida, Y. Identification of a New Bovine МНС Class II DRB Allele by Nucleotide Sequencing and an Analysis of Phylogenetic Relationships / Aida Y. et al. // Biochemical and Biophysical Research Communications. -1995.-vol. 209. -№ 3, P. 981−988.
  73. Altanerova, V. Induction of immune deficiency syndrome in rabbits by bovine leukaemia virus / V. Altanerova, J. Ban, С Altaner // AIDS. 1989. V.3. P.755−758.
  74. Ammer, H. Exonic polymorphism versus intronic simple repeat hypervariability in MHC-DRB genes / H. Ammer, F-W. Schwaiger, C. Kammerbauer // Immunogenetics. 1991 — № 35. — P. 332−340.
  75. Amorena, B. Serologically defined SD locus in cattle / B. Amorena, W.H.Stone // Science. 1978. V.201. P. 159−160.
  76. Behl, J.D. Characterization of genetic polymorphism of the bovine lymphocyte antigen DRB3.2 locus in Kankrej cattle (Bos indicus) / J.D. Behl, N.K. Verma, R. Behl et al. // J. Dairy Sei. 2007. V.90. № 6. P. 2997−3001.
  77. Beier, D. Identification of different BLV provirus isolates by PCR, RFLPA and DNA sequencing / D. Beier, P. Blankenstein, O. Marquardt, J. Kuzmak // Berl. Munch Tierarztl Wochenschr. 2001 Jul-Aug- 114 (7−8):252−6.
  78. Brujeni, G.N. Bovine immunodeficiency virus and bovine leukemia virus and their mixed infection in Iranian Holstein cattle / G.N. Brujeni, T.T. Poorbazargani, S. Nadin-Davis et al. // J.Infect.Dev.Ctries. 2010. V.4. № 4(9). P576−579.
  79. Brown, J.H. A hypothetical model of the foreign antigen binding site of class II histocompatibility molecules / J.H. Brown, T. Jardetzry, M Saper // Nature. 1998. -P. 845.
  80. Boris Lawrie, K. In vivo study of genetically simplified bovine leukemia virus derivatives that lack tax and rex/ K. Boris-Lawrie, V. Altanerova, C. Altaner, L. Kucerova, H.M. Temin// J.Virol. 1997. V.71. P. 1514−1520.
  81. Burke, M.G. Nucleotide sequence and northern analysis of a bovine major histocompatibility class II DR beta-like cDNA / M.G. Burke, R.T. Stone, N.E. Muggli Cockett // Anim. Genet. — 1991. — № 22 (4). P. 343−352.
  82. Da, Y. Milk and fat yields decline in bovine leukemia virus-infected dairy cattle with persistent lymphocytosis / Y. Da, R.D. Shanks, J.A. Stewart, H.A. Lewin // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1993. — № 94. — P. 6538−6541.
  83. Derse, D. Nucleotide sequence and structure of integrated bovine leukemia virus long terminal repeats/ D. Derse, A.J. Diniak, J.W. Casey, P.L.Deininger // Virology. 1985. V. 141. P. 162−166.
  84. Deren, W. The eradication of enzootic bovine leucosis in a large farm population / W. Deren, A. Szewczyk-Sadowska, J. Rulka // Pol J Vet Sci. 2003. -№ 6. — P. 12−14.
  85. Djilali, S. Development of leukemia and lymphosarcoma induced by bovine leukemia virus in sheep: a hematopathological study/ S. Djilali, A.L. Parodi, D. Levy, G.L. Cockerel 1 // Leukemia. 1987. V.l. P.777−781.
  86. Djilali, S. The BLV-induced leukemia lymphosarcoma complex in sheep / S. Djilali, A.L. Parodi// Vet.Immunol.Immunopathol. 1989. V.22. P.233−244.
  87. Dietz, A.B. Bovine lymphocyte antigen Class II Alleles as risk factors for high somatic cell counts in milk of lactating dairy cows / A.B. Dietz, N.D. Conen // J Dairy Sci. -1997. № 80. — P. 406 — 412.
  88. Dodol, G.J. Serological analysis for linked BoLA loci / G.J. Dodol, D. Bernoco, C. Stormont // Anim. Blood Grps. and Biochem. Genet. 1980. № 11(1). P.28−29.
  89. Dus Santo, M.J. Development of a PCR to diagnose BLV genome in frozen semen samples/ M.J. Dus Santo, K. Trono, I. Lager, A. Wigdorovitz // Vet.Microbiol. 2007. V.17. № 119(1). P.10−18.
  90. Dube, S. The complete genomic sequence of an in vivo low replicating BLV strain / S. Dube, L. Abbott, D.K. Dube, G. Dolcini, S. Gutierrez, C. Ceriani, M. Juliarena, J. Ferrer, R. Perzova, B.J. Poiesz // Virol.J. 2009. V.3. № 6. P. 120.
  91. Dube, S. The complete genomic sequence of a BLV strain from a Holstein cow from Argentina / S. Dube, L. Abbott, S. Mehta, D. Dube, S. Gutierrez,
  92. C. Ceriani, E. Esteban, J. Ferrer, B. Poiesz // Virology. 2000. V.277. P.379−386.
  93. Fechner, H. Provirus variants of the bovine leukemia virus and their relation to the serological status of naturally infected cattle/ H. Fechner, P. Blankenstein, A.C. Looman, J. Elwert, L. Geue, C. Albrecht, A. Kurg, D. Beier, O. Marquardt,
  94. D.Ebner//Virology. 1997. V.237. P.261−269.
  95. Fries, R. The bovine genome map / R. Fries, A. Eggen, J.E.Womack // Mamm. Genome. -1993.-№ 4.-P. 405−428
  96. Gilliespie, B.E. Analysis and frequency of bovine lymphocyte antigen DRB3.2 alleles in Jersey cows. / B.E. Gilliespie, B.M. Jayarao, H.H. Dowlen & S.P. Oliver//J. Dairy Sci. 1999. V.82. P.2049−2053.
  97. Giovambattista, G. Gene frequencies of DRB3.2 locus of Argentine Creole cattle / G. Giovambattista, C.D. Golijow, F.N. Dulout, M.M. Lojo // Anim.Genet. 1996. V.27. № 1. P.55−56.
  98. Gelhaus, A. Sequence and PCR-RFLP analysis of 14 novel BoLA-DRB3 alleles / A. Gelhaus, L. Schnittger, D. Mehlitz, R.D. Horstmann, C.G. Meyer// Anim. Genet. 1995. — № 26(3). — P. 147−153.
  99. Groenen, M.A. The nucleotide sequence of bovine MHC class II DQB and DRB genes / M.A. Groenen et al.// Immunogenetics. 1990. -№ 31. — P. 37.
  100. Casas, E. Detection of quantitative trait loci for growth and carcass composition in cattle. / E Casas, S. D. Shackelford, J. W Keele, M. Koohmaraie, T. P. Smith, R. T. Stone//J. Anim. Sci. 2003. -№ 81. — P. 2976−2983.
  101. Carli, K.T. Detection of IgG antibody to bovine leukemia virus in urine and serum by two enzyme immunoassays / K.T. Carli, A. Sen, H. Batmaz, E. Kennerman // Lett. Appl. Microbiol. 1999.- Vol.28, N.6.- P.416−418.
  102. Carli, K.T. Comparison of Serum, Milk and Urine as Samples in an Enzyme-Immunoassay for Bovine Leukemia Virus Infection / K.T.Carli, H. Batmaz, A. Sen, A. Minbay // Res.Vet.Sci.- 1993.- Vol.55.-№ 3.- P.394−395.
  103. Creighton, P. Mapping of bovine markers CYP21, PRL, and BoLA DRBP1 by genetic linkage analysis in reference pedigrees / P. Creighton, A. Eggen, R. Fries, SA. Jordan, J. Hetzel, EP. Cunningham, P. Humphries // Genomics. 1992. — № 14. -P. 526−528.
  104. Juliarena, M.A. Antibody response against three widespread bovine viruses is not impaired in Holstein cattle carrying bovine leukocyte antigen DRB3.2 alleles associated with bovine leukemia virus resistance / M.A. Juliarena, M. Poli,
  105. C. Ceriani, L. Sala, E. Rodriguez, S. Gutierrez. G. Dolcini, A. Odeon, E.N. Esteban J. Dairy //Sci. 2009. V.92. № 1. P.375−381.
  106. Jimba, M. BLV-CoCoMo-qPCR: Quantitation of bovine leukemia virus proviral load using the CoCoMo algorithm / M. Jimba, S.N. Takeshima, K. Matoba,
  107. D. Endoh Y. Aida// Retrovirology. 2010. V.2. № 7. P.91.
  108. Haghparast, A. Selection of T-cell epitopes from foot-and-mouth disease virus reflects the binding affinity to different cattle MHC class II molecules. /A. Haghparast, M.H. Wauben, M.C. Grosfeld-Stulemeyer, P. van Kooten,
  109. E.J. Hensen // Immunogenetics. 2000. V. 51 (8−9). P.733−742.
  110. Horin, P. BoLA DYA polymorphism in Czech cattle / P. Horin, J. Matiasovic// Exp. Clin Immunogenet. 1998. -15 (1). — P. 56 — 60
  111. Kabeya, H. Host immune responses in the course of bovine leukemia virus infection / H. Kabeya, K. Ohashi, M. Onuma // J Vet Med Sei. -2001.- Jul.-№ 63(7). P. 703−708
  112. Kobayashi, S. Risk factors associated with within-herd transmission of bovine leukemia virus on dairy farms in Japan / S. Kobayashi, T. Tsutsui, T.Yamamoto.et al //BMC.Vet.Res. 2010. V6. P.6.
  113. Kale, M. Effects of subclinical bovine leukemia virus infection on some production parameters in a dairy farm in southern Turkey/ M. Kale, O. Bulut,
  114. Yapkic, M.S. Gulay, F. Pehlivanoglu, A. Ata, S. Yavru //J.S.Afr.Vet.Assoc. 2007. V.78. № 3. P.130−132.
  115. Knapen, K. Epidemiological evaluation of a monoclonal ELISA detecting antibodies against bovine leukaemia virus in serum pools / K. Knapen, P. Kerkhofs, E. Thiry, M. Mammerickx / Epidemiol.Infect. 1994. V. l 13. № 3. P.563−569.
  116. Kobayashi, S. Risk factors associated with within-herd transmission of bovine leukemia virus on dairy farms in Japan / S Kobayashi, T. Tsutsui, T. Yamamoto, et al. //BMC.Vet.Res. 2010. V6. P.6.
  117. Kohara, J. Experimental transmission of Bovine leukemia virus in cattle via rectal palpation / J. Kohara, S. Konnai, M. Onuma// Jpn. J Vet Res.- 2006.- May. -№ 54(1).P. 25−30
  118. Kulberg, S. Study on the association of BoLA-DRB3.2 alleles with clinical mastitis in Norwegian Red cows / S. Kulberg, B. Heringstad, O.A. Guttersrud,
  119. Olsaker// J Anim Breed Genet.- 2007. Aug- 124(4). — P.201−207
  120. Levin, H.A. Association between BoLA and subclinical in bovine leukemia virus infection in a herd of Holstein Friesian cows / H.A. Levin, M.C. Wu, J.A. Steward // Immunogenetics. — 1988. -27(5). — P. 338 — 344
  121. Lewin, H.A. Close linkage between bovine prolactin and BoLA-DRB3 genes: Genetic mapping in cattle by single sperm typing. / H.A. Lewin, K. Schmitt, R. Hubert et al. // Genomies. 1992. № 12. P.44−48.
  122. Licursi, M. Provirus variants of bovine leukemia virus in naturally infected cattle from Argentina and Japan / M. Licursi, Y. Inoshima, D. Wu, T. Yokoyama, E.T., Gonzalez, H. Sentsui // Vet.Microbiol. -2003. V-.96. P. 17−23.
  123. Lim, S.I. Agar gel immunodiffusion analysis using baculovirus-expressed recombinant bovine leukemia virus envelope glycoprotein (gp51/gp30T-) / S.I. Lim, W. Jeong, D.S. Tark, D.K.Yang, C.H. Kweon // J.Vet.Sci. 2009. V. 10(4). P.331−336.
  124. Limanskaia, O. Distribution of potentially hairpin-loop structures in the genome of bovine retroviruses/ O. Limanskaia, A.P. Limanskii // Vopr.Virusol. 2009. V.54. № 4. P.27−32.
  125. Lymans’ka, O. Polypurine/polypyrimidine sequences with potential of forming triplexes in the proviral DNA of bovine retroviruses / O. Lymans’ka //Tsitol.Genet. 2010. V.44. № 1. P. 10−18.
  126. Maillard, J.C. Characterization of 18 new BoLA-DRB3 alleles / J.C. Maillard,
  127. C. Renard, P Chardon., I. Chantal, A. Bensaid // Anim. Genet. 1999. -№ 30(3). -P.200−203.
  128. Mammerickx, M. Experimental cross-transmissions of bovine leukemia virus (BLV) between several animal species/ M. Mammerickx, D. Portetelle, A. Burny //Zentralbl.Veterinarmed. 1981. V.28. P.69−81.
  129. Mammerickx, M. Experimental transmission of enzootic bovine leukosis to sheep: latency period of the tumoral disease/ M. Mammerickx, R. Palm,
  130. D. Portetelle, A. Burny//Leukemia. 1988. V.2. P.103−107.
  131. Matsumura, K. Molecular epidemiology of bovine leukemia virus associated with enzootic bovine leukosis in Japan/ K. Matsumura, E. Inoue, Y. Osawa, K. Okazaki// Virus Research Volume 155, Issue 1, January 2011, P. 343−348.
  132. Meas, S. Vertical transmission of bovine leukemia virus and bovine immunodeficiency virus in dairy cattle herds / S. Meas, T. Usui, K. Ohashi, et al // Vet.Microbiol. 2002. V.84. P.275−282.
  133. Mikko, S. Extensive MHC class II DRB3 diversity in African and European cattle / S. Mikko, L. Andersson // Immunogenetics. 1995. — № 42 (5). — P. 408−413.
  134. Miller, J.M. Virus like particles in phytohemagglutinin — stimulated lymphocyte cultures with referent to bovine lymphosarcoma / J.M. Miller, L.D. Miller, C. Olson, K.G. Gillette // J. Natl. Cancer Inst. — 1969. — № 43. -P. 1297- 1305.
  135. Miltiadou, D. Establishment of a sequence-based typing system for BoLA-DRB3 exon 2 / D. Miltiadou, A.S. Law, G.C.Russell // Tissue Antigens. -2003. Jul.-№ 62.- P. 55−65.
  136. Miretti, M.M. Restriction fragment length polymorphism (RLFP) in exon 2 of the BoLA DRB 3 gene in South American cattle / M.M.Miretti, J. A Ferro// Biochem Genet. 2001. -№ 39. — P. 311- 324.
  137. Mirsky, M.L. Reduced bovine leukaemia virus proviral load in genetically resistant cattle / M.L. Mirsky, H.A. Lewin // Anim. Genet. 1998. — 29. -P. 145−252.
  138. Monti, G.E. Evaluation of natural transmission of bovine leukaemia virus within dairy herds of Argentina/ G.E. Monti, K. Frankena, M.C. De Jong // Epidemiology and Infection. 2007. V.135. P.228−237.
  139. Murakami, K. The recent prevalence of bovine leukemia virus (BLV) infection among Japanese cattle / K. Murakami, S. Kobayashi, M. Konishi, et al. //Vet.Microbiol. 2011. V.24. № 148 (1). P.84−88.
  140. Norimine, J. Quantitation of Anaplasma marginale major surface protein (MSP) and MSP2 epitope-specific CD4+ T lymphocytes using bovine DRB3*1101and DRB3*1201 tetramers / J. Norimine, S. Han, W.C. Brown // Immunogenetics. 2006. V.58. № 9. P.726−739.
  141. Onuma, M. Suppression of immunological responses in rabbits experimentally infected with bovine leukemia virus / M. Onuma, M. Wada, Y. Yasutomi, M. Yamamoto, H.M. Okada, Y Kawakami // Vet.Microbiol. 1990. V.25. P.131−141.
  142. Olson, C. Goat lymphosarcoma from bovina leukemia virus / C. Olson, R. Kettmann, A. Burny, R. Kaja// J. Nuit Gmcer. Inst. 1981. — v. 67.- P. 671−675.
  143. Oshima, K. Evidence on Horisontal Transmission of Bovine Leukemia Virus due to Bloodsucking Tabanid flies / K. Oshima, et al. // Jap.J. Vet.Sci. -1981. -v. 43. P.70−80.
  144. Pashmi, M. PCR based RFLP genotyping of bovine lymphocyte antigen DRB3.2 in Iranian Holstein population / M. Pashmi, S. Qanbari, S.A.Ghorashi and A. Salehi // Pak. J. Biol. Sci. 2007. V. 10. № 3. P. 383−387.
  145. Petropoulos, C.J. Appendix 2: Retroviral taxonomy, protein structure, sequences, and genetic maps (In) Coffin, J.M. (Ed.) — Retroviruses // Cold Spring Harbor, New York, NY, USA, Cold Spring Harbor Laboratory Press. 1997. P.757.
  146. Ripoli, M.V. New polymorphisms for the BoLA-DRB3 upstream regulatory region / M.V. Ripoli, E.E.Villegas-Castagnasso, P. Peral-Garcia, G. Giovambattista //Tissue Antigens. 2005. — № 66 (2). — P. 136 — 137.
  147. Ripoli, M.V. Gene frequency distribution of the BoLA-DRB3 locus in saavedreno Creole dairy cattle/ M.V. Ripoli, J.P. Liron, J.C. De Luca, F. Rojas, F.N.Dulout // Biochemical genetics. 2004. V.42. № 7−8. P.231−240.
  148. Rola, M. The detection of bovine leukemia virus proviral DNA by PCR-ELISA / M. Rola, J. Kuzmak // J.Virol.Methods. 2002. V.99. P.33−40.
  149. Rupp, R. Association of bovine leukocyte antigen (BoLA) DRB3.2 with immune response, mastitis, and production and type traits in Canadian Holsteins / R. Rupp, A. Hernandez, B.A. Mallard // J.Dairy.Sci. 2007. V.90. № 2. P.1029−1038.
  150. Rumyantsev, S. N. Observations on constitutional resistance to infection / S. N. Rumyantsev// Immunology Today. 1992. — № 13. — P. 184 — 187.
  151. Sagata, N. Complete nucleotide sequence of the genome of bovine leukemia virus: its evolutionary relationship to other retroviruses/ N. Sagata, T. Yasunaga, J. Tsuzuku Kawamura, et al. // Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A. -1985. -V.82. — № 3. P.677−681.
  152. Sitte, K. Identification and characterization of new BoLA-DRB3 alleles by heteroduplex analysis and direct sequencing / K. Sitte, I.J. East, M.F. Lavin, E.C. Jazwinska// Anim. Genet.-1995. -№ 26(6). P. 413−417.
  153. Sharif, S. Presence of glutamine at position 74 of pocket 4 in the BoLA DR antigen binding groove with occurrence of clinical mastitis caused by Staphylococcus species / S. Sharif, B.A. Mallard // Immunogenetics.- 2000. — № 51. — P. 733 — 742.
  154. Spooner, R. Evidence for a possible major histocompatibility complex (BoLA) in cattle / R. Spooner, H. Leveziel, F. Grosclaude et.al. // Immunogenetics. 1978. № 5.P.335−346.
  155. Straub, O.C. Horisontal Transmission studies on enzootic bovine leucosis / O.C. Straub// Ann. Rech. vet. 1978.- V.9. — № 4- P. 809−813.
  156. Suh, G. H. Establishment of a bovine leukemia virus-free dairy herd in Korea / G. H. Suh, J.C. Lee, C.Y. Lee // J Vet Sci.- 2005. Sep. — № 6(3).- P. 227−230.
  157. Tajima, S. Induction of expression of bovine leukemia virus (BLV) in blood taken from BLV-infected cows without removal of plasma / S. Tajima, Y. Aida// Microbes Infect.- 2005.- Aug-Sep.- № 7.- P. 1211−1216.
  158. Van Eijk, M.J.T. Extensive polymorphism of the BoLA DRB 3 gene distinguished PCR-RFLP / M.J.T. Van Eijk, J.A. Stewart-Haynes, H.A. Lewin // Anim. Genet. 1992. V.-23. — P.483 — 496
  159. Wyatt, C.R. Persistent infection of rabbits with bovine leukemia virus associated with development of immune dysfunction/ C.R. Wyatt, D. Wingett, J.C. White, C.D. Buck, D. Knowles, R. Reeves, N.S. Magnuson // J.Virol. 1989. V.63. P.4498−4506.
  160. Xu, A. Polymorphism in BoLA DRB3 Exon 2 correlates with resistance to persistent lymphocytosis caused by bovine leukemia virus / A. Xu, V.J. T. Van Eijk, Ch. Park // J. of Immunology. — 1993. -V. 151. -№ 12. — P. 6977 — 6985
  161. Zhao, T.M. Quantification of HTLV-I proviral load in experimentally infected rabbits/ T.M. Zhao, B. Hague, D.L. Caudell, R.M. Simpson, T.J. Kindt //Retrovirology. 2005. V.2. P.34.
  162. Zanotti, M. Association of BoLA Class II Haplotypes with Subclinical Progression of Bovine Leukemia Virus Infection in Holstein-Friesian Cattle /M. Zanotti, G. Poli, W. Ponti et al. // Animal Genetics. 1996. V.27. P.337−341.
  163. Zanotti, M. Association of BoLA class II haplotypes with subclinical progression of bovine leukaemia virus infection in Holstein Friesian cattle / M. Zanotti et al. // Anim. Genet. -1996. — 27. — P.337 — 341
Заполнить форму текущей работой

Сессия? Спокойно!